全 文 ：第４１卷　第２期
２０１３年３月
河南师范大学学报（自然科学版）
Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｈｅｎａｎ　Ｎｏｒｍａｌ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ（Ｎａｔｕｒａｌ　Ｓｃｉｅｎｃｅ　Ｅｄｉｔｉｏｎ）
　 Ｖｏｌ．４１　Ｎｏ．２
　 Ｍａｒ．２０１３
　　文章编号：１０００－２３６７（２０１３）０２－０１３１－０５
短序落葵薯根多糖提取工艺及其生物活性
赵金莉，张亚如，顾晓阳，刘　斌，金跃婷
（河北大学 生命科学学院，河北 保定０７１００２）
摘　要：通过正交试验研究短序落葵薯根多糖水提过程中提取温度、提取时间和料液比对多糖得率的影响，采
用苯酚－硫酸法对多糖进行含量测定，选出较为理想的提取条件，即加２０倍水，在１００℃下浸提４ｈ，得率１５．７２％．
短序落葵薯根多糖能有效清除活性氧，对·ＯＨ，Ｏ－２ ，ＤＰＰＨ·的半清除率ＩＣ５０分别为２．８９，１．９９和１．８９ｍｇ／ｍＬ；对
脂质过氧化的半抑制率为０．０３８ｍｇ／ｍＬ；在还原力的测定中，１ｍｇ／ｍＬ多糖在７００ｎｍ下吸光值为０．６９６　７．
关键词：短序落葵薯；根多糖；提取；生物活性
中图分类号：Ｑ９４６．３ 文献标志码：Ａ
短序落葵薯［Ａｎｒｅｄｅｒａ　ｓｃａｎｄｅｎｓ（Ｌ．）Ｍｏｑ．］是落葵科落葵属多年生蔓生肉质藤本植物［１］．该属植物全
世界约有５～１０种，我国栽培２种即落葵薯和短序落葵薯，其中落葵薯［Ａｎｒｅｄｅｒａ　ｃｏｒｄｉｆｏｌｉａ （Ｔｅｎｏｒｅ）
Ｓｔｅｅｎｉｓ］一直作为绿色蔬菜供观赏和食用，是一种药食兼用的新兴保健蔬菜［２－４］．近年来，与之同属的短序落
葵薯在民间也有作为药食同源植物利用的，但是对其营养和药用价值的现代研究甚少．短序落葵薯块根多糖
含量较高［５］，大量资料表明多糖具有较强的抗氧化、抗肿瘤、抗衰老、抗炎和抑菌活性等［６，７］．目前关于短序落
葵薯根多糖的研究报道较少．因此本实验对短序落葵薯根多糖的提取工艺和体外抗氧化活性进行了较为系
统的研究，以期为短序落葵薯根多糖的进一步开发利用提供参考．
１　材料与方法
１．１　材料与试剂
１．１．１　材料　短序落葵薯：采自河北顺平，１０月底收获块根，烘干备用．
１．１．２　试剂　二苯基苦味酰基苯肼（１，１－ｄｉｐｈｅｎｙ，１－２－ｐｉｃｒｙｌｈｙｄｒａｚｙｌ，ＤＰＰＨ·）为Ｓｉｇｍａ产品；氯化硝基
四氮唑蓝（ＮＢＴ），上海研域生物科技有限公司；维生素Ｃ，三羟甲基氨基甲烷（Ｔｒｉｓ），葡萄糖，浓硫酸，苯酚，
盐酸，氯仿，正丁醇，三氯乙酸，双氧水，硫酸亚铁，核黄素，邻菲罗啉，磷酸二氢钾，磷酸氢二钾，铁氰化钾，卵
磷脂均为分析纯试剂，购于保定华新试剂公司．
１．２　主要仪器与设备
三用电热恒温水箱（ＨＷ－Ｗ２１），北京市场风仪器仪表；台式高速离心机（ＴＧＬ－２０Ｂ），上海安亭科学仪器
厂；循环水式真空泵（ＳＨＺ－Ⅲ），上海亚荣生化仪器；电热鼓风干燥箱（１０１－３ＡＢ），天津市泰斯特仪器有限公
司；型旋转蒸发器（ＲＥ－５２Ａ），上海亚荣生化仪器厂；酸度计（ｐＨＳ－３ＣＷ），上海般特仪器制造有限公司；紫外
可见分光光度计（ＵＶ－２４５０），日本岛津；电子天平（ＦＡ１００４），上海精密科学仪器公司．
１．３　方法
１．３．１　短序落葵薯根多糖提取工艺　短序落葵薯块根→粉碎，过筛→石油醚回流脱除脂类→干燥得脱脂样
品→加适量蒸馏水，１００℃浸提４ｈ→离心取上清液→沉淀加蒸馏水再提取一次（连续提取２次），合并２次
上清液 减压浓缩（５５℃，８０ｒ／ｍｉｎ）加入乙醇，使其体积分数为８０％→冰箱中静置过夜→离心得粗多糖，加
适量蒸馏水溶解→Ｓｅｖａｇｅ法除蛋白质→离心，上清液进行醇沉 沉淀用丙酮洗涤３次，６０℃烘干得短序落葵
收稿日期：２０１２－１０－２０
基金项目河北大学博士基金项目（２００９－１６６）
作者简介：赵金莉（１９７３－），女，河北景县人，河北大学副教授，博士，主要从事土壤微生物与植物间相互作用研究．
DOI:10.16366/j.cnki.1000-2367.2013.02.027
薯根多糖→以葡萄糖为对照品，用苯酚－硫酸法测得提取物中多糖含量为９６．８２％．
１．３．２　短序落葵薯根多糖提取工艺的正交试验设计　影响短序落葵薯根多糖得率的主要因素有提取温度、
提取时间和料液比等．根据预试验结果，选择浸
提时间、浸提温度、料液比３个因素为考察因
素，每个因素各取３个较优水平，做三因素三
水平正交试验设计（见表１）．
短序落葵薯多糖得率计算公式：短序落葵
薯多糖得率＝多糖质量／短序落葵薯根粉质量
×１００％
表１　短序落葵薯根多糖提取正交试验因素水平表
水平
因素
Ａ（浸提温度／℃） Ｂ（料液比） Ｃ（浸提时间／ｈ）
１　 ８０　 １∶２０　 ３
２　 ９０　 １∶３０　 ４
３　 １００　 １∶４０　 ５
１．３．３　多糖含量测定及提取率的计算方法　以葡萄糖为标准品，采用苯酚－硫酸法测定多糖含量［８］．
１．３．４　短序落葵薯根多糖生物活性研究
１．３．４．１　清除羟自由基（ＯＨ）活性的测定　采用 Ｆｅｔｏｎ反应即邻菲罗啉－Ｆｅ２＋－Ｈ２Ｏ２法测定［９］．向１ｍＬ
质量浓度范围在０．１～５ｍｇ／ｍＬ短序落葵薯根多糖样品溶液中依次加入１ｍＬ　ＰＢＳ缓冲溶液（ｐＨ 值为
７．４，０．４ｍｏｌ／Ｌ），１ｍＬ　２．５ｍｍｏｌ／Ｌ邻菲罗啉溶液，１ｍＬ　２．５ｍｍｏｌ／Ｌ　ＦｅＳＯ４，０．５ｍＬ　２０ｍｍｏｌ／Ｌ　Ｈ２Ｏ２，混
匀后３７℃水浴中准确反应１ｈ，５３６ｎｍ处迅速测定吸光度，以ＶＣ为对照．空白组中用１ｍＬ去离子水代替样
品溶液；对照组中用１．５ｍＬ去离子水代替样品溶液和 Ｈ２Ｏ２ 溶液．按下式计算·ＯＨ 清除率．
·ＯＨ清除率（％）＝［（Ａ２－Ａ１）／（Ａ０－Ａ１）］×１００，
式中：Ａ１ 为空白组吸光度值；Ａ２ 为样品组吸光度值；Ａ０ 为标准对照组吸光度值．
１．３．４．２　清除超氧阴离子自由基Ｏ２活性的测定　采用光照核黄素［１０］的方法．向１ｍＬ质量浓度范围在０．１
～５ｍｇ／ｍＬ短序落葵薯根多糖样品中依次加入１．６７×１０－５　ｍｏｌ／Ｌ核黄素、０．０１ｍｏｌ／Ｌ蛋氨酸、４．６×１０－５
ｍｏｌ／Ｌ氯化硝基四氮唑（ＮＢＴ）（均用ｐＨ＝７．４，０．０５ｍｏｌ／Ｌ的ＰＢＳ缓冲液配制），２支空白管都以１．０ｍＬ
缓冲液代替样品溶液．１支空白管置于黑暗中处理，其它管都置于光照箱中光照３０ｍｉｎ，取出后以黑暗处理
的溶液调零，于５６０ｎｍ处测定各溶液的吸光度．清除率按下式计算：
Ｏ－２ ·清除率（％）＝（Ａ０－Ａ１）／Ａ０×１００％，
Ａ０ 为光照处理的空白管的吸光度，Ａ１ 为样品管的吸光度．
１．３．４．３　对ＤＰＰＨ 的清除作用［１１，１２］　取２ｍＬ不同质量浓度的多糖样品溶液，加入２ｍＬ　０．１ｍｍｏｌ／Ｌ
ＤＰＰＨ·有机溶液，立即混匀，静置３０ｍｉｎ后，在５１７ｎｍ处测定吸光度．以等体积乙醇代替 ＤＰＰＨ 溶液为空
白，以等体积无菌水代替多糖溶液为对照．多糖对ＤＰＰＨ·的清除率由下面计算式计算：
ＤＰＰＨ·清除率（％）＝［１－（Ａ２－Ａ１）／Ａ０］×１００，
式中，Ａ０ 为对照吸光度值；Ａ１ 为空白吸光度值；Ａ２ 为 ＤＰＰＨ 与样品溶液反应后的吸光度值．
１．３．４．４　对脂质过氧化抑制活性的测定［１３，１４］　取０．５ｍＬ卵磷溶液（用２００ｍｇ卵磷溶解于３０ｍＬ１０
ｍｍｏｌ／Ｌ　ＰＨ＝７．４的ＰＢＳ，冰浴震荡），加入ｐＨ＝７．４ＰＢＳ缓冲液１．０ｍＬ，不同浓度的样品溶液１ｍＬ，２．５
ｍｍｏｌ／Ｌ的ＥＤＴＡ－Ｆｅ（Ⅱ）１．０ｍＬ，混匀后于３７℃水浴中反应４５ｍｉｎ，再加入２８％（Ｗ／Ｖ）的ＴＣＡ　２．０ｍＬ，
１％（Ｗ／Ｖ）的ＴＢＡ　１．０ｍＬ，混匀后置于１００℃沸水浴中加热１０ｍｉｎ，冷却后在５３２ｎｍ处测定吸光度，用
ＰＢＳ缓冲液调零，空白管用ＰＢＳ缓冲液代替样品测吸光度，并按下式计算抑制率：
抑制率＝（Ａ０－Ａ１）／Ａ０×１００，
Ａ０ 是空白管中溶液的吸光度，Ａ１ 是样品管中溶液的吸光度．
１．３．４．５　多糖还原力的测定　采用三氯乙酸法测定［１５，１６］．分别取１ｍＬ多糖样品溶液，加２．５ｍＬ　ｐＨ＝６．６
ＰＢＳ和２．５ｍＬ　１％铁氰化钾溶液，混合后，于５０℃下放置２０ｍｉｎ，加入２．５ｍＬ质量分数为１０％的三氯乙
酸溶液，４８００ｒ·ｍｉｎ－１离心１０ｍｉｎ．取２．５ｍＬ上清液，加入２．５ｍＬ蒸馏水和２．５ｍＬ　０．１％三氯化铁溶液，
混匀，静置１０ｍｉｎ，在７００ｎｍ测定吸光度．吸光度越高，抗氧化性越好，还原力越强．
２　结果与分析
２．１　提取短序落葵薯根多糖的正交试验结果
２３１ 河南师范大学学报（自然科学版）　　　　　　　　　　　　　　　　２０１３年
提取短序落葵薯根多糖的正交试验结果与分析见表２和表３．由直观分析结果（表２）可以看出，ＲＡ＞
ＲＣ＞ＲＢ，说明３中因素对多糖得率的影响大小为浸提温度＞料液比＞浸提时间．在试验设定的范围内，最
佳提取方案为Ａ３Ｂ２Ｃ１，即加２０倍水，１００℃下提取４ｈ．方差分析（表３）表明，因素Ａ（浸提温度）和因素Ｃ
（料液比）对多糖的得率影响显著；因素Ｂ（浸提时间）影响不显著，说明了短序落葵薯根多糖提取过程中对多
糖得率影响较大的因素是浸提温度和加水倍数，而浸提时间的影响相对较小．
表２　短序落葵薯根多糖提取工艺优化的正交试验结果
编号 Ａ（浸提温度／℃） Ｂ（浸提时间／ｈ） Ｃ（料液比） 多糖得率／％
１　 １（８０） １（３） １（１：２０） １０．９６
２　 １（８０） ２（４） ２（１：３０） ８．３８
３　 １（８０） ３（５） ３（１：４０） ７．６２
４　 ２（９０） １（３） ２（１：３０） １１．４４
５　 ２（９０） ２（４） ３（１：４０） １２．７８
６　 ２（９０） ３（５） １（１：２０） １３．０６
７　 ３（１００） １（３） ３（１：４０） １３．９８
８　 ３（１００） ２（４） １（１：２０） １５．７２
９　 ３（１００） ３（５） ２（１：３０） １４．４７
Ｔ１ ２６．９６　 ３６．３８　 ３９．７４ －
Ｔ２ ３７．２８　 ３６．８８　 ３４．２９ －
Ｔ３ ４４．１７　 ３５．１５　 ３４．３８ －
Ｒ　 １７．２１　 １．７３　 ５．４５ －
优水平 Ａ３ Ｂ２ Ｃ１ －
主次顺序 Ａ＞Ｃ＞Ｂ
表３　各因素方差分析表
变异来源 自由度 均方 Ｆ值 显著性
ＳＳＡ　 ２　 １６１．７７８　 ３８．７６０　 Ｐ＜０．０５
ＳＳ　Ｂ　 ２　 ４．２６７　 １．０２２　 Ｐ＞０．０５
ＳＳ　Ｃ　 ２　 １９．５２４　 ４．６７８　 Ｐ＜０．０５
误差 ２　 ４．１７４ － －
ＳＳＴ　 ８ － －
２．２　短序落葵薯根多糖的生物活性
２．２．１　短序落葵薯根多糖对·ＯＨ 的清除作用　由图１可看出，随着多糖浓度的增加，对·ＯＨ的清除率
逐渐增大．在多糖质量浓度０．１～５ｍｇ／ｍＬ范围呈良好的量效关系．使用 Ｍｉｃｒｏｃａｌ　Ｏｒｉｇｉｎ软件对短序落葵
薯根多糖的曲线进行拟合，经计算短序落葵薯根多糖的ＩＣ５０为２．８９ｍｇ／ｍＬ．与维生素Ｃ对ＯＨ的清除能力
相比，短序落葵薯根多糖清除ＯＨ的能力略弱．
２．２．２　短序落葵薯根多糖对Ｏ－２ ·的清除作用　由图２可以看出，在多糖质量浓度０．１～５ｍｇ／ｍＬ范围，
Ｏ－２ ·的清除率与短序落葵薯根多糖的浓度呈量效关系，符合４次多项式．其拟合方程：Ｅ＝１１．２６３＋
９７．５８４Ｃ－７４．７１６Ｃ２＋２２．３８２Ｃ３－２．１７８　２Ｃ４，Ｒ２＝０．９７７　１，ＩＣ５０＝１．９９ｍｇ／ｍＬ．与维生素Ｃ清除Ｏ２ 的能力
相比，在０．１～２．８ｍｇ／ｍＬ范围内，短序落葵薯根多糖清除 Ｏ２ 的能力强于维生素 Ｃ，但质量浓度超过
２．８ｍｇ／ｍＬ后，维生素Ｃ对Ｏ２ 的清除能力迅速增强．
２．２．３　短序落葵薯根多糖对·的清除作用　如图３所示，短序落葵薯根多糖有显著的清除ＤＰＰＨ的能力，
且表现出良好的剂量依赖关系．在质量浓度为０．１ｍｇ／ｍＬ时，短序落葵薯根多糖对ＤＰＰＨ的清除能力虽然
低于ＶＣ，但随着质量浓度的升高其清除能力增强，ＩＣ５０＝１．８９ｍｇ／ｍＬ．当质量浓度达到５ｍｇ／ｍＬ时，短序
落葵薯根多糖的清除率达到８４．２８％，接近于ＶＣ．
２．２．４　短序落葵薯根多糖对脂质过氧化的抑制活性　硫代巴比妥酸（ＴＢＡ）可与丙二醛（ＭＤＡ）反应生成粉
红色物质，该物质在５３２ｎｍ处有最大光吸收，利用ＴＢＡ反应可定量检测卵磷脂被氧化时产生的 ＭＤＡ量，
加入抗氧化物质可间接测出卵磷脂被氧化的抑制率．短序落葵薯根多糖对脂质过氧化的抑制作用见图４．利
３３１第２期　　　　　　　　　　　　　赵金莉等：短序落葵薯根多糖提取工艺及其生物活性
用 Ｍｉｃｒｏｃａｌ　Ｏｒｉｇｉｎ软件对短序落葵薯根多糖的曲线进行拟合，经计算短序落葵薯根多糖对脂质过氧化的半
抑制率为ＩＣ５０＝０．０３８ｍｇ／ｍＬ，当短序落葵薯根多糖质量浓度为１ｍｇ／ｍＬ时，抑制率达到６９．０５％，随后，
抑制率趋于平稳．
２．２．５　短序落葵薯根多糖的还原力　物质的还原能力与其抗氧化活性之间有着明显的相关性，还原能力的
高低可以间接反映抗氧化能力的强弱，故一种物质的还原能力可以作为潜在的抗氧化活性的一个重要指标．
由表４可知，短序落葵薯根多糖具有较强的还原能力，且还原能力随多糖浓度（０．１～５．０ｍｇ／ｍＬ）的升高而
增强．相关分析表明，短序落葵薯根多糖的还原能力（Ｅ）与多糖浓度（Ｃ）呈极显著正相关（Ｅ＝０．２４５　５Ｃ＋
０．４５９　９，ｒ＝０．９９９　６）．
３　结　论
（１）本实验采用正交试验法优选得出短序落葵薯根多糖的最佳提取工艺条件：料液比１∶２０、提取温度
１００℃，提取时间４ｈ，多糖得率１５．７２％．
（２）短序落葵薯根多糖体外抗氧化活性在实验范围内有明显的量效关系，对 ·ＯＨ，·Ｏ２，·ＤＰＰＨ 的
半清除率ＩＣ５０分别为２．８９，１．９９和１．８９ｍｇ／ｍＬ；对脂质过氧化的半抑制率为０．０３８ｍｇ／ｍＬ；在还原力的
测定中，１ｍｇ／ｍＬ多糖在７００ｎｍ下吸光值为０．６９６　７．
表４　短序落葵薯根多糖还原力的测定结果
多糖浓度／（ｍｇ·ｍＬ－１） 还原力（Ａｂｓ７００ｎｍ）
０．１　 ０．４９０　０±０．０２６
０．３　 ０．５１０　０±０．０１０
０．５　 ０．５９０　０±０．０４３
１　 ０．６９６　７±０．０２３ Ｅ＝０．２４５　５Ｃ＋０．４５９　９；ｒ＝０．９９９　６
２　 ０．９５０　０±０．０８７
３　 １．１８３　３±０．０７３
５　 １．６９６　７±０．０７２
４３１ 河南师范大学学报（自然科学版）　　　　　　　　　　　　　　　　２０１３年
参　考　文　献
［１］　唐昌林．中国植物志［Ｍ］．北京：科学出版社，１９９６．
［２］　郭淑英，马金贵．药食兼用新型蔬菜———藤三七北方温室栽培术［Ｊ］．湖南农业，２００９，９（１９）：３９．
［３］　吴　萍，严建业，黄　丹，等．藤三七的现代研究进展［Ｊ］．科技导报，２０１２，３０（１６）：７６－７９．
［４］　罗海羽，兰　彬，姚　默，等．药用植物藤三七研究概况［Ｊ］．安徽农业科学，２０１２，４０（２６）：１２８６１－１２８６２．
［５］　赵金莉，张亚如，宋　娟．短序落葵薯多糖含量测定及体外抗氧化活性研究［Ｊ］．江西农业学报，２０１１，２３（１０）：６５－６７．
［６］　Ｈａｎ　Ｓ　Ｂ，Ｌｅｅ　Ｃ　Ｗ，Ｊｅｏｎ　Ｙ　Ｊ，ｅｔ　ａｌ．Ｔｈｅ　ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｙ　ｅｆｆｅｃｔ　ｏｆ　ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓ　ｉｓｏｌａｔｅｄ　ｆｒｏｍ　Ｐｈｅｌｉｎｕｓ　ｌｉｎｔｅｕｓ　ｏｎ　ｔｕｍｏｒ　ｇｒｏｅｔｈｈａｎｄ　ｍｅｔａｓ－
ｔａｓｉｓ［Ｊ］．Ｉｍｍｕｎｏｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ，１９９９，４１（２）：１５７－１６４．
［７］　Ｋｉｍ　Ｇ　Ｙ，Ｌｅ　Ｊ　Ｄ，Ｊｅ　Ｊ　Ｏ，ｅｔ　ａｌ．Ｐａｒｔｉａｌ　ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｉｍｍｕｎｏｓｔｉｍｕｌａｔｏｒｙ　ｅｆｆｅｃｔ　ｏｆ　ａ　ｎｏｖｅｌ　ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅ－ｐｒｏｔｅｉｎ　ｃｏｍｐｌｅｘ　ｅｘｔｒａｃ－
ｔｅｄ　ｆｒｏｍ　Ｐｈｅｌｉｎｕｓ　ｌｉｎｔｅｕｓ［Ｊ］．Ｂｉｏｓｃｉ　Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ　Ｂｉｏｃｈｅｍ，２００６，７０（５）：１２１８－１２２６．
［８］　马　莺．功能性食品活性成分测定［Ｍ］．北京：化学工业出版社，２００５．
［９］　Ｓｍｉｒｎｏｆｆ　Ｎ，Ｃｕｍｂｅｓ　Ｑ　Ｊ．Ｈｙｒｏｘｙｌ　ｒａｄｉｃａｌ　ｓｃａｖｅｎｇｉｎｇ　ａｃｔｉｖｉｔｙ　ｏｆ　ｃｏｍｐａｔｉｂｌｅ　ｓｏｌｕｔｅｓ［Ｊ］．Ｐｈｙｔｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，１９８９，２８：１０５７－１０６０．
［１０］　Ｌｉｕ　Ｆ，Ｏｏｉｖｅ　Ｃ，Ｃｈａｎｇ　Ｓ　Ｔ．Ｆｒｅｅ　ｒａｄｉｃａｌｓ　ｓｃａｖｅｎｇｉｎｇ　ａｃｔｉｖｉｔｙ　ｏｆ　ｍｕｓｈｒｏｏｍ　ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅ　ｅｘｔｒａｃｔｓ［Ｊ］．Ｌｉｆｅ　Ｓｃｉｅｎｃｅ，１９９７，６０（１０）：７６３－
７７１．
［１１］　王丽华，段玉峰，马艳丽，等．槐花多糖的提取工艺及抗氧化活性研究［Ｊ］．西北农林科技大学学报，２００８，３６（８）：２１３－２１７，２２８．
［１２］　Ｋｉｍ　Ｅ　Ｋ，Ｌｅｅ　Ｓ　Ｊ，Ｍｏｏｎ　Ｓ　Ｈ，ｅｔ　ａｌ．Ｆｒｅｅ　ｒａｄｉｃａｌ　ｓｃａｖｅｎｇｉｎｇ　ａｃｔｉｖｉｔｙ　ａｎｄ　ｃｏｍｐａｒａｔｉｖｅ　ｐｒｏｔｅｏｍｉｃ　ａｎａｌｙｓｉｓ　ｏｆ　ａｎｔｉｏｘｉｄａｔｉｖｅ　ｐｒｏｔｅｉｎ　ａｇａｉｎｓｔ
Ｈ２Ｏ２－ｉｎｄｕｃｅｄ　ｏｘｉｄａｔｉｖｅ　ｓｔｒｅｓｓ　ｉｎ　ｎｅｕｒｏｎａｌ　ｃｅｌｓ［Ｊ］．Ｆｏｏｄ　Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，２００９，１１７：２３２－２４０．
［１３］　王雪梅，张建胜，戴　云，等．旱莲草总黄酮的提取及其体外抗氧化活性研究［Ｊ］．时珍国医国药，２００９，２０（２）：３５６－３５８．
［１４］　Ｌｉ　Ｘ　Ｙ，Ｗａｎｇ　Ｚ　Ｙ，Ｗａｎｇ　Ｌ．Ｅｌｆａｌｅｈ　Ｗａｌｉｄ　ａｎｄ　Ｈｕａ　Ｚｈａｎｇ　Ｉｎ　Ｖｉｔｒｏ　Ａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔ　ａｎｄ　Ａｎｔｉ－Ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎ　Ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ　ｏｆ　Ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓ
ｆｒｏｍ　Ｖａｒｉｏｕｓ　Ｅｘｔｒａｃｔｓ　ｏｆ　Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　Ｍｕｓｈｒｏｏｍｓ［Ｊ］．Ｉｎｔ　Ｊ　Ｍｏｌ　Ｓｃｉ，２０１２，１３，５８０１－５８１７．
［１５］　税　丹，王立峰，袁　建，等．酸法提取菜籽多糖的抗氧化活性研究［Ｊ］．食品科学，２０１１，３２（２１）：９８－１０１．
［１６］　许海顺，蒋剑平，徐　攀，等．红参多糖抗氧化活性的研究［Ｊ］．浙江中医药大学学报，２０１１，３５（６）：９０９－９１２．
Ｅｘｔｒａｃｔｉｎｇ　Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ　Ｏｐｔｉｍｉｚａｔｉｏｎ　ｏｆ　Ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓ　ｆｒｏｍ
Ａｎｒｅｄｅｒａ　Ｓｃａｎｄｅｎｓ　ａｎｄ　Ｉｔｓ　Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ　Ａｃｔｉｖｉｔｙ
ＺＨＡＯ　Ｊｉｎｌｉ，ＺＨＡＮＧ　Ｙａｒｕ，ＧＵ　Ｘｉａｏｙａｎｇ，ＬＩＵ　Ｂｉｎ，ＪＩＮ　Ｙｕｅｔｉｎｇ
（Ｃｏｌｅｇｅ　ｏｆ　Ｌｉｆｅ　Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ｈｅｂｅｉ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｂａｏｄｉｎｇ　０７１００２，Ｃｈｉｎａ）
Ａｂｓｔｒａｃｔ：Ｔｈｅ　ｐａｐｅｒ　ｉｎｖｅｓｔｇａｔｅｓ　ｔｈｅ　ｅｆｆｅｃｔ　ｏｆ　ｅｘｔｒａｃｔｉｎｇ　ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ，ｅｘｔｒａｃｔｉｎｇ　ｔｉｍｅ，ａｎｄ　ｍａｔｅｒｉａｌ－ｍｅｄｉｕｍ－ｒａｄｅ　ｏｎ　ｅｘ－
ｔｒａｃｔｉｏｎ　ｏｆ　ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓ　ｆｒｏｍ　ｓｔｅｍ　ｏｆ　Ａｎｒｅｄｅｒａ　ｓｃａｎｄｅｎｓ　ｗｉｔｈ　ｏｒｔｈｏｇｏｎａｌ　ｄｅｓｉｇｎ．Ｔｈｅ　ｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎ　ｏｆ　ａｄｄｉｎｇ　２０ｔｉｍｅｓ　ｏｆ　ｗａ－
ｔｅｒ，ａｔ　ｔｈｅ　ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ　ｏｆ　１００℃ａｎｄ　ｗｉｔｈ　ｅｔｒａｃｔｉｎｇ　ｔｉｍｅ　ｏｆ　４ｈｉｓ　ｒｅｃｏｍｍｅｎｄｅｄ．Ｔｏｔａｌ　ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓ　ｉｎ　Ａｎｒｅｄｅｒａ　ｓｃａｎｄｅｎｓ
ｗａｓ　１５．７２％．Ｒｏｏｔ　ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓ　ｉｎ　Ａｎｒｅｄｅｒａ　ｓｃａｎｄｅｎｓ　ｃａｎ　ｅｆｆｅｃｔｉｖｅｌｙ　ｅｌｉｍｉｎａｔｅ　ｒｅａｃｔｉｖｅ　ｏｘｙｇｅｎ　ｓｐｅｃｉｅｓ．Ｔｈｅ　ｓｅｍｉ－ｃｌｅａｒａｎｃｅ
ｒａｔｅ　ｏｆ·ＯＨ－，Ｏ－２ ·ａｎｄ　ＤＰＰＨ　ｗａｓ　２．８９ｍｇ／ｍＬ，１．９９ｍｇ／ｍＬ　ａｎｄ　１．８９ｍｇ／ｍＬ．Ｔｈｅ　ｓｅｍｉ－ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ　ｒａｔｅ　ｏｆ　Ｌｅｃｉｔｈ　ｉｎ　ｌｉｐｉｄ
ｐｅｒｏｘｉｄａｔｉｏｎ　ｗａｓ　０．０３８ｍｇ／ｍＬ．Ａｂｓｏｒｂａｎｃｅ　ａｔ　７００ｎｍ　ｏｆ　ｒｅｄｕｃｉｎｇ　ｐｏｗｅｒ　ｗａｓ　０．６９６７ｗｈｅｎ　ｔｈｅ　ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｐｏｌｙｓａｃｃｈａ－
ｒｉｄｅ　ｗａｓ　１ｍｇ／ｍＬ．
Ｋｅｙ　ｗｏｒｄｓ：Ａｎｒｅｄｅｒａ　ｓｃａｎｄｅｎｓ；ｒｏｏｔ　ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓ；ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ；ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ　ａｃｔｉｖｉｔｙ
５３１第２期　　　　　　　　　　　　　赵金莉等：短序落葵薯根多糖提取工艺及其生物活性