全 文 :摘 要:以潜育水耕人为土为供试土壤,以不同的处理方式和培养时间下产生的紫云英水溶性有机物(DOM)为添加物(包括新鲜
紫云英 DOM、淹水腐解 7 d和 14 d紫云英 DOM、好气腐解 7 d和 14 d紫云英 DOM;800 mg C·L-1),研究了 5种 DOM作为有机碳源
促进淹水土壤中五氯酚(PCP)还原转化与 Fe(Ⅱ)累积的关系。结果表明,紫云英 DOM在淹水 6.5 d后均可显著促进 PCP的还原
(P<0.05),淹水 2 d后显著促进了乙酸钠提取态 Fe(Ⅱ)[Fe(Ⅱ)NaOAc]和乙酸钠+盐酸连续提取态 Fe(Ⅱ)[Fe(Ⅱ)NaOAc+HCl]的累积(P<
0.05);多数情况下还可促进乙酸钠提取态 Fe(Ⅲ)[Fe(Ⅲ)NaOAc]的累积;多元线性回归分析发现,PCP还原主要受 Fe(Ⅱ)NaOAc+HCl影响,
其逐步回归模型为:PCP(mg·kg-1)= 22.95-0.047Fe(Ⅱ)NaOAc+HCl(mg·kg-1)(R2=0.615,P<0.01)。因此,DOM促进了淹水土壤中 PCP还原
与铁还原,Fe(Ⅱ)累积是导致 PCP还原转化的主要化学机制。
关键词:紫云英;水溶性有机物;潜育水耕人为土;五氯酚;活性铁形态;连续提取;逐步回归模型
中图分类号:S153 文献标志码:A 文章编号:1672-2043(2014)04-0687-08 doi:10.11654/jaes.2014.04.010
紫云英水溶性有机物促进淹水土壤中
五氯酚还原与铁还原
柳 勇 1,于雄胜 2,李芳柏 1*,徐建明 2*,楼 骏 3,刘传平 1
(1.广东省生态环境与土壤研究所,广东省农业环境综合治理重点实验室,广州 510650;2.浙江大学紫金港校区环境与资源学院,
土水资源与环境研究所,杭州 310058;3.福建农林大学资源与环境学院,福州 350002)
Dissolved Organic Matter from Chinese Milk Vetch (Astragalus sinicus L.)Enhances Pentachlorophenol
Reductive Transformation and Iron Reduction in a Flooded Paddy Soil
LIU Yong1, YU Xiong-sheng2, LI Fang-bai1*, XU Jian-ming2*, LOU Jun3, LIU Chuan-ping1
(1.Guangdong Key Laboratory of Agro -Environment Integrated Control, Guangdong Institute of Eco -Environmental and Soil Sciences,
Guangzhou 510650, China; 2.Institute of Soil and Water Resources and Environmental Science, College of Environmental and Resource Sci-
ences, Zijingang Campus, Zhejiang University, Hangzhou 310058, China; 3.College of Resource and Environmental Sciences, Fujian Agricul-
ture and Forestry University, Fuzhou 350002, China)
Abstract:This study investigated the effects of dissolved organic matter(DOM) from green manure on pentachlorophenol(PCP) reduc-
tive transformation and Fe(Ⅲ)reduction under flooded soil conditions. Batch experiments were conducted to explore the kinetics of PCP
reductive transformation and its relationship with Fe(Ⅱ)accumulation in a flooded paddy soil(Gleyi-Stagnic Anthrosol)amended with
fresh or decomposed(continuously-flooded, CF or non-flooded, NF; 7 and 14 d)DOM from Chinese milk vetch(Astragalus sinicus L.,
CMV; 800 mg C·L-1). The 5 treatments of CMV-derived DOM(CMV-DOM)significantly enhanced the reductive transformation of PCP
and the accumulation of NaOAc-extractable or sequential NaOAc- and HCl-extractable Fe(Ⅱ) [Fe(Ⅱ)NaOAc+HCl] after 6.5 and 2 d of
flooding, respectively(P<0.05). In most cases, the addition of CMV-DOM greatly increased NaOAc-extractable Fe(Ⅲ)owing to non-
reductive dissolution. The relationship between reduction kinetics and selected environmental variables was examined by correlation
analysis and regression analysis . Sequential NaOAc-and HCl-extractable Fe(Ⅱ)was found playing a vital role in PCP reductive
transformation, and a stepwise regression model was established as follows: PCP(mg·kg-1)=22.95-0.047Fe(Ⅱ)NaOAc+HCl(mg·kg-1)(R2=
0.615, P<0.01). The results demonstrated that addition of CMV-DOM accelerated PCP reductive transformation and Fe(Ⅲ) reduction
in the flooded paddy soil. In terms of soil chemistry, enhanced PCP reductive transformation in flooded paddy soil is attributable to gen-
eration of adsorbed Fe(Ⅱ)with high redox activity.
Keywords:Chinese milk vetch; dissolved organic matter; Gleyi-Stagnic Anthrosol; pentachlorophenol; active iron species; sequential extrac-
tion; stepwise regression model
收稿日期:2013-11-29
基金项目:国家自然科学基金项目(41001135);广东省自然科学基金面上项目(S2012010010132);广州市珠江新星科技项目(2012J2200004);公益
性行业(农业)科研专项(200803029-01-03)
作者简介:柳 勇(1976—),男,湖北京山人,博士,副研究员,主要从事土壤与植物营养学研究。E-mail:yongliu@soil.gd.cn
*通信作者:李芳柏 E-mail:cefbli@soil.gd.cn
徐建明 E-mail:jmxu@zju.edu.cn
2014,33(4):687-694 2014年 4月农 业 环 境 科 学 学 报
Journal of Agro-Environment Science
农业环境科学学报 第 33卷第 4期
种植绿肥压青还田是我国南方稻田/红壤旱地用来
培肥改土的主要形式(如稻-稻-绿肥,烤烟-绿肥)[1-2]。
在绿肥的种植与腐解过程中,植物和微生物的代谢、
分解等活动会产生大量的水溶性有机物(DOM)[3]。
DOM是土壤有机质中最为活跃的成分。由于其降解、
吸附、络合、氧化还原等特性,DOM能够显著影响营
养元素(如 C、N、P、S和 Fe)的循环和污染物(如重金
属和有机污染物)的迁移转化等过程[4-7],进而影响营
养元素循环与污染物转化之间的相互关系[8-9]。
DOM的络合能力和氧化还原能力是 DOM化学
中最为重要的两个特性[10-17]。DOM含有羧基、酰胺基
等多种活性基团,可作为有机配体与 Fe(Ⅲ)/Fe(Ⅱ)
等金属离子发生络合(螯合)反应,改变 Fe(Ⅲ)/Fe(Ⅱ)
电对的电极电位,强烈影响土壤中氧化铁的还原溶
解[10,15-17]。另外,由于 DOM自身氧化还原状态的差异,
使得 DOM具有氧化还原活性的不同成分既可作为
参与异化铁还原的电子供体,也可作为加速异化铁还
原的电子穿梭体[11-14]。DOM作为电子供体的特性与其
含有低分子量有机酸、碳水化合物、酚类化合物等还
原性物质组成有关[11,13];作为电子穿梭体的特性则主
要与其类腐殖质成分中含有醌基有关[12,14]。
已有文献报道,单一组分的低分子量有机酸、碳
水化合物等小分子还原性物质在参与 Fe(Ⅲ)还原过
程中,会产生各种生物源和化学源的吸附态 Fe(Ⅱ),明
显提高了五氯酚(PCP)等有机氯的脱氯转化速率[18-19]。
然而,针对绿肥 DOM进入土壤后,特别是对不同氧
化还原条件下绿肥腐解不同时间段产生的 DOM 参
与上述氧化还原反应的过程还缺乏相关研究。因此,
本文旨在研究不同绿肥 DOM 作为有机碳源促进淹
水土壤 PCP还原转化与 Fe(Ⅱ)累积的关系,进而探
讨绿肥 DOM促进 PCP还原转化的化学机制。
1 材料与方法
1.1 实验供试材料
供试土壤采自华南植物园科研区水稻试验研究
基地(23°10′38″ N;113°21′10″ E),按照《中国土壤系
统分类检索(第 3 版)》,属潜育水耕人为土(Gleyi-
Stagnic Anthrosol)。取表层 0~15 cm 新鲜土壤(无
PCP污染),将鲜土样品去除大的石砾和植物根系,分
成 3份。一份鲜土立即过 8 mm筛,4 ℃条件下存放于
冰箱中(不超过 2 周);一份风干后研磨过 0.25 mm
筛,室温条件下存放于玻璃瓶中;另一份立即过 8 mm
筛或风干后过 2、0.25、0.16 mm筛,用于土壤基本理
化性质分析。土壤田间持水量采用漏斗法分析[20],其
他基本理化性质的分析方法见参考文献[21],测定结
果如下:田间持水量 43.9%(鲜土含水量为饱和持水
量);机械组成为砂粒含量 41.3%,粉粒含量 24.2%,
粘粒含量 34.5%(质地为粘壤);pH(水提)5.73;有机
质含量 46.0 g·kg-1;总氮含量 2.16 g·kg-1;阳离子交换
量 11.0 cmol(+)·kg-1;铁氧化物形态为游离氧化铁含
量 8.27 g·kg-1,无定形氧化铁含量 5.81 g·kg-1,有机结
合态氧化铁含量 0.525 g·kg-1;无机阴离子组成为 Cl-
含量 7.65 mg·kg-1,NO-3含量 2.92 mg·kg-1,SO2-4含量
40.1 mg·kg-1;水溶性有机碳含量 210 mg·kg-1;水溶性
总氮含量 17.6 mg·kg-1。
供试绿肥为紫云英(Astragalus sinicus L.),种植
于广东省生态环境与土壤研究所盆栽试验场。紫云英
收获于盛花期,用自来水和去离子水漂洗干净后于
60 ℃烘干并研磨过 1 mm筛,室温条件下存放于真空
干燥器中(注意防晒)。
1.2 实验设计方案
1.2.1 土壤接种悬液的制备
参考 Frosteg覽rd和 B覽覽th[22]的方法。称取过 8 mm
筛的 12 份 15 g 鲜土(冰箱中保存),各装于 250 mL
离心瓶中,于 25 ℃条件下放置 24 h,待微生物活化;
各按 1∶10(W/V)土水比加入 Milli-Q超纯水,于 25 ℃
条件下振荡 30 min(180 r·min-1),于 5 ℃条件下离心
10 min(750 × g),立即倾倒全部上清液,于装有定量
滤纸的布氏漏斗中小心抽滤,按此步骤在相同条件
下重复提取 1次后合并上清液;各上清液于 5 ℃条件
下离心 20 min(13 000 × g),小心去除上清液;合并菌
体残留物,反复加入 Milli-Q超纯水洗涤并离心至上
清液的水溶性有机碳(WSOC)含量低于 1 mg·L-1,将
菌体残留物在 Milli-Q超纯水中涡旋 3 min以上,使
之均匀分散,得到土壤接种悬液,立即用于紫云英的
腐解。
1.2.2 紫云英的腐解
参考 Hunt和 Ohno[3]的方法。称取过 1 mm筛的
10份 1.5 g紫云英干样,各装于 250 mL离心瓶中,按
1∶10(W/W)的紫云英石英砂比加入用酸洗净的石英
砂(500 ℃马弗炉中 48 h去除有机质),每个离心瓶中
加入土壤接种悬液 5 mL(相当于 15 g 鲜土的含菌
量);除了 2份离心瓶中样品不作培养,把剩余 8份离
心瓶中样品平均分为 2组,调节 2组离心瓶中样品含
水量各为 2、0.36 g·g-1石英砂,分别模拟淹水腐解方
式(CF)和好气腐解方式(NF),于 25 ℃条件下间歇通
688
第 32卷第 1期2014年 4月
气培养,每天以称重差减法补充损失的水分以保证恒
定的湿度条件;于第 0、7、14 d取样,分别得到新鲜紫
云英(Initial)、淹水腐解 7 d和 14 d紫云英(CF-7和
CF-14)、好气腐解 7 d和 14 d紫云英(NF-7和 NF-
14),对应表示为紫云英在不同的处理方式(压青、沤
肥、堆肥)和培养时间下的产物。4℃条件下存放于冰
箱中(不超过 24 h),用于紫云英 DOM的制备。
1.2.3 紫云英 DOM的制备
参考 Hunt和 Ohno[3]的方法。将 10份离心瓶从冰
箱中逐一取出,均按 1∶40(W/V)绿肥水比加入预冷
Milli-Q超纯水,于 4 ℃条件下间歇用手振荡 18 h;各
混浊液于 5℃条件下离心 30 min(900 × g),立即倾倒
全部上清液,于装有 Millipore 聚碳酸酯滤膜(0.40
μm)的溶剂过滤器中真空抽滤,分别得到不同的紫云
英 DOM滤液。4 ℃条件下存放于冰箱中(不超过 2
周),用于动力学实验。
1.2.4 动力学实验
参考 Liu等[19]的方法。准确称取过 0.25 mm筛的
若干份 2.0000 g风干土样,各装于 30 mL玻璃离心管
中,依次加入碱性 PCP 水溶液(40 mg PCP·L-1,每升
加入 2.5 mmol 的 NaOH 混匀)、DOM 水溶液(Initial、
CF-7、CF-14、NF-7或 NF-14;800 mg C·L-1)或 Milli-
Q超纯水(CK;0 mg C·L-1)、哌嗪-1,4-二乙磺酸缓冲
液(PIPES;25 mmol·L-1,pH = 7.0)各 1 mL;各按 1 ∶2
(W/V)土水比加入 Milli-Q超纯水,立即密闭管盖,于
25℃条件下静置培养;于第 0、2、5、6.5、8、11 d按测定
项目独立取样(避免悬浮和沉淀带来取样误差),每
个处理重复 3 次。各处理分别为:CK、Initial、CF-7、
CF-14、NF-7、NF-14。测定项目包括:PCP;乙酸钠提
取态 Fe(Ⅱ)或 Fe(Ⅲ)、乙酸钠+盐酸连续提取态
Fe(Ⅱ)或 Fe(Ⅲ),分别表示为 Fe(Ⅱ)NaOAc/Fe(Ⅲ)NaOAc、
Fe(Ⅱ)NaOAc+HCl /Fe(Ⅲ)NaOAc+HCl;WSOC;Eh;pH。
1.3 实验分析方法
1.3.1 紫云英 DOM化学性质分析
将每份紫云英 DOM 滤液稀释至 WSOC 含量为
200 mg·L-1后进行化学性质分析。总有机酸(TOAs)[23]
和总碳水化合物(TCs)[24]采用北京普析通用 TU-1800
型紫外/可见分光光度计测定(比色法),分别以乙酸
和葡萄糖作为标准物质,测定波长分别为 500 nm和
625 nm;采用北京普析通用 TU-1800型紫外/可见分
光光度计测定波长 436 nm 处的摩尔吸光系数
(SCOA436)[25],用于估计 DOM类腐殖质成分中的醌基
含量(光谱扫描法)。
1.3.2 土壤化学性质分析
PCP 的提取参考 Khodadoust 等 [26]的方法,采用
Waters 1525型双泵、Waters Symmetry C18型色谱柱(4.6
mm×250 mm,5 μm)和 Waters 2487型双波长 UV/Vis
检测器测定(高效液相色谱法);Fe(Ⅱ)NaOAc/Fe(Ⅲ)NaOAc
代表物理吸附态 Fe(Ⅱ)或 Fe(Ⅲ),Fe(Ⅱ)NaOAc +HCl/
Fe(Ⅲ)NaOAc+HCl代表物理吸附态与化学吸附态 Fe(Ⅱ)
或 Fe(Ⅲ)的总和,其提取参考 Liu等[19]和 Crosby等[27]
的方法,采用上海棱光 S53型紫外分光光度计测定(邻
菲罗啉比色法);WSOC的提取参考 Bolan等[28]方法,采
用 Shimadzu TOC-V CPH型总有机碳分析仪测定(干
烧法);Eh采用南京传滴 FJA-5型全自动氧化还原电
位分析仪测定(去极化法);pH 采用 Sartorius PB-10
型酸度计和Sartorius pH/ATC 复合电极测定(电极
法)。具体的提取过程及测试条件见参考文献[19]。
1.4 实验数据分析
采用 GraphPad Prism 5 和 Microsoft Office Excel
2007软件进行图表编辑。图表中,不同反应时间的数
据表示为算数平均值±标准差。采用 SPSS 11.5软件
进行数理统计分析。单因素方差分析采用 Duncan法;
双变量相关分析采用 Pearson相关系数法;多元线性回
归分析采用逐步回归法。所有统计检验均以 α=0.05
为显著水准,采用大/小写字母和 */**标注显著性。
2 结果与分析
2.1 PCP的动态变化
表 1可见,不同处理淹水土壤中可提取 PCP残
留量随着反应时间的延长而不断下降。与各反应时间
段的 CK处理相比,紫云英 DOM在淹水 6.5 d后均可
显著促进 PCP的还原(P<0.05),但不同紫云英 DOM
处理的转化规律表现不同(表 1)。第 6.5 d时,Initial
处理淹水土壤中 PCP的还原最快,转化率达 58.3%,
且与其他紫云英 DOM处理之间的差异均达显著水
准(P<0.05),其他紫云英 DOM处理之间无显著差异;
第 8 d时,CF-14和 NF-14处理还原最快,转化率分
别达 81.2%和 77.3%,且与其他紫云英 DOM处理之
间的差异均达显著水准(P<0.05),其他紫云英 DOM
处理之间无显著差异;第 11 d 时,Initial、CF-7 和
NF-7处理的还原变快,转化率为 91.9%~94.6%,但各
紫云英 DOM处理之间再无显著差异。
2.2 Fe(Ⅲ)、Fe(Ⅱ)的动态变化及消长关系
表 1 可见,不同处理淹水土壤中 Fe(Ⅱ)NaOAc、
Fe(Ⅱ)NaOAc+HCl和 Fe(Ⅲ)NaOAc含量随着反应时间的延长
柳 勇,等:紫云英水溶性有机物促进淹水土壤中五氯酚还原与铁还原 689
农业环境科学学报 第 33卷第 4期
表 1 添加不同紫云英 DOM条件下淹水土壤中 PCP、Fe(Ⅱ)、Fe(Ⅲ)含量随反应时间(t)的变化
Table 1 Changes in concentrations of PCP,Fe(Ⅱ)and Fe(Ⅲ)over incubation time(t)as affected by Chinese milk vetch-derived DOM
under different decomposition conditions in a flooded paddy soil
注:不同大写字母表示某个变量在相同反应时间、不同实验组间的差异显著(P<0.05),不同小写字母表示某个变量在相同实验组、不同反应时
间的差异显著(P<0.05)。
而增加,8 d或 11 d后则略有下降;然而,Fe(Ⅲ)NaOAc+HCl
含量随着反应时间的延长而下降,8 d或 11 d后则略
有增加。与各反应时间段的 CK处理相比,紫云英 DOM
在淹水 2 d后均可显著促进淹水土壤中 Fe(Ⅱ)NaOAc
和 Fe(Ⅱ)NaOAc+HCl 的累积(P<0.05);多数情况下还可
促进 Fe(Ⅲ)NaOAc 的累积(CF-7 处理除外),但使得
Fe(Ⅲ)NaOAc+HCl含量呈现加速下降趋势(表 1)。
相关分析的结果则表明,Fe(Ⅲ)NaOAc+HCl 含量与
Fe(Ⅱ)NaOAc+HCl含量达极显著负相关(P<0.01)(图 1A),
而 Fe(Ⅲ)NaOAc 含量与 Fe(Ⅱ)NaOAc 含量却呈现极显
著正相关(P<0.01)(图 1B)。此外,Fe(Ⅱ)NaOAc含量与
Fe(Ⅱ)NaOAc+HCl含量之间有着极显著的正相关关系(P<
0.01)(图 1C),而 Fe(Ⅲ)NaOAc含量与 Fe(Ⅲ)NaOAc+HCl含
量之间却存在着极显著的负相关关系(P<0.01)(图
1D)。这与淹水土壤中 Fe(Ⅱ)与 Fe(Ⅲ)之间以及各
种形态铁之间存在着氧化-还原、沉淀-溶解等物理、
化学、生物过程构成的动态平衡有关(参见讨论)。
2.3 WSOC、Eh、pH的动态变化
紫云英 DOM 处理的 WSOC 含量总体上随着反
应时间的延长不断下降,而 CK处理在淹水 2 d后下
降幅度很小(图 2A)。第 2 d时,各处理的WSOC含量
降幅大小顺序为:NF-14 和 CF-14 处理> CK 处理>
处理 变量/mg·kg-1
CK PCP 20.3±0.5Aa 19.1±0.3ABb 17.4±0.3Ac 15.7±0.5Ad 12.2±0.3Ae 4.96±1.00Af
Fe(Ⅱ)NaOAc 3.17±0.10Ad 18.1±0.9Cc 88.9±4.3Cb 107±5Da 111±3Ea 91.7±2.6Db
Fe(Ⅱ)NaOAc+HCl 52.7±0.6Af 47.5±1.7Fe 166±3Fd 206±4Fb 236±2Da 195±1Dc
Fe(Ⅲ)NaOAc 0.809±0.155Ac 5.47±0.19Cc 51.3±8.0Bb 54.6±1.1Eab 59.9±1.6Ca 56.3±1.9BCab
Fe(Ⅲ)NaOAc+HCl 379±2Aa 358±5Ab 325±8Ac 310±6Ad 296±4Be 325±2Bc
Initial PCP 20.3±0.5Aa 19.7±0.6Aa 15.9±1.2Ab 8.47±1.35Cc 7.20±1.87Bc 1.29±0.03Bd
Fe(Ⅱ)NaOAc 3.17±0.10Ae 33.2±2.6Ad 135±4Ac 146±8BCb 171±3Aa 153±9ABb
Fe(Ⅱ)NaOAc+HCl 52.7±0.6Ae 120±2Bd 293±1Ac 333±5Cb 362±9Aa 355±5Aa
Fe(Ⅲ)NaOAc 0.809±0.155Ad 4.77±0.32Dd 55.7±3.4ABc 70.4±4.4Ab 81.4±9.1Aa 56.5±8.4BCc
Fe(Ⅲ)NaOAc+HCl 379±2Aa 337±5BCb 246±2Cd 243±4Cde 286±6Cc 238±2De
CF-7 PCP 20.3±0.5Aa 19.0±0.5ABab 16.8±0.8Ab 12.1±2.4Bc 8.24±1.59Bd 1.24±0.18Be
Fe(Ⅱ)NaOAc 3.17±0.10Af 23.7±0.7Be 115±3Bd 155±1Aa 136±5Dc 148±4ABCb
Fe(Ⅱ)NaOAc+HCl 52.7±0.6Af 103±1Ce 258±4Cd 351±1Ba 312±1Bc 343±1Bb
Fe(Ⅲ)NaOAc 0.809±0.155Ae 2.19±0.50Fe 42.1±1.1Cd 58.9±0.8Da 51.3±1.6Db 47.6±1.4Cc
Fe(Ⅲ)NaOAc+HCl 379±2Aa 323±1Db 253±6Cd 236±14Ce 273±2Dc 224±1Ef
CF-14 PCP 20.3±0.5Aa 18.9±0.1Bb 17.6±0.5Ac 13.8±0.6ABd 4.60±0.58Ce 1.64±0.17Bf
Fe(Ⅱ)NaOAc 3.17±0.10Ae 22.0±0.2Bd 110±3Bc 139±2Cb 152±3Ca 140±13BCb
Fe(Ⅱ)NaOAc+HCl 52.7±0.6Ad 58.1±1.7Ed 195±2Ec 254±1Eb 295±2Ca 259±11Cb
Fe(Ⅲ)NaOAc 0.809±0.155Ad 7.22±0.57Bd 55.4±2.8ABc 63.6±1.1BCb 72.5±1.6Ba 75.0±8.3Aa
Fe(Ⅲ)NaOAc+HCl 379±2Aa 346±10Bb 326±14Ac 288±2Bd 277±2Dd 317±1Cc
NF-7 PCP 20.3±0.5Aa 19.3±0.2ABa 16.5±1.1Ab 11.4±0.8Bc 8.54±1.49Bd 1.10±0.38Be
Fe(Ⅱ)NaOAc 3.17±0.10Ae 32.5±3.0Ad 134±1Ac 156±5Ab 169±4ABa 156±8Ab
Fe(Ⅱ)NaOAc+HCl 52.7±0.6Ad 124±3Ac 288±2Bb 363±2Aa 367±5Aa 361±5Aa
Fe(Ⅲ)NaOAc 0.809±0.155Ad 3.57±0.06Ed 53.1±0.3ABc 60.9±2.6CDb 75.6±4.7ABa 56.2±5.6BCbc
Fe(Ⅲ)NaOAc+HCl 379±2Aa 328±5CDb 246±15Cd 237±1Cd 311±4Ac 238±1Dd
NF-14 PCP 20.3±0.5Aa 19.0±0.2Bb 16.1±0.9Ac 11.9±0.8Bd 3.81±0.52Ce 1.31±0.07Bf
Fe(Ⅱ)NaOAc 3.17±0.10Ae 34.8±1.0Ad 133±5Ac 149±3ABb 163±4Ba 134±3Cc
Fe(Ⅱ)NaOAc+HCl 52.7±0.6Af 80.8±1.3De 234±2Dd 269±1Db 319±2Ba 265±2Cc
Fe(Ⅲ)NaOAc 0.809±0.155Ae 8.20±0.00Ad 60.1±6.1Ac 65.8±1.7Bb 74.8±3.1ABa 65.1±1.2Bbc
Fe(Ⅲ)NaOAc+HCl 379±2Aa 328±3CDc 300±5Bd 293±2Bde 287±2Ce 342±9Ab
t/d
0 2 5 6.5 8 11
690
第 32卷第 1期2014年 4月
480
360
240
120
0
Fe(Ⅱ)NaOAc/mg·kg-1
Fe (
Ⅱ
)
Na
OA
c+
HC
l/m
g ·
kg
-1
0 60 120 180 240
C
r=0.974**
480
360
240
120
0
Fe(Ⅱ)NaOAc+HCl/mg·kg-1
Fe (
Ⅲ
)
Na
OA
c+
HC
l/m
g ·
kg
-1
0 120 240 360 480
A
r=-0.885**
图 1 淹水土壤中 Fe(Ⅱ)NaOAc、Fe(Ⅱ)NaOAc+HCl、Fe(Ⅲ)NaOAc、Fe(Ⅲ)NaOAc+HCl变化的相互关系(n=36)
Figure 1 Correlations between Fe(Ⅱ)NaOAc,Fe(Ⅱ)NaOAc+HCl,Fe(Ⅲ)NaOAc,and Fe(Ⅲ)NaOAc+HCl in a flooded paddy soil(n=36)
*表示某 2个变量的相关性显著(P<0.05),**表示某 2个变量的相关性极显著(P<0.01)。
NF-7处理> Initial处理> CF-7处理;第 2 d后,各处
理降幅大小顺序大致相同,即 CF-14处理最大,NF-
14、CF-7和 Initial处理次之,NF-7和 CK处理最小。
可见,不同紫云英 DOM在淹水土壤中厌氧矿化速率
不同。添加紫云英 DOM后淹水土壤 Eh值变化趋势
基本与 CK处理的相同,即随反应时间变化呈现先降
低后升高的趋势,且各反应时间段普遍低于 CK处理
(图 2B);添加紫云英 DOM后淹水土壤 pH值变化趋
势较 CK处理而言更为复杂,但各反应时间段始终高
于 CK处理(图 2C)。
2.4 PCP降解与其他环境变量变化的动态关系
我们选取了 PCP、Fe(Ⅱ)NaOAc、Fe(Ⅱ)NaOAc +HCl、
Fe(Ⅲ)NaOAc、Fe(Ⅲ)NaOAc+HCl、WSOC、Eh、pH 等环境变
量,通过双变量相关分析(表 2)并建立多元线性逐步
回归方程,阐述淹水土壤中 PCP还原与其他环境变
量变化的动态关系。
表 2 可见,PCP 浓度与 WSOC、Fe(Ⅲ)NaOAc+HCl 含
量之间均有着极显著的正相关关系(P<0.01),而与
Fe(Ⅱ)NaOAc、Fe(Ⅱ)NaOAc+HCl、Fe(Ⅲ)NaOAc含量之间却均
有着极显著的负相关关系(P<0.01),与 pH之间也存
在着显著的负相关关系(P<0.05)。
对淹水土壤中 PCP 浓度与其他环境变量值之
间进行多元线性回归分析可知,PCP 还原主要受
Fe(Ⅱ)NaOAc+HCl的影响。多元线性逐步回归方程如下:
PCP(mg·kg-1)= 22.950-0.047Fe(Ⅱ)NaOAc+HCl(mg·
kg-1)(R2=0.615,n=36)
经检验,上述回归方程的 F值为 54.282,达到了
极显著水平(P<0.01)。
3 讨论
目前,在对土壤体系中 PCP降解进行还原脱氯
研究时,主要是研究环境条件(电子供体、电子受体、
电子穿梭体、有机配体、含水量、pH、Eh、温度、污染物
初始浓度、矿物组分及养分等特性、胶体表面特性、共
存金属离子等)对 PCP降解动力学行为和转化规律
的影响[29]。外源有机添加物是可以人为调控的对土壤
中厌氧 PCP降解过程有重要影响的环境条件之一,
具体表现为有机碳源对土-水界面微生物与 PCP相
互作用的影响[30]。DOM的氧化还原性质决定了其既
可作为电子供体[11,13]或有机配体[10,15-17],又可作为电子
穿梭体[12,14]。从表 1中结果来看,不同紫云英 DOM对
淹水土壤中 PCP还原转化的促进作用具有时段性,
其主要原因在于:不同紫云英 DOM化学组分的差异
较大(表 3)。紫云英 DOM进入土壤后,随着反应时间
100
75
50
25
0
Fe(Ⅱ)NaOAc/mg·kg-1
Fe (
Ⅲ
)
Na
OA
c/m
g ·
kg
-1
0 60 120 180 240
B
r=0.962**
480
360
240
120
0
Fe(Ⅲ)NaOAc/mg·kg-1
Fe (
Ⅲ
)
Na
OA
c+
HC
l/m
g ·
kg
-1
0 25 50 75 100
D
r=-0.695**
柳 勇,等:紫云英水溶性有机物促进淹水土壤中五氯酚还原与铁还原 691
农业环境科学学报 第 33卷第 4期
6000
5825
5650
5475
5300
t/d
W
SO
C/
m
g ·
kg
-1
0 3 6 9 12
NF-14
NF-7
CF-14
CF-7
Initial
CK
A
B
C
540
430
320
210
Eh
/m
V
6.78
6.69
6.60
6.51
pH
图 2 添加不同紫云英 DOM条件下淹水土壤中WSOC含量
以及 Eh、pH值随反应时间(t)的变化
Figure 2 Changes in water soluble organic C(WSOC)
concentrations,Eh values, and pH values over incubation time(t)
as affected by Chinese milk vetch-derived DOM under different
decomposition conditions in a flooded paddy soil
Fe(Ⅱ)NaOAc Fe(Ⅱ)NaOAc+HCl Fe(Ⅲ)NaOAc Fe(Ⅲ)NaOAc+HCl WSOC Eh pH
PCP -0.775** -0.784** -0.756** 0.590** 0.585** -0.303 -0.403*
表 2 淹水土壤中 PCP与其他环境变量变化的相互关系(n=36)
Table 2 Correlations between PCP and some other environmental variables in a flooded paddy soil(n=36)
注:*表示某两个变量的相关性显著(P<0.05),**表示某两个变量的相关性极显著(P<0.01)。
的延长,淹水土壤中 WSOC逐渐被微生物利用而消
耗(图 2A),但 DOM氧化还原活性成分的差异可能导
致其微生物可利用性不同[31]。因此,我们比较了不同
紫云英 DOM 中的 TOAs+TCs 含量和 SCOA436值,它
们在一定程度上分别决定了易降解有机碳组分和相
对难降解有机碳组分的氧化还原容量(有关紫云英
DOM氧化还原特征的评价方法另撰文讨论[32])。不同
紫云英 DOM的 TOAs+TCs含量依次为:新鲜紫云英
DOM>好气腐解 7 d紫云英 DOM>好气腐解 14 d紫云
英 DOM和淹水腐解 14 d紫云英 DOM>淹水腐解 7 d
紫云英 DOM(P<0.05)。不同紫云英 DOM的醌基含量
依次为:好气腐解 14 d紫云英 DOM>好气腐解 7 d紫
云英 DOM>新鲜紫云英 DOM>淹水腐解 7 d 紫云英
DOM>淹水腐解 14 d紫云英 DOM(P<0.05)。这是因
为,SCOA436值越大,腐植酸样品中的醌基含量越高[25],
综合而言,在有机酸、碳水化合物等易降解有机碳组
分占主导的情况下,它们更倾向于作为电子供体或有
机配体促进 PCP的还原转化;在腐植酸等相对难降
解有机碳组分占主导的情况下,它们更倾向于作为电
子穿梭体促进 PCP的还原转化。以新鲜紫云英 DOM
和好气腐解 14 d紫云英 DOM为例来说明。新鲜紫云
英 DOM中的 TOAs+TCs含量最高,醌基含量居中,而
好气腐解 14 d 紫云英 DOM 中的醌基含量最高,
TOAs+TCs含量居中。因此,新鲜紫云英 DOM可以提
供充足的电子供体或有机配体,而好气腐解 14 d紫
云英 DOM则提供了充足的电子穿梭体,它们分别在
淹水 6.5 d和 8 d时显著促进了 PCP的还原。需要指
出的是,紫云英 DOM 较单一组分的低分子量有机
酸、碳水化合物等小分子还原性物质以及腐植酸等大
分子醌类物质更为复杂,其化学性质的单个测定参数
并不能说明多因素共同决定的紫云英 DOM 的氧化
还原反应性[32]。
淹水土壤中 PCP的降解过程还受到土壤性质等
环境变量变化的制约[19,33]。双变量相关分析的结果表
明,随着反应时间的延长,WSOC 的消耗、Fe(Ⅱ)NaOAc
或 Fe(Ⅱ)NaOAc+HCl的累积以及 pH的升高均有利于 PCP
的还原(表 2)。结果与 Liu等[19]的报道相似。然而,多元
线性回归分析的结果表明,Fe(Ⅱ)NaOAc、Fe(Ⅱ)NaOAc+HCl、
Fe(Ⅲ)NaOAc、Fe(Ⅲ)NaOAc+HCl、WSOC、Eh、pH等环境变量
中,Fe(Ⅱ)NaOAc+HCl是对 PCP还原转化起决定作用的环
境变量,即 PCP还原转化速率随着 Fe(Ⅱ)NaOAc+HCl含量
的增加而提高。大量研究表明,淹水土壤及其他含水
层介质中 Fe(Ⅱ)与 Fe(Ⅲ)之间以及各种形态铁(水
溶态、吸附态、结合态、结构态等)之间存在着动态平
衡过程[34-38],进而影响铁的厌氧生物氧化还原循环与
PCP还原转化的关系。Liang等[35]研究指出,缺氧环境中
天然溶解性有机质的存在,一方面有利于促进 Fe(Ⅲ)
692
第 32卷第 1期2014年 4月
表 3 不同紫云英 DOM化学性质的测定参数
Table 3 Chemical properties of Chinese milk vetch-derived DOM under different decomposition conditions
注:不同小写字母表示某个测定参数在不同紫云英 DOM稀释液间的差异显著(P<0.05)。
测定参数
紫云英 DOM稀释液/200 mg C·L-1
Initial CF-7 CF-14 NF-7 NF-14
TOAs/mg·L-1 31.8±0.3d 90.8±0.4b 99.7±0.5a 33.9±0.0c 34.1±1.0c
TCs/mg·L-1 161.8±1.3a 11.9±0.1e 13.6±0.0d 91.9±1.1b 81.3±0.2c
TOAs+TCs/mg·L-1 193.6±0.9a 102.7±0.3d 113.3±0.4c 125.8±0.8b 115.4±0.7c
SCOA436/10-3 L·(mg C)-1·m-1 105.5±10.3c 37.5±10.0d 31.0±10.2d 155.6±11.6b 289.0±10.1a
的微生物还原与化学还原反应,生成 Fe(Ⅱ);另一方
面也有利于 Fe(Ⅲ)-有机络合物的形成而加速 Fe(Ⅲ)
的非还原性溶解。水稻土的淹水条件创造了兼性厌氧
环境,不同紫云英 DOM显著促进 Fe(Ⅲ)的还原,导致
Fe(Ⅱ)NaOAc+HCl或 Fe(Ⅱ)NaOAc的累积。但与 Fe(Ⅱ)NaOAc
相比,Fe(Ⅱ)NaOAc+HCl更能反映出吸附态 Fe(Ⅱ)具有较
强的 PCP还原能力。Amonette等[39]认为,铁氧化物表
面提供了吸附 Fe(Ⅱ)的位点和反应的场所,吸附态
Fe(Ⅱ)可以表面羟基官能团作为配位体形成内圈复
合物,从而增加了固相表面吸附态 Fe(Ⅱ)周围的电
子云密度而带负电荷,系统的还原能力增强;Jeon
等 [40]则认为,铁氧化物表面结合态 Fe(Ⅱ)[包括物理
吸附态 Fe(Ⅱ)和化学吸附态 Fe(Ⅱ)]可能是表面结
合铁系统具有还原能力的最主要原因。乙酸钠并不能
提取到全部的表面结合态 Fe(Ⅱ),如 Crosby等[27]通
过微生物异化赤铁矿和针铁矿还原的实验证实,1 mol·
L-1 NaOAc(pH 4.85)只去除了约 80%的吸附态 Fe(Ⅱ)。
Liu 等 [19]研究表明,对 PCP 还原脱氯起作用的活性
Fe(Ⅱ)物种除了包含乙酸钠提取态 Fe(Ⅱ)这部分外,
还可能包含盐酸提取态 Fe(Ⅱ)的一部分,导致盐酸
提取态 Fe(Ⅱ)比乙酸钠提取态 Fe(Ⅱ)具有更强的
PCP还原脱氯活性,这与本试验结果基本一致。因此,
可以肯定,具有较强还原活性的 Fe(Ⅱ)NaOAc+HCl累积
是导致PCP还原转化的主要化学机制。此外,DOM具
有非还原性溶解氧化铁的能力,因此紫云英 DOM增加
了Fe(Ⅲ)NaOAc的含量;Fe(Ⅲ)NaOAc容易被进一步还原
生成 Fe(Ⅱ)NaOAc,Fe(Ⅱ)NaOAc也易于作为还原 PCP的电
子供体重新被氧化,从而发生 Fe(Ⅲ)和 Fe(Ⅱ)的相
互转化过程,当 Fe(Ⅱ)NaOAc的氧化速率高于 Fe(Ⅲ)NaOAc
的还原速率,体系达到新的平衡状态时,就会产生
Fe(Ⅲ)NaOAc的累积,同时发生 PCP的还原转化。
4 结论
紫云英DOM输入均可显著促进淹水土壤中 PCP的
还原转化和 Fe(Ⅱ)NaOAc、Fe(Ⅱ)NaOAc+HCl的累积;多数情
况下还可促进 Fe(Ⅲ)NaOAc的累积,但使得 Fe(Ⅲ)NaOAc+HCl
含量呈现加速下降趋势。
Fe(Ⅱ)NaOAc+HCl是促进 PCP还原转化的主要活性
铁形态。
参考文献:
[1] Yu T R. Use of organic matter/manure on upland acid soils in China[M]//
Craswell E T, Pushparajah E. Management of acid soils in the humid
tropics of Asia. Silverwater:Rodenprint Pty Ltd, 1989:44-51.
[2]曹卫东.绿肥在现代农业发展中的探索与实践[M].北京:中国农业
科学技术出版社, 2011:1-329.
CAO Wei-dong. Green manure in the development of modern agricul-
ture in the exploration and practice[M]. Beijing:China Agricultural Sci-
ence and Technology Press, 2011:1-329.
[3] Hunt J F, Ohno T. Characterization of fresh and decomposed dissolved or-
ganic matter using excitation-emission matrix fluorescence spectroscopy
and multiway analysis[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry ,
2007, 55:2121-2128.
[4] Kalbitz K, Solinger S, Park J H, et al. Controls on the dynamics of dis-
solved organic matter in soils:A review[J]. Soil Science , 2000, 165:
277-304.
[5] Guppy C N, Menzies N W, Moody P W, et al. Competitive sorption reac-
tions between phosphorus and organic matter in soil:A review [J]. Aus-
tralian Journal of Soil Research, 2005, 43:189-202.
[6] Kalbitz K, Popp P, Geyer W, et al. β-HCH mobilization in polluted wet-
land soils as influenced by dissolved organic matter[J]. Science of the
Total Environment, 1997, 204:37-48.
[7] Bauer M, Blodau C. Mobilization of arsenic by dissolved organic matter
from iron oxides, soils and sediments[J]. Science of the Total Environ-
ment, 2006, 354:179-190.
[8] Buerge I J, Hug S J. Influence of organic ligands on chromium(Ⅵ)re-
duction by iron(Ⅱ)[J]. Environmental Science & Technology , 1998,
32:2092-2099.
[9] Hakala J A, Chin Y P, Weber E J. Influence of dissolved organic matter
and Fe(Ⅱ)on the abiotic reduction of pentachloronitrobenzene[J]. En-
vironmental Science & Technology, 2007, 41:7337-7342.
[10] Wen Q X, Yu T R. Effect of green manure on physicochemical proper-
ties of irrigated rice soils [M]//Pollard M L. Sustainable agriculture:
Green manure in rice farming. Los Ba觡os:International Rice Research
Institute, 1988:275-287.
[11] Lovley D R, Holmes D E, Nevin K P. Dissimilatory Fe(Ⅲ)and Mn(Ⅳ)
reduction[J]. Advances in Microbial Physiology, 2004, 49:219-286.
柳 勇,等:紫云英水溶性有机物促进淹水土壤中五氯酚还原与铁还原 693
农业环境科学学报 第 33卷第 4期
[12] Cory R M, Mcknight D M. Fluorescence spectroscopy reveals ubiqui-
tous presence of oxidized and reduced quinones in dissolved organic
matter[J]. Environmental Science & Technology, 2005, 39:8142-8149.
[13] Li Q M, Ding Y, Zhang W, et al. Sorptive interaction between goethite
and strongly reducing organic substances from anaerobic decomposition
of green manures[J]. Soil Biology & Biochemistry, 2008, 40:2922-2927.
[14] Zhang H C, Weber E J. Elucidating the role of electron shuttles in re-
ductive transformations in anaerobic sediments[J]. Environmental Sci-
ence & Technology, 2009, 43(4):1042-1048.
[15]丁昌璞.低分子量有机还原性物质与土壤的相互作用 I.低分子量
有机还原性物质的化学性质[J].土壤学报, 2010, 47(3):451-457.
DING Chang -pu. Interaction between low -molecular weight organic
reducing substances and soils. I. Chemical properties of low-molecular
weight organic reducing substances[J]. Acta Pedologica Sinica, 2010,
47(3):451-457.
[16]丁昌璞.低分子量有机还原性物质与土壤的相互作用Ⅱ.低分子
量有机还原性物质与土壤作用的化学反应[J]. 土壤学报 , 2011,
48(5):957-963.
DING Chang-pu. Interaction between low-molecular weight organic
reducing substances and soils.Ⅱ. Chemical reactions of low-molecular
weight organic reducing substances with soils[J]. Acta Pedologica Sini-
ca, 2011, 48(5):957-963.
[17] Strathmann T J. Redox reactivity of organically complexed iron(Ⅱ)
species with aquatic contaminants [M]//Tratnyek P G, Grundl T G,
Haderlein S B. Aquatic redox chemistry. Washington, DC:American
Chemical Society, 2011:283-313.
[18] Li F B, Wang X G, Liu C S, et al. Reductive transformation of pen-
tachlorophenol on the interface of subtropical soil colloids and water[J].
Geoderma, 2008, 148:70-78.
[19] Liu Y, Li F B, Xia W, et al. Association between ferrous iron accumu-
lation and pentachlorophenol degradation at the paddy soil-water inter-
face in the presence of exogenous low-molecular-weight dissolved or-
ganic carbon[J]. Chemosphere, 2013, 91:1547-1555.
[20] Harding D E, Ross D J. Some factors in low-temperature storage influ-
encing the mineralisable-nitrogen of soils[J]. Journal of the Science of
Food and Agriculture, 1964, 15:829-834.
[21]鲁如坤.土壤农业化学分析方法[M].北京:中国农业科技出版社,
2000:1-638.
LU Ru -kun. The analytical methods for soil and agrochemistry [M].
Beijing:China Agricultural Science and Technology Press, 2000:1 -
638.
[22] Frosteg覽rd A, B覽覽th E. The use of phospholipid fatty acid analysis to
estimate bacterial and fungal biomass in soil[J]. Biology and Fertility of
Soils, 1996, 22:59-65.
[23] Montgomery H A C, Dymock J F, Thom N S. The rapid colorimetric de-
termination of organic acids and their salts in sewage-sludge liquor[J].
Analyst, 1962, 87:949-955.
[24] Grandy A S, Erich M S, Porter G A. Suitability of the anthrone-sulfuric
acid reagent for determining water soluble carbohydrates in soil water
extracts[J]. Soil Biology & Biochemistry, 2000, 32:725-727.
[25] Kumke M U, Specht C H, Brinkmann T, et al. Alkaline hydrolysis of
humic substances:Spectroscopic and chromatographic investigations[J].
Chemosphere, 2001, 45:1023-1031.
[26] Khodadoust A P, Suidan M T, Acheson C M, et al. Solvent extraction of
pentachlorophenol from contaminated soils using water -ethanol mix-
tures[J]. Chemosphere, 1999, 38:2681-2693.
[27] Crosby H A, Johnson C M, Roden E E, et al. Coupled Fe(Ⅱ)-Fe(Ⅲ)
electron and atom exchange as a mechanism for Fe isotope fractionation
during dissimilatory iron oxide reduction[J]. Environmental Science &
Technology, 2005, 39:6698-6704.
[28] Bolan N S, Baskaran S, Thiagarajan S. An evaluation of the methods of
measurement of dissolved organic carbon in soils, manures, sludges,
and stream water[J]. Communications in Soil Science & Plant Analysis,
1996, 27:2723-2737.
[29]于雄胜,罗敏意,楼 骏,等.厌氧条件下土壤中有机氯降解动力学
模型及其参数优化:以五氯酚(PCP)为例[J].生态环境学报, 2013,
22(11):1853-1858.
YU Xiong-sheng, LUO Min-yi, LOU Jun, et al. Kinetic modeling and
parameter optimization for organochlorine degradation in anaerobic
soil:A case study on pentachlorophenol(PCP)[J]. Ecology and Envi-
ronmental Sciences, 2013, 22(11):1853-1858.
[30] DAngelo E M, Reddy K R. Aerobic and anaerobic transformations of
pentachlorophenol in wetland soils[J]. Soil Science Society of America
Journal, 2000, 64:933-943.
[31] Young K C, Docherty K M, Maurice P A, et al. Degradation of surface-
water dissolved organic matter:Influences of DOM chemical character-
istics and microbial populations[J]. Hydrobiologia, 2005, 539:1-11.
[32] Liu Y, Lou J, Li F B, et al. Evaluating oxidation-reduction properties of
dissolved organic matter from Chinese milk vetch(Astragalus sinicus
L.):A comprehensive multi-parametric study[J]. Environmental Tech-
nology, 2014, DOI:10.1080/09593330. 2014.885586.
[33] Kuwatsuka S, Igarashi M. Degradation of PCP in soils. Ⅱ . The rela-
tionship between the degradation of PCP and the properties of soils,
and the identification of the degradation products of PCP[J]. Soil Sci-
ence and Plant Nutrition, 1975, 21:405-414.
[34] Ahmad A R, Nye P H. Coupled diffusion and oxidation of ferrous iron
in soils. I. Kinetics of oxygenation of ferrous iron in soil suspension[J].
Journal of Soil Science, 1990, 41:395-409.
[35] Liang L Y, Mccarthy J F, Jolley L W, et al. Iron dynamics:Transforma-
tion of Fe(Ⅱ)/Fe(Ⅲ)during injection of natural organic matter in a
sandy aquifer[J]. Geochimica et Cosmochimica Acta, 1993, 57:1987-
1999.
[36] Stumm W, Morgan J J. Aquatic chemistry:Chemical equilibria and
rates in natural waters[M]. 3rd Edition. New York:John Wiley & Sons
Inc., 1996:425-515.
[37] van Bodegom P M, van Reeven J, Denier H A C, et al. Prediction of re-
ducible soil iron content from iron extraction data[J]. Biogeochemistry,
2003, 64:231-245.
[38] Weber K A, Achenbach L A, Coates J D. Microorganisms pumping iron:
Anaerobic microbial iron oxidation and reduction[J]. Nature Reviews
Microbiology, 2006, 4:752-764.
[39] Amonette J E, Workman D J, Kennedy D W, et al. Dechlorination of
carbon tetrachloride by Fe(Ⅱ)associated with goethite[J]. Environ-
mental Science & Technology, 2000, 34:4606-4613.
[40] Jeon B H, Dempsey B A, Burgos W D. Kinetics and mechanisms for re-
actions of Fe(Ⅱ)with iron(Ⅲ)oxides[J]. Environmental Science &
Technology, 2003, 37: 3309-3315.
694