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重瓣榆叶梅花中蛋白质提取工艺及动态含量研究



全 文 :西北林学院学报 2015,30(3):191~196
Journal of Northwest Forestry University
  doi:10.3969/j.issn.1001-7461.2015.03.33
重瓣榆叶梅花中蛋白质提取工艺及动态含量研究
 收稿日期:2014-09-05 修回日期:2014-11-04
 基金项目:国家自然科学基金(30671655)。
 作者简介:徐毅励,男,在读硕士,研究方向:生物物理专业,大分子结构。E-mail:xuyiliqq@126.com
*通信作者:陈媛梅,女,副教授,研究方向:天然化合物的提取分离与物理化学性质。E-mail:chym11@bjfu.edu.cn
徐毅励,陈媛梅*
(北京林业大学 理学院,北京100083)
摘 要:重瓣榆叶梅花中蛋白质提取研究表明,最佳提取工艺为采用pH7.0的磷酸氢二钠提取液、液
料比为30∶1(mL∶g)、30℃、500W、超声提取3次(每次120min)。在该提取工艺条件下,测得开花
14d花中蛋白质含量最高,为13.237mg·g-1;开花21d花中蛋白质含量最低,仅为5.150mg·g-1。
关键词:重瓣榆叶梅花;超声提取;蛋白质;液料比;动态含量
中图分类号:S713   文献标志码:A   文章编号:1001-7461(2015)03-0191-06
Optimal Extraction Technology and Dynamic Content of Protein in the
Flower of Amygdalus triloba f.multiplex
XU Yi-li,CHEN Yuan-mei*
(College of Science,Beijing Forestry University,Beijing100083,China)
Abstract:Crude proteins were extracted from the flowers of Amygdalus triloba f.multiplex.The optimal
conditions of the extraction were obtained:Solvent:disodium hydrogen phosphate with pH=7.0,ration
of solvent to material:30∶1(mL∶g).The extraction was conducted for 3times(120min each)at 30℃ai-
ded by ultrasonic wave(500Wof ultrasonic generator power).By above extraction conditions,it was
found the highest content of protein was in the flowers colected at the 14th day after blossoming,about
13.237mg·g-1,lowest at the 21st day,about 5.150mg·g-1.
Key words:Amygdalus triloba f.multiplex;ultrasonic wave aided extraction;protein;liquid ratio;dy-
namic content
  重瓣榆叶梅(Amygdalus triloba f.multiplex)又
名小桃红,属蔷薇科(Rosaceae)植物。具有开花早、花
期长、花朵大、颜色鲜艳、纯正等特点,是一种观赏价
值很高的园林绿化彩化树种[1];其分布地域广,耐干
燥土壤,适应性强,易成活[2]。重瓣榆叶梅花粉营养
成分丰富,含有蛋白质、氨基酸、脂肪、维生素、微量元
素、生物酶、黄酮类等化合物,从花粉中将有效成份提
取出来,可用于保健食品、药品以及营养性化妆品[3]。
因此,它既可美化环境,又极具经济价值。
植物蛋白对人体生理代谢以及膳食营养结构的
调节具有重要作用,是人类最主要的蛋白质资源之
一[4]。蛋白质组学方法在致病机制、耐药性等方面
的应用研究正逐渐引起重视。在进行蛋白质组学方
法研究中,建立一种稳定、可靠的蛋白质提取方法非
常重要[5]。我国关于重瓣榆叶梅的研究主要是栽培
技术及其果仁成分的分析,目前未见重瓣榆叶梅花
的蛋白质提取工艺及其动态含量的研究报道。本文
参考国内外相关文献的基础上[6-19],对蛋白质提取
方法进行改进,并测定了不同时期花中蛋白质的含
量。采用单因素试验和正交试验,对重瓣榆叶梅花
中蛋白质的提取工艺进行研究,以期为重瓣榆叶梅
花的综合开发利用提供科学根据。
1 材料与方法
1.1 材料与试剂
材料:分别采集北京林业大学校园内花苞、开花
1周、开花2周、开花3周4个时期的重瓣榆叶梅花
(其中,开花3周,树上的花已凋谢大半),冷藏于
-30℃冰箱中。
试剂:Tris-HCl、盐酸、磷酸氢二钠、丙酮、氢氧
化钠、盐酸、聚乙烯吡咯烷酮(PVP)均为分析纯。牛
血清蛋白(95%)。水均为超纯水。
1.2 主要仪器
3K30台式高速冷冻离心机(北京时代北利离心
机有限公司),ItemAR2140电子天平;电热鼓风干
燥箱(重庆万达仪器有限公司),KQ500DB型超声
波清洗器(昆山市超声仪器有限公司),UV-2450紫
外可见分光光度计(日本岛津公司)。
1.3 方法
1.3.1 标准曲线的绘制 采用改良 Bradford
法[18-20]测定蛋白质吸光度并绘制标准曲线:配制
0.20、0.40、0.60、0.80mg·mL-1和1.00mg·
mL-1系列浓度的蛋白质标准液,各取1.000mL考
马斯亮蓝工作液于5只比色皿中作对照液,用于调
零;再向其中加入上述各标准液10μL混匀,于波长
595nm处,测定吸光度值。每个浓度的标准液平行
测定5次,取平均值作为测定结果。以浓度(mg·
mL-1)为横坐标(x),OD595值(在波长595nm处测
得的蛋白质溶液的吸光度值)为纵坐标(y),绘制蛋
白质的标准曲线(图1)。根据待测样品的OD595值,
从标准曲线中计算出样品浓度。
1.3.2 提取液的制备 称取开花后2周的鲜重瓣
榆叶梅花1.000 0g,置预冷的研钵中,加入0.050 0
g PVP,然后加入液氮迅速冷却并充分研磨至粉末,
将粉末移入到提取管中,加入一定量的提取液,在设
定条件下超声提取一定时间,取出后在高速冷冻离
心机中,调节离心机转速至10 000r·min-1离心25
min,上清液为粗蛋白提取液。用上述方法测定提
取液的OD595值,根据蛋白质的标准曲线计算含量。
所有试验均重复5次,取平均值。
1.3.3 单因素试验 选取溶剂类型、超声功率、超
声温度、超声时间、超声次数、液料比、提取液pH值
等因素为研究对象,以粗提蛋白质的提取率为考察
指标,选用开花2周的重瓣榆叶梅花(花瓣开放最旺
盛)为材料进行单因素试验。
1.3.4 正交试验 在单因素试验的基础上,选取对
提取影响较大的因素进行正交试验,以确定最佳
工艺。
1.3.5 验证试验 在正交试验的基础上,按照已确
定的最佳工艺参数,进行超声提取并测定开花2周
的重瓣榆叶梅花中蛋白质的含量,以检验最佳工艺
的可行性。
1.3.6 重复性试验 准确称取开花2周的重瓣榆
叶梅花5份,每份1.000 0g,在最佳工提取艺条件
下,测定样品中蛋白质的含量。5次平行试验,取平
均值。
1.3.7 精密度试验 为检验仪器的精密度,准确称
取开花2周的重瓣榆叶梅花1.000 0g,按最佳工艺
提取,测定样品中蛋白质的含量。平行测定吸光度
5次。
1.3.8 不同时期花中蛋白质含量的测定 分别准
确称取不同时期的重瓣榆叶梅花各5份,每份
1.000 0g,在最佳提取工艺条件下,测定蛋白质含
量。重复5次,取平均值。
2 结果与分析
2.1 标准曲线的绘制
用最小二乘法作线性回归,方程为
y=0.172 2x+0.004,r2=0.998 1。
在0.20~1.00mg·mL-1的范围内,OD595值
与蛋白质浓度呈良好的线性关系(图1)。
图1 蛋白质的标准曲线
Fig.1 The standard curve of protein
2.2 不同提取因子对重瓣榆叶梅花中蛋白质提取
率的影响
2.2.1 提取溶剂的选择 在液料比(提取液体积/
mL与试验材料质量/g的比值)为10∶1、溶剂pH
=7.0等保持不变的条件下,500W、25℃、90min
超声提前3次,不同溶剂类型对超声提取蛋白质的
提取效果(图2)可知,磷酸氢二钠溶液>Tris-HCl
溶液>丙酮>超纯水。
2.2.2 pH 对蛋白质提取率的影响 在液料比
10∶1(mL∶g)条件下,500W、25℃、90min超声提
前3次,pH为5.0、6.0、7.0、8.0、9.0与10.0的磷
酸氢二钠溶液(用1moL·L-1 NaOH 溶液和1
moL·L-1 HCl溶液调节提取液的pH值)对蛋白质
提取率的影响(图3)结果表明,pH从5.0至7.0,蛋
白质的提取率逐渐升高,而在7.0至10.0蛋白质的
291 西北林学院学报 30卷 
提取率迅速下降。可见,提取液磷酸氢二钠溶液的
pH以7.0为宜。
图2 不同溶剂类型对重瓣榆叶梅花中蛋白质提取率的影响
Fig.2 Effect of different solvents on protein extraction rate of the
flower of A.triloba f.multiplex
图3 pH值重瓣榆叶梅花中蛋白质提取率的影响
Fig.3 Effect of pH on protein extraction rate
2.2.3 液料比对蛋白质提取率的影响 以pH7.0
的磷酸氢二钠为提取液,500W、25℃、90min超声
提前3次的条件下,液料比对蛋白质提取率的影响
(图4)结果表明,当液料比较低时,测得蛋白质的提
取率随着液料比的增加而升高。当液料比超过25
∶1(mL∶g)时,所得浓度趋于平稳。结合从降低成
本角度考虑,提取液用量不宜过大,选择液料比为
25∶1(mL∶g)为宜。
图4 液料比对重瓣榆叶梅花中蛋白质提取率的影响
Fig.4 Effect of solvent to material ratio on protein extraction rate
2.2.4 超声温度对蛋白质提取率的影响 以
pH7.0的磷酸氢二钠为提取液,液料比25∶1(mL
∶g),500W、90min、超声提取3次条件下,超声温
度对蛋白质提取率的影响(图5)结果表明,20℃~
40℃范围,随着超声温度的升高,蛋白质的提取率升
高。温度为30℃时,蛋白质提取率达到最高。温度
高于30℃之后,其提取率随温度的升高反而降低。
因此,适宜超声提取温度为30℃。
图5 超声温度对重瓣榆叶梅花中蛋白质提取率的影响
Fig.5 Effect of ultrasonic temperature on protein extraction rate
2.2.5 超声功率对蛋白质提取率的影响 以
pH7.0的磷酸氢二钠为提取液,液料比为25∶1
(mL∶g),30℃、90min超声3次条件下,超声功率
对蛋白质提取率的影响结果(图6)表明,超声功率
在100~500W 时,随着超声功率的增大,蛋白质的
提取率升高,500W时蛋白质的提取率达最大。
图6 超声功率对重瓣榆叶梅花中蛋白质提取率的影响
Fig.6 Effect of ultrasonic power on protein extraction rate
2.2.6 超声次数对蛋白质提取率的影响 以
pH7.0的磷酸氢二钠为提取液,液料比为25∶1
(mL∶g),500W、30℃超声提取90min条件下,超
声提取次数对蛋白质提取率的影响结果(图7)表
明,蛋白质的提取率随超声次数的增加而增大,而超
过3次后变化较为缓慢;超声次数过多时,会增加溶
剂用量及所需时间。因此,从方便操作、经济成本、
提取得率等方面综合考虑,超声提取次数以3次
为宜。
2.2.7 超声时间对蛋白质提取率的影响 以
pH7.0的磷酸氢二钠为提取液,液料比为25∶1
391第3期 徐毅励 等:重瓣榆叶梅花中蛋白质提取工艺及动态含量研究
(mL∶g),30℃、500W、超声提取3次条件下,超声
时间对蛋白质提取率的影响结果(图8)表明,超声
提前时间在30~90min范围内,蛋白质的提取浓度
随着超声时间的延长而快速增加,90~150min内
则增加缓慢。适宜的超声提前时间为120min。
图7 超声次数对重瓣榆叶梅花中蛋白质提取率的影响
Fig.7 Effect of extraction times on protein extraction rate
2.3 不同提取因子对蛋白质提取率的影响优化
选取对蛋白质提取率影响较为显著且复杂的4
个因素,采用L9(34)正交表设计试验,以蛋白质提
取率为考察指标,对重瓣榆叶梅花中蛋白质的提取
工艺进行研究。不同因素对提取浓度影响的重要性
顺序为B>A>D>C,即液料比>pH>超声温度>
超声时间,最佳水平组为A2B3C3D2,即液料比
30∶1、pH7.0、超声提取时间120min、超声温度
30℃(表1);为求验证,准确称取开花两周的重瓣榆
叶梅花5份,每份1.000 0g,在优化工艺条件下,测
定样品中蛋白质的含量。每份5次平行试验,取其
平均值。所得蛋白质的平均提取率为13.228mg·
g-1,RSD值为0.306%(表2)。
图8 超声时间对重瓣榆叶梅花中蛋白质提取率的影响
Fig.8 Effect of length of ultrasonic treatment time
on protein extraction rate
2.4 重复性试验
准确称取5份开花2周的重瓣榆叶梅花,每份
1.000 0g,在最佳工艺条件下进行5次平行试验,
RSD为0.295%,说明该工艺重现性好,稳定可行
(表3)。
表1 不同提取因子对蛋白质提取率的影响优化
Table 1 Optimization of the influence of different extraction factors on the protein extraction efficiency
试验号 A:(pH) B:液料比/(mL∶g) C:超声时间/min  D:超声温度/℃ 蛋白质提取率/(mg·g-1)
1  1(6.0) 1(20∶1) 1(60) 1(25) 4.100
2  1(6.0) 2(25∶1) 2(90) 2(30) 9.875
3  1(6.0) 3(30∶1) 3(120) 3(35) 10.410
4  2(7.0) 1(20∶1) 2(90) 3(35) 6.560
5  2(7.0) 2(25∶1) 3(120) 1(25) 10.175
6  2(7.0) 3(30∶1) 1(60) 2(30) 12.060
7  3(8.0) 1(20∶1) 3(120) 2(25) 7.560
8  3(8.0) 2(25∶1) 1(60) 3(30) 5.175
9  3(8.0) 3(30∶1) 2(90) 1(25) 8.010
k1 24.385  21.68  21.335  22.285
k2 28.795  25.225  24.445  29.495
k3 20.745  30.48  28.145  22.145
K1 8.128  7.226  7.112  7.428
K2 9.598  8.408  8.148  9.832
K3 6.915  10.16  9.382  7.382
R  2.683  2.934  2.270  2.45
优化方案 A2 B3 C3 D2
表2 最佳工艺条件验证试验
Table 2 The experiment result of verification
指标 1  2  3  4  5  RSD/%
蛋白质提取率/(mg·g-1) 13.238  13.203  13.252  13.237  13.212  0.306
491 西北林学院学报 30卷 
表3 最佳工艺条件重复性试验结果
Table 3 The experiment result of repeatability
指标 1  2  3  4  5  RSD/%
蛋白质提取率/(mg·g-1) 13.252  13.203  13.242  13.237  13.219  0.295
2.5 精密度试验
准确称取开花2周的重瓣榆叶梅花1.000 0g
一份,用最佳工艺条件提取后,测定样品中蛋白质的
含量5次,取平均值(表4)。蛋白质的平均提取率
为13.223mg·g-1,RSD 值为0.210%(n=5),试
验表明该方法精密度高,所得数据准确。
表4 精密度试验结果
Table 4 The experimental result of precision
指标 1  2  3  4  5  RSD/%
蛋白质提取率/(mg·g-1) 13.232  13.213  13.242  13.217  13.209  0.210
2.6 不同时期花中蛋白质的含量分析
在筛选出的最佳提取工艺条件下,不同时期重
瓣榆叶梅花中蛋白质的含量不同(表5),花苞期到
开花2周花中蛋白质含量逐渐升高,在开花2周时
达到最高,可达13.237mg·g-1;而开花2周至开
花3周的花中蛋白质含量迅速下降,直至开花3周
时降低到5.150mg·g-1。
表5 不同时期花中蛋白质含量
Table 5 Contents of protein in the flower of A.triloba
f.multiplexfor different blooming periods
开花时间/d  0  7  14  21
蛋白质提取
/(mg·g-1)
6.810  8.425  13.237  5.150
3 结论与讨论
采用单因素试验和正交试验优化了重瓣榆叶梅
花中蛋白质的提取工艺,得出其最佳提取方案为以
pH7.0的磷酸氢二钠为提取液、液料比为30∶1
(mL∶g)、500W、30℃、120min超声提取3次。该
方法蛋白质提取率高,重复性好,精密度高,适用于
重瓣榆叶梅花中蛋白质的提取。
在最佳提取工艺条件下,测定了花苞、开花2
周、开花2周及开花3周的花中蛋白质含量。从花
苞期至开花2周后蛋白质含量逐渐升高,且在开花
2周时蛋白质含量最高;而由开花2周至开花3周
花中蛋白质含量下降,且开花后3周花中蛋白质含
量最低。测定出的花中蛋白质含量的升降趋势与重
瓣榆叶梅花的生长周期中的代谢特点相一致。大部
分蛋白质可溶于水、有机溶剂、稀盐、稀碱或稀酸溶
液中,而稀盐溶液和缓冲溶液对蛋白质稳定性好、溶
解度大。磷酸盐溶液可螯合某些金属离子和解离酶
分子与其他杂质的静电结合,使与细胞颗粒结合不
太紧密的蛋白质和酶溶解在水溶液中。在一定pH
范围内的磷酸溶液可维持蛋白质的结构,对花中蛋
白质起保护作用。
蛋白质是具有等电点的两性电解质,提取液的
pH值应选择在偏离等电点两侧的pH范围内,提取
时,应防止过酸或过碱而引起蛋白质可解离基团发
生变化,从而导致蛋白质构象的不可逆变化。在
pH为7.0,蛋白质提取率达到最大值。
当液料比超过25∶1(mL∶g)时,所得浓度趋
于平稳,可能是物料一定时,提取液用量越大,物料
与提取液的接触面浓度差越大、渗透压越大,蛋白质
也就越容易浸出[21]。当达到一定比值(25∶1)后,
重瓣榆叶梅花中蛋白质的提取量已接近最大,因此
继续增加液料比时,浓度增加不明显,超声功率在
100~500W时,随着超声功率的增大,蛋白质的提
取率升高,因为超声波功率越大,空化和机械化作用
越强烈,分子扩散速度越大[21],超声提取开始时随
着超声时间的延长,蛋白质的溶出速度大于降解速
度,所得蛋白质提取率呈上升趋势;超声90min后,
溶液体系的渗透压达到平衡,进而蛋白质的溶解趋
于平稳[21]。
不同时期重瓣榆叶梅花中蛋白质的含量不同,
其原因可能是随着重瓣榆叶梅花的生长,其空间结
构变得更复杂,代谢活动增强,生理功能逐渐完善。
蛋白质分子的种类、数量、空间结构决定了其植物器
官、组织的代谢功能。生物体内几乎所有的生理代
谢活动需要酶的参与,绝大部分酶的化学本质是蛋
白质。从花苞期至开花2周,重瓣榆叶梅花是处于
生长期,所以其蛋白质含量逐渐增多。重瓣榆叶梅
花开花两周达到成熟,是功能最完善、代谢活动最强
时期,所以这个时期花中蛋白质含量最高。而在重
瓣榆叶梅花开花2周后,花开始凋谢,随着重瓣榆叶
梅花的衰败,其花中酶开始降解,蛋白质含量减少。
因此,在开花2周至3周花中蛋白质含量迅速下降。
在开花3周,重瓣榆叶梅花大部分凋落,此时期花中
很多代谢酶已降解,致使蛋白质含量最低。
591第3期 徐毅励 等:重瓣榆叶梅花中蛋白质提取工艺及动态含量研究
参考文献:
[1] 丛欣.重瓣偷叶梅的绿枝扦插繁殖研究[J].园艺学报,1991,18
(3):278-280.
CONG X.Studies of the reproduction of green branch cutting
of Prunus triloba Lindl.var.Plena[J].Acta Horticulturae
Sinica,1991,18(3):278-280.(in Chinese)
[2] 何秀贞,郭元平,罗玉杰.榆叶梅蛋白质的提取与分析[J].中国
林副特产,1997(1):27-28.
[3] 李波,罗心玲,甘纯矾.花粉提取液中蛋白质的分子量分布测定
[J].日用化学工业,1988(6):28-30.
[4] 胡苗苗,杨海霞,曹炜,等.植物蛋白质资源的开发利用[J].食
品与发酵业,2012,38(8):137-140.
[5] 焦立新,张云峰,贺丹,等.一种念珠菌蛋白质的提取方法[J].
中国组织工程研究与临床康复,2007,11(8):1540-1541.
[6] STEAD D,FIBDON H,YIN Z,et al.Proteomic changes as-
sociated with inactivation of the Candida glabrata ACE2viru-
lence-moderating gene[J].Proteomics,2005,5(7):1838-1848.
[7] 吕微,蒋剑春,徐俊明.蛋白质提取及分离纯化研究进展[J].精
细石油化工进展,2010(11):52-58.
[8] 范文,伊爱芹,陈媛梅.杨树芽和芽胶中化学成分的分析[J].
林业科技开发,2009,23(1):32-35.
[9] 金虹.豌豆蛋白质提取工艺的优化[J].湖北农业科学,2010,49
(9):2199-2201.
[10] 王朝瑾,马红青,袁金凤,等.月桂树叶中蛋白质的提取工艺研
究[J].分析测试报,2006(Supp.1):103-105.
[11] 阚欢,李贤忠,陆斌.辣木叶蛋白质提取工艺研究[J].西部林
业科学,2007,36(1):106-108.
[12] 陈蕾,于娟,李晓蕙,等.超声法提取骆驼蒿总生物碱的工
艺研究[J].西北林学院学报,2010,25(3):158-162.
CHEN L,YU J,LI X H,et al.Ultrasonic wave aided extrac-
tion of total alkaloids fromPeganum nigellastrum[J].Journal
of Northwest Forestry University,2010,25(3):158-162.(in
Chinese)
[13] 王娜,褚衍亮,李静,等.樟树叶蛋白提取工艺及四季含量动态
分析[J].北方园艺,2011(7):51-54.
[14] 袁坤,王明庥,黄敏仁.一种适合杨树叶片的蛋白质提取方法
[J].南京林业大学学报:自然科学版,2007,31(3):119-121.
YUAN K,WANG M X,HUANG M R,A method suitable for
protein extraction of poplar leaves[J].Journal of Nanjing For-
estry University:Natural Sciences Edition,2007,31(3):119-
121.(in Chinese)
[15] 李梦琳,王亚东,林梦,等.构树叶蛋白质的提取研究[J].资源
开发与市场,2013(12):1057-1059.
[16] 何美军,廖朝林,王华,等.野葛叶蛋白质提取工艺研究[J].湖
北农业科学,2011,50(11):2298-2300.
[17] 刘婷,金瑞.超声波法提取西洋参多糖的工艺研究[J].西北林
学院学报,2014,29(3):174-177.
LIU T,JIN R.Technology of ultrasonic wave assisted extrac-
tion of polysaccharides fromPanax quinque Folium[J].Jour-
nal of Northwest forestry University,2014,29(3):174-177.
(in Chinese)
[18] 王明娟,季孔庶.珍珠黄杨叶片的蛋白质提取方法探讨[J].基
因组学与应用生物学,2009,28(1):105-108.
[19] ZHANG C,SANDERS J P M,BRUINS M E.Critical parame-
ters in cost-effective alkaline extraction for high protein yield from
leaves[J].Biomass and Bioenergy,2014,67:466-472.
[20] 金会鑫,谢寿安,史睿杰,等.不同方法提取蚱蝉若虫蛋白
质效果比较[J].西北林学院学报,2012,27(6):128-130.
JIN H X,XIE S A,SHI R J,et al.Comparison of chemical
extraction methods of the proteins from the larva of Crypto-
tympana pustulata[J].Journal of Northwest forestry Univer-
sity,2012,27(6):128-130.(in Chinese)
[21] 刘长付,陈媛梅.超声波法提取西红柿中类胡萝卜素的工艺
优化[J].食品工业,2013(8):
櫲櫲櫲櫲櫲櫲櫲櫲櫲櫲櫲櫲櫲櫲櫲櫲櫲櫲櫲櫲櫲櫲櫲櫲櫲櫲櫲櫲櫲櫲櫲櫲櫲櫲櫲櫲櫲櫲櫲櫲櫲櫲櫲櫲櫲櫲櫲櫲櫲
76-80.
(上接第190页)
[3] 颜婷燕,张武俊,许怀东,等.中粉质壤土泥浆泵法修筑淤地
坝人工排水管网布设优选研究[J].西北林学院学报,2014,
29(5):53-58.
YAN T Y,ZHANG W J,XU H D,et al.Optimization of the
layout of pipe drainage for building check dam using mud pump
in middle silt loam area[J].Journal of Northwest Forestry U-
niversity,2014,29(5):53-58.(in Chinese)
[4] 曹文洪,胡海华,吉祖稳.黄土高原地区淤地坝坝系相对稳定
研究[J].水利学报,2007,38(5):606-610.
CAO W H,HU H H,JI Z W.Study on relative stability of
check dam system[J].Journal of Hydraulic Engineering,
2007,38(5):606-610.(in Chinese)
[5] 郑新民,王英顺.水坠坝设计与施工[M].郑州:黄河水利出
版社,2006.
[6] 方开泽,高新科.水坠坝冲填体二维非线性固结问题[J].人
民黄河,1981(5):40-44.
[7] 王钟琦.我国的静力触探及动静触探的发展前景[J].岩土工
程学报,2000,22(5):517-522.
WANG Z Q.The Chinese CPT and the prospect of penetration
tests[J].Chinese Journal of Geotechnical Engineering,2000,
22(5):517-522.(in Chinese)
[8] 康晓娟,李波.国外静力触探技术发展现状及未来趋势[J].
岩土工程界,2008,11(5):63-65.
[9] 马海鹏,陈祖煜,于沭.上海地区土体抗剪强度与静力触探比
贯入阻力相关关系研究[J].岩土力学,2014,35(2):536-542.
[10] 中华人民共和国水利部.水利水电工程天然建筑材料勘察规
程(SL251-2000)[S].北京:中国水利水电出版社,2000.
[11] 中华人民共和国住房和城乡建设部.建筑工程地质勘探与取
样技术规程(JGJ/T87-2012)[S].北京:中国建筑工业出版
社,2011.
[12] 中华人民共和国水利部.土工试验规程(SL237-1999)[S].
北京:中国水利水电出版社,1999.
[13] 中国工程建设标准化委员会,静力触探技术标准(CECS04:
88)[S].北京:中国工程建设标准化委员会,1988.
[14] 张克恭,刘松玉.土力学[M].北京:中国建筑工业出版社,
2010.
[15] 中华人民共和国铁道部.铁路工程地质原位测试规程
(TB10018-2003)[S].北京:中国铁道出版社和铁路工程技术
标准所,2003.
691 西北林学院学报 30卷