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两种生态型玛咖叶片的丛生芽诱导



全 文 :2016年第 2期
云 南 农 业 科 技
Yunnan Nongye Keji
玛咖(Lepidium meyenii Walpers),是一种重要的
药食两用植物 [1~3]。玛咖原产于秘鲁安第斯山脉的低
温高海拔地区,中国目前已在云南丽江等地引种成
功。玛咖种子在 15~25 ℃条件下萌发率较高 [4],受生
长环境限制,现有玛咖产量已无法满足日益增长的市
场需求。玛咖按块根的颜色,可以分为不同的生态
型。研究表明,不同生态型玛咖的作用及活性成分如
总多糖含量等具有一定程度的差异 [5~7],从而导致不
同生态型玛咖具有不同的经济价值,其中,块根为黑
色及紫色的玛咖具有很高的市场价格。因此,如何增
加玛咖的产量并获得大量经济价值高的玛咖种苗,是
玛咖生产中面临的一个重要问题。
植物组织培养技术在玛咖育种中起到了重要作
用。目前,一些研究结果显示由玛咖种子获得无菌小
苗后,可选用无菌苗叶片、胚轴、子叶、根、茎为外
植体,经过诱导愈伤组织再分化成苗 [8~14]。在许多研
究报道中,由于需要先从种子形成无菌苗,并进一步
诱导愈伤组织才可形成玛咖苗,从而增加了玛咖出苗
的时间、人力与资金成本。另外,诱导不同生态型玛
咖成苗的差异还未见相关报道。因此,开展对不同生
态型玛咖的快速诱导出苗研究,对于获得大量具有重
要经济价值的玛咖原料具有重要作用。
本研究选取种植于大田中的块根分别为紫色和黑
色的 2种生态型玛咖,利用其叶片作为外植体诱导丛
生芽。玛咖快速成苗组培体系的建立可为玛咖的种质
保存及新品种育种建立基础。
1 材料与方法
1.1 材料来源及处理
块根为黑色及紫色的玛咖苗来自于中科院昆明植
物研究所。幼嫩的玛咖叶片用自来水冲洗干净后,在
超净工作台中用 70%乙醇表面消毒 90 s,并用 15%的
次氯酸钠溶液浸泡 10 min后,用无菌水漂洗 3遍,叶
片剪成小块,放入相应的培养基中培养。
1.2 试剂
所用 MS 培养基购买自 Sigma 公司 (M5519 -
10L),细胞分裂素 6-BA 及生长素 NAA 购买自昆明
云科生物技术有限公司。
1.3 培养基及培养条件
玛咖的组织培养以 MS 培养基为基础,添加蔗
糖30 mg/L、琼脂 7 g/L,调 pH 值为 5.8。培养基
灭菌后,在诱导丛生芽形成的培养基中加入不同浓
摘 要:植物激素在植物生长发育过程中起到重要作用。通过组织培养的方法,分别诱导 2种块根
为紫色与黑色的玛咖以获得丛生芽。玛咖叶片培养于含有细胞分裂素 6-BA 及生长素 NAA 的
Murashige and Skoog(MS) 培养基,在含有 6-BA 2 mg/L+NAA 0.2 mg/L的 MS培养基中,2种生态
型玛咖的叶片都可以快速分化出丛生芽,出芽率为 14.3%。而且,在含有 NAA 0.1 mg/L的 MS培养
基中,则可以诱导新生的丛生芽的根系形成。在生长素及细胞分裂素的组合下,可诱导玛咖产生丛
生芽及生根,这对玛咖的快速育种及种质保存起到了重要作用。
关键词:玛咖;丛生芽;组织培养;植物激素
两种生态型玛咖叶片的丛生芽诱导
收稿日期:2015-01-21
基金项目:国家自然科学基金地区科学基金项目
(31460453)。
作者简介:杜丽思(1994-),女,云南保山人,研究方向
为植物保护,E-mail:dulisikm@163.com。
*为通讯作者:杜云龙(1976-),男,云南蒙自人,教授,
主要从事植物保护研究工作,研究方向为植物激素与植物发育,
E-mail:yunlongdu@aliyun.com。
杜丽思 1,章成君 2,张 靖 1,彭 晟 1,杨 静 1,刘 林 1,李成云 1,杜云龙 1*
(1. 云南农业大学农业生物多样性与病害控制教育部重点实验室,云南 昆明 650201;
2. 中国科学院昆明植物研究所,云南 昆明 650201)
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云 南 农 业 科 技
Yunnan Nongye Keji2016年第 2期
图2 黑色玛咖叶片诱导分化出丛生芽
度组合的细胞分裂素 6-BA 与生长素 NAA (表 1),
诱导生根的培养基加入 NAA 0.1 mg/L 或 0.2 mg/L。
表面消毒完成的玛咖叶片放入配制好的培养基
中,在培养室中进行 24 h 连续光照培养,温度设
定为 23 ℃。
2 结果与分析
2.1 玛咖丛生芽的诱导
首先选择了块根为紫色的玛咖叶片在分化培养基
中经过 30 d培养后,大部分配方中的玛咖叶片出现褐
化、枯萎,没有明显的愈伤组织形成。但是,在含有
6 -BA 2 mg/L +NAA 0.2 mg/L 或 6 -BA 2 mg/L +NAA
0.25 mg/L的培养基中,均可诱导出玛咖丛生芽,出芽
率达到 14.3%,2种培养基的诱导效率没有明显区别,
但含有 NAA 0.2 mg/L 的培养基中丛生芽长势更快
(表 1,图 1)。丛生芽在同样的分化培养基中继续培
养一段时间后,分化出更多的丛生芽。
表1 玛咖分化培养基诱导结果


激素(mg/L) 生长情况 丛生芽
形成率(%)
1 6-BA 0.3+NAA 0.3 部分叶片切口长出愈伤 0
8 6-BA 2+NAA 0.25 部分叶片切口长出愈伤,
少数愈伤分化成苗
14.3
2 6-BA 0.5+NAA 0.5 部分叶片切口上长出绿色愈伤 0
5 6-BA 1+NAA 0.5 部分叶片长出绿色愈伤 0
6 6-BA 2+NAA 0.1 部分叶片切口长出绿色愈伤 0
7 6-BA 2+NAA 0.2 部分叶片切口长出愈伤,
少数愈伤分化成苗
14.3
3 6-BA 1+NAA 0.1 部分叶片切口长出愈伤 0
4 6-BA 1+NAA 0.2 部分叶片切口长出绿色愈伤 0
图1 紫色玛咖叶片诱导分化出丛生芽
注:箭头所指为玛咖叶片在表 1中处理 7、处理 8培养基中分化出丛生芽
7 8
为进一步检测上述培养基诱导丛生芽的能力,
块根为黑色的玛咖叶片培养于含有 6-BA 2mg/L+
NAA 0.25mg/L 的 MS 培养基,结果显示在此培养基
中,块根为黑色的玛咖叶片也可被直接诱导产生丛
生芽(图 2)。
由以上可知,在含有 6-BA 2 mg/L及生长素 NAA
低至 0.2 mg/L培养基中,玛咖叶片可以经过不明显的
愈伤组织阶段而能直接分化出丛生芽。
2.2 玛咖丛生芽生根诱导
玛咖丛生芽在分化培养基上继续生长 30 d后,把
它从外植体上分离下来,诱导丛生芽生根。玛咖丛生
芽转入含生长素(NAA 0.1 mg/L) 的培养基中,经 1
个月的培养后,在类似块根的组织上开始长出茂密的
根系(图 3A),并出现新生的芽点。把这些已生根的
类似块根的组织转入含有 6-BA 2 mg/L +NAA 0.25
mg/L的 MS培养基中,可快速长出根系并出现许多新
的丛生芽(图 3B),其中,在类似块根组织的根系上
有丛生芽形成(图 3C)。
3 讨论
玛咖作为一种药食两用植物,通过组织培养加快
繁育效率,是解决玛咖市场需求的一个重要方式。在
5
2016年第 2期
云 南 农 业 科 技
Yunnan Nongye Keji
图3 玛咖丛生芽的生根诱导
研究结果中,块根为紫色与黑色的 2种生态型玛咖叶
片在细胞分裂素 6-BA 2 mg/L及生长素 NAA 0.2 mg/L
的诱导下,可以经过一个不明显的愈伤阶段直接分化
形成丛生芽,并能在生长素 NAA 0.1 mg/L 的诱导下
生根。因此,不同生态型玛咖都可被细胞分裂素与生
长素直接诱导成苗,这显示控制玛咖颜色形成的机制
与控制玛咖细胞分化的机制是不同的途径。
目前,已有许多关于玛咖组织培养的研究报道,
但是,在所有这些报道中,玛咖丛生芽的形成都需要
经过对不同外植体进行愈伤组织诱导的过程,其中细
胞分裂素与生长素的浓度组合起到了重要作用 [8, 12~
13]。在这项研究中,玛咖叶片经 6-BA 2 mg/L+NAA
0.2 mg/L处理后,即可有效诱导叶片形成丛生芽。由
于笔者所用外植体及植物激素的种类及浓度与已发表
的文章不完全一致,并得到不同的诱导效果,因而,
诱导玛咖丛生芽直接形成的机制可能与所用的外植体
密切相关,并暗示出玛咖的不同组织对细胞分裂素及
生长素的需求不相同。
玛咖的有效成分如氨基酸主要集中于地下的根
茎 [15]。有研究发现在诱导愈伤组织分化成苗的过程
中,不同的光质可以影响玛咖糖代谢中的关键酶活性
[10]。在该项研究中,结果显示细胞分裂素与生长素的
共同作用对于玛咖丛生芽的形成及根系的生长非常重
要(图 2、图 3),因此,在玛咖生产中,可利用不同
激素促进玛咖发育。但是,在诱导丛生芽形成的过程
中,所用的细胞分裂素及生长素是否影响玛咖活性成
分还需进一步研究。利用植物激素生长素与细胞分裂
素建立玛咖快速成苗的组织培养体系,为快速获得大
量玛咖种苗、防止种质资源退化奠定了基础。
参考文献:
[1] 王义强,陈章靖,王启业,等. 玛咖药用价值与引种培育研究
进展[J]. 经济林研究,2014,32(2):167-172.
[2] 余龙江,金文闻,吴元喜,等. 玛咖的植物学及其药理作用研
究概况[J]. 天然产物研究与开发,2002,14(5):71-74.
[3] 余龙江,金文闻. 玛咖(Lepidium meyenii.)干粉的营养成分及
抗疲劳作用研究[J]. 食品科学,2004,25(1):164-166.
[4] 尚瑞广,王兵益,徐珑峰. 温度、水分和光照对玛咖种子萌发
的影响[J]. 西南农业学报,2014,27(6):2564-2568.
[5] 高大方,张泽生. 不同生态型云南引种玛咖的多糖含量及多
糖纯化工艺研究 [J]. 安徽农业科学,2012,40(36):17756-
17757.
[6] Clement C,Diaz Grados D A,Avula B,et al. Influence of colour
type and previous cultivation on secondary metabolites in
hypocotyls and leaves of maca(Lepidium meyenii Walpers)[J].
Journal of the Science of Food and Agriculture,2010,90:
861-869.
[7] 许 敏,徐 丽,宋 晖,等. 玛咖的研究进展[J]. 食品安全质量检
测学报,2015,6(7):2775-2782.
[8] 孙友平. 玛咖(Maca)引种栽培基础研究[D]. 湖北:华中科技
大学,2004.
[9] 王亚丽,王晓东,赵 兵,等. 马卡丛生芽培养条件优化及玻璃
化控制研究[J]. 河南农业科学,2007(6):54-57.
[10] 王亚丽,王晓东,赵 兵,等. 光质对玛咖愈伤组织生长、分化
的影响[J]. 过程工程学报,2007,7(4):782-785.
[11] Cheng H,Yu L,Hu Q,et al.Micro-propagation of Lepedium
meyenii Walp.(Maca)by shoot culture [J]. Agricultural Science
& Technology,2004,5(4):18-22.
[12] 胡雪梅. 玛咖和新疆雪莲再生体系的建立及新疆雪莲转昆
虫抗冻蛋白基因的研究[D]. 乌鲁木齐:新疆大学,2007.
[13] 朱 军,李晓瑾,孙 丽,等. 药用植物玛咖离体快繁技术研究
[J]. 北方园艺,2013(22):101-103.
[14] 程 华,余龙江,孙友平,等. 玛咖的愈伤组织诱导及植株再生
[J]. 植物生理学通讯,2004,40(6):709.
[15] 张 维,张 铁,王伟伟,等. 云南种植玛咖不同部分化学成分
和抗氧化活性分析[J]. 天然产物研究与开发,2014,26:813-
818,823.
注:在 MS培养基中,加入生长素 NAA 0.1 mg/L(A) 后,黑色生态型玛咖丛生芽上类似块根的组织
可以长出根系,把类似块根的组织转入含细胞分裂素 6-BA 2 mg/L及生长素 NAA 0.25 mg/L的 MS培养基
中,玛咖丛生芽形成(B),并可在根系上长出丛生芽(箭头所示) (C)。
A B C
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