全 文 ：食品研究与开发 2006.Vol.27.NO.10
基金项目:广东省农业攻关项目(2004B20401015)
作者简介:李升锋(1976-),男,助理研究员,研究方向:果蔬深加工。
玫瑰茄(HibiscussabdarifaL.),属锦葵科木槿属一年
生草本植物,株高1m~2m,茎秆、叶脉、花萼为紫红色。
玫瑰茄主要分布于印度、东南亚、非洲和南美等国家和
地区,目前,我国云南、福建、两广等地已大面积种植[1]。
1 化学成分
玫瑰茄花萼的化学组成主要有有机酸、碳水化合
物、粗蛋白、粗脂肪、花青素、多酚和类黄酮类物质。玫
瑰茄花萼有机酸含量高达15%~30%,主要有草酸、酒
石酸、苹果酸、琥珀酸、原儿茶酸、柠檬酸、丙二酸、木槿
酸、Hibiscin其中草酸和琥珀酸占总酸含量的 75%以
上。玫瑰茄花萼含有3.3%的碳水化合物,其中葡萄糖
含量最高,其次是果糖和蔗糖,含有的糖类还有乳糖、
戊糖、粘液质、不同种类的酸性和中性多糖。玫瑰茄花
萼中还含有丰富的多酚。花青素含量可以高达2%,主
要是飞燕草素(Delphinidin)和矢车菊素(Cyanidin)的糖
甙。玫瑰茄花萼还含有一些类黄酮类物质,如
李升锋,刘学铭,陈智毅,徐玉娟,张友胜,吴继军
(广东省农业科学院蚕业与农产品加工研究所 广东省农产品加工公共实验室,广东 广州 510610)
玫瑰茄花萼营养和药理作用研究进展
摘 要:对玫瑰茄花萼化学成分和药理作用进行了综述。玫瑰茄花萼含有花青素、多酚、原儿茶酸和类黄酮类物质,
具有抗氧化、抗肿瘤、保护心血管、护肝、降血压、通便和利尿等药理作用。
关键词:玫瑰茄;花萼;营养成分;药理作用
RECENTADVANCESINTHESTUDIESONCHEMICALCOMPOSITIONANDPHARMACOLOGICAL
FUNCTIONSOFHIBISCUSSABDARIFFAL.CALYX
LISheng-feng,LIUXue-ming,CHENZhi-yi,XUYu-juan,ZHANGYou-sheng,WUJi-jun
(TheSericulture&FarmProduceProcessingResearchInstituteofGuangdongAcademyofAgriculturalSciences,
GuangdongOpenAccessLaboratoryofAgriculturalProductProcessing,Guangzhou510610,Guangdong,China)
Abstract:ChemicalcompositionandpharmacologicalfuncitonsofHibiscussabdarifaL.calyxwasintroduced
detailedly.HibiscussabdarifaL.calyxconsistedofanthocyanins,polyphenols,protocatechuicacidand
flavonoids,andpossessedantioxidative,antitumour,cardiovascular-protection,hepatprotective,antihyperten-
sive,catharticanddiureticefects.
Keywords:HibiscussabdarifaL;calyx;chemicalcomposition;pharmacologicalfunction
参考文献:
[1] 国家药典委员会.中华人民共和国药典(一部)[M].北京:化学工
业出版社,2005:233~234.
[2] 郑虎占,董泽宏,佘靖.中药现代研究与应用(第5卷)[M].北京:学
苑出版社,1998:4308.
[3]TArao,MUdayama,JKinjo,TNohara.Preventiveefectsofsaponins
fromthePuerarialobatarootoninvitroimmunologicalliverinjuryof
ratprimaryhepatocytecultures[J].PlantaMed,1998,64(5):413~416.
[4] SuppressionofalcoholintakeafteradministrationoftheChinese
herbalmedicine,NPI-028,anditsderivatives[J].AlcoholClinExp
Res.1996,20(2):221~227.
[5] 潘见,陈强,等.葛根黄酮浸取工艺优化研究[J].农业工程学报,
1998,12(4):230~233.
[6] 徐任生,陈仲良.中草药有效成分提取与分离[M].上海:上海科学
技术出版社,1983,7(1):22~42.
[7] 沙世炎.中草药有效成分分析法(上册)[M].北京:人民卫生出版
社,1982:216.
[8] 闵庆旺,谭生建,等.薄层扫描法测定葛根芩连片中葛根素含量
[J].解放军药学学报,2001,17(1):21~22.
[9] 黄兆龙,郭俊明,等.葛根有效成分的提取和测定[J].医药导报,
2003,22(5):333~334.
收稿日期:2006-07-20
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Gossypretin、Hibiscetin、Quercetin、Hibiscitrin等。
2 玫瑰茄花萼的药理作用
传统医学认为,玫瑰茄花萼具有清热、解渴、止咳
和降血压作用,在埃及,广泛用于治疗心脏和神经的疾
病;在印度,作为利尿、抗坏血病等药物;在塞内加尔,
玫瑰茄被推荐为杀菌剂、驱肠虫剂和降血压剂[2]。近年
来国内外对玫瑰茄花萼的保健功能和药理作用进行了
广泛深入的研究和报道,例如抗氧化、抗肿瘤、降血压、
保护肝脏和保护心血管等作用。
2.1 抗氧化
Duh等[3]对玫瑰茄花萼的抗氧化活性进行了研究,
研究表明在亚油酸和脂质模型试验中,玫瑰茄花萼的
水提物对卵磷脂过氧化反应抑制率为62.8%,对亚油
酸过氧化反应的抑制率为90%,表现出显著的抗氧化
活性。Tseng等[4]研究了玫瑰茄干花萼乙醇粗提物的3
个萃取部:乙酸乙酯萃取部(HS-E)、氯仿萃取部(HS-
C)和剩余部(HS-R)的抗氧化活性,发现HS-E具有最
强的清除DPPH自由基的作用,HS-C抑制黄嘌呤氧化
酶活性的能力最强。Tsai等[5]研究了玫瑰茄花萼中花青
素的抗氧化能力,显示花青素是玫瑰茄的主要抗氧化
活性成分,它的抗氧化能力占整个玫瑰茄花萼提取物
抗氧化能力的51%。HirunpanichV等[6]体外抗氧化试
验表明,玫瑰茄花萼水提物具有很强的抑制Cu2+导致
小鼠LDL氧化的作用。Lee等[7]也报道了玫瑰茄原儿茶
酸具有很强的抑制Cu2+导致小鼠LDL氧化的作用。Tee
等[8]报告了玫瑰茄花萼甲醇提取物具有比 BHA和 β-
胡萝卜素更强的抗氧化性。
2.2 抗肿瘤
玫瑰茄中含有一种酚酸——原儿茶酸,具有非常
好的抗癌效果,Tseng等 [9]发现玫瑰茄的原儿茶酸
(PCA)对小鼠皮肤肿瘤具有很好的抑制效果。研发发
现,玫瑰茄原儿茶酸对 TPA(12-O-十四烷酰佛波醇-
13-乙酸酯)诱导的皮肤癌具有抑制作用,经过PCA处
理的小鼠与仅仅用苯并芘处理 CD-1雌小鼠相比,皮
肤肿瘤的发生率显著降低,小鼠皮肤肿瘤的数量也较
少。Tseng等[10]报道了玫瑰茄原儿茶酸(PCA)具有促进
血癌细胞死亡的作用,研究发现,PCA促进早幼粒白血
病HL-60细胞凋亡成量效和时间依赖关系,PCA处理
导致了HL-60细胞发生核小体间DNA发生破裂和形
态发生变化的凋谢死亡特征。Chang等[11]报告了玫瑰茄
花萼的花青素(HAs)能促进血癌细胞HL-60凋谢死
亡。T.Chewonarin等[12]研究了玫瑰茄乙醇浸提物对结
肠致癌化学物质氧化偶氮甲烷(AOM)和 2-氨基-1-
甲基-6-苯咪唑并[4,5-B]吡啶(PhIP)在 F344大鼠体
内诱导产生肠癌病灶的抑制效果,发现服用玫瑰茄浸
提物的F344大鼠,与仅仅服用AOM或PhIP相比,肠
癌病灶数显著的减少。Lin等[13]发现玫瑰茄花多酚提取
物(HPE)能促进8种细胞死亡,在这其中HPE对胃癌
细胞影响最大,0.95mg/mLHPE可抑制胃癌细胞生长
的50%。
原儿茶酸还能抑制不同的化学致癌物质的致癌作
用,HiroseY等[14]报道了原儿茶酸具有抑制化学致癌物
氮-丁基-氮(4-羟丁基)亚硝酸胺(N-butyl-N-(4-hy-
droxybutyl)nitrosamine,BBN)致膀胱癌的作用,TanakaT
等报道了抑制二乙基亚硝酸胺(diethylnitrosamine)致
肝癌的作用[15],抑制 4-硝基奎宁(4-nitroquinoline-1-
oxide)致口腔癌作用[16],抑制氮-甲基-氮-硝基尿素
(N-methyl-N-nitrosourea)致胃癌作用[17],KawanoriTb
报道了抑制AOM致肠癌作用[18]。
2.3 护肝
很多研究报道了玫瑰茄花萼具有显著的抑制不同
化学物质的致肝损伤作用。I.F.Usoh等[19]报告了玫瑰茄
干花萼 80%乙醇提取物对亚砷酸钠(SA)导致小鼠肝
损伤具有显著的抑制作用。AminA等[20]报道了玫瑰茄
花萼水提物抑制硫唑嘌呤(Azathioprine)导致小鼠肝损
伤的作用,服用玫瑰茄花萼水提物不仅可以防止硫唑
嘌呤导致肝坏死,而且还极大程度上保持了肝功能的
正常。FOObi等[21]、Liu等[22]和D.Dahiru等[23]分别报道
了玫瑰茄花萼提取物具有抑制 CCl4导致的小鼠、Wis-
tar大鼠和Wister白化病大鼠肝损伤的作用。Tseng等[4]
报道玫瑰茄花萼抑制叔丁基过氧化氢(t-BHP)导致的
肝损伤作用,通过LDH和MDA水平的检测评价,发现
玫瑰茄花萼的乙酸乙酯萃取部和氯仿萃取部和 HS-C
具有保护小鼠肝脏作用。B.H.Ali等[24]对玫瑰茄水提物
对“扑热息痛”致小鼠肝毒性防护进行了研究,发现连
续喝4个星期的水提液显著改善了小鼠的肝功能,
不少学者还对玫瑰茄花色苷的保护肝脏的作用进
行了研究。B.H.Ali等[24]还对花色苷(HAs)抑制“扑热
息痛”诱导的小鼠肝毒性作用进行了研究,试验结果显
示200mg/kg剂量HAs使小鼠肝组织学和生物化学的
肝损伤恢复正常状态。Wang等[25]报道了玫瑰茄花青素
(HAs)具有抑制 t-BHP导致的小鼠肝中毒作用,研究
表明通过检测LDH、MDA、ALT和AST水平,服用玫瑰
茄花青素能显著的抑制t-BHP导致的肝损伤,组织病
理学评价显示HAs还减少了t-BHP导致包括发炎、白
细胞渗出、肝细胞坏死等肝损伤的发生率。
另外,对玫瑰茄中原儿茶酸的保护肝脏的作用也
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进行了研究和报道。Liu等[26]和 Tseng[27]等研究发现玫
瑰茄花萼提取的原儿茶酸(PCA)具有抑制t-BHP致小
鼠肝损伤的作用。Lin[28]等发现玫瑰茄原儿茶酸具有抑
制脂多糖(LPS)导致小鼠肝损伤的效果,研究发现,喂
食PCA能减少肝脏中的LPS诱导的iNOS酶和血清中
亚硝酸盐的总量上升,以及能显著降低血清中LSP诱
导的ALT和AST的水平升高。小鼠肝脏的组织病理学
评价也显示服用 PCA降低了 LPS诱导的包括中性粒
细胞浸润、充血、肝细胞肿胀等肝损伤的发生率。
2.4 降血压
动物试验表明,玫瑰茄花萼提取物具有降血压的
效果[29~30]。Adegunloye等[29]报道了连续服用玫瑰茄花萼
提取物21d后,先天性高血压实验鼠和正常血压试验
鼠血压都有下降,其中先天性高血压实验鼠血压降低
了 11.7%。正常血压实验鼠血压也降低了 5%~8%。
Onyenekwe等[30]报道了玫瑰茄花萼的提取物对自发性
高血压小鼠和 Wistar-Kyoto大鼠抗高血压的效果,研
究发现给予剂量 500和 1000mg/kg的玫瑰茄花萼浸
提物能够显著的降低自发性高血压小鼠和正常血压的
Wistar-Kyoto大鼠的动脉收缩压和舒张压。Odigie等[31]
对玫瑰茄水提物对 I2K-1C肾血管性高血压小鼠降血
压作用进行了研究,服用8周的I2K-1C肾血管性高血
压小鼠与没有服用玫瑰茄水提物的相比,血压降低了
20%。
人体试验同样表明,玫瑰茄花萼具有降血压的作
用,M.HajiFaraji等[32]对 54名中度先天性高血压患者
进行了调查研究,统计发现服用了玫瑰茄花茶的患者
12d后,与第一天相比,高血压降低了11.2%,停止服用
3d后,高血压又上升了5.6%。Herera-Arelano等[33]对
90名高血压患者进行研究,发现每天饮用10g玫瑰茄
干花萼水提取液与每天服用2次25mg的降血压药物
(captopril),效果一样好。
2.5 降胆固醇、保护心血管
Chen等[34]对玫瑰茄花萼提取物(HSE)抑制大白兔
动脉粥样硬化作用进行了研究,研究发现经过连续 10
周,服用高胆固醇加玫瑰茄提取物膳食组的大白兔的
血清中甘油三酸酯、胆固醇、低密度脂蛋白胆固醇水平
都比服用高胆固醇膳食组低,服用HSE的大白兔显著
的减轻了动脉重度粥样硬化,组织病理学表明在大白
兔血管,HSE减少了泡沫细胞生成和抑制平滑肌细胞
移动和钙化,这表明HSE具有降血脂和抑制动脉粥样
硬化的活性。Chen等[35]还研究发现服用HSE小鼠能减
少高果糖膳食组血清甘油三酸酯和高胆固醇膳食组胆
固醇水平,抑制低密度脂蛋白氧化,预防高果糖膳食组
和高胆固醇膳食组小鼠各种高脂血症的发生。
VilasineeHirunpanich等[36]研究表明,连续6周,剂
量 500和 1000mg/kg的 HSE和胆固醇一起服用,高
胆固醇血症鼠血清中的胆固醇降低了 22%和 26%,
血清的甘油三酸酯水平降低了33%和 28%,血清的
LDL水平降低了22%和32%。连续6周服用250、500
和 1000mg/kgHSE,显著降低了 TBARs水平(硫代巴
比妥酸反应产物)。
2.6 通便和利尿
在非洲许多地区,玫瑰茄花萼用来辅助治疗便秘。
A.K.Haruna[37]对玫瑰茄新鲜花萼的水提物的通便功能
进行了研究,喂食剂量 800mg/kg的玫瑰茄花萼水提
物能导致小鼠湿粪便的显著增加,玫瑰茄花萼水提物
的通便功能可能与其含有的类皂角苷化合物有关。
Mojiminiyi等[38]和CNAguwa等[39]证实了玫瑰茄花萼具
有利尿功能。
2.7 其它
AdetutuA等[40]发现玫瑰茄花萼具有抗致畸功能,
发现玫瑰茄提取物对亚砷酸钠促使小鼠骨髓里的多染
性红血球形成微核具有非常显著的抑制作用。Dafalah
andAl-Mustafa[41]报道了玫瑰茄花萼水提物具有镇痛和
退热的作用。
3 毒性
研究还发现,玫瑰茄花萼提取物具有低毒性,在小
鼠试验中表明,LD50量大于5000mg/kg[30]。Akindahunsi
等[42]对Wistar白化病大鼠(150g~200g)喂食玫瑰茄水甲
醇提取物发现,每天剂量150mg/kg~180mg/kg是安全
的,而剂量更高可能会对肝造成伤害。Orisakwe等[43]报
道了服用玫瑰茄花萼的提取物剂量1.15、2.3、4.6g/kg的
小鼠与没有服用的小鼠相比,体重和肾重明显下降,
这表明服用较高剂量玫瑰茄花萼提取物会对肾脏造
成毒性伤害。
参考文献:
[1] 章建浩,陈松,刘海斌,等.食用玫瑰茄红色素的稳定性研究[J].食
品科技,2001,1:47~48.
[2] 张育松,陈洪德,苏孝勇.玫瑰茄茶[J].福建茶叶,2001,1:21~22.
[3]Pin-DerDuh,Gow-ChinYen.Antioxidativeactivityofthreeherbal
waterextracts[J].FoodChemistry,1997,60(4):639~645.
[4] T.-H.TSENG,E.-S.KAO,C.-Y.CHU,F.-P.CHOU,H.-W.LIN
WUandC.-J.WANG.ProtectiveEfectsofDriedFlowerExtractsof
HibiscussabdarifaL.againstOxidative,StressinRatPrimaryHepa-
tocytes[J].FoodandChemicalToxicology,1997,35:1159~1164.
[5] Pi-JenTsai,JohnMcIntosh,PhilipPearce,BlakeCamden,BrianR.
Jordan.AnthocyaninandantioxidantcapacityinRosele(Hibiscus
营养健康
131
食品研究与开发2006.Vol.27.NO.10
SabdarifaL.)extract[J].FoodResearchInternational,2002,35:351~
356.
[6]HirunpanichV,UtaipatA,MoralesNP,BunyapraphatsaraN,SatoH,
HerunsaleeA,SuthisisangC.Antioxidantefectsofaqueousextracts
fromdriedcalyxofHibiscussabdarifaLinn.(Rosele)invitrousing
ratlow-densitylipoprotein(LDL)[J].BiolPharmBul.,2005,28(3):
481~484.
[7]Miao-JaneLee,Fen-PiChou,Tsui-HwaTseng,Ming-HsunHsieh,
Ming-ChengLin,andChau-JongWang.HibiscusProtocatechuic
AcidorEsculetinCanInhibitOxidativeLDLInducedbyEitherCop-
perIonorNitricOxideDonor[J].J.Agric.FoodChem.,2002,50(7):
2130~2136.
[8]TeeP-L,etal.Antioxidativepropertiesofroseles(Hibiscussabdar-
ifaL.)inlinoleicacidmodelsystem[J].Nutrition&FoodScience,
2002,32(1):17~20.
[9]TsengTH,HsuJD,LoMH,etal.InhibitoryefectofHibiscusproto-
catechuicacidontumorpromotioninmouseskin[J].CancerLet.,
1998,126:199~207.
[10]Tsui-HwaTseng,Ta-WeiKao,Chia-YihChu,etal.Inductionof
apoptosisbyhibiscusprotocatechuicacidinhumanleukemiacels
viareductionofretinoblastoma(RB)phosphorylationandBcl-2ex-
pression[J].BiochemPharmacol,2000,60:307~315.
[11]Yun-chingChang,Hui-PeiHuang,Jeng-DongHsu,etal.Hibiscus
anthocyaninsrichextract-inducedapoptoticceldeathinhuman
promyelocyticleukemiacels[J].ToxicolApplPharmacol,2005,205:
201~212.
[12]ChewonarinT,KinouchiT,KataokaK,etal.Efectsofrosele(Hi-
biscussabdarifaLinn.),aThaimedicinalplant,onthemutagenicity
ofvariousknownmutagensinSalmonelatyphimuriumandonfor-
mationofaberantcryptfociinducedbythecoloncarcinogensa-
zoxymethaneand2-amino-1-methyl-6-phenylimidazo[4,5-b]pyri-
dineinF344rats[J].FoodChemToxicol,1999,37:591~601.
[13]Hui-HsuanLin,Hui-PeiHuang,Chi-ChouHuang,Jing-Hsien
Chen,Chau-JongWang.Hibiscuspolyphenol-richextractinduces
apoptosisinhumangastriccarcinomacelsviap53phosphorylation
andp38MAPK/FasLcascadepathway[J].MolCarcinog,2005,43:86~
99.
[14]HiroseY,TanakaT,KawamoriT,OhnishiM,MakitaH,MoriH,
SatohK,HaraA.Chemopreventionofurinarybladdercarcinogenesis
bythenaturalphenoliccompoundprotocatechuicacidinrats[J].
Carcinogenesis,1995,16:2337~2342.
[15]TanakaT,KojimaT,KawamoriT,YoshimiN,MoriH.Chemopre-
ventionofdiethylnitrosamine-inducedhepatocarcinogenesisbya
simplephenolicacid,protocatechuicacidinrats[J].CancerRes,
1993,53:2775~2779.
[16]TanakaT,KawamoriT,OhnishiM,OkamotoK,MoriH,HaraA.
Chemopreventionof4-nitroquinoline-1-oxide-inducedoralcar-
cinogenesisbydietaryprotocatechuicacidduringinitiationand
post-initiationphase[J].CancerRes,1994,54:2359~2365.
[17]TanakaT,KojimaT,KawamoriT,MoriH.Chemopreventionofdi-
gestiveorganscarcinogenesisbynaturalproductprotocatechuicacid
[J].Cancer,1995,75:1433~1439.
[18]KawanoriT,TanakaT,KojimaT,SuzuiM,OhnishiM,MoriH.Sup-
pressionofazoxymethane-inducedratcolonaberantcryptfociby
dietaryprotocatechuicacid[J].JpnJCancerRes,1994,54:2359~
2365.
[19]I.F.Usoh,E.J.Akpan,E.O.EtimandE.O.Farombi.Antioxidant
ActionsofDriedFlowerExtractsofHibiscussabdarifaL.OnSodi-
umArsenite-InducedOxidativeStressinRats[J].PakistanJournal
ofNutrition,2005,4(3):135~141.
[20]AminA,HamzaAA.HepatoprotectiveefectsofHibiscus,Rosmari-
nusandSalviaonazathioprine-inducedtoxicityinrats[J].LifeSci.,
2005,77:266~278.
[21]FOObi,OCChiazo,NFEzeani,OSOmorodion,JBFakoya.Protec-
tiveefectsofDriedFlowerExtractofHibiscussabdarifaL.onCar-
bonTetrachloride-inducedLiverInjuryintheRat[J].GlobalJournal
ofPureandAppliedSciences,2005,11(2):249~251.
[22]LiuJY,ChenCC,WangWH,HsuJD,YangMY,WangCJ.Thepro-
tectiveefectsofHibiscussabdarifaextractonCCl4-inducedliver
fibrosisinrats[J].FoodChemToxicol.,2006,44(3):336~343.
[23]D.Dahiru,O.J.ObiandH.Umaru.EfectofHibiscussabdarifaca-
lyxextractoncarbontetrachlorideinducedliverdamage[J].
Biokemistri,2003,15(1):27~33.
[24]B.H.Ali,H.M.Mousa,S.El-Mougy.Theefectofawaterextract
andanthocyaninsofhibiscussabdarifaL.onparacetamol-induced
hepatoxicityinrats[J].Phytother.Res.,2003,17:56~59.
[25]Chau-jongWang,Jin-mingWang,Wea-lungLin,Chia-yinChu,
Fin-piChouandTsui-hwaTseng,ProtectiveefectofHibiscusan-
thocyaninsagainsttert-butylhydroperoxide-inducedhepatictoxicity
inrats[J].FoodChemToxicol,2000,38:411~416.
[26]LiuCL,WangJM,ChuCY,ChengMC,TsengTH.Invivoprotective
efectofprotocatechuicacidontert-butylhydroperoxide-induced
rathepatotoxicity[J].FoodChemToxicol,2002,40(5):635~641.
[27]Tsui-HwaTseng,Chau-JongWang,Erl-ShyhKao,Hia-YihChu.Hi-
biscusprotocatechuicacidprotectsagainstoxidativedamagein-
ducedbytert-butylhydroperoxideinratprimaryhepatocytes.
Chemico-BiologicalInteraxtions[J].1996,101:137~148.
[28]Wea-LinLin,Yu-JinHsieh,Fen-PiChou,Chau-JongWang,M.-T.
Cheng,Tsui-HwaTseng.Hibiscusprotocatechuicacidinhibits
lipopolysaccharide-inducedrathepaticdamage[J].Arch.Toxicol,,
2003,77:42~47.
[29]AdegunloyeBJ.OmoniyiJO.OwolabiOA.etal.Mechanismsofthe
bloodpressureloweringefectofthecalyxextractofHibiscussab-
darifainrats[J].AfrJMedMedSci.,1996,25:235~238.
[30]OnyenekwePC.AjaniEO.AmehDA.etal.Antihypertensiveefect
ofrosele(Hibiscussabdarifa)calyxinfusioninspontaneouslyhy-
pertensiveratsandacomparisonofitstoxicitywiththatinWistar
rats[J].CelBiochemFunct.,1999,17:199~206.
[31]I.P.Odigie,R.R.Etarh,S.A.Adigun.Chronicadministrationof
aqueousextractofHibiscussabdarifaatenuateshypertensionand
reversescardiachypertrophyin2K-1Chypertensiverats[J].Journal
ofEthnopharmacology,2003,86:181~185.
营养健康
132
食品研究与开发 2006.Vol.27.NO.10
RESEARCHONSCAVENGINGEFFECTOFTHEHYDROLYSATESFROMMUSSELMEATPROTEIN
ONHYDROXYLRADICAL
QIUChun-jiang1,CHENYu1,LIULi1,XUEChang-hu2
作者简介:邱春江(1971-),男(汉),讲师,研究方向:水产品加工与贮藏。
[32]HajiFarajiM.HajiTarkhaniA.Theefectofsourtea(Hibiscussab-
darifa)onessentialhypertension[J].JEthnopharmacol,1999,65:
231~236.
[33]Herera-ArelanoA.Flores-RomeroS.Chavez-SotoMA.etal.Ef-
fectivenessandtolerabilityofastandardizedextractfromHibiscus
sabdarifainpatientswithmildtomoderatehypertension:acon-
troledandrandomizedclinicaltrial[J].Phytomedicine,2004,11:
375~382.
[34]Chang-CheChen,Jeng-DongHsu,San-FaWang,Huei-Ching
Chiang,Mon-YuanYang,Erl-ShyhKao,Yung-ChyanHo,and
Chau-JongWang.Hibiscussabdarifaextractinhibitsthedevelop-
mentofatherosclerosisincholesterol-fedrabbits[J].JAgricFood
Chem.,2003,51:5472~5477.
[35]Chang-CheChen,Fen-PiChou,Yuang-ChyanHo,Wea-LungLin,
Chin-PinChou,Erl-ShyhHao,An-ChungHuangandChau-Jong
Wang.InhibitoryefectsofHibiscussabdarifaLextractonlow-den-
sitylipoproteinoxidationandanti-hyperlipidemiainfructose-fed
andcholesterol-fedrats[J].JSciFoodAgric,2004,84:1989~1996.
[36]VilasineeHirunpanich,AnochaUtaipat,NoppawanPhumalaMorales,
NuntavanBunyapraphatsara,HitoshiSato,AngkanaHerunsale,
ChuthamaneeSuthisisang.Hypocholesterolemicandantioxidant
efectsofaqueousextractsfromthedriedcalyxofHibiscussab-
darifaL.inhypercholesterolemicrats[J].JournalofEthnophar-
macology,2006,103:252~260.
[37]A.K.Haruna.CatharticActivityofSoborodo:TheAqueousExtract
ofCalyxofHibiscussabdarifaL. [J].PhytotherapyResearch,
1997,11:307~308.
[38]Mojiminiyi,F.B.O.,Adegunloye,B.J.,Egbeniyi,Y.A.,Okolo,R.U.
Aninvestigationofthediureticefectofanaqueousextractofthe
petalsofHibiscussabdarifa[J].JournalofMedicineandMedical
Sciences,2000,2,77~80.
[39]CNAguwa,OONdu,Nsukka.Nigeria,CCNwanma,POUdeogaranya,
NOAkwara.VerificationofthefolkloricdiureticclaimofHibiscus
sabdarifaL.petalextract[J].Nig.J.Pharm.Res.,2004,3(1):1~8.
[40]AdetutuA,OdunolaOA,OwoadeOA,etal.Anticlastogenicefects
ofHibiscussabdarifafruitsagainstsodiumarsenite-inducedmi-
cronucleiformationinerythrocytesinmousebonemarow[J].Phy-
totherRes.,2004,18:862~864.
[41]DafalaAA,al-mustafaZ.Investigationoftheantinflammatoryac-
tionofAcacianiloticaandHibiscussabdarifa[J].AmerJChinese
Med,1996,24:263~269.
[42]A.A.Akindahunsi,M.T.Olaleye.Toxicologicalinvestigationof
aqueous-methanolicextractofthecalycesofHibiscussabdarifaL
[J].JournalofEthnopharmacology,2003,89:161~164.
[43]O.E.Orisakwe,D.C.Hussaini,V.N.Orish,E.Obi,O.O.Udemezue.
NephrotoxicefectsofHibiscussabdarifacalyxinrats[J].European
BuletinofDrugResearch.,2003,11(4):99~103.
收稿日期:2006-07-11
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邱春江 1,陈瑜 1,刘利 1,薛长湖 2
(1.淮海工学院江苏省海洋生物技术重点建设实验室,江苏 连云港 222005;
2.中国海洋大学食品科学系,山东 青岛266003)
贻贝酶解物对羟自由基清除作用的试验研究
摘 要:通过测定贻贝酶解物对离体实验系统(Fenton体系)产生的羟自由基的清除效果,从胰蛋白酶、木瓜蛋白酶、
胃蛋白酶3种酶中筛选出木瓜蛋白酶和胰蛋白酶作为酶解贻贝制备具有较高清除羟自由基活性酶解物的理想水解
酶;并通过正交实验 L9(34)对 2种酶的水解条件进行优化。结果表明木瓜蛋白酶在温度 60℃、酶解时间 15min、
pH7.5、酶质量分数 1.00%的水解条件下,酶解物对羟自由基的清除效果最佳;胰蛋白酶在温度 45℃、酶解时间
35min、pH8.5、酶质量分数 0.75%的水解条件下,酶解物对羟自由基清除效果最佳。木瓜蛋白酶酶解物在最大洗脱
峰时有最大羟基自由基清除率峰,清除率为 76.15%,在最大峰处酶解物中活性肽的分子量为 1.4kDa;胰蛋白酶酶
解物在最大洗脱峰时也有最大羟基自由基清除率峰,其清除率为69.13%,该峰处活性肽的分子量也为1.4kDa。
关键词:贻贝;酶解物;活性肽;羟自由基
营养健康
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