全 文 ：陈婧婧，王小德，马 进，等． 不同瓶插液对梅花品种三轮玉蝶采后生理特性的影响［J］． 江苏农业科学，2012，40( 7) : 252 － 254．
不同瓶插液对梅花品种三轮玉蝶采后生理特性的影响
陈婧婧，王小德，马 进，刘 猛，罗 旋
( 浙江农林大学风景园林与建筑学院，浙江临安 311300)
摘要: 分析了不同瓶插液对梅花品种三轮玉蝶切花瓶插过程中形态和生理指标的影响。结果表明，三轮玉蝶瓶
插时间约为 7 d，最高开花率出现在瓶插第 6 天，各处理间完全开花率和完全开花花径无显著差异;瓶插液有助于瓶插
三轮玉蝶花瓣可溶性糖与可溶性蛋白质含量的维持，对相对含水量与电导率的变化起一定作用，也能保持较高的 SOD
活性。3%蔗糖 + 10 mg /L 6 － BA + 200 mg /L 8 －羟基喹啉配方的瓶插液能使三轮玉蝶切花达到较佳的瓶插效果。
关键词: 三轮玉蝶; 切花; 生理指标; 花瓣; 瓶插液
中图分类号: S685． 17 文献标志码: A 文章编号: 1002 － 1302( 2012) 07 － 0252 － 03
收稿日期: 2011 － 12 － 31
基金项目:浙江省科技项目( 编号: 2009R50034 ) ; 浙江林学院人才培
养基金( 编号: 2006FR007) 。
作者简介:陈婧婧( 1986—) ，女，浙江温州人，硕士研究生，主要从事
园林植物栽培与管理研究。E － mail: sxyyk_1025@ yahoo． com． cn。
通信作者:王小德，博士，教授，主要从事园林植物引种与应用、植物
造景和生态园林研究。E － mail: wxd65@ zafu． edu． cn。
梅花( Prunus mume Sieb． et． Zucc． ) 为蔷薇科李属落叶
小乔木，是我国十大传统名花之一，栽培历史悠久，应用广泛。
梅花插花艺术源远流长，梅花是最适宜作插花花材的木本花
卉之一。梅花造型独特，色香俱佳，春节前后能在常温或较低
温度下自然开花，是低温时段鲜切花市场的优秀花材［1］，市
场前景广阔，发展潜力巨大。近年来，业界对梅花切花的关注
程度有所提高，一些地区开始积极筹建梅花切花生产基地，并
有学者陆续开展梅花切花研究［2 － 4］。周琦对梅花品种粉红朱
砂、美人梅的切花瓶插液进行了研究［5］。然而，目前还缺乏
其他常见梅花品种的切花采后生理等方面的系统性研究。本
研究以玉蝶型中栽植较为普遍的重瓣品种三轮玉蝶 ( P．
mume cv． Sanlun Yudie) 为研究对象，系统研究室内环境下该
品种切花采后于不同瓶插液中的开花进程，旨在为梅花切花
采后处理及大规模生产提供理论依据。
1 材料与方法
1． 1 试验材料
供试三轮玉蝶采自浙江长兴东方梅园，试验于浙江农林
大学林业与生物技术学院实验室进行。2011 年 2 月 22 日
( 晴) 09: 00 切取三轮玉蝶紧蕾期［5］一年生枝 18 根，每根长度
约 60 cm，花蕾数量与花蕾饱和度尽量一致。采切后将其置
于通风透气纸箱内，并辅以湿润报纸包裹，5 h 内运回实验室
进行复水处理。
1． 2 试验方法
试验环境:温度 15 ℃，光照自然，相对湿度 55% ～ 65%。
瓶插液设置 2 个处理，处理 A 为 3% 蔗糖 + 200 mg /L Al2
( SO4 ) 3 + 200 mg /L 8 － HQ( 8 －羟基喹啉) ，处理 B 为 3%蔗
糖 + 10 mg /L 6 － BA + 200 mg /L 8 － HQ，对照为蒸馏水。每
个处理重复 3 次，每个重复 2 花枝。瓶插液每 3 d更换 1 次。
瓶插当天记为瓶插第 0 天，以开花率降至 20%以下作为
瓶插寿命终结标志。观察测定瓶插过程中的开花进程与生理
指标。开花进度包括: 开花率( 开放花蕾数 /总花蕾数) 、完全
开花率( 盛开期花蕾数 /总花蕾数) ［5］及完全开花花径( 每处
理随机抽取 15 朵测量) 。生理指标测定方法为: 电导仪法测
定花瓣细胞膜相对透性［5］、称重法测定花瓣水分含量［6］、考
马斯亮蓝 G －250 法( Brandford 法) 测定花瓣蛋白质含量［7］、
苯酚法测定花瓣糖含量［7］、氮蓝四唑( NBT) 法测定花瓣超氧
化物歧化酶( SOD) 活性［7］。
1． 3 数据处理
采用 Excel 2003 软件处理试验数据，采用 SPSS 17． 0 软
件进行方差分析及 Duncans多重比较。
2 结果与分析
2． 1 不同瓶插液对三轮玉蝶切花开花进程的影响
由表 1 可见，对于三轮玉蝶切花开花率而言，A、B处理无
显著差异，A、CK处理存在显著差异，B、CK 处理存在极显著
差异。3 个处理的完全开花率和完全开花花径无显著差异。
表1 三轮玉蝶采后瓶插过程中最高开花率、完全开花率、完全开花花径
处理 开花率( % )
完全开花率
( % )
完全开花花径
( cm)
A 83． 06 ± 15． 02aAB 45． 19 ± 0． 21aA 2． 57 ± 0． 17aA
B 100． 00 ± 0． 00aA 66． 93 ± 0． 19aA 2． 61 ± 0． 17aA
CK 63． 89 ± 8． 94bB 40． 67 ± 0． 11aA 2． 57 ± 0． 18aA
注:表中数据为平均值 ±标准差( x ± s) ; 同列数字后不同大写、小写
字母分别表示差异极显著( P ＜ 0． 01) 、显著( P ＜ 0． 05) 。下同。
由图 1 可见，3 个处理的三轮玉蝶瓶插第 1 天开花率均
为 0，此时仍保持采收时的紧蕾状态。从瓶插第 2 天起开花
率逐渐上升，第 3 ～ 4 天开花率迅速上升，3 个处理开花率均
在第 6 天达到最大值，其中 B 处理的三轮玉蝶开花率达到
100%。瓶插第 7 天 3 个处理的开花率均降至 20%以下，失
去有效观赏价值。A、CK处理在瓶插第 5、6 天的开花率几乎
不变; 而 B处理在瓶插第 6 天的开花率仍有较大幅度上升，但
在第 7 天迅速回落，说明 B处理的三轮玉蝶开花时间较其他
处理更为集中。由此可见，就切花瓶插期间的观赏价值来看，
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DOI:10.15889/j.issn.1002-1302.2012.07.140
B处理的瓶插液可使三轮玉蝶开花率显著提高，达到较佳观
赏效果，A处理对三轮玉蝶观赏价值的提高也有一定作用。
2． 2 不同瓶插液对三轮玉蝶生理指标的影响
2． 2． 1 不同瓶插液对三轮玉蝶花瓣可溶性糖含量的影响
植物体通过可溶性糖积累适应外界条件变化，可溶性糖含量
是植物体内碳素营养状况的重要指标。由表 2 可见，CK可溶
性糖含量先略有下降后缓慢上升，至第 4 天后逐渐下降; A 处
理第 3 天下降至最小值后逐渐上升，至第 5 天达到最高值后
下降;处理 B一直上升至第 4 天后逐渐下降。3 个处理在第 4
或 5 天可溶性糖含量达到最大值，此时开花率也接近最大值，
可见三轮玉蝶可溶性糖含量与花蕾开放程度呈正相关。
表 2 三轮玉蝶切花瓶插期间花瓣可溶性糖含量变化
处理
可溶性糖含量( % )
第 1 天 第 2 天 第 3 天 第 4 天 第 5 天 第 6 天
A 7． 68 ± 1． 00aA 7． 84 ± 0． 46aA 7． 33 ± 0． 32aA 8． 25 ± 0． 46aA 10． 36 ± 1． 08aA 9． 14 ± 0． 45aA
B 6． 98 ± 0． 52aAB 8． 15 ± 0． 74aA 9． 89 ± 0． 61bB 10． 19 ± 0． 68bB 9． 22 ± 0． 33aA 8． 77 ± 0． 32aA
CK 5． 48 ± 0． 26bB 5． 13 ± 0． 20bB 5． 43 ± 0． 51cC 5． 49 ± 0． 49cC 4． 86 ± 0． 57bB 4． 20 ± 0． 24bB
由表 2 还可见，瓶插第 1 天 A、B 处理花瓣的可溶性糖含
量无显著差异，A、CK处理差异极显著;第 2、5、6 天 A、B 处理
无显著差异，CK 与其他处理存在极显著差异;瓶插第 3、4 天
各处理间均存在极显著差异，B处理极显著高于 A处理，A 处
理极显著高于 CK处理。可见往瓶插液中适当增加蔗糖浓度
有助于提高其可溶性糖含量，从而对瓶插期间三轮玉蝶开花
率及观赏价值有所影响。
2． 2． 2 不同瓶插液对三轮玉蝶花瓣可溶性蛋白质含量的影
响 可溶性蛋白质有助于细胞保水力与束缚水含量及膜蛋白
的维持。由表 3 可见，瓶插期间各处理的三轮玉蝶花瓣可溶
性蛋白质含量变化表现出相同的变化趋势，随着瓶插时间增
加逐渐上升，并于第 5 d 达到峰值后下降。可见三轮玉蝶花
瓣可溶性蛋白质含量随着开花进程推移而产生变化。由表 3
还可见，瓶插初期各处理花瓣可溶性蛋白质含量无明显差异;
瓶插第 3 天 CK与 A、B处理差异极显著;瓶插第 4 天 B与 CK
处理差异极显著，B 与 A 处理差异显著，A 与 CK 处理差异不
显著，此时 B 处理可溶性蛋白质含量达 3． 90 mg /g; 瓶插第 5
天 B处理可溶性蛋白质含量约为 CK处理的 2 倍，3 个处理的
可溶性蛋白质含量与其开花率高低规律一致; 瓶插第 6 天虽
然三轮玉蝶开花率达到最高值，但花瓣已逐渐进入衰变状态，
因此蛋白质含量开始下降，A、B 处理无显著差异，CK 处理极
显著低于其他处理，仅为 0． 89 mg /g。
表 3 三轮玉蝶切花瓶插期间花瓣可溶性蛋白质含量变化
处理
可溶性蛋白质含量( mg /g)
第 1 天 第 2 天 第 3 天 第 4 天 第 5 天 第 6 天
A 1． 22 ± 0． 22aA 1． 61 ± 0． 04aA 2． 19 ± 0． 27aA 2． 68 ± 0． 16aAB 3． 73 ± 1． 10abA 3． 06 ± 0． 42aA
B 0． 97 ± 0． 23aA 1． 42 ± 0． 83aA 1． 89 ± 0． 13aA 3． 90 ± 0． 71bB 5． 00 ± 1． 12aA 3． 06 ± 0． 49aA
CK 0． 72 ± 0． 28aA 1． 04 ± 0． 22aA 1． 07 ± 0． 33bB 2． 36 ± 0． 19aA 2． 76 ± 0． 24bA 0． 89 ± 0． 65bB
2． 2． 3 不同瓶插液对三轮玉蝶花瓣相对含水量与电导率的
影响 各处理的三轮玉蝶花瓣相对含水量在瓶插初期显著上
升，瓶插第 2 天达到 80%左右，其后逐渐下降。除瓶插第 5
天外，各处理三轮玉蝶花瓣相对含水量均无显著差异( 表 4) 。
三轮玉蝶花瓣电导率则自瓶插起逐渐上升，初期为 10%左右，
后期接近 50%，这与瓶插液生理条件逐渐恶化有关( 表 5) 。
细胞膜相对透性反映了细胞受损程度，用电导率表示，电
导率高则表明细胞膜受损严重。瓶插第 4 天 CK 处理的三轮
玉蝶花瓣电导率显著低于 A、B处理，瓶插第 6 天极显著低于
A、B处理( 表 5 ) 。虽然 CK 处理的开花率、完全开花率较
低，但是后期花瓣细胞膜透性低于其他处理，细胞结构相对
完整。
表 4 三轮玉蝶切花瓶插期间花瓣相对含水量变化
处理
相对含水量( % )
第 1 天 第 2 天 第 3 天 第 4 天 第 5 天 第 6 天
A 57． 26 ± 2． 99aA 80． 95 ± 1． 87aA 72． 56 ± 7． 27aA 73． 05 ± 3． 12aA 69． 02 ± 5． 37aA 60． 08 ± 3． 74aA
B 51． 52 ± 6． 07aA 83． 81 ± 10． 51aA 79． 73 ± 3． 42aA 78． 69 ± 4． 17aA 76． 69 ± 3． 84abA 64． 89 ± 5． 64aA
CK 58． 12 ± 6． 92aA 84． 64 ± 4． 63aA 74． 63 ± 6． 50aA 78． 56 ± 7． 63aA 79． 38 ± 5． 21bA 68． 12 ± 3． 96aA
2． 2． 4 不同瓶插液对三轮玉蝶花瓣 SOD 活性的影响 SOD
活性高低表明动植物体内酶活性大小，SOD 活性越高则酶活
性越强。在三轮玉蝶瓶插过程中，瓶插初期花瓣 SOD 活性有
所下降，第 3 天起逐渐上升，第 5 天后又有所下降( 表 6) 。瓶
插过程对离体植物 SOD活性变化有一定影响，瓶插一定时间
后由于植物须维持开花状态，因此 SOD含量又有所恢复。A、
B处理的三轮玉蝶花瓣 SOD含量在瓶插第 5 天达到极大值，
分别为 2． 85、2． 77 U /mg( 表 5) ，表明该处理在开花盛期酶活
性最高。CK处理的三轮玉蝶花瓣 SOD含量最高值出现于瓶
插第 1天，表明瓶插过程中植物体自身较难保持良好的SOD
—352—陈婧婧等:不同瓶插液对梅花品种三轮玉蝶采后生理特性的影响
表 5 三轮玉蝶切花瓶插期间花瓣电导率变化
处理
电导率( % )
第 1 天 第 2 天 第 3 天 第 4 天 第 5 天 第 6 天
A 10． 46 ± 0． 84aA 15． 36 ± 1． 52aA 17． 60 ± 2． 20aA 26． 23 ± 3． 75aA 39． 17 ± 3． 62aA 47． 46 ± 4． 65aA
B 9． 82 ± 1． 90aA 12． 21 ± 3． 63aA 18． 12 ± 4． 07aA 29． 29 ± 4． 04aA 42． 13 ± 8． 20aA 49． 25 ± 2． 97aA
CK 10． 64 ± 0． 68aA 14． 44 ± 1． 95aA 16． 88 ± 3． 01aA 19． 52 ± 2． 08bA 28． 72 ± 8． 15aA 36． 88 ± 2． 06bB
表 6 三轮玉蝶切花瓶插期间花瓣 SOD活性变化
处理
SOD活性( U /mg)
第 1 d 第 2 d 第 3 d 第 4 d 第 5 d 第 6 d
A 2． 27 ± 0． 21aA 2． 11 ± 0． 05aA 2． 00 ± 0． 06aA 2． 47 ± 0． 20aA 2． 85 ± 0． 02aA 2． 38 ± 0． 11 aA
B 2． 37 ± 0． 15aA 2． 13 ± 0． 12aA 2． 08 ± 0． 12aA 2． 32 ± 0． 12aA 2． 77 ± 0． 16aA 2． 35 ± 0． 16 aA
CK 1． 75 ± 0． 13bB 1． 52 ± 0． 18bB 1． 25 ± 0． 09bB 1． 40 ± 0． 16bB 1． 69 ± 0． 10bB 1． 22 ± 0． 09 bB
活性以维持生理活动。此外，瓶插期间 CK 与其他处理间每
天的 SOD活性都有极显著差异，可见 A、B处理在瓶插液环境
下有助于维持较佳的生理活动状态。
3 结论与讨论
3． 1 三轮玉蝶开花进程、瓶插寿命与瓶插液的相关性
瓶插液配方中，蔗糖可以提供切花糖分，8 － HQ、
Al2 ( SO4 ) 3是杀菌剂，6 － BA起调节植物生理活动作用。本研
究中，随着瓶插时间延长，三轮玉蝶切花开花率逐渐升高，并
在第 6 天达到最大值后迅速下降，第 7 天瓶插寿命终止，可见
瓶插寿命与开花速率有一定相关性，瓶插液对其影响并不显
著。3 个处理的三轮玉蝶瓶插时间均为 7 d，但不同处理开花
率与完全开花率有所差异，这与瓶插液营养成分有关，6 － BA
能提高采后瓶插过程中的开花量，增加观赏价值。但不同瓶
插液对开花大小并无显著影响。若需对花朵大小与花量均有
帮助的瓶插液配方，还须进一步试验。
3． 2 三轮玉蝶生理衰老行为与瓶插液的相关性
众多学者对不同切花材料的生理变化进行了研究，发现
不同切花品种在开花衰老过程中生理指标发生规律性变化，
且不同瓶插液对材料开花效果影响显著［6，8 － 12］。本研究表
明，以蒸馏水为对照的切花整体指标均处于劣势，不利于切花
长久而良好的瓶插观赏。在生理指标较为接近的前提下，B
处理开花率与完全开花率显著高于 A 处理，因此 3%蔗糖 +
10 mg /L 6 － BA +200 mg /L 8 － HQ配方的瓶插液较适于三轮
玉蝶的瓶插观赏使用。
瓶插初期切花材料处于紧蕾阶段，而后逐渐开放，其可溶
性糖含量基本呈升高趋势，并于后期有所下降，瓶插液可为切
花提供外源糖，缓解植物体内自身可溶性糖流失，补充其物质
消耗。植物组织发展过程中，体内蛋白质持续合成供应细胞
能量并维持细胞活力，衰老过程中体内蛋白质逐渐水解，从而
促进乙烯生成。本研究中三轮玉蝶花瓣可溶性蛋白质含量在
瓶插过程中明显上升，花瓣衰老时期迅速下降，这与顾小云对
芍药切花贮藏与衰老研究结果相符［8］。瓶插液中的 8 － HQ
等成分有缓解蛋白质降解的作用，从而保证其瓶插效果的延
续。由此可见，切花开花过程中可溶性糖含量、可溶性蛋白质
含量与开花进程密切相关，因此在选择瓶插液时应考虑其含
量的维持。花瓣相对含水量在瓶插前期上升，瓶插后期逐渐
下降，可见植物在瓶插过程中为保持生理状态仍会从外界吸
收水分，而适当浓度的蔗糖溶液有助于细胞吸水。电导率则
随瓶插时间延长而持续上升，细胞膜透性随时间延长而逐步
升高，细胞活性逐渐恶化。因此，在瓶插过程中应尽量使花瓣
维持较高的含水量与较完整的细胞膜结构，降低因花瓣失水
和细胞膜透性增加而引起的衰变加速。本研究中，CK 处理
相对含水量较高、细胞膜透性较低的原因有待进一步研究。
三轮玉蝶花瓣 SOD活性也呈现出先降低后升高的趋势，与开
花进程及瓶插时间均有所关联，保持较高的 SOD 含量有助于
切花对抗逆境，增加瓶插过程中的开花动力与植物体活性，因
此配制瓶插液时应考虑其配方是否有助于有效保持瓶插过程
中的植物体酶活性。
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