全 文 :畜牧兽医学报 2013,44(6):952-959
Acta Veterinaria et Zootechnica Sinica
doi:10.11843/j.issn.0366-6964.2013.06.018
毛泡桐花黄酮对小鼠脾和胸腺超微结构及
免疫功能的影响
王占彬1,王亚锴1,赵德明2,张自强1
(1.河南科技大学动物科技学院,洛阳471003;2.中国农业大学动物医学院,北京100193)
摘 要:为研究毛泡桐花黄酮对小鼠脾和胸腺超微结构的影响,将120只昆明种小白鼠随机分为4组:对照组(灌
服0.3mL·d-1含0.5%CMC-Na的PBS)、黄酮Ⅰ组[40mg·(kg·d)-1黄酮]、黄酮Ⅱ组[120mg·(kg·d)-1黄
酮]和黄酮Ⅲ组[360mg·(kg·d)-1黄酮],每组30只(雌雄各半),采用灌胃法按体重每日给小鼠灌服毛泡桐花黄
酮建立实验动物模型,在处理后第28天处死小鼠,采集脾和胸腺,计算脏器指数,MTT法检测刀豆素A(ConA)诱
导的小鼠脾淋巴细胞增殖转化、中性红试验测定小鼠腹腔巨噬细胞吞噬功能,并采用扫描电镜观察小鼠脾和胸腺
结构。结果表明,不同剂量的毛泡桐花黄酮均能显著提高小鼠胸腺和脾指数及淋巴细胞增殖反应和腹腔巨噬细胞
吞噬功能(P<0.05),且呈现一定的剂量依赖性;毛泡桐花黄酮高、中、低3个剂量组小鼠脾和胸腺中成熟淋巴细胞
数量均较对照组增多,特别是高剂量组成熟淋巴细胞数量最多。提示,毛泡桐花黄酮通过增加小鼠免疫器官质量、
免疫器官中成熟淋巴细胞数量等影响其超微结构。毛泡桐花黄酮通过提高脾T淋巴细胞增殖反应和腹腔巨噬细
胞吞噬能力,对小鼠免疫功能具有一定的调控作用。
关键词:毛泡桐花;黄酮;扫描电镜;小鼠;脾;胸腺
中图分类号:S852.16 文献标志码:A 文章编号:0366-6964(2013)06-0952-08
收稿日期:2012-12-10
基金项目:河南省科技攻关项目(132102310279)
作者简介:王占彬(1964-),男,河南省嵩县人,博士,副教授,E-mail:wangzhanbin3696@126.com
The Effect of Flavonoids fromPaulownia tomentosa Flowers on the Ultrastructure
and Immune Function of Spleen and Thymus in Mice
WANG Zhan-bin1,WANG Ya-kai 1,ZHAO De-ming2,ZHANG Zi-qiang1
(1.College of Animal Science and Technology,Henan University of Science and Technology,
Luoyang471003,China;2.College of Veterinary Medicine,China Agricultural University,
Beijing100193,China)
Abstract:To explore the effect of flavonoids from flowers of Paulownia tomentosa on the ultra-
structure of spleen and thymus in mice,120Kunming mice were randomly divided into four
groups(n=30,half male and half female).Using daily intragastric administration of flavonoids
fromPaulownia tomentosa flower according to the weight to establish the experimental animal
model:Mice in flavonoid groupⅠ,flavonoid groupⅡand flavonoid groupⅢ were drenched
(once daily for 28days)with 40,120and 360mg·(kg·d)-1 flavonoid,respectively.Mice in
control group were gavaged with equal volume PBS containing 0.5%CMC-Na.On the 28th day of
the treatment,spleens and thymuses were colected and organ index was calculated.Proliferation
and transformation of spleen lymphocytes induced by ConA were determined by MTT method.
Phagocytosis of peritoneal macrophages was tested by neutral red test.The ultrastructure of
spleen and thymuses were observed through scanning electron microscope.The results showed
6期 王占彬等:毛泡桐花黄酮对小鼠脾和胸腺超微结构及免疫功能的影响
that different doses of flavonoids fromPaulownia tomentosaflowers can significantly improve the
thymus and spleen index and lymphocyte proliferation response(P<0.05)in a dose-dependent
manner.Compared with the control group,the number of mature lymphocytes in mice spleen and
thymus increased significantly in the three flavonoid-treated groups,especialy in high dose
group.The results suggest that flavonoids from Paulownia tomentosa flowers affect the ultra-
structure of spleen and thymus by increasing immune organ quality,immune organs mature lym-
phocyte number.In addition,lymphocyte proliferation response,flavonoids from Paulownia to-
mentosaflowers has a certain regulation effect on the immune function in mice by reinforcing the
T lymphocyte proliferation response of spleen and thymus to the celular immune function.
Key words:Paulownia tomentosa flowers;flavonoids;scanning electron microscope;mice;
spleen;thymus
黄酮类化合物广泛存在于自然界的植物体中,
是药用植物中主要活性成分之一[1-2]。在畜禽生产
中还发现,该化合物具有提高畜禽机体免疫力、抗菌
消炎、提高抗氧化能力和保健等作用[3-8]。
毛泡桐(Paulownia tomentosa steud)为玄参科
泡桐属植物,目前,在中国广泛种植。毛泡桐花的药
用价值在中国古代史书中就有记载。现代研究表明
毛泡桐花中含有一定量的黄酮类化合物,不但可用
于心脑血管疾病、糖尿病、高血压等疾病的治疗,而
且还具有重要的抗癌功效[7,9-12]。但有关毛泡桐花
黄酮对小鼠免疫器官超微结构及免疫功能影响的研
究至今尚未见报道。本试验旨在研究毛泡桐花黄酮
对小鼠脾和胸腺超微结构及免疫功能的影响,为进
一步探讨毛泡桐花黄酮能否作为一种绿色饲料添加
剂应用于畜禽生产以提高畜禽免疫力及预防、治疗
畜禽免疫缺陷性疾病等提供形态学依据。
1 材料与方法
1.1 材料
毛泡桐花黄酮样品纯化物:由河南科技大学动
物科技学院中心实验室纯化并制备,纯化物中总黄
酮的含量为98.25%。
1.2 实验动物
120只21日龄昆明种小白鼠(由河南省实验动
物中心提供),饲养于清洁级动物房,自由饮水和进
食,每日12h光照,温度22~25℃。
1.3 仪器与试剂
AG204型电子天平(上海精密科学仪器公司);
SY3200-T型超声波清洗器(上海声源超声波仪器
设备有限公司);澳柯玛 AM-C23CV型微波炉(青
岛澳柯玛股份有限公司);ELX800UV酶标仪(美国
BioTek公司);KYKY-EM3200型数字化扫描电子
显微镜(苏州瑞测精密仪器有限公司)。羧甲基纤维
素钠、戊二醛为国产分析纯。
1.4 试验设计
将120只试验小白鼠预饲1周后,随机分为4
组,每组30只(公母各半)。即空白对照组(A组)、毛
泡桐花黄酮纯化物低、中、高3个剂量组(B、C、D组),
试验组每日15:00灌胃黄酮,B、C、D试验组灌胃剂量
分别为40、120、360mg·(kg·d)-1,具体是毛泡桐花
黄酮溶于0.5%的羧甲基纤维素钠(CMC-Na)配制成
所需浓度的溶液,每只灌胃0.3mL·d-1。对照组
只灌胃等量的溶剂。试验期间小鼠自由采食和饮
水。试验期注意观察动物(如活动情况、进食情况、
精神状态等),每周称1次动物体重。试验期28d
结束时,处死小鼠并解剖取胸腺、脾称重,戊二醛固
定,待制备电镜样品。
1.5 测定指标
在实验处理第28天,经脱臼处死小鼠(每组随
机选取10只),迅速剖开腹腔取出胸腺和脾,除去脂
肪组织后称重,并计算胸腺指数和脾指数
免疫器官指数(g·kg-1)=免疫器官鲜重(g)/
宰前活重(kg)。
1.6 脾淋巴细胞增殖反应测定
处死小鼠(每组随机选取5只)后,参照李媛
等[13]方法制备脾细胞悬浮液,同时调整细胞浓度为
1×109·L-1。于96孔的培养板上每孔分别加入
脾细胞悬浮液100μL,再加入100μL含ConA(Co-
nA终质量浓度5mg·L-1)的RPMI1640培养液,
保持每份3个复孔,37℃、5%CO2 培养箱培养48
h,终止培养前4h每孔加入5g· L-1 MTT 10μL
振荡后继续培养,离心去上清,加酸化异丙醇120
359
畜 牧 兽 医 学 报 44卷
μL,在酶标仪570nm处测A值,结果以3个复孔A
的均值表示。
1.7 腹腔巨噬细胞吞噬能力测定
小鼠处死(每组随机选取5只)后,参照运晨霞
等[14]的方法制备小鼠腹腔巨噬细胞,用RPMI1640
培养液调整细胞浓度至1×109· L-1,采用中性红
法测定小鼠腹腔巨噬细胞的吞噬能力,结果以酶标
仪570nm处吸光度均值表示。
1.8 电镜样本制备
将组织用双面刀片切成边长约3mm×5mm
的小方块。放入盛有2.5%戊二醛的小瓶内,将小
瓶放入盛有300mL水的培养皿中,在微波炉内(火
力20,额定输出功率约150W,下同),固定3min。
具体过程:将装有材料的小瓶放在盛有水的培养皿
中,同时在炉内放一盛900mL水的烧杯用于吸收
微波炉产生的多余热量,防止材料温度升高。固定
后将小瓶中的戊二醛倒出,然后加入缓冲液,在微波
炉内清洗3次,火力40,每次1min。清洗后材料用
30%、50%、70%、80%、90%、100%的乙醇依次梯度
脱水,每次在微波炉内处理1min,火力40。脱水后
将乙醇倒出,加入醋酸异戊脂,然后放在微波炉内处
理,每次1min,火力40。
1.9 数据处理
试验数据采用SAS8.02 软件包方差分析和
Duncan's多重比较,数据用“x±s”表示,P<0.05
表示差异显著,P<0.01表示差异极显著。
2 结 果
2.1 毛泡桐花黄酮对小鼠脾和胸腺脏器指数的影
响
毛泡桐花黄酮对小鼠脾、胸腺脏器指数均具有
一定的影响。各试验组小鼠脾指数,与对照组相比
毛泡桐花黄酮的低剂量组、中剂量组、高剂量组分别
比对照组提高25.04%(P<0.05)、28.46%(P<
0.05)、28.84%(P<0.05),且3个试验组之间差异
不显著(P>0.05);各试验组小鼠胸腺指数,与对照
组相比毛泡桐花黄酮的低剂量组、中剂量组、高剂量
组分别比对照组提高24.45%(P<0.05)、39.16%
(P<0.05)、44.05%(P<0.01),且3个试验组之
间差异不显著(P>0.05),说明毛泡桐花黄酮的低
剂量组、中剂量组、高剂量组对小鼠脾和胸腺具有明
显的刺激增生作用,具体见表1。
表1 毛泡桐花黄酮对小鼠脾、胸腺脏器指数的影响
Table 1 Effect of flavonoids fromPaulownia tomentosa flowers on spleen and thymus index in mice
组别
Groups
脾指数/(mg·g-1)
Spleen index(mg·g-1)
胸腺指数/(mg·g-1)
Thymus index(mg·g-1)
空白对照组Control group[0mg·(kg·d)-1] 5.27±0.23b 2.86±0.32Bb
低剂量组Low dose group[40mg·(kg·d)-1] 6.59±0.34a 3.56±0.35a
中剂量组 Medium dose group[120mg·(kg·d)-1] 6.77±0.26a 3.98±0.26a
高剂量组 High dose group[360mg·(kg·d)-1] 6.79±0.31a 4.12±0.33Aa
同列数据肩标字母相同表示差异不显著(P>0.05),不同小写字母表示差异显著(P<0.05),不同大写字母表示差异极显著
(P<0.01)。下表同
In the same row,values with the same letter superscripts mean no significant difference(P>0.05),while with different smal
letter superscripts mean significant difference(P<0.05),and with different capital letter superscripts mean significant differ-
ence(P<0.01).The same as below
2.2 毛泡桐花黄酮对小鼠脾淋巴细胞增殖反应和
腹腔巨噬细胞吞噬能力的影响
与正常对照组相比,毛泡桐花黄酮各剂量组脾
淋巴细胞增殖反应和腹腔巨噬细胞吞噬能力均提
高,特别是中剂量和高剂量组与对照组相比差异极
显著(P<0.01),具体见表2。
459
6期 王占彬等:毛泡桐花黄酮对小鼠脾和胸腺超微结构及免疫功能的影响
a1、a2、a3.对照组(1 000×、2 500×和5 000×);b1、b2、b3.40mg·(kg·d)-1黄酮组(1 000×、2 500×和5 000
×);c1、c2、c3.120mg·(kg·d)-1黄酮组(1 000×、2 500×和5 000×);d1、d2、d3.360mg·(kg·d)-1黄酮组
(1 000×、2 500×和5 000×);添加毛泡桐花黄酮组小鼠胸腺中成熟淋巴细胞数量均较对照组增多,特别是黄酮
360mg·(kg·d)-1组成熟淋巴细胞数量最多
a1,a2,a3.The control group(1 000×,2 500×and 5 000×);b1,b2,b3.The 40mg·(kg·d)-1 flavonoids
group(1 000×,2 500×and 5 000×);c1,c2,c3.The 120mg·(kg·d)-1 flavonoids group(1 000×,2 500×
and 5 000×);d1,d2,d3.The 360mg·(kg·d)-1 flavonoids group(1 000×,2 500×and 5 000×).Compared
with the control group,the number of mature lymphocytes in mice thymus increased significantly in the three fla-
vonoid-treated groups,especialy in the 360mg·(kg·d)-1 flavonoids group
图1 毛泡桐花黄酮对小鼠胸腺超微结构的影响
Fig.1 Effect of flavonoids from Paulownia tomentosa flowers on the ultrastructure of thymus in mice
559
畜 牧 兽 医 学 报 44卷
A1、A2、A3.对照组(1 000×、2 500×和5 000×);B1、B2、B3.40mg·(kg·d)-1黄酮组(1 000×、2 500×和5 000
×);C1、C2、C3.120mg·(kg·d)-1黄酮组(1 000×、2 500×和5 000×);D1、D2、D3.360mg·(kg·d)-1黄酮组
(1 000×、2 500×和5 000×)。添加毛泡桐花黄酮组小鼠脾脏中成熟淋巴细胞数量均较对照组增多,特别是黄酮
360mg·(kg·d)-1黄酮组成熟淋巴细胞数量最多
A1,A2,A3.The control group(1 000×,2 500×and 5 000×);B1,B2,B3.The 40mg·(kg·d)-1 flavonoids
group(1 000×,2 500×and 5 000×);C1,C2,C3.The 120mg·(kg·d)-1 flavonoids group(1 000×,2 500×
and 5 000×);D1,D2,D3.The 360mg·(kg·d)-1 flavonoids group(1 000×,2 500×and 5 000×).Compared
with the control group,the number of mature lymphocytes in mice spleen increased significantly in the three fla-
vonoid-treated groups,especialy in the 360mg·(kg·d)-1 flavonoids group
图2 毛泡桐花黄酮对小鼠脾超微结构的影响
Fig.2 Effect of flavonoids from Paulownia tomentosa flowers on the ultrastructure of spleen in mice
659
6期 王占彬等:毛泡桐花黄酮对小鼠脾和胸腺超微结构及免疫功能的影响
表2 毛泡桐花黄酮对小鼠脾淋巴细胞增殖及腹腔巨噬细胞吞噬能力的影响
Table 2 Effect of flavonoids fromPaulownia tomentosaflowers on spleen Lymphocyte proliferation and Phagocytosis of peritoneal
macrophages in mice
组别
Groups
脾淋巴细胞增殖
Lymphocyte proliferation
of Spleen(A570nm)
腹腔巨噬细胞吞噬能力
Phagocytosis of peritoneal
macrophages(A570nm)
空白对照组
Control group[0mg·(kg·d)-1]
0.462±0.028B 0.441±0.026b
低剂量组
Low dose group[40mg·(kg·d)-1]
0.471±0.031B 0.503±0.051Aa
中剂量组
Medium dose group[120mg·(kg·d)-1]
0.532±0.047A 0.543±0.039A
高剂量组
High dose group[360mg·(kg·d)-1]
0.594±0.053A 0.565±0.043A
2.3 毛泡桐花黄酮对小鼠胸腺超微结构的影响
小鼠胸腺扫描电镜图片(图1)显示:正常对照
组(a1、a2和a3)小鼠胸腺淋巴细胞呈圆形,细胞数
量相对较少,细胞之间不规则排列,个别细胞与周围
间质脱离呈现出空洞现象,有的淋巴细胞与周围间
质彻底脱离而呈现出一个明显的凹痕。毛泡桐花黄
酮高剂量组(d1、d2和d3)小鼠胸腺T淋巴细胞呈
圆形且数量明显增多,各细胞排列规则,没有细胞与
其周围细胞间质脱离及细胞脱落现象,细胞体积较
对照组也有所增大,说明高剂量组胸腺中成熟淋巴
细胞数量明显比对照组增多,胸腺发育较好。低剂
量组(b1、b2和b3)和中剂量组(c1、c2和c3)小鼠胸
腺中 T淋巴细胞呈圆形,细胞与周围间质吻合较
好,胸腺空洞现象不明显,其所含成熟淋巴细胞数量
介于对照组和高剂量组之间,说明淋巴细胞数量与
黄酮添加剂量呈正相关。
2.4 毛泡桐花黄酮对小鼠脾超微结构的影响
小鼠脾扫描电镜图片(图2)均显示脾之脾小梁
及成熟的淋巴细胞(包括B细胞、T细胞)、少量散
在的巨噬细胞。正常对照组(A1、A2和A3)和毛泡
桐花黄酮低剂量组(B1、B2和B3)小鼠脾淋巴细胞
呈圆形,细胞数量较少,细胞与周围间质有脱离现
象,相邻细胞之间的细胞间质凹凸不平,中剂量
(C1、C2和C3)和高剂量组(D1、D2和D3)脾中淋巴
细胞数量明显增多,特别是高剂量组淋巴细胞数量
最多,有发达的脾小梁及大量成熟的表面有微绒毛
的B细胞,各个细胞及间质组织排列致密,少有细
胞空隙。
3 讨 论
胸腺和脾是机体内的重要免疫器官。其中胸腺
对动物免疫功能的建立及其免疫能力丧失后免疫调
控功能的恢复具有重要作用,胸腺产生的大量胸腺
细胞在T淋巴细胞不足时可作为T淋巴细胞的后
备完成其免疫调控功能,成熟的胸腺细胞还可以随
血液到达机体外周的免疫器官协助B淋巴细胞发
挥体液免疫作用。脾是有机体内体积较大的免疫器
官,对各类瘤细胞、有害微生物等均有一定的过滤作
用,脾还是机体淋巴细胞的居留地和增殖场所,除
此,机体的特异性免疫反应大都发生在脾[15]。一般
认为,免疫器官的质量降低为免疫抑制所致,而免疫
器官的质量增加则为免疫增强的表现[16]。王洪武
等[17]研究表明,淫羊藿黄酮可增加免疫力低下小鼠
的体重,虽对免疫器官脾的质量无明显增加作用,但
能够明显增加脾细胞的绝对数量及每克脾组织中细
胞的相对数量,因而淫羊藿黄酮对免疫低下小鼠的
细胞免疫功能具有显著的恢复作用,同时对体液免
疫有显著增强作用。本研究结果表明,毛泡桐花黄
酮通过促进小鼠胸腺和脾的发育调控小鼠的免疫功
能,这可能与黄酮促进机体代谢,改善钙离子通道有
关[18-20]。毛泡桐花黄酮对小鼠脾和胸腺指数的影响
随着其剂量的增加不断增强,呈现出一定的剂量依
赖性。
胸腺是动物的中枢免疫器官,能分泌多种胸腺
759
畜 牧 兽 医 学 报 44卷
激素参与调节机体的免疫功能,特别是参与机体的
细胞免疫功能,增强机体抗肿瘤、抗感染的能力,胸
腺还是T细胞发育分化和成熟的场所,近年来的研
究表明,胸腺中初始T细胞的数量能代表胸腺中T
细胞的增殖潜能,其功能状态直接决定着机体的细
胞免疫功能,并影响机体的体液免疫功能[21]。本试
验中扫描电镜显示,随着毛泡桐花黄酮剂量的加大,
胸腺中成熟淋巴细胞数量逐渐增加,成熟淋巴细胞
的生理状态和细胞内细胞器的数量和形态发生改
变,进而调控机体的免疫功能。
脾作为机体的重要免疫器官,在机体的各种免
疫应答中发挥着重要作用。脾的实质包括红髓、白
髓及边缘区。白髓中淋巴细胞尤为密集,脾小体作
为白髓的主要结构单位,富含大量的B淋巴细胞,
而动脉周围淋巴鞘则密集有大量的 T淋巴细胞。
红髓中白细胞较多。在脾的边缘区中富含大量巨噬
细胞及少量B淋巴细胞、T淋巴细胞,当有机体受
到抗原刺激后,抗原经巨噬细胞加工处理后,在 T
细胞的协同作用下,脾小体中B型淋巴细胞增殖产
生大量的效应B细胞即浆细胞,分泌抗体参与体液
免疫。本试验脾淋巴细胞增殖反应、腹腔巨噬细胞
吞噬能力及扫描电镜结果表明,不同剂量的毛泡桐
花黄酮均能提高脾中T淋巴细胞的增殖反应及腹
腔巨噬细胞的吞噬能力、增加成熟淋巴细胞的数量,
特别是高剂量组效应更加明显,这说明毛泡桐花黄
酮的添加量与脾淋巴细胞增殖反应、腹腔巨噬细胞
吞噬能力及成熟淋巴细胞的数量呈正相关,试验结
果显示,毛泡桐花黄酮可能通过不同途径影响脾超
微结构和免疫功能进而改善小鼠的免疫功能。
淋巴细胞增殖反应被认为是反映机体免疫功能
的重要检测指标之一[22]。巨噬细胞作为机体天然
免疫的组成部分,不仅对机体的屏障机能起着重要
作用,并且参与免疫应答,还可产生多种生物活性物
质,如IL-2、TNF-α等。在产生特异性细胞免疫和
体液免疫之前发挥防御作用。毛泡桐花黄酮可提高
脾淋巴细胞增殖反应和腹腔巨噬细胞吞噬能力并提
高免疫器官质量、影响免疫器官中成熟淋巴细胞数
量,提示,不同剂量的毛泡桐花黄酮不仅影响免疫器
官脾、胸腺的超微结构而且对小鼠的免疫功能也具
有一定的调控作用。
参考文献:
[1] 高锦明,张鞍灵,王株清.黄酮类化合物的分布及开发
利用[J].西北林学院学报,2000,15(1):69-74.
[2] AGATI G,AZZARELLO E,POLLASTRI S,et al.
Flavonoids as antioxidants in plants:Location and
functional significance[J].Plant Sci,2012,196:67-
76.
[3] 王亚菊,赵茹茜,陈 杰.大豆黄酮的营养生理功能与
应用[J].中国饲料,2002(1):28-29.
[4] WANG W N,YANG X B,LIU H Z,et a1.Effect of
Oenanthe javanica flavone on human and duck hepati-
tis B virus infection[J].Acta Pharmacol Sin,2005,
26(5):587-592.
[5] TORMAKANGAS L,VUORELA P,SAARIO E,et
a1.In vivo treatment of acute Chlamydia pneumoniae
infection with the flavonoids quercetin and luteolin
and an alkyl galate,octyl galate,in a mouse model
[J].Biochem Pharmacol,2005,70(8):1222-1230.
[6] SEZIK E,ASLAN M,YESILADA E,et a1.Hypogly-
eaemic activity of Gentiana olivieri and isolation of the
active constituent through bioassay-directed fractiona-
tion techniques[J].Life Sci,2005,76(11):1223-
1238.
[7] ROBOTHAM S A,BRODBELT J S.Regioselectivi-
ty of human UDP-glucuronosyltransferase isozymes in
flavonoid biotransformation by metal complexation
and tandem mass spectrometry[J].Biochem Phar-
macol,2011,82:1764-1770.
[8] 王占彬,赵德明,刘 红,等.毛泡桐皮黄酮提取物抗
氧化作用研究[J].中国饲料,2012(6):22-25.
[9] 杜 欣,师彦平,李志刚,等.毛泡桐花中黄酮类成分
的分离与结构确定[J].中草药,2004,35(3):245-
247.
[10] 王宝华,高增平,江佩芬,等.鲜泡桐花与阴干泡桐花
化学成分的对比研究[J].北京中医药大学学报,
2003,26(3):56-57.
[11] 付明哲,袁福汉,卢兴民.泡桐黄酮抗菌作用及对免疫
机能的影响[J].中国兽药杂志,1999,25(5):46-47.
[12] CAO J G,XIA X,CHEN X F,et al.Characteriza-
tion of flavonoids from Dryopteris erythrosora and e-
valuation of their antioxidant,anticancer and acetyl-
cholinesterase inhibition activities [J].Food Chem
Toxicol,2013,51:242-250.
[13] 李 媛,宋媛媛,张洪泉.松果菊苷对衰老小鼠免疫功
能和线粒体DNA相对含量的影响[J].中国药理学通
报,2010,26(6):810-813.
[14] 运晨霞,余晓玲,吴 光,等.三叶黄合剂对小鼠细胞
免疫功能影响的实验研究[J].时珍国医国药,2009,
20(5):1155-1157.
859
6期 王占彬等:毛泡桐花黄酮对小鼠脾和胸腺超微结构及免疫功能的影响
[15] 杨汉春.动物免疫学[M].北京:中国农业大学出版
社,2003.
[16] GROSSMAN C J.Interaction between the gonadal
steroids and the immune system[J].Science,1985,
227:257-261.
[17] 王洪武,贾亮亮,徐媛青,等.淫羊藿总黄酮对环磷酰
胺致免疫低下小鼠的免疫调节作用[J].天津医药,
2010,38(12):1068-1071.
[18] TARAHOVSKY Y S,YAGOLNIK E A,MUZA-
FAROV E N,et al.Calcium-dependent aggregation
and fusion of phosphatidylcholine liposomes induced
by complexes of flavonoids with divalent iron[J].
Biochim Biophys Acta,2012,1818:695-702.
[19] WEST M E,MAUER L J.Development of an inte-
grated approach for the stability testing of flavonoids
and ascorbic acid in powders[J].Food Chem,2011,
129(1):51-58.
[20] DE SOUZA DOS SANTOS M C,GON ALVES C
F,VAISMAN M,et al.Impact of flavonoids on thy-
roid function[J].Food Chem Toxicol,2011,49
(10):2495-2502.
[21] MLADINICH K M,PIASKOWSKI S M,RUDERS-
DORF R,et al.Dengue virus-specific CD4+and CD8
+ T lymphocytes target NS1,NS3and NS5in infec-
ted Indian rhesus macaques[J].Immunogenetics,
2012,64:111-121.
[22] 杨兴海,吴 杰,郭莲军.资木瓜皂苷提取工艺的优化
及对大鼠佐剂性关节炎抗炎免疫机制的研究[J].华
西药学杂志,2010,25(5):547-549.
(编辑 白永平)
959