全 文 ：基金项目:国家自然科学基金资助项目(30873367)
作者简介:贺石麟，男，硕士 研究方向:中药化学及药效物质基础研究 * 通讯作者:倪艳，女，教授，硕士生导师 研究方向:中药的药
效物质基础及制剂的现代化研究 Tel /Fax:(0351)4668028 E-mail:niyan_01@ hotmail. com
还阳参多糖 CTP3-E的结构分析
贺石麟1，李媛媛2，李肃3，彭照琪1，李小贝1，倪艳1* (1．山西省中医药研究院，太原 030012;2．北京中医药大学，北京 100102;3.
吕梁市人民医院，山西 吕梁 033000)
摘要:目的 研究还阳参(Crepis turczaninowii C. A. Mey)中分离纯化的纯多糖 CTP3-E 结构分析。方法 采用糖组成分析、甲
基化分析和波谱分析方法确定 CTP3-E的结构。结果 CTP3-E重均分子量为 12 182，由甘露糖、鼠李糖、葡萄糖醛酸、半乳糖
醛酸、葡萄糖、半乳糖、阿拉伯糖组成。红外光谱和核磁共振波谱(Dept，HMBC，HMQC 等)研究确定 CTP3-E 化学结构。结论
CTP3-E是首次从该植物中分离得到的酸性杂多糖。
关键词:屠还阳参;多糖;CTP3-E;结构分析
doi:10. 11669 /cpj. 2013. 22. 017 中图分类号:Ｒ284 文献标志码:A 文章编号:1001 － 2494(2013)22 － 1959 － 06
Structural Characterization of the Polysaccharide CTP3-E from Crepis turczaniowii C. A. Mey.
HE Shi-lin1，LI Yuan-yuan2，LI Su3，PENG Zhao-qi1，LI Xiao-bei1，NI Yan1* (1. Shanxi Province Institute of Tradition-
al Chinese Medicine，Taiyuan 030012，China;2. Beijing University of Chinese Medicine，Beijing 100102，China;3. Lvliang City Peo-
ples Hospital，Lvliang 033000，China)
ABSTＲACT:OBJECTIVE To characterize the chemical structure of a homogenous polysaccharide CTP3-E purified from Crepis turc-
zaninowii C. A. Mey. METHODS Sugar composition analysis，methylation analysis，IＲ and NMＲ (Dept，HMBC，HMQC，etc.)were
used to elucidate the structure. ＲESULTS The molecular weight of CTP3-E was 12182. CTP3-E was composed of mannose，
rhamose，glucuronic acid，galacturonic acid，glucose，galactose，and arabinose. CONCLUSION CTP3-E is a new acidic hetero-
polysaccharide and was isolated from this medicinal plant for the first time.
KEY WOＲDS:Crepis turczaninowii C. A. Mey;polysaccharide;CTP3-E;struchral analysis
还阳参为菊科植物屠还阳参(Crepis turczani-
nowii C. A. Mey)全草，别名驴打滚儿草，味苦，微寒，
具有止咳平喘、清热解毒、益气等功效，民间常用于
治疗支气管炎、肺结核、喘息性慢性支气管和无名肿
毒等疾病，疗效显著［1］。前期研究发现，还阳参富
含多糖类成分，可明显改善模型大鼠体内糖、脂代谢
紊乱，对 2 型糖尿病具有良好作用。然而关于还阳
参多糖的化学成分研究至今未有报道，本实验从还
阳参水溶性多糖中分离得到一多糖化合物 CTP3-E，
并进行结构研究，为进一步研究其构效关系提供
基础。
1 仪器与材料
1. 1 仪器
TU －1910 型双光束紫外可见分光光度计(北京
普析通用仪器有限公司) ;LGJ － 18A 冷冻干燥机
(北京四环科学仪器厂有限公司) ;双显双控恒温磁
力搅拌器 SH － 4(北京北德科学器材有限公司) ;
pH －3C数字式 pH计(上海理达仪器厂) ;台式高速
冷冻离心机 H － 2050Ｒ(湖南湘仪试验室仪器有限
公司) ;Agilent Technologies 7890A(安捷伦科技有限
公司) ;Agilent Technologies 5975C(安捷伦科技有限
公司) ;Nicolet 6700(美国热电尼高力仪器公司) ;
Bruker 600MHz(德国 Bruker公司)。
1. 2 材料
实验用还阳参采集于山西省山阴县玉井镇，经
山西省药中医药研究院倪艳主任药师鉴定为菊科植
物屠还阳参(Crepis turczaninowii C. A. Mey)全草。
DEAE-52(Whatman 公司) ;葡聚糖凝胶 G100
(Pharmacia公司) ;透析袋(MW3500，北京拜耳迪生
物技术有限公司) ;1-乙基-3-(3-二甲氨丙基)碳二
亚胺盐酸盐(Kayon 公司) ;溴化钾(Therom 公司) ;
其余试剂均为分析纯。
右旋糖酐对照品(相对分子质量:4 600、7 100、
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21 400、41 100、133 800，批号:140637-2000-01) ;阿
拉伯糖(批号:1506-200001) ;D-无水葡萄糖(批号:
110833-200503) ;鼠李糖(批号:111683-200401) ;半
乳糖(批号:100226-201105) ;甘露糖(批号:140651-
200602) ;D-葡萄糖醛酸(批号:140648-200602) ;D-
半乳糖醛酸(批号:111646-200301)均购自中国药品
生物制品检定所。
2 实验方法
2. 1 CTP3-E提取分离［2］
取还阳参药材适量加 10 倍量水，煎煮 3 次，每
次 1 h，滤液合并，浓缩至生药与浸膏比 1 ∶ 1(g·
mL －1)。浓缩液加入体积分数 95%乙醇至终浓度为
体积分数 40%乙醇沉淀，静置 12 h，3 000 r·min －1
离心 15 min，上清液加体积分数 95%乙醇至终浓度
体积分数 60%乙醇沉淀，静置 12 h，3 000 r·min －1
离心 15 min。沉淀依次用 95%乙醇、无水乙醇、石
油醚洗涤，干燥，除蛋白、脱色，得还阳参多糖 CTP3。
精密称取 CTP3 样品 0. 7 g，溶于 15 mL 蒸馏水，上
样至 DEAE-52 柱，依次用 0. 0、0. 02、0. 05、0. 1、0. 2、
0. 5 mol·L －1 NaCl溶液洗脱，流速为 1 mL·min －1，
以阿拉伯糖为对照，按苯酚-硫酸法检测 A480，洗脱
至无糖液流出，将 0. 2 mol·L －1洗脱部位经葡聚糖
凝胶 G100 层析柱纯化，以去离子水为洗脱剂，洗脱
得到一还阳参多糖化合物 CTP3-E。
2. 2 纯度鉴定及相对分子质量测定
2. 2. 1 紫外光谱扫描分析 精密称取 CTP3-E 5
mg，溶于 5 mL 蒸馏水，配置成质量浓度为 1 mg·
mL －1的溶液，同法配置牛血清白蛋白溶液，以蒸馏
水为对照，在 200 ～ 400 nm处进行紫外光谱扫描。
2. 2. 2 高效凝胶渗透色谱法 采用高效凝胶渗透
色谱法测定，色谱条件:色谱柱:TSKgel G4000SWXL
凝胶色谱柱(7. 8 mm × 30 cm，Tosoh，Japan) ;Shi-
madzu ＲID － 10A 示差折光检测器;流动相:0. 71%
硫酸钠水溶液;流速:0. 5 mL·min －1;柱温:35 ℃;
进样量:20 μL。CTP3-E 及标准右旋糖酐对照品分
别按照上述色谱条件分析，根据标准右旋糖酐对照
品的相对分子质量对数与保留时间的标准曲线，通
过 GPC数据处理软件求得样品相对分子质量［3］。
2. 3 单糖组成分析
精密称取 CTP3-E 5 mg，加入 2 mol·L －1三氟乙
酸 2 mL，封管，100 ℃水解 6 h，加入 3 mL甲醇并蒸
干，反复 4 次以除去剩余的三氟乙酸，40 ℃真空干
燥过夜。然后加入蒸馏水并定容至 1 mL，即得水解
液，精密吸取水解液 100 μL，按文献［4］项下方法制
备 PMP柱前衍生物，进行 HPLC分析。
色谱条件:色谱柱:SinoChrom ODS-BP(4. 6
mm ×250 mm，5 μm) ;检测波长:250 nm;室温;流
速:1. 0 mL·min －1;进样量:20 μL。流动相:溶剂
A，15% (V /V)乙腈 + 0. 05 mol·L －1磷酸缓冲液
(KH2PO4-NaOH，pH 6. 8) ;溶剂 B，40%(V /V)乙腈
+ 0. 05 mol·L －1磷酸缓冲液(KH2PO4-NaOH，pH
6. 9)。梯度模式:时间梯度为:0→14→35 min，相应
溶剂 A浓度梯度为 0→20%→40%。通过与单糖标
准品的保留时间和峰面积比对分析，得到 CTP3-E
组分所含单糖的种类，采用面积归一化法计算得到
单糖摩尔比。
2. 4 高碘酸氧化和 Smith降解
高碘酸氧化和 Smith 降解反应按文献［5-6］方法
进行。
2. 5 甲基化分析
2. 5. 1 糖醛酸还原 糖醛酸还原按文献［7］项下方
法进行。用间羟基联苯法［8］检测糖醛酸是否还原
完全。
2. 5. 2 甲基化反应 将“2. 6. 1”项下糖醛酸还原
样品应用改良的 Ciucanu 和 Kerck 法［9］及文献［10］
项下方法进行。IＲ检测确证甲基化完全后，将甲基
化产物用 2 mol·L －1三氟乙酸水解，硼氢化钾还原，
经醋酸乙酰化制备成部分甲基化阿尔迪醇乙酸酯衍
生物后进行 GC-MS分析。
色谱条件:GC 条件:色谱柱:HP-5 石英毛细管
柱;初始温度:145 ℃，以 5 ℃·min －1升温至 165
℃，保留 5 min;以 5 ℃·min －1升温至 190 ℃，保留 5
min;以 10 ℃·min －1升温至 245 ℃，保留 5 min。质
谱条件:离子源:230 ℃;前进样口温度:230 ℃;MS
四级杆温度:150 ℃;辅助通道-2 温度:280 ℃;分流
比 20∶ 1;柱流量:1 mL·min －1;质量范围:25 ～ 500;
EI源溶剂延迟:5 min。
2. 6 红外光谱分析
取 1 mg CTP3-E，KBr压片，于 4 000 ～ 400 cm －1
内进行红外光谱扫描。
2. 7 核磁共振光谱分析
将 140 mg CTP3-E溶于 0. 5 mL重水中，室温条
件下进行核磁测试。实验参数均采用 Bruker 标准
程序。
3 结果和讨论
3. 1 还阳参多糖分离纯化
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还阳参多糖经热水浸提、乙醇沉淀、脱色、除蛋
白后得类白色粗多糖 CTP3，按原药材计其得率约为
6. 71%，以阿拉伯糖为对照，按苯酚-硫酸法测得多
糖含量为 83. 63%;以牛血清白蛋白为对照，按考马
斯亮蓝法测得蛋白质含量为 0. 73%。CTP3 经 DE-
AE-52 纤维素离子交换色谱柱及 Sephadex G-100 色
谱柱进一步分离纯化，得白色无定形粉末状多糖
CTP3-E，按原药材计其得率约为 0. 011%。
3. 2 纯度鉴定及相对分子质量测定
牛血清白蛋白、CTP3-E紫外光谱扫描结果表明
牛血清白蛋白在 280 nm 处有明显吸收峰(图 1) ，
CTP3-E在 280 nm处观察无明显吸收，说明多糖中
基本不含核酸和蛋白质。经 HPGPC 色谱分析(图
2) ，表明 CTP3-E为相对分子质量均一的单一多糖，
重均相对分子质量为 12 182。
3. 3 单糖组成分析
CTP3-E水解 PMP衍生化后经高效液相色谱分
析(图 3、4) ，结果表明，该多糖由甘露糖、鼠李糖、D-
葡萄糖醛酸、D-半乳糖醛酸、D-无水葡萄糖、半乳糖、
阿拉伯糖组成，其摩尔比为 2. 50 ∶ 16. 80 ∶ 1. 00 ∶
17. 70∶ 12. 90∶ 68. 13∶ 40. 28。
3. 4 高碘酸氧化和 Smith降解结果分析
还阳参多糖 CTP3-E 经高碘酸氧化，紫外 223
nm检测反应完全后，测得摩尔己糖消耗 0. 603 mol
高碘酸，大于甲酸生成量(0. 032 mol)的 2 倍，表明
CTP3-E存在 1→或 1→6 键型，还存在只消耗高碘
酸而不生成甲酸的类型，即 1→2 或 1→2，6、1→4、1
→4，6 键型。
图 1 CTP3-E紫外扫描图
Fig. 1 UV spectra of CTP3-E
图 2 CTP3-E的 HPGPC图谱
Fig. 2 HPGPC chromatograms of CTP3-E
图 3 混合标准单糖的 PMP衍生物高效液相色谱图
1 －甘露糖;2 －鼠李糖;3 － D-葡萄糖醛酸;4 － D-半乳糖醛酸;5 － D-无水葡萄
糖;6 －半乳糖;7 －阿拉伯糖
Fig. 3 HPLC chromatograms of mixed monosaccharide stand-
ards
1 － mannose;2 － rhamnose;3 － glucuronic acid;4 － galacturonic acid;
5 － glucose;6 － galactose;7 － arabonose
图 4 CTP3-E PMP衍生物高效液相色谱图
1 －甘露糖;2 －鼠李糖;3 － D-葡萄糖醛酸;4 － D-半乳糖醛酸;5 － D-无水葡萄
糖;6 －半乳糖;7 －阿拉伯糖
Fig. 4 HPLC chromatograms of PMP derivative of CTP3-E
1 － mannose;2 － rhamnose;3 － glucuronic acid;4 － galacturonic acid;5 － glu-
cose;6 － galactose;7 － arabonose
高碘酸氧化后进行 Smith 降解，检出甘油，可能
存在 1→、1→2、1→6、1→2，6 键型;检出赤藓醇，可
能存在 1→4、1→4，6 键型。袋外部分检出 Ara，说
明 Ara不被高碘酸氧化的键型或是位于主链末端或
是间隔排列在能被高碘酸氧化的键型之间。
3. 5 甲基化结果分析
CTP3-E经甲基化、水解、还原及乙酰化后得到
甲基化糖醇乙酸酯，进行 GC-MS 分析，对照不同单
糖的主要离子碎片，可推断 CTP3-E 中糖基的各种
连接键型，结果见表 1。
甲基化结果表明，Glc、Gal、Ara和 Ｒha位于非还
原末端;Glc有 1→6、1→3，6 的连接方式;Man 连接
z方式为 1→3，6;Ara 连接方式为 1→5;Gal 连接方
式为 1→6，1→3，6。
3. 6 红外谱图分析
CTP3-E经过 IＲ测定，结果见图 5。
由图 5 可得:3 425. 02 cm －1处为 O-H伸缩振动
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峰;2 926. 07 和 1 417. 76 cm －1分别为 C-H伸缩振动
和变角振动，1 615. 86 cm －1处吸收峰为羰基的 C =
O伸缩振动，它和 C-H 的伸缩振动构成了糖环的特
征吸收;1 073. 47 cm －1为 C-O-H或 C-O-C结构中 C-
O键的弯曲振动，890 cm －1左右有吸收峰，说明结构
中主要存在 β糖苷键，在 875 与 813 cm －1处几乎无
吸收，说明甘露糖含量很低。CTP3-E单糖组成结果
显示，由甘露糖、鼠李糖、D-葡萄糖醛酸、D-半乳糖醛
酸、D-无水葡萄糖、半乳糖、阿拉伯糖组成。葡萄吡
喃糖、半乳吡喃糖、甘露吡喃糖、阿拉伯吡喃糖的特
征吸收在 810 ～ 905 cm －1之间，CTP3-E 红外谱图在
此几乎无吸收，需进一步借助其他谱图综合分析。
3. 7 核磁共振光谱结果分析
在 CTP3-E的1H-NMＲ谱图中，存在化学位移大
于 δ5. 0，说明糖苷键构型为 α构型，另有部分 H1 质
子峰化学位移小于 δ5. 0，说明多糖 CTP3-E 中同时
还存在部分 β 构型糖苷键。在 δ1. 302 处存在共振
信号，归属为鼠李糖 H-6 的甲基峰，在 δ3. 5 ～ 4. 26
处共振峰严重重叠，还需借助其他谱图，为质子归属
提供可靠依据。CTP3-E 的13 C-NMＲ 见图 6，δ18. 1
为 Ｒha［11］单元的 6 位甲基碳信号;δ174. 1、δ175. 2
的信号是酸性多糖中羰基的共振信号，分别归属于
GalUA的 C-6［11］和 GlcUA的 C-6，说明 CTP3-E含有
糖醛 酸，为 酸 性 多 糖。 δ101. 36、δ102. 50 和
δ103. 62、δ108. 44 证明分别为 Ｒha、D-Gal，β-D-Gl-
cUA的异头碳信号。
CTP3-E 的 DEPT-135°谱图见图 7，δ61. 26 与
δ68. 32 处的负信号，分别归属为葡萄糖的 6 位未发
生取代和发生取代的信号，δ62. 52 与 δ69. 92，、
69. 88 处的负信号分别归属为半乳糖的 6 位未发生
取代和发生取代的信号［11］，δ66. 58 处的负信号为甘
露糖的 6 位发生取代的信号。 δ62. 64、δ62. 49、
δ66. 67 处的负信号分别归属为 β-D-Ara、α-L-Ara、α-
D-Ara的 5 位碳未发生取代的信号，δ69. 85 处存在
负信号，归属为 α-L-Ara在 5 位碳发生取代的信号。
综合1D-NMＲ、2D-NMＲ 并参考文献报道，对
CTP3-E中的糖残基的1 H-NMＲ 和13 C-NMＲ 的化学
位移和构型进行确定，结果见表 2。
在 HMQC 谱图中，存在 δ69. 92，δ3. 945，δ3. 955 信
号，归属 Gal的 H-6，从 COSY谱图中可得 H-6与 H-1、
δ3. 598存在远程相关，确定 δ3. 598 为 Gal 的 H-3 的信
号，从 HMBC中推测 δ81. 97为 Gal的 C-3，说明 Gal 在
3、6位碳上有取代，Gal 存在(1→3，6)-β-D-Gal 的连接
方式 。同时根据 DEPT-135°谱图结果推测，CTP-E 中
同时存在 β-D-Gal(1→及(1→6)-β-D-Gal［12-14］。δ82. 24
的吸收峰说明存在(1→4)-β-D-GalUA［12］。
表 1 CTP3-E甲基化分析结果
Tab. 1 Methylation analysis results of CTP3-E
Methylated sugar Fagments m /z Linkage
2，3，6-tri-O-methyl-di-glucose 43，58，71，87，101，117，129，143，161，187，233 →4)-D-Glc-(1→
2，3，4-tri-O-methyl-，beta-glycero-di-glucohepto 69，75，88，101，110，127 →6)-β-D-Glc-(1→
2，3，4，6-tetra-O-methyl-d-glucitol 59，71，87，101，117，129，145，161，205 D-Glc-(1→
2，3-di-O-methylgluctitol 58，71，101，117，129，142， →4，6)-D-Glc-(1→
2，4-di-O-methyl-Mannitol 43，58，87，101，117，129，143，189，233，245 →3，6)-D-Man-(1→
1，4，5-tri-O-acetyl-2，3-l-O-methylarabinitol 43，58，71，87，101，117，129，161 →5)-α-L-Ara-(1→
D-arabinose 43，57，87，103，115，145，187，201 D-Ara-(1→
alpha-l-rhamnopyranose 71，88，101，115，142，167 α-L-Ｒha-(1→
2，4-di-O-methyl-6-deoxy-D-galactitol 43，58，71，87，101，117，129，145，205 →3，6)-D-Gal-(1→
2，3，4-tri-O-methyl-D-galactitol 43，58，71，87，101，117，129，145，161，233 →6)-D-Gal-(1→
2，3，4，6-tetra-O-acetyl-l-d-galactopyranoside 81，115，129，141，169，243 D-Gal(→
图 5 CTP3-E红外图谱
Fig. 5 IＲ Spectra of CTP3-E
图 6 CTP3-E的13C-NMＲ谱图
Fig. 6 13C-NMＲ Spectrum of CTP3-E
·2691· Chin Pharm J，2013 November，Vol. 48 No. 120 中国药学杂志 2013 年 11 月第 48 卷第 22 期
根据 HMQC谱图，存在 δ66. 58，δ3. 855，δ3. 834
的信号，确定Man的 H-6，说明Man于 6 位碳上有取
代，δ80. 96 吸收峰说明 Man 在 C-3 位发生了取代，
因此认为 Man 的存在形式为(1 → 3，6)-α-D-
Man［15］。
在 HMQC 谱图，存在 δ61. 26，δ3. 868 与 δ3. 712、
δ68. 32，δ4. 03，与 δ3. 95的信号峰，确定 Glc 有 2 种连
接方式的 H-6，而在 HMBC 谱图中，存在 δ79. 31，
δ3. 602的交叉峰，归属为 Glc的 C-4 /H-5，说明 Glc在
4位碳上有取代，可能存在(1→4)-α-D-Glc，同时存在
(1→6)-α-D-Glc，(1→4，6)-α-D-Glc ，δ81. 1 的信号说
明可能存在 1，3-连接的 Glc残基［13-14］。
根据13 C-NMＲ 和 HMBC 谱图，存在 δ101. 25，
δ3. 686 的交叉峰，确认为 β-D-Ara 的 C-1 /H-2。
HMQC谱图中，存在 δ107. 38，δ5. 128 的信号，证明是
α-L-Ara 的 C-1 /H-1，另外，HMBC 谱图中 δ109. 22，
δ4. 243的交叉峰归属为 α-L-Ara 的 C-1 /H-2，δ69. 85
信号说明存在 5 位碳上有取代的残基 (1→5)-α-L-
Ara。存在 δ103. 44，δ4. 169 的信号，归属为 α-D-Ara
的 C-1 /H-1，在 HMBC 谱图中存在 δ80. 85，δ4. 684 的
交叉峰，说明 α-D-Ara 的 H-1 和 C-2 存在相关，说明
可能存在 1，2-连接的 Ara残基［12，16］。
图 7 CTP3-E的 DEPT-135°谱图
Fig. 7 DEPT-135° spectrum of CTP3-E
表 2 CTP3-E中糖残基13C-NMＲ和1H-NMＲ化学位移
Tab． 2 Chemical shifts for the resonances of glycosyl residues of CTP3-E1 in 13C-NMＲ and 1H-NMＲ spectra
Sugar residue
Chemical shifts of 13C-NMＲ and 1H-NMＲ
C-1
H-1
C-2
H-2
C-3
H-3
C-4
H-4
C-5
H-5
C-6
H-6
β-D-Gal(1→ 102. 50 70. 82 73. 1 69. 94 74. 78 62. 52
4. 525 3. 57 3. 58 4. 026 3. 583 3. 729，3. 779
→3，6)-β-D-Gal(1→ 103. 55 70. 82 81. 97 69. 94 74. 78 69. 92
4. 54 3. 57 3. 598 4. 026 3. 583 3. 945，3. 955
→6)-β-D-Gal(1→ 103. 02 70. 82 73. 1 69. 94 74. 78 69. 88
4. 62 3. 57 3. 58 4. 026 3. 583 3. 945，3. 955
α-D-Glc-(1→ 100. 14 72. 43 73. 75 72. 97 72. 05 61. 26
5. 078 3. 568 4. 05 3. 393 3. 602 3. 868，3. 712
→4)-α-D-Glc-(1→ 100. 14 72. 43 73. 75 79. 3 72. 05 61. 26
5. 078 3. 568 4. 05 3. 96 3. 602 3. 712，3. 868
→4，6)-α-D-Glc-(1→ 100. 14 72. 43 73. 75 78. 19 72. 05 68. 32
5. 078 3. 568 4. 05 4. 189 3. 602 3. 95，4. 03
→6)-α-Glc-(1→ 100. 14 72. 43 73. 75 72. 97 72. 05 68. 32
5. 078 3. 568 4. 05 3. 393 3. 602 3. 95. 4. 03
→3)-α-D-Glc-(1→ 100. 14 72. 43 81. 1 72. 97 72. 05 61. 26
5. 078 3. 568 3. 949 3. 393 3. 602 3. 712，3. 868
→3，6)-α-D-Man-(1→ 105. 09 72. 44 80. 96 70. 63 73. 34 66. 58
5. 103 3. 688 4. 173 3. 585 3. 819 3. 855，3. 834
α-L-Ara-(1→ 107. 38 83. 75 78. 5 79. 7 62. 49
5. 128 4. 173 3. 851 3. 848 3，71，3. 86
→5)-α-L-Ara-(1→ 109. 22 81. 23 73. 45 79. 96 69. 85
5. 297 4. 243 3. 799 3. 977 3. 792，3. 696
β-D-Ara-(1→ 101. 25 69. 78 69. 78 69. 78 62. 64
5. 12 3. 868 3. 868 3. 868 3. 717，3. 782
→2)-α-D-Ara-(1→ 103. 44 80. 85 72. 33 69. 62 66. 67
4. 684 4. 169 3. 707 3. 683 3. 821，3. 855
α-D-GlcUA-(1→ 108. 44 75. 85 72. 31 70. 09 72. 33 175. 2
5. 116 3. 992 3. 706 3. 812 3. 695 －
β-L-Ｒha(1→ 101. 36 73. 69 71. 78 73. 58 70. 82 18. 1
5. 12 3. 649 3. 41 3. 662 3. 889 1. 302
→4)-β-D-GalUA-(1→ 104. 34 76. 69 77. 29 82. 24 76. 06 174. 1
4. 66 4. 03 3. 975 4. 132 3. 74 －
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中国药学杂志 2013 年 11 月第 48 卷第 22 期 Chin Pharm J，2013 November，Vol. 48 No. 22
4 讨论
4. 1 通过以上实验研究推测，CTP3-E 为含有少量
糖醛酸的酸性杂多糖，其主要重复单元结构见图 8。
4. 2 据文献报道［17］，阿拉伯糖能抑制水解双糖的
酶，对蔗糖的代谢转化有阻断作用，可以降低血糖、
预防肥胖、改善糖尿病症状等多重功效。在对
CTP3-E结构分析中发现其阿拉伯糖含量较高，并且
阿拉伯糖(即→5)-α-L-Ara-(1→)位于结构主链部
分，由此推测，还阳参多糖 CTP3-E 的降血糖活性可
能与其主链是由阿拉伯糖构成有关。
图 8 还阳参多糖 CTP3-E结构单元
Fig. 8 Chemical structure of CTP3-E from Crepis turczaninowii C. A. Mey
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(收稿日期:2013-02-16
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·4691· Chin Pharm J，2013 November，Vol. 48 No. 120 中国药学杂志 2013 年 11 月第 48 卷第 22 期