全 文 ：• 3294 • 中华中医药杂志(原中国医药学报)2015年9月第30卷第9期 CJTCMP , September 2015, Vol . 30, No. 9
蒺藜茎叶的化学成分研究
李春娜，范冰舵，刘洋洋，时晓娟，李朋收，徐暾海，刘铜华
（北京中医药大学，北京 100029）
摘要：目的：研究蒺藜Tribulus terrestris L.茎叶的化学成分。方法：采用大孔树脂、MCI树脂、RP-C18键合硅
胶柱色谱、Sephadex LH-20凝胶柱色谱、反相制备高效液相色谱等技术对蒺藜提取物进行分离纯化，并根据理化
性质和波谱手段进行结构鉴定。结果：从蒺藜茎叶30%大孔树脂洗脱物中分离得到12个化合物，鉴定出10个化合
物，分别为乙酰丁香酮-4’-O-β-D-吡喃葡萄糖苷（1），异嗪皮啶-7-O-β-D-吡喃葡萄糖苷（2），异鼠李素-
3-O-β-D-葡萄糖基-7-O-β-D-吡喃葡萄糖苷（3），槲皮素-3-O-β-D-龙胆双糖苷（4），异荭草苷（5），
山奈酚-3-O-β-D-龙胆双糖基-7-O-β-D-吡喃葡萄糖苷（6），异鼠李素-3-O-β-D-龙胆双糖基-7-O-β-D-
吡喃葡萄糖苷（7），Terrestrinone A2（8），邻苯二甲酸二丁酯（9）和邻苯二甲酸二辛酯（10）。结论： 化合物
1和5为首次在该属中分离得到。
关键词：蒺藜茎叶；化学成分；甾体皂苷类；黄酮类
基金资助：国家国际科技合作计划项目（No.2010DFB33260），11北京教委共建项目，北京中医药大学创新
团队项目（No.2011-CXTD-19）
Study on chemical constituents in the stems and leaves of Tribulus terrestris
LI Chun-na, FAN Bing-duo, LIU Yang-yang, SHI Xiao-juan, LI Peng-shou,
XU Tun-hai, LIU Tong-hua
( Beijing University of Chinese Medicine, Beijing 100029, China )
Abstract: Objective: To investigate the chemical constituents in the stems and leaves of Tribulus terrestris. Methods:
The compounds were isolated and purified by a combination of various column chromatographies techniques including
macroporous resin, MCI resin, reversed-phase C18 silica gel, Sephadex LH-20 columns, and reversed-phase HPLC. The structures
were identified by means of chemical evidences and spectral analyses including MS, 1H-NMR, and 13C-NMR. Results: Twelve
compounds were isolated and 10 were identified as 3’, 3’-dimethoxy-4’-hydroxyacetophenone-4’-O-β-D-glucopyranoside (1),
isofraxidin-7-O-β-D-glucopyranoside (2), isorhamnetin-3-O-β-D-glucosyl-7-O-β-D-glucoside (3), quercetin-3-O-β-D-
gentiobioside (4), isoorientin (5), kaempfero l-3-O-β-D-gentiobioside-7-O-D–glucoside (6), isorhamnetin-3-O-β-D-gentiobioside-
7-O-D-glucoside (7), Terrestrinone A2 (8), dibutyl phthalate (9), dioctyl phthalate (10). Conclusion: Compounds 1 and 5 are
isolated from the plants of Tribulus for the first time.
Key words: Stems and leaves of Tribulus terrestris; Chemical constituents; Steroidal saponins; Flavonoids
Funding: International Science & Technology Cooperation Program of China(No.2010DFB33260), Research
Foundation of Beijing Municipal Commission of Education, Innovation Team Program of Beijing University of Chinese Medicine
(No.2011-CXTD-19)
·研究报告·
通讯作者：徐暾海，北京市朝阳区北三环东路11号北京中医药大学，邮编：100029，电话：010-64286935，E-mail：thxu@163.com
蒺藜（Tribulus terrestris L.）为蒺藜科（Zygophylaceae）蒺藜
属（Tribulus）植物。《中国药典》2010版收载的中药蒺藜为蒺藜
的果实，称之为蒺藜果，其性微温，味辛苦，有小毒，具有平肝解
郁、活血祛风、明目、止痒的功效。主治头痛眩晕、胸胁胀痛、乳
闭乳痈、目赤翳障、风疹瘙痒、消渴等症[1]。蒺藜药用历史悠久，
全株果实、根、茎叶、花都可入药，被誉为“草中名药”。蒺藜茎
叶为蒺藜科植物蒺藜干燥的茎和叶，始载于《本草纲目》[2]。
目前，对蒺藜的化学成分研究发现，其主要成分为甾体皂
苷类、黄酮类、生物碱类、多糖类等，其中黄酮类和甾体皂苷
类具有改善心脑血管、增强性功能、抗衰老、抗胰岛素抵抗、
降血压及抑菌抗病毒等多种生物活性，是该植物药的活性成
分。本课题组对蒺藜茎叶提取物进行了系统研究并分离得到
多种黄酮苷类化合物[3]，为了更深入阐明蒺藜的药效物质基
础，本实验继续对蒺藜茎叶30%大孔树脂洗脱物进行分离，
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共得到12个化合物，通过理化性质和波谱手段共鉴定出10个
化合物，分别为乙酰丁香酮-4’-O-β-D-吡喃葡萄糖苷（3’，
3’-dimethoxy-4’-hydroxyacetophenone-4’-O-β-D-glucopyranoside
or Glucoacetosyringone），异嗪皮啶-7-O-β-D-吡喃葡萄糖
苷（isofraxidin-7-O-β-D-glucopyranoside），异鼠李素-3-O-
β-D-葡萄糖基-7-O-β-D-吡喃葡萄糖苷（isorhamnetin-
3-O-β-D-glucosyl-7-O-β-D-glucoside），槲皮素-3-O-β-D-
龙胆双糖苷（quercetin-3-O-β-D-gentiobioside），异荭草苷
（isoorientin），山奈酚-3-O-β-D-龙胆双糖基-7-O-β-D-葡
萄糖苷（kaempferol-3-O-β-D-gentiobioside-7-O-D-gluc oside），
异鼠李素-3-O-β-D-龙胆双糖基-7-O-β-D-吡喃葡萄糖
苷（isorhamnetin-3-O-β-D-gentiobio side-7-O-D-glucoside），
Terrestrinone A2，邻苯二甲酸二丁酯（dibutyl phthalate）和邻
苯二甲酸二辛酯（dioctyl phthalate）。其中乙酰丁香酮-4’-O-
β-D-吡喃葡萄糖苷和异荭草苷为首次在该属报道。
材料
1. 仪器 LC-15C分析型高效液相色谱仪（日本岛津），LC-
3000半制备型高效液相色谱仪（北京创新通恒有限公司），
Millipore-Q超纯水制备仪（法国密理博公司），色谱甲醇（美国
Fisher公司），色谱乙腈（美国Fisher公司）；其他所用试剂均为
分析纯（北京化工厂）。
2. 药材 蒺藜茎叶购于吉林，经北京中医药大学博物馆马
泽新老师鉴定为Tribulus terrestris L.的干燥茎和叶。
方法与结果
1. 提取与分离 蒺藜茎叶36kg，经中药粉碎机粉碎呈粗分
状，依次经95%乙醇渗漉提取（至渗漉提取液呈淡黄色）；70%
乙醇渗漉提取（至渗漉提取液呈淡黄白色）；水超声提取（料液
比1∶5）。分别回收提取液得95%乙醇提取部分（960g浓浸膏），
70%乙醇提取部分和水部分。蒺藜95%乙醇提取部分加少许水
溶液混悬后依次用石油醚、乙酸乙酯萃取。萃取后水溶液适
当加热挥散残留的乙酸乙酯，经D101大孔树脂，依次用水、30%
乙醇、50%乙醇、75%乙醇、95%乙醇洗脱，并回收溶剂，得到
30%醇洗脱部位、50%醇洗脱部位、75%醇洗脱部位、95%醇洗
脱部位（水部分弃去）。30%乙醇洗脱部分经MCI树脂中压柱分
离、葡聚糖凝胶（Sephadex LH-20）柱层析和半制备高效液相色
谱等方法分离纯化。70%乙醇提取部分加有机相萃取（方法同
前）。萃取后与水提取部分合并经D101大孔树脂粗分段（方法同
前），得到的30%乙醇洗脱部分用RP-C18键合硅胶中压柱分离、
Sephadex LH-20凝胶柱色谱和半制备高效液相色谱等方法分离
纯化。从以上两30%醇洗脱部位分离得到12个化合物，鉴定出
10个化合物。
2. 结构鉴定
2.1 化合物1 白色针状结晶（MeOH）；可溶于水醇，
甲醇等；盐酸镁粉反应阳性，Molish反应阳性。ESI-MSm/z：
381[M+Na]+。UVmax（λnm）：217nm，278nm。
1H-NMR（CD3OD，
600MHz）δ：2.60（3H，s，H-2），7.32（2H，s，H-2’，6’），3.91
（6H，s，3’，5’-OCH3），5.10（
1H，d，J=7.8Hz，H-1’’），3.23-3.50
（4H，m，H-（2’’-5’’）），3.77（1H，dd，J=2.4，12.0Hz，H-6’’），
3.65（1H，dd，J=5.4，12.0Hz，H-6’’b）；13C-NMR（CD3OD）δ：
199.9（C-1），27.1（C-2），134.8（C-1’），108.1（C-2’，6’），154.8
（C-3’，5’），57.6（3’，5’-OCH3），141.1（C-4’），100.7（C-1’’），76.2
（C-2’’），78.4（C-3’’），71.9（C-4’’），79.0（C-5’’），63.0（C-6’’）。
上述数据与文献报道[4]基本一致，故鉴定化合物1为乙酰丁香
酮-4’-O-β-D-吡喃葡萄糖苷。
2.2 化合物2 白色粉末结晶（MeOH）；可溶于水醇，甲
醇等极性溶剂；Molish反应为阳性。ESI-MSm/z：407[M+Na]+。
UVmax（λnm）：207nm，226nm，291nm，336nm。
1H-NMR
（CD3OD，600MHz）δ：6.37（
1H，d，J=9.6Hz，H-3），7.90（1H，
d，J=9.6Hz，H-4），7.02（1H，s，H-5），3.91（3H，s，6-OCH3），
4.03（3H，s，8-OCH3），5.20（
1H，d，J=7.8Hz，H-1’’），3.51-3.24
（4H，m，H-（2’’-5’’）），3.77（1H，dd，J=1.8，12.0Hz，H-6’’a），
3.64（1H，dd，J=6.6，12.0Hz，H-6’’b）；13C-NMR（CD3OD）δ：
162.8（C-2），116.0（C-3），144.3（C-4），106.4（C-5），151.7（C-
6），143.7（C-7），142.6（C-8），146.0（C-9），116.9（C-10），104.4
（C-1’’），75.9（C-2’’），78.1（C-3’’），71.6（C-4’’），78.8（C-5’’），
62.7（C-6’’），57.3（C-6-OCH3），62.7（C-8-OCH3）。上述数据与
文献报道[5]基本一致，故鉴定化合物2为异嗪皮啶-7-O-β-D-
吡喃葡萄糖苷。
2.3 化合物3 黄色粉末结晶（MeOH）；可溶于水醇，甲醇；
盐酸镁粉反应阳性，Molish反应阳性。ESI-MSm/z：641[M+1]+。
U Vm a x（λn m）：2 55n m（带Ⅱ），35 4n m（带Ⅰ）。
1H -N M R
（CD3OD，600MHz）δ：6.81（
1H，d，J=1.8Hz，H-8），6.46（1H，
d，J=1.8Hz，H-6），7.96（1H，d，J=1.8Hz，H-2’），7.55（1H，dd，
J=1.8，8.4Hz，H-6’），6.94（1H，d，J=1.8Hz，H-5’），5.59（1H，
d，J=7.2Hz，H-1’’），5.09（1H，d，J=7.8Hz，H-1’’’），3.85（1H，s，
Ar-OCH3）；
13C-NMR（CD3OD）δ：156.8（C-2），133.2（C-3），
177.9（C-4），106.8（C-5），99.3（C-6），162.8（C-7），94.5（C-
8），156.0（C-9），105.6（C-10），121.0（C-1’），133.5（C-2’），
147.0（C-3’），149.8（C-4’），115.2（C-5’），122.2（C-6’），100.7
（C-1’’），60-80（C-2’，6’），99.8（C-1’’’）。上述数据与文献报道
[6]基本一致，故鉴定化合物3为异鼠李素-3-O-β-D-葡萄糖
基-7-O-β-D-吡喃葡萄糖苷。
2.1 化合物4 黄色粉末结晶（MeOH）；可溶于水甲醇，
甲醇等；盐酸镁粉反应阳性，Molish反应阳性。ESI-MSm/z：
649[M+Na]+。UVmax（λnm）：256nm（带Ⅱ），354nm（带Ⅰ）。
1H-NMR（CD3OD，600MHz）δ：6.19（
1H，d，J=1.8Hz，H-6），
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6.38（1H，d，J=1.8Hz，H-8），7.57（1H，d，J=1.8Hz，H-2’），6.84
（1H，d，J=9.0Hz，H-5’），7.57（1H，dd，J=2.4，9.0Hz，H-6’），
5.40（1H，d，J=7.2Hz，3-O-glu1’’），4.06（1H，d，J=7.2Hz，
7-O-glu1’’’）；13C-NMR（CD3OD）δ：156.3（C-2），133.3（C-3），
177.3（C-4），161.2（C-5），98.6（C-6），164.1（C-7），93.5（C-
8），156.3（C-9），104.0（C-10），121.1（C-1’），115.2（C-2’），
144.7（C-3’），148.4（C-4’），116.2（C-5’），121.6（C-6’），100.9
（C-1’’），73.4（C-2’’），76.5（C-3’’），69.8（C-4’’），76.3（C-5’’），
68.1（C-6’’），103.1（C-1’’’），74.0（C-2’’’），76.5（C-3’’’），69.7（C-
4’’’），76.4（C-5’’’），60.7（C-6’’’）。上述数据与文献报道[7]基本
一致，故鉴定化合物4为槲皮素-3-O-β-D-龙胆双糖苷。
2.5 化合物5 黄色粉末结晶（MeOH）；难溶于水，微溶
于甲醇。ESI-MSm/z：449[M+1]+。UVmax（λnm）乙腈-水系统：
270nm（带Ⅱ），348nm（带Ⅰ）。1H-NMR（CD3OD，600MHz）δ：
6.67（1H，s，H-3），6.48（1H，s，H-8），7.41（1H，d，J=8.4Hz，
H-6’），7.40（1H，s，H-2’），6.89（1H，d，J=8.4Hz，H-5’），13.56
（1H，brs，5-OH），4.58（1H，d，J=9.6Hz，7-C-glu1’’）；13C-NMR
（CD3OD）δ：163.6（C-2），102.8（C-3），181.8（C-4），160.7（C-
5），108.9（C-6），163.3（C-7），93.5（C-8），156.2（C-9），103.4
（C-10），73.0（C-1’），113.3（C-2’），145.7（C-3’），149.7（C-4’），
116.0（C-5’），118.9（C-6’），100.9（C-1’’），70.6（C-2’’），78.9（C-
3’’），70.2（C-4’’），81.5（C-5’’），61.5（C-6’’）。上述数据与文献
报道[8]基本一致，故鉴定化合物5为异荭草苷。
2.6 化合物6 淡黄色粉末（MeOH）；可溶于低浓度含水
醇，难溶于甲醇等；盐酸镁粉反应阳性，Molish反应阳性。ESI-
MSm/z：773[M+1]+。UVmax（λnm）：256nm（带Ⅱ），357nm（带
Ⅰ）。1H-NMR（CD3OD，600MHz）d：6.44（
1H，d，J=2.4Hz，
H-6），6.76（1H，d，J=2.4Hz，H-8），8.05（2H，d，J=9.0Hz，
H-2’，6’），6.89（2H，d，J=9.0Hz，H-3’，5’），4.03（1H，d，
J=7.8Hz，H=1’’’），5.07（1H，d，J=7.2Hz，H=1’’’’）；13C-NMR
（CD3OD）δ：157.1（C-2），133.5（C-3），177.5（C-4），160.8（C-
5），99.3（C-6），162.8（C-7），94.7（C-8），156.0（C-9），105.7
（C-10），120.6（C-1’），131.0（C-2’），115.2（C-3’），160.2（C-
4’），115.2（C-5’），131.0（C-6’），73.3（C-1’’），76.5（C-2’’），69.7
（C-3’’），76.2（C-4’’），68.0（C-5’’），100.9（C-3’’-OCH3），103.2
（C-1’’’），74.1（C-2’’’），76.4（C-3’’’），69.6（C-4’’’），76.3（C-
5’’’），60.6（C-6’’’），99.9（C-1’’’’），73.1（C-2’’’’），76.5（C-3’’’’），
δ69.8（C-4’’’’），77.1（C-5’’’’），60.8（C-6’’’’）。上述数据与文献
报道[6]基本一致，故鉴定化合物6为山奈酚-3-O-β-D-龙胆双
糖基-7-O-β-D-葡萄糖苷。
2.7 化合物7 淡黄色粉末（MeOH）；可溶于低浓度含水
醇，难溶于甲醇等；盐酸镁粉反应阳性，Molish反应阳性。ESI-
MSm/z：803[M+1]+。UVmax（λnm）：254nm（带Ⅱ），353nm（带
Ⅰ）。1H-NMR（CD3OD，600MHz）d：6.45（
1H，dd，J=1.8Hz，
H-6），6.78（1H，d，J=2.4Hz，H-8），7.94（1H，d，J=2.4Hz，
H-2’），6.93（1H，d，J=8.4Hz，H-5’），7.55（1H，dd，J=1.8，
8.4Hz，H-6’），3.85（3H，s，C-3’’-OCH3），5.52（
1H，d，J=7.2Hz，
H=1’’），4.06（1H，d，J=7.8Hz，H=1’’’），5.07（1H，d，J=7.2Hz，
H=1’’’’）；13C-NMR（CD3OD）δ：156.8（C-2），133.3（C-3），177.5
（C-4），160.8（C-5），99.3（C-6），162.9（C-7），94.7（C-8），
156.0（C-9），105.7（C-10），120.8（C-1’），113.3（C-2’），147.0（C-
3’），149.6（C-4’），115.2（C-5’），122.3（C-6’），55.8（C-1’’），73.3
（C-2’’），76.6（C-3’’），69.7（C-4’’），76.2（C-5’’），67.8（C-6’’），
100.9（C-3’’-OCH3），103.2（C-1’’’），74.2（C-2’’’），76.4（C-3’’’），
69.6（C-4’’’），76.4（C-5’’’），60.6（C-6’’’），99.9（C-1’’’’），73.1（C-
2’’’’），76.5（C-3’’’’），69.7（C-4’’’’），77.2（C-5’’’’），60.8（C-6’’’’）。
上述数据与文献报道[6，9]基本一致，故鉴定化合物7为异鼠李
素-3-O-β-D-龙胆双糖基-7-O-β-D-吡喃葡萄糖苷。
2.8 化合物8 淡黄色粉末（MeOH）；可溶于水，水醇等；
Molish反应为阳性。ESI-MSm/z：606[M-1]-。UVmax（λnm）：
243nm。1H-NMR（CD3OD，600MHz）d：5.75（
1H，s，H-4），
2.63（J=14.4Hz，H-6），3.38（J=14.4Hz，H-6），4.31（1H，m，
J=6.6Hz，H-16），1.16（1H，s，H-18），1.33（1H，s，H-19），3.74
（1H，dd，J=9.6，6.0Hz，H-26a），3.38（1H，dd，H-26a），0.95
（1H，d，J=6.6Hz，H-27），4.23（1H，d，J=7.8Hz，H-1’），3.86
（1H，dd，J=12.0，2.4Hz，H-6’a），3.66（1H，dd，J=12.0，5.4Hz，
H-6’b）；13C-NMR（CD3OD）δ：36.5（C-1），34.7（C-2），201.9（C-
3），125.1（C-4），173.1（C-5），33.6（C-6），32.6（C-7），35.6（C-
8），56.3（C-9），40.4（C-10），38.3（C-11），214.7（C-12），56.7
（C-13），56.2（C-14），32.2（C-15），81.0（C-16），56.4（C-17），
16.7（C-18），17.3（C-19），41.9（C-20），14.9（C-21），114.2（C-
22），38.3（C-23），29.1（C-24），35.2（C-25），76.2（C-26a），
17.4（C-27），104.8（C-1’），75.4（C-2’），78.4（C-3’），71.9（C-
4’），78.1（C-5’），63.0（C-6’a）。上述数据与文献报道[10]基本一
致，故鉴定化合物8为TerrestrinoneA2。
2.9 化合物9 淡黄色油状液体，白色絮状沉淀（H2O）；
可溶于水醇，易溶于甲醇，乙醇等。ESI-MSm/z：279[M+1]+。
1H-NMR（CD3OD，600MHz）d：7.58（
2H，m，H-3（6）），7.70（2H，
m，H-4（5）），4.28（4H，t，J=6.6Hz，H-1’（1’’）），1.70（4H，m，
H-2’（2’’）），1.43（4H，m，H-3’（3’’）），0.95（6H，t，J=7.2Hz，
H-4’（4’’））；13C-NMR（CD3OD）δ：133.7（C-1（2）），132.5（C-3
（6）），130.0（C-4（5）），169.3（C-7（8）），66.8（C-1’（1’’）），31.9
（C-2’（2’’）），20.4（C-3’（3’’）），14.3（C-4’（4’’））。上述数据与文
献报道[11]基本一致，故鉴定化合物9为邻苯二甲酸二丁酯。
2.10 化合物10 淡黄色沉淀（H2O）；可溶于水醇，易溶
于甲醇，乙醇等。ESI-MSm/z：391[M+1]+。1H-NMR（CD3OD，
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600MHz）d：7.61（2H，m，H-3（6）），7.71（2H，m，H-4（5）），
4.21（4H，m，J=6.6Hz，H-1’（1’’）），1.68（2H，m，H-2’（2’’）），
1.2-1.5（H-3’（3’’）），0.9-1.0（H-6’（6’’）），1.2-1.5（H-（1’’-7’’）），
0.9-1.0（H-（1’’-1’-8’））；13C-NMR（CD3OD）δ：133.8（C-1（2）），
132.6（C-3（6）），130.1（C-4（5）），169.5（C-7（8）），69.3（C-1’
（1’’）），40.4（C-2’（2’’）），31.8（C-3’（3’’）），25.1（C-4’（4’’）），
14.6（C-5（5）），11.6（C-6（6）），30.3（C-（1’-7’）），24.2（C-（1’-
8’））。上述数据与文献报道[11]基本一致，故鉴定化合物10为
邻苯二甲酸二辛酯。化合物9化合物10初步鉴定为化学填料中
的塑化剂，尚需进一步验证。
参 考 文 献
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（收稿日期：2014年7月10日）
电针对偏头痛大鼠三叉神经节大麻素受体、
CGRP表达和血清CGRP浓度影响
张慧1，胡幼平2，吴佳2，郑晖2
（1四川医科大学，泸州 646000；2成都中医药大学针灸推拿学院，成都 610075）
摘要：目的：观察偏头痛大鼠造模测（右侧）三叉神经节大麻素受体1（C B1）、降钙素基因相关肽
（CGRP）的表达和血清CGRP浓度，及电针干预对其影响，探讨电针在偏头痛中发挥镇痛效应的相关机制。
方法：SD大鼠随机分为假手术组（A）、模型组（B）、模型+电针组（C）、模型+电针+拮抗剂组（D）。电
刺激右侧三叉神经节制作偏头痛模型。取“风池”“外关” 电针治疗。QPCR和Western blot检测右测三叉神
经节CB1/CGRP表达；ELISA检测血清CGRP浓度。结果：QPCR结果显示，CB1 mRNA表达：B组、C组、D组均
明显高于A组（P<0.05）；C组、D组均明显高于B组（P<0.05）。CGRP mRNA表达：B组、C组、D组均明显高
于A组（P<0.05）；B组、D组均明显高于C组（P<0.05）。Western blot结果显示：CB1蛋白表达：B组、C组、
D组均明显高于A组（P<0.05）；C组、D组均明显高于B组（P<0.05）。CGRP蛋白表达：B组、C组、D组均明
显高于A组（P<0.05）；B组、D组均明显高于C组（P<0.05）。血清CGRP浓度：针刺前B组、C组、D组明显高
于A组（P<0.05）；针刺5min及针刺10min后B组、C组、D组明显高于A组（P<0.05），B组、D组明显高于C组
（P<0.05）。结论：电针干预上调偏头痛大鼠三叉神经节CB1受体表达和下调三叉神经节CGRP表达，降低血清
CGRP浓度，CB1拮抗剂可以部分拮抗电针对CGRP的影响。
关键词：电针；大麻素受体1；降钙素基因相关肽；三叉神经节；偏头痛
基金资助：国家自然科学基金项目（No.81102656）
·研究报告·
通讯作者：郑晖，成都市十二桥路37号成都中医药大学针推学院，邮编：610075，电话：028-66875812，E-mail：Zh_229@126.com