全 文 ： 黑果腺肋花楸多酚稳定性的研究 

高凝轩 1，李 斌 1,*，杜姗姗 2，孟宪军 1，张 琦 1，矫馨瑶 1，陈世富 3
（1.沈阳农业大学食品学院，辽宁 沈阳 110161；2.沈阳综合保税区出入境检验检疫局，辽宁 沈阳
110169；3.辽宁富康源黑果腺肋花楸科技开发有限公司，辽宁 海城 114200）
 
摘 要：通过测定黑果腺肋花楸多酚在不同条件下多酚保留率的变化，分别研究了在不同 pH 值、糖类、温
度、光照强度、氧化还原剂和防腐剂条件下对黑果腺肋花楸多酚稳定性影响。结果表明：在 pH 2~3 的条件
下多酚保留率可达 96.12%以上；糖类对多酚稳定性具有一定增强作用，多酚保留率与糖质量浓度呈正相关，
但不同糖类对多酚保留率并无显著差异；随着光照强度的增加，多酚保留率显著下降，在避光条件下多酚
最为稳定；当温度超过 50 ℃时，温度对多酚保留率影响显著；氧化还原剂对多酚具有显著的破坏作用，
而氧化剂对多酚的影响明显大于还原剂；防腐剂可有效减少多酚的降解，但随防腐剂质量浓度的增加，多
酚保留率并无显著增高，低质量浓度的防腐剂即可有效提高多酚稳定性。
关键词：黑果腺肋花楸；多酚；稳定性
The Stability of Polyphenols from Aronia Melanocarpa
GAO Ningxuan1, LI Bin1,DU Shanshan2, MENG Xianjun1, ZHANG Qi1, JIAO Xinyao1, CHEN Shifu3
(1. College of Food Science, Shenyang Agriculture University, Shenyang 110161, China; 2. Shenyang Free
Trade Zone Entry-Exit Inspection and Quarantine Bureau, Shenyang 110169, China; 3. Liaoning Fukangyuan
Aroniamelanocarpa Technology Development Co. Ltd., Haicheng 114200, China)
Abstract: This research has determined the stability of aronia melanocarpa polyphenol on pH, sugar, temperature,
light, oxidant and preservative. The polyphenol conservation could be 96.12% on pH 2; Sugar had a positive effect
on the stability of polyphenols, and the retention rate was positively correlated with the sugar concentration, but
there was no significant difference in the preservation rate of the different sugars; With the increase of light, the
retention rate of polyphenols decreased significantly, and polyphenol was the most stable under the dark condition;
When the temperature was above 50 ℃, the temperature has a significant effect on the retention rate of
polyphenols; Reductant-oxidant had a negative effect on polyphenol, and oxidant had more; Preservative can
effectively reduce the degradation of polyphenols, but with the increase of the concentration of preservatives, the
retention rate of polyphenols was not significantly increased.
Key words: aronia melanocarpa; polyphenols; stability

黑果腺肋花楸，又名不老莓、野樱莓，属蔷薇科，原产于北美洲，在欧洲有大面积种植及成规模
的加工产业。我国先后从朝鲜、俄罗斯、美国引进了 8  个品种，目前，我国已拥有了该树种的较丰
富的种植资源基础。黑果腺肋花楸果实为深蓝色小浆果，呈圆形。果实一般用于加工果酱、果酒、果
汁、果脯、罐头等产品。其果实含有丰富的酚类物质，可以有效地清除体内产生的自由基，降低血脂、
血糖含量和有效地调节人体免疫系统，维持人体正常机能[1‐3]。国外研究结果表明，黑果腺肋花楸果
实中富含黄酮、花青素和酚酸等多酚类物质，且多酚含量是目前已知植物果实中含量最高的，每 100 
g黑果腺肋花楸鲜果中所含多酚可达到 2 050~2 560 mg 没食子酸当量。随着其抗氧化、抗炎、降血糖、
                                                              
收稿日期：2016-06-30
基金项目：国家自然科学基金面上项目（31671863）；国家重点研发计划专项资助（2016YFD0400200）；
沈阳农业大学天柱山英才计划项目资助(2014)这是编号么是；
作者信息：高凝轩（1990—），男，硕士研究生，研究方向为浆果深加工及功能性成分研究。E-mail：
gaoningxuan1990@163.com
*通信作者：李斌（1979—），男，副教授，博士，研究方向为浆果深加工及功能性成分研究。E-mail：
libinsyau@163.com
2016-10-15
网络出版时间：2016-10-21 22:07:15
网络出版地址：http://www.cnki.net/kcms/detail/11.2206.TS.20161021.2207.162.html
 
降血脂等保健功能不断被发现，国外开始针对其物质组成、抗氧化能力及各种保健功能的作用机理展
开一系列研究[4‐7] ，而国内对于黑果腺肋花楸的食用研究正处于起步阶段，对其中多酚类物质的稳定
性研究未见报道。本实验以黑果腺肋花楸冻果为原材料，针对不同加工、贮藏方式所引起的黑果腺肋
花楸多酚类物质含量的变化，分别对 pH 值、糖类、温度、光照强度、氧化还原剂及防腐剂因素对其
多酚稳定性的影响展开研究，旨在为黑果腺肋花楸的研究、相关产品的生产及深加工提供理论依据。 
 
1 材料与方法

1.1 材料与试剂
黑果腺肋花楸冻果：黑果腺肋花楸果实采自于辽宁省海城富康源黑果腺肋花楸科技开发有限公
司，挑选出无病虫害和机械损伤且成熟度一致的黑果腺肋花楸富康源 1 号果实，清洗沥干后速冻，并
于－80 ℃超低温冰箱中冻藏；Folin-酚试剂、没食子酸标准品、蒽酮试剂、XAD-7 型大孔树脂 美
国 Sigma 公司；其它试剂均为分析纯。 
1.2 仪器与设备
PHS-25 酸度计 上海理达仪器厂；SB25-12DTN 超声波清洗机 宁波新芝生物科技股份有限
公司；BSA224S 分析天平 赛多利斯科学仪器（北京）有限公司；JYL-C012 九阳料理机 九阳股
份有限公司；RE-52AA 旋转蒸发仪、紫外分光光度计 上海亚荣生化仪器厂；SHZ-D（Ⅲ）循环水
式真空泵 巩义市予华仪器有限责任公司；；层析柱（3.6 cm× 60 cm） 上海华美实验仪器厂；
BT-100B 数显恒流泵 上海沪西分析仪器厂有限公司；LG0.2 型真空冷冻干燥机 沈阳航天新阳速
冻设备制造有限公司。
1.3 方法
1.3.1 供试黑果腺肋花楸多酚样品的制备
将黑果腺肋花楸冻果于常温下解冻，蒸馏水清洗后使用料理机打成果浆。使用超声波辅助提取，
称取一定量黑果腺肋花楸果浆按料液比 1:44（m/V）加入 55%乙醇溶液搅匀，在提取温度 45 ℃、超
声功率 500 W 条件下提取 90 min。真空抽滤，滤渣在相同条件下提取 2 次，合并滤液，使用旋转蒸
发仪于 45 ℃条件下减压浓缩除去乙醇，得黑果腺肋花楸多酚浓缩液[8]。将多酚浓缩液通过装有 XAD-7
型大孔树脂层析住纯化多酚，在 2 mL/min 的流速下上样，并使用 5 BV 体积蒸馏水洗脱除杂，之后使
用 4.5 BV 体积的 95%乙醇洗脱多酚，洗脱流速为 2 mL/min。将多酚洗脱液通过旋转蒸发仪，于 45 ℃
条件下减压浓缩除去乙醇后放入真空冷冻干燥机中干燥，得黑果腺肋花楸多酚冻干粉，测定冻干粉中
多酚含量，使用时按需要配制成不同质量浓度水溶液备用[9]。
1.3.2 多酚含量测定及标准曲线绘制
采用 Folin-酚比色法测定多酚含量，使用移液枪准确加入 1 mL 黑果腺肋花楸多酚样品溶液于 25
mL 试管内，同时依次加入 1 mL 50% Folin-酚显色剂、3 mL 7.5%碳酸钠溶液和 5mL 蒸馏水，振荡摇
匀，避光显色 2 h 后于 765 nm 波长处测定吸光度，使用没食子酸作为标准品。以吸光度（y）为纵坐
标，质量浓度（x）为横坐标，绘制标准曲线[10-11]。得线性回归方程，y=0.081 05+5.011 43x（R2=0.998）。
按下式计算样品溶液中多酚含量：
NAρ 
5.01143
0.08105-

式中：ρ为黑果腺肋花楸多酚含量/（mg/mL）；A 为 765 nm 波长处吸光度；N 为提取液稀释倍数。
1.3.3 黑果腺肋花楸多酚稳定性的研究
1.3.3.1 pH 值对黑果腺肋花楸多酚稳定性的影响
配制质量浓度为 1 mg/mL 黑果腺肋花楸多酚溶液并分别调至 pH 值为 2.0、3.0、4.0、5.0、6.0、
7.0、8.0，观察多酚溶液颜色变化，并在 260-800 nm 波长范围扫描最大吸收波长。移取 10 mL 多酚溶
液于 50 mL 容量瓶中，并用不同 pH 缓冲溶液定容，避光静置 24 h，测定多酚含量并计算多酚保留率
2016-10-15
 
[12-13]。
0ρ
ρ%多酚保留率
式中：ρ为处理前黑果腺肋花楸多酚含量/（mg/mL）；式中：ρ0为处理后黑果腺肋花楸多酚含量
/（mg/mL）。
1.3.3.2 糖类对黑果腺肋花楸多酚稳定性的影响
配制 pH 2.0 、1 mg/mL 黑果腺肋花楸多酚溶液，并配制质量浓度分别为 0、10、20、30、40、50
g/100mL 的葡萄糖、果糖、蔗糖溶液，并以 0 g/100mL 作为对照组。移取 10 mL 多酚溶液和 40mL 糖
溶液于 50 mL 容量瓶中并定容，于室温条件下避光静置 24 h，测定多酚含量及保留率[14]。
1.3.3.3 温度对黑果腺肋花楸多酚稳定性的影响
配制 pH 2.0、的 1 mg/mL 黑果腺肋花楸多酚溶液。移取 50 mL 多酚溶液于容量瓶中，分别置于 4、
20、30、50、70、90、100 ℃条件下避光静置 5 h，每隔 1 h 取样 1 次，观察溶液颜色变化并测定多
酚含量及保留率[15-16]。
1.3.3.4 光照强度对黑果腺肋花楸多酚稳定性的影响
配制 pH 2.0、1 mg/mL 黑果腺肋花楸多酚溶液。移取 50 mL 多酚溶液于容量瓶中，分别置于避光、
室内散射光、阳光、紫外光条件下静置 5 h，每隔 1 h 取样 1 次，观察溶液颜色变化并测定多酚含量
及保留率[17]。
1.3.3.5 氧化还原剂对黑果腺肋花楸多酚稳定性的影响
选用 H2O2作为氧化剂，配制 pH 2.0、1 mg/mL 黑果腺肋花楸多酚溶液，质量浓度并配制质量浓
度分别为 0、0.5、1.0、1.5、2%的 H2O2溶液。移取 10 mL 多酚溶液和 40mLH2O2溶液于 50 mL 容量
瓶中，并用多酚溶液定容，于室温条件下避光静置 5 h，每隔 1 h 取样 1 次，测定多酚含量及保留率[18]。
选用 Na2SO3 作为还原剂，配制 pH 2.0、1 mg/mL 黑果腺肋花楸多酚溶液，并配置质量浓度分别
为 0、0.5、1.0、1.5、2.0%的 Na2SO3溶液。移取 10mL 多酚溶液和 40mL Na2SO3溶液于 50 mL 容量瓶
中，并用多酚溶液定容，于室温条件下避光静置 5 h，每隔 1 h 取样 1 次，测定多酚含量及保留率[19]。
1.3.3.6 防腐剂对黑果腺肋花楸多酚稳定性的影响
选用苯甲酸钠作为防腐剂，配制 pH 2.0、1 mg/mL 黑果腺肋花楸多酚溶液，质量浓度并配制质量
浓度分别为 0、0.01、0.05、0.10、0.15%的苯甲酸钠溶液。移取 10mL 多酚溶液和 40mL 苯甲酸钠溶
液于 50 mL 容量瓶中，并用多酚溶液定容，于室温条件下避光静置，每隔 2 d 取样 1 次，测定多酚含
量及保留率[20]。
1..4 统计分析
每个结果重复处理 3 次，并采用 Excel 与 Origin Pro8.0 软件制图。实验数据采用 SPSS 19.0 软件
处理，其中 P＜0.05 表示存在显著性差异。

2 结果与分析
2.1 pH 值对黑果腺肋花楸多酚稳定性的影响
表 1. 不同 pH 下对黑果腺肋花楸多酚颜色及最大吸收波长
Table 1 Color and maximum wavelength λmax in different pH
pH 2 3 4 5 6 7 8
颜色 亮红 亮红 亮红 红 深红 褐 蓝
最大吸收波长（nm） 280 280 280 280 280 279 278
2016-10-15
 ‐0.1
0
0.1
0.2
0.3
0.4
0.5
0.6
200 300 400 500 600 700 800
吸
光
度
波长/nm
pH2
pH3
pH4
pH5
pH6
pH7
pH8
 
图 1 不同 pH 下黑果腺肋花楸多酚全波长扫描
Fig.1 The full wave scanning in different pH
由表 1、图 1 可知，在酸性条件下随着 pH 值的增加，黑果腺肋花楸多酚的最大吸收波长没有明
显变化的趋势，但在中性和碱性时，最大吸收波长会出现较小蓝移。多酚溶液颜色随 pH 值的增加，
由亮红逐渐变为蓝色。出现这种现象的原因是由于黑果腺肋花楸多酚中花色苷类物质在酸性条件下以
吡喃型阳离子结构存在，而在碱性条件下时，花色苷呈现蓝色，以不稳定的醌型结构存在[21]。

a a b b c d e
0
20
40
60
80
100
2 3 4 5 6 7 8
多
酚
保
留
率
/%
pH                                
小写字母不同表示差异显著（P＜0.05）。下同。
图 2 pH 对黑果腺肋花楸多酚稳定性的影响
Fig.2 Effect of pH on the stability of polyphenols from aronia melanocarpa
由图 2 可知，黑果腺肋花楸多酚在 pH 2～3 条件下最为稳定，24 h 后多酚保留率可达 98%以上。
当 pH＞5 后，随着 pH 值的升高，多酚保留率显著降低（P＜0.05），并在 pH 8 的碱性条件下达到最
低。说明了不同 pH 值下，多酚类物质稳定性表现出显著差异。造成这种现象的原因可能是由于黑果
腺肋花楸多酚中含有大量酚羟基，呈弱酸性，于酸性条件下较为稳定，但在碱性条件下，多酚分子结
构容易遭到破坏[14]。

2.2 糖类对黑果腺肋花楸多酚稳定性的影响
由图 3 可知，与对照组相比，低质量浓度糖液处理的多酚保留率并无显著差异。但随着糖质量浓
度的增加，多酚保留率逐渐提高。使用 50 g/100mL 葡萄糖、果糖和蔗糖处理 24 h 后，多酚保留率明
显高于糖质量质量浓度为 10 g/100mL 的多酚溶液（P＜0.05）。这是由于随着糖质量浓度的增加，溶
液中水分活度逐渐降低从而减少了多酚的降解[22]。此外，通过比较不同糖分对黑果腺肋花楸多酚保留
率的影响发现，相同糖质量浓度下不同糖分对多酚的保留率差异不显著（P>0.05）。
2016-10-15
  
Aa
ABb Ab
Ac
Ac
Aa
Aab Abc
Acd Ad
aAa
Bb Ab
Ab Abc
75
80
85
90
95
100
10 20 30 40 50 对照
多
酚
保
留
率
/%
糖质量浓度/（g/100mL）
葡萄糖
果糖
蔗糖
 
图 3      糖类对黑果腺肋花楸多酚稳定性的影响 
Fig.3 Effect of carbohydrate on the stability of polyphenols from aronia melanocarpa
大写字母不同表示相同质量浓度不同糖分间差异显著（P＜0.05）。
2.3 温度对黑果腺肋花楸多酚稳定性的影响
黑果腺肋花楸多酚溶液在不同温度下处理相同时间后，颜色有较大变化。随着处理温度的增加，
多酚溶液由深红变为浅红色。当处理温度在 0～50 ℃时，放置 5 h 后，多酚溶液颜色无较大变化。当
温度在 50～100 ℃时，处理 5 h 后，多酚溶液颜色明显变浅。这是由于多酚中呈色的花色苷类物质在
热处理下极易氧化，且温度越高，氧化速率越快[4]。
由图 4 可知，随着温度和热处理时间的增加，总体上多酚保留率逐渐降低。而通过 SPSS 19.0 软
件对实验数据分析发现，在不同温度下，放置相同的时间，50～100 ℃条件下多酚下降速率显著高于
4～50 ℃（P＜0.05）。在同一温度下，随着时间的延长，多酚保留率逐渐下降，当温度在 50 ℃以上
时，随着热处理时间的增加，多酚类物质降解、化学结构遭到破坏，导致多酚保留率显著降低[23-24]。
说明黑果腺肋花楸多酚在 4-50 ℃下稳定性较好。
0
20
40
60
80
100
0 1 2 3 4 5
多
酚
保
留
率
/%
时间/h
4℃
20℃
30℃
50℃
70℃
90℃
100℃
 
图 4      温度对黑果腺肋花楸多酚稳定性的影响 
Fig.4 Effect of temperatures on the stability of polyphenols from aronia melanocarpa
2.4 光照强度对黑果腺肋花楸多酚稳定性的影响

60
70
80
90
100
0 1 2 3 4 5
多
酚
保
留
率
/%
时间/h
避光
室内散射光
阳光
紫外光
 
图 5 光照对黑果腺肋花楸多酚稳定性的影响
Fig.5 Effect of light on the stability of polyphenols from aronia melanocarpa
2016-10-15
 
通过 SPSS 软件对实验数据分析发现，光照强度对黑果腺肋花楸多酚保留率的变化具有显著影响
（P＜0.05）。由图 5 可知，在避光和室内散射光条件下，随时间的延长多酚保留率逐渐下降，5 h 后
多酚保留率分别降至（97.64±1.91）%和（93.81±1.84）%。而在阳光和紫外光照射下多酚保留率下
降速率明显高于其他光照条件，5 h 后多酚保留率分别降至（86.93±2.63）%和（73.91±2.81）%。此
外，黑果腺肋花楸多酚溶液在紫外光照射下 5 h 后，溶液颜色明显变浅，由于黑果腺肋花楸多酚溶液
中呈色部分主要为花色苷类物质，说明多酚溶液中花色苷含量明显下降[14]。出现这种现象的原因是由
于黑果腺肋花楸多酚具有较强的光敏性，在阳光及紫外光照射下会加速其降解，因此应尽量避免黑果
腺肋花楸直接暴露于室外强光的照射下[25]。

2.5 氧化还原剂对黑果腺肋花楸多酚稳定性的影响
由图 6、7 可知，氧化剂对黑果腺肋花楸多酚具有较强的破坏作用，随着添加氧化剂 H2O2时间的
增加，多酚保留率明显降低。此外，通过 SPSS 对实验数据进一步分析，并对比添加有不同质量浓度
H2O2的多酚溶液可以发现，随着氧化剂质量浓度的增加，多酚含量显著降低（P＜0.05）。在多酚溶液
中添加还原剂 Na2SO3，随着处理时间的延长，多酚保留率显著下降（P＜0.05）。并且在同一处理时间
下，随着多酚溶液中 H2O2、Na2SO3 添加量的增加，多酚保留率下降速率显著增加（P＜0.05）。这说
明由于黑果腺肋花楸多酚的耐氧化、耐还原性较差，氧化还原性物质对黑果腺肋花楸多酚的稳定性具
有显著影响。
通过对氧化剂与还原剂处理下的黑果腺肋花楸多酚可以发现，在同一质量浓度相同时间处理后，
还原剂处理下多酚保留率明显均高于氧化剂。此外，通过对比图 6、7 中不同质量浓度的氧化还原剂
处理下的多酚保留率可以看出，随着氧化还原剂质量浓度的增加，氧化剂处理下的多酚保留率的下降
速率也明显高于还原剂。使用 2% H2O2与 Na2SO3处理 5 h 后，多酚保留率分别从 100%降至（25.13
±2.12）%和（49.61±1.84）%。说明在相同条件下，氧化剂对黑果腺肋花楸多酚的破坏明显高于还
原剂。
0
20
40
60
80
100
0 1 2 3 4 5
多
酚
保
留
率
/%
时间 / h
0%
0.5%
1%
1.5%
2%
 
图 6 氧化剂对黑果腺肋花楸多酚稳定性的影响 
Fig.6 Effect of oxidant on the stability of polyphenols from aronia melanocarpa
40
50
60
70
80
90
100
0 1 2 3 4 5
多
酚
保
留
率
/ %
时间 /h
0%
0.5%
1.0%
1.5%
2.0%
 
图 7.  还原剂对黑果腺肋花楸多酚稳定性的影响 
Fig.6 Effect of reductant on the stability of polyphenols from aronia melanocarpa
2.6 防腐剂对黑果腺肋花楸多酚稳定性的影响
2016-10-15
 

50
60
70
80
90
100
1 3 5 7 9 11 13 15 17 19 21
多
酚
保
留
率
/%
时间/h
0%
0.01%
0.05%
0.10%
0.15%
 
图 8. 防腐剂对黑果腺肋花楸稳定性的影响
Fig.8 Effect of antiseptic on the stability of polyphenols from aronia melanocarpa
由图 8 可知，没有添加防腐剂的黑果腺肋花楸多酚溶液（对照组）随放置时间的增加，多酚保留率逐
渐下降，第 13 天对照组中多酚保留率开始快速下降，并在第 21 天下降至（65.03±3.22）%。而添
加0.01%苯甲酸钠后的多酚溶液从第13 天开始，与对照组相比其多酚保留率出现显著差异（P＜0.05），
在第 21 天多酚保留率为（85.94±2.91）%，说明添加防腐剂苯甲酸钠对黑果腺肋花楸多酚具有明显
的保护作用，这是由于苯甲酸钠在酸性条件下可以起到抑制微生物活性的作用，减少了微生物对多酚
的利用，从而提高了多酚的稳定性。此外，通过对比 4 组不同质量浓度的防腐剂对多酚保留率的影
响发现，随着苯甲酸钠添加量的增加多酚保留率差异不显著（P＞0.05），因此添加 0.01%的苯甲酸钠
即可增加黑果腺肋花楸多酚的稳定性。
3. 结论

通过测定黑果腺肋花楸多酚在不同条件下保留率的变化发现，黑果腺肋花楸多酚在酸性条件下较
为稳定，pH 2～3 时其多酚保留率最高，随着 pH 值的上升，多酚保留率呈显著下降趋势。葡萄糖、
果糖和蔗糖糖类对黑果腺肋花楸多酚稳定性的无不良影响，且高质量浓度的糖对其多酚具有保护作
用。黑果腺肋花楸多酚对温度较为敏感，当温度大于 50℃后，随温度升高和加热时间的延长，多酚
保留率呈显著下降。在光照方面，随着光照强度的增加，多酚保留率逐渐降低。紫外光对于黑果腺肋
花楸多酚的破坏最为显著，而避光条件对黑果腺肋花楸多酚保存最为有利。黑果腺肋花楸多酚的耐氧
化、耐还原性较差，因此氧化还原剂对于黑果腺肋花楸多酚的破坏也较为明显。此外，与还原剂相比，
氧化剂对黑果腺肋花楸多酚稳定性的影响也更为明显，应尽量避免与氧气接触。防腐剂对黑果腺肋花
楸多酚具有保护作用，低质量浓度的防腐剂即可较大程度的提高多酚稳定性。

参考文献：
[1] HANDELAND M, GRUDE N, TORP T, et al. Black chokeberry juice (Aronia melanocarpa) reduces incidences of urinary tract
infection among nursing home residents in the long term - a pilot study[J]. Nutrition Research,2014,34(6):518-525.
DOI: 10.1016/j.nutres.2014.05.005
[2] SAVIKIN K, ZDUNIC G, JANKOVIC T, et al. Berry fruit teas: Phenolic composition and cytotoxic activity[J].Food Research
International, 2014,62(8):677–683. DOI: 10.1016/j.foodres.2014.04.017.
[3] CORREA-BETANZO J, ALLEN-VERCOE E, MCDONALD J, et al. Stability and biological activity of wild blueberry (Vaccinium
angustifolium) polyphenols during simulated in vitro gastrointestinal digestion[J], Food Chemistry,2014,165C(20):522-531.
DOI: 10.1016/j.foodchem.2014.05.135
[4] KIM B, KU C S, PHAM T X, et al. Aronia melanocarpa (chokeberry) polyphenol–rich extract improves antioxidant function and
reduces total plasma cholesterol in apolipoprotein E knockout mice[J]. Nutrition Research, 2013, 33(5): 406-413.
DOI: 10.1016/j.nutres.2013.03.001
[5] MEDINA S, DOMINGUEZ-PERLES R, GARCIA-VIGUERA C, et al. Physical activity increases the bioavailability of flavanones
2016-10-15
 
after dietary aronia-citrus juice intake in triathletes[J]. Food Chemistry, 2012,135(4):2133-2137.
DOI: 10.1016/j.foodchem.2012.07.080
[6] KEDZIERSKA M, MALINOWSKA J, KONTEK B, et al. Chemotherapy modulates the biological activity of breast cancer patients
plasma: The protective properties of black chokeberry extract [J].Food and Chemical Toxicology, 2013,53(3):126–132.
DOI: 10.1016/j.fct.2012.11.042.
[7] KIM JH, AUGER C, KURITA I, et al. Aronia melanocarpa juice, a rich source of polyphenols, induces endothelium-dependent
relaxations in porcine coronary arteries via the redox-sensitive activation of endothelial nitric oxide synthase[J]. Nitric Oxide,2013,
35(6):54-64. DOI: 10.1016/j.niox.2013.08.002.
[8] 李斌, 雷月, 孟宪军, 等. 响应面实验优化超声波辅助提取蓝靛果多酚工艺及其抗氧化活性[J]. 食品科学, 2015, 36(22): 33-39.
DOI:10.7506/spkx1002-6630-201522006.
[9] 李斌 , 高凝轩 , 刘辉 , 等 . 大孔树脂纯化黑果腺肋花楸多酚的工艺研究 [J]. 食品科学 , 2016, 37(16): 69-74.
DOI:10.7506/spkx1002-6630-201616011.
[10] 冯进, 曾晓雄, 李春阳. 响应面法优化蓝莓叶多酚提取工艺[J]. 食品科学, 2013, 34(4): 59-64. DOI
[11] SILYAEM, ROGEZH, LARONDELLEY. Optimization of extraction of phenolics from Ingaedulis leaves using response surface
methodology[J]. Separation and Purification Technology, 2007, 55(3): 381-387. DOI:10.1016/j.seppur.2007.01.008.
[12] 李彩霞, 杨小龙, 李琼, 等.“黑美人”土豆色素稳定性的研究[J].食品科学,2010, 31(9):89-94. DOI
[13] 梁芳, 高霞, 杨雪, 等. 不同添加剂对刺梨果汁品质稳定性的影响[J].食品科学,2011,32(23):53-57. DOI
[14] 雷月, 黎盛, 智红涛, 等. 粗制及精制蓝靛果花色苷的稳定性和抗氧化性研究[J].食品工业科技, 2016, 37(2):113-124.  DOI：
10.13386/j.issn1002-0306.2016.02.014.
[15] 卢佳琨, 兰桃芳, 张艺凡, 等. 蜂胶提取物抗氧化稳定性研究[J].食品科学, 2012,33(07):127-130.
[16] 赵 玉 红 , 贾 琳 娜 , 赵 铁 楠 , 等 . 黑 加 仑 果 汁 中 花 色 苷 的 贮 藏 稳 定 性 [J]. 食 品 科 学 , 2014, 35(20):301-307. 
DOI:10.7506/spkx1002-6630-201420059.
[17] 李颖畅, 孟宪军, 周艳, 等.金属离子和食品添加剂对蓝莓花色苷稳定性的影响[J].食品科学, 2009, 30(9):80-84. DOI
[18] 杨 晓 娜 , 徐 玲 , 赵 昶 灵 , 等 .  龙 陵 紫 皮 石 斛 色 素 的 提 取 及 其 稳 定 性 [J]. 食 品 科 学 , 2015, 36(9):49-54. 
DOI:10.7506/spkx1002-6630-201509010.
[19]  王英, 张玉刚, 戴洪义.苹果果皮中类黄酮的超声波辅助提取及稳定性研究[J].食品科学, 2011(16): 178-181. DOI
[20] 马梦君 , 胡文卿 , 傅丽亚 , 等 . 温度和质量浓度对茶多酚水溶液稳定性的影响 [J].食品科学 , 2014, 35(11):11-16. 
DOI:10.7506/spkx1002-6630-201411003.
[21] 黄思梅, 张镜, 张京维.  物理因子及无机盐对阴香花色苷稳定性的影响[J].食品科学,2010, 31(13):69-73. DOI
[22] 樊金玲, 朱文学, 巩卫东, 等.  蔗糖含量对牡丹花色苷热稳定性和降解动力学的影响[J].食品科学, 2010, 31(3): 74-78.
[23] 冯卫华, 于立梅, 秦艳, 等.  荔枝多酚的抗氧化性动力学及稳定性[J].2011, 32(05):5-9. DOI
[24] 赵 玉 , 任 亚 梅 , 张 爽 , 等 . 苹 果 果 皮 和 果 肉 多 酚 稳 定 性 研 究 [J]. 中 国 食 品 学 报 ,2014, 14(2): 93-101. 
DOI:10.16429/j.1009-7848.2014.02.037.
[25] 毛迪锐 , 姜贵全 , 孙继伟 , 等 . 文冠果壳总黄酮分离纯化及稳定性研究 [J]. 食品与机械 , 2016(1):140-143.
DOI:10.13652/j.issn.1003-5788.2016.01.034

2016-10-15