全 文 ：收稿日期:2012 － 07 － 02
作者简介:王越铭(1966 －)女，硕士，高级实验师，主要从事经济林及花
卉的组织培养方面的研究;E-mail:wymxjefs@ 163． com。
匐生蝇子草组培快速繁育技术研究
王越铭1， 古丽森1， 李凤琴2
(1．新疆林业科学院， 乌鲁木齐 830000; 2．新疆林业学校， 乌鲁木齐 830000)
Study on the Techniques of Tissue Culture and Rapid Propagation of Silene repens Patr．
WANG Yue-ming1，GU Li-sen1，LI Feng-qin2
摘要:对新疆野生花卉匐生蝇子草进行了组织培养研究，结果
表明:茎段为匐生蝇子草组培最适合外植体，初代培养最适宜
芽诱导的培养基为 MS + 6-BA 2． 5 mg /L + NAA 0． 2 mg /L，诱导
率最高可达 85% ; 丛生芽继代增殖最适宜的培养基为 MS +
6-BA 1． 5 mg /L + NAA 0． 01 mg /L;最适宜的壮苗培养基为 MS +
6-BA 0． 5 + NAA 0． 02 mg /L; 最适宜的生根培养基为 1 /2 MS +
NAA 0． 3 mg /L，生根率为 97%。建立了高效、稳定的匐生蝇子
草再生体系，为匐生蝇子草的人工驯化和产业化奠定基础。
关键词: 匐生蝇子草;外植体;组织培养
中图分类号: S 682． 1 + 9 文献标志码: B
文章编号: 1001 － 4705(2012)11-0124-03
石竹科(Caryophyllaceae)蝇子草属 (Silene L．)植
物约 400 种，主要分布在北温带，其次为非州和南美
洲。中国有 112 种 2 亚种 17 变种，广布于长江流域和
北部各省区，以西北和西南地区较多［1］。匐生蝇子草
(Silene repens Patr．)是类大爪草组 Sect． Spergulifoliae
(Boiss．)Schischk． 多年生草本花卉，高 15 ～ 50 cm，全
株被短柔毛，根状茎细长，分叉，经疏丛生或单生，不分
枝或有时分枝［1］，叶互生、花白色、总状圆锥花序、花
期长，花形美观，在新疆分布于乌鲁木齐、尼勒克、伊
宁、布尔津等地［2］，是新疆特有的野生花卉。匐生蝇
子草适应性强，耐旱，耐寒，适合西北地区城市园林绿
化，是极具生态价值和应用前景的植物资源。虽然可
以利用其种子进行人工培养箱催芽的方法进行繁
殖［3］，但是其种子非常小，不易采摘。而植物组织培
养技术是在无菌条件下，将离体的植物器官(根、茎、
叶、花、果实、种子等)、组织(形成层、花药组织、胚乳、
皮层等)、细胞(体细胞和生殖细胞)以及原生质体，培
养在人工配制的培养基上，给予适当的培养条件，使其
长成完整的植株的一种技术［4］。北京林业大学的李
继爱等［5］研究了海蝇子草组织培养与快速繁殖技术，
大大提高了海蝇子草的繁殖速度，并可在短时间内获
得大量性状一致的种苗，具有较好的市场应用价值。
结合前人的研究经验，对匍生蝇子草的组培快速繁育
技术进行了研究，为匐生蝇子草的人工驯化和产业化
提供技术依据。
1 材料与方法
1． 1 材 料
试验材料采自新疆乌鲁木齐县板房沟乡的野生匐
生蝇子草植株。
1． 2 外植体处理
采集匐生蝇子草幼嫩植株，用保温桶保鲜带回实
验室，用自来水冲洗 1 h，用洗衣粉水浸泡 10 min。冲
洗后置于超净工作台上，用 70%乙醇处理 1 ～ 2 s，无菌
水冲洗 1 ～ 2 次，然后用 0． 1%升汞溶液浸泡 5 ～ 8 min，
无菌水冲洗 4 ～ 5 次，将茎段剪成 1． 5 cm接种到MS培
养基上。
1． 3 培养基
选用 MS培养基为基本培养基，生根培养基为 1 /2
MS，附加不同浓度的 6-BA和 NAA 等植物激素进行诱
导，培养基中含白沙糖 30 g /L，琼脂粉 4． 5 g /L，pH =
5． 8，121 ℃，20 min。
1． 4 培养条件
培养温度(23 ± 2)℃。光照 14 h /d，光照强度
1 500 ～ 2 000 lx。
2 结果与分析
2． 1 不同部位培养材料对诱导分化效果的影响
选用匐生蝇子草 2 个部位(表中只有 2 种外植体)
外植体，对其进行芽诱导试验。试验效果对比见表 1。
表 1 不同培养材料对匐生蝇子草芽诱导效果的影响
外植体
部位
培养时间
2 d 5 d 20 d
顶芽 未萌动 萌动 顶芽生长 4 ～ 5 cm ，且有 3 片小叶
茎段 萌动 萌动
腋芽 1 ～ 2 cm高，
基部产生 2 ～ 3 个较健壮的小芽
丛生芽诱导培养基为 MS 培养基，附加相同激素
浓度的 6-BA和 NAA，采用的外植体部位不同，其分化
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第 31 卷 第 11 期 2012 年 11 月 种 子 (Seed) Vol． 31 No． 11 Nov． 2012
DOI:10.16590/j.cnki.1001-4705.2012.11.076
效果不同。顶芽培养 5 d 后萌发，20 d 左右长成 4 ～ 5
cm且有几片小叶的无菌苗;茎段培养 5 d 左右腋芽萌
发，20 d左右长成 1 ～ 2 cm同时基部产生 2 ～ 3 个较健
壮的小芽。培养在 MS + 6-BA 2． 5 mg /L + NAA 0． 2
mg /L培养基上的不同部位外植体，诱导结果差异很
大。茎段分化能力强，其次是顶芽，由此得出结论:不
同的器官其细胞分化与再分化能力有很大差异。
2． 2 不同外植体对匐生蝇子草初代培养的影响
以匐生蝇子草的茎尖、茎段 2 种材料为外植体，接
种在 6-BA 2． 5 mg /L + NAA 0． 2 mg /L 培养基，对匐生
蝇子草进行培养材料筛选。试验结果见表 2。
表 2 不同外植体对匐生蝇子草初代培养影响
编号 外植体的类型 诱导率(%)
A 1 茎尖 75
A 2 茎段 85
从表 2 可以看出，匐生蝇子草的培养材料以茎段
的诱导率最高，可达 85%，由此推断:茎段是匍生蝇子
草最适宜的初代培养外植体材料。
2． 3 不同浓度 6-BA 和 NAA 对匐生蝇子草丛生苗的
影响
将初代培养的苗割下来转接到继代增殖培养基
中，并对其附加不同浓度的 6-BA 和 NAA，观察其丛生
芽的形态。试验结果见表 3，其继代培养苗如图 1所示。
表 3 不同浓度 6-BA和 NAA配比对匍生蝇子草
继代增殖的影响
培养
基
激素水平
(mg /L) 增殖结果 丛生芽形态
A 1 6-BA 2． 0NAA 0． 01
每瓶 3 繁殖
5 ～ 6 倍
叶片较小、叶未展开、叶柄短，节间距离很小，
幼苗密集、苗短粗，几乎没有长高，
11 ～ 12 月份茎芽基部有玻璃化现象。
A 2 6-BA 1． 5NAA 0． 01
每瓶 3 繁殖
4 ～ 5 倍
叶片小，叶伸展开，叶柄较短，
茎芽丛生化，每丛有 2 ～ 3 个高苗，
每丛基部有很多发育的小芽，小苗株形紧凑。
A 3 6-BA 1． 0NAA 0． 01
每瓶 3 繁殖
3 ～ 4 倍
叶片大，叶展开，叶柄伸长，
节间距适中，叶腋处可见发育的小芽，
丛生芽高度基本一致，茎芽健壮。
A 4 6-BA 0． 5NAA 0． 02
每瓶 3 繁殖
2 倍
叶片大，叶展开，叶柄伸长，节间距适中，
叶腋处发育的小芽较小，茎芽高度基本一致，
每丛高度基本一致，每丛茎芽为 10 个。
A 5 6-BA 0． 2NAA 0． 02
每瓶 3 繁殖
2 倍
叶片伸展，叶柄伸长，节间距适中，
叶腋处无发育的小芽，丛生芽有 10 ～ 12 个，
高度一致，茎干粗壮。
从表 3 可以看出:匐生蝇子草的增殖培养，选择适
当的激素浓度是提高增殖速率的关键。选用 6-BA 1． 5
mg /L，NAA 0． 01 mg /L，茎芽丛生化，叶伸展开，叶柄较
短，增殖倍数为 5 倍，每丛基部有很多发育的小芽，小
芽紧凑。
当 6-BA升高至 2． 0 mg /L，幼苗顶芽生长受到抑
制，叶未展开、叶柄短，节间距很小，幼苗密集，芽粗短，
玻璃花严重。当 6-BA 浓度降至 0． 5 mg /L、NAA 0． 02
mg /L时，繁殖倍数为 2 倍。
图 1 匍生蝇子草继代培养苗
2． 4 不同浓度 6-BA 和 NAA 对匐生蝇子草壮苗的
影响
通过继代培养可以得到大量丛生状小芽，芽的高
度为 0． 1 ～ 1． 5 cm，不能转到生根培养基，必须有一个
壮苗培养的过程，将丛生芽培养成壮芽。将丛生芽接种
至壮苗培养基上，试验结果见表 4，其壮苗如图 2所示。
表 4 不同浓度 6-BA和 NAA对匐生蝇子草壮苗的影响
培养基
激素水平
(mg /L) 壮苗形态
B 1 6-BA 0． 5NAA 0． 02
叶片大、叶展开、节间距适中、
叶腋处发育的小芽较小，每丛生长
出高度基本一致的茎芽 20 个左右。
B 2 6-BA 0． 5NAA 0． 05
叶片大、叶展开、
叶柄伸长较长，节间距很大、
叶腋处发育的茎芽细高。
B 3 6-BA 1． 0NAA 0． 02
叶片小、叶伸展开、叶柄较短、
茎芽丛生化每丛有 2 ～ 3 个高苗。
B 4 6-BA 1． 5NAA 0． 02
叶片小、叶柄较短，苗丛生化，
每丛基部有很多发育的小芽，
只有 4 ～ 5 个高的茎芽
从表 4 结果可知，6-BA 的浓度从 1． 5 mg /L 降到
0． 5 mg /L，NAA从 0． 01 升到 0． 02 mg /L 后，即以低浓
度 6-BA(0． 5 mg /L)配以高浓度的 NAA(0． 02 mg /L)
的培养基配方适宜于匍生蝇子草的壮芽，其丛生芽可以
长至具有一定高度能用于生根、高度整齐一致的小芽。
2． 5 不同浓度 NAA对试管苗生根的影响
通过壮芽培养以后，得到高度整齐一致的壮芽，剪
取 2 ～ 5 cm的壮芽将其接种到生根培养基上。匐生蝇
子草生根培养基为 1 /2 MS，蔗糖 1． 5%，附加不同浓度
的 NAA和 IBA，试验结果见表 5，其生根移栽苗如图 3
所示。
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应用技术 王越铭 等:匐生蝇子草组培快速繁育技术研究
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图 2 匐生蝇子草壮苗
图 3 匍生蝇子草生根移栽苗
表 5 不同激素及不同激素浓度对试管苗生根的影响
培养基
激素浓度
(mg /L)
生根率
(%)
平均根数
(条)
平均根长
(cm)
C 1 NAA 0． 5 97 4 ～ 11 1． 5
C 2 NAA 0． 3 95 4 ～ 9 2． 0
C 3 IBA 0． 5 80 2 ～ 5 1． 0
C 4 IBA 0． 3 70 2 ～ 7 0． 5
从表 5 试验结果看出:NAA 0． 5 mg /L、NAA 0． 3
mg /L时生根率较高，诱导生根率分别为 97%、95%，
生根条数在 4 ～ 11 条。IBA 0． 5 mg /L、IBA 0． 3 mg /L
时生根率分别为 80%和 70%。
3 小结与讨论
3． 1 外植体的不同部位对芽诱导的影响
培养在相同培养基上，附加相同激素浓度的不同
匐生蝇子草的外植体，其诱导结果差异很大，其诱导率
差异显著。在顶芽和茎段对比试验中，茎段在生长势
与诱导率方面都比茎尖强，这种现象可能是由于茎段
除去顶端优势后，侧芽易萌发出芽的原因造成的。由
此看来，同种植物的不同器官，其细胞分化与再分化能
力存在明显差异。
3． 2 不同激素浓度对继代、壮苗培养增殖速率的影响
在继代、壮苗培养过程中，选择适当的激素浓度是
提高增殖速率的关键。选用 6-BA 1． 5 mg /L、NAA
0． 01 mg /L，茎芽丛生化，增殖倍数为 5 倍。当 6-BA浓
度高至 2． 0 mg /L 时顶芽受到抑制，茎芽粗矮，而且玻
璃化现象严重;当 6-BA 1． 0 mg /L，NAA 0． 01 mg /L 最
适合增芽。
综上所述，采用继代培养和壮苗培养交替培养的
方法，可使匍生蝇子草芽的增殖和苗的生根不脱节，在
短期内可获得大量的试管苗，而且这些苗还具有高度
整齐一致的优点，利于第三阶段的生根移栽。
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第 31 卷 第 11 期 2012 年 11 月 种 子 (Seed) Vol． 31 No． 11 Nov． 2012