全 文 :食用菌学报2013.20(1):89~92
收稿日期:2013-01-12原稿;2013-02-04修改稿
基金项目:国家科技支撑课题(编号:2013BAD16B08-02)的部分研究内容
作者简介:张 忠(1983-),男,2011年毕业于上海大学化学系有机化学专业,硕士,研究实习员,主要从事药用真
菌的研究与开发。
*本文通讯作者 E-mail:tangqingjiu2003@yahoo.com.cn
文章编号:1005-9873(2013)01-0089-04
金耳多糖含量测定方法
张 忠,唐庆九*,周 帅,张劲松,杨 焱,刘艳芳,唐传红
(上海市农业科学院食用菌研究所,农业部南方食用菌资源利用重点实验室,国家食用菌工程技术研究中心,
国家食用菌加工技术研发分中心,上海市农业遗传育种重点开放实验室,上海201403)
摘 要:以苯酚-硫酸法测定多糖含量,比较分析金耳(Tremella aurantia)子实体样品的预处理效果和多糖提取
方法。确定样品经预处理即85%乙醇中超声(室温,30 min)洗涤2次,在料液比1∶500(g/mL),提取温度100℃,
提取时间2 h的优化提取条件下,测定多糖含量准确性高、重现性好、结果可靠,适用于金耳多糖含量的测定。
关键词:金耳;多糖;子实体
金耳(Tremella aurantia),隶属于担子菌纲
(Basidiomycetes),银耳目(Tremelales),与其伴
生菌毛韧革(Stereum hirsutum)菌丝共同形成大
型担子果,担子果呈脑状、金黄色,故又名黄金银
耳、脑耳等,是一种名贵的食、药用真菌[1]。金耳
胶质细腻,清润可口,具有化痰、止咳、定喘、调
气、平肝阳之功效,具有很高的营养价值[2,3]。据
文献报道,金耳多糖主要具有增强免疫、降血糖、
降血脂、抗肿瘤、抗血栓等作用[4,5]。
多糖作为金耳的主要生理活性成分之一,受
到了国内外学者越来越多的关注[6,7]。但是对金
耳多糖含量测定方法的研究却少有报道。与其
它药用真菌相比,金耳中多糖含量丰富[8],采用
一般食用菌多糖处理方法得到的提取液非常粘
稠,不适用于多糖含量测定,因此有必要优化金
耳多糖测定的样品预处理和多糖提取的方法。
根据文献报道[9,10],食用菌中含有影响多糖
含量测定的干扰物质如海藻糖等,笔者尝试先去
除干扰物质,再进行含量测定,并进行方法学考
察,以建立精确的金耳多糖含量测定方法,为合
理开发和利用金耳资源奠定基础。
1 材料与方法
1.1原料
云南野生金耳(T.aurantia)子实体(T1)购
自云南天之蕈野生食用菌有限公司,四川人工栽
培金耳子实体(T2)购自攀枝花彝人菌物有限公
司,西藏野生金耳子实体(T3)购自西藏波密农
牧资源有限公司。
1.2试剂与仪器
50% NaOH溶液,德国 Merck公司;葡萄糖
(标准品),美国Sigma公司;色谱级甲醇,美国
Dikma公司;分析纯无水乙醇、分析纯苯酚和
98%浓硫酸,国药集团药业股份有限公司。
Dionex ICS2500型离子色谱仪(戴安Dionex
ICS2500系统,包括:GS50四元梯度泵、LC30柱
温箱、ED50A电化学检测器、脉冲安培检测器)、
CarboPac MA1阴离子交换柱,美国戴安公司;
Waters 600高效液相色谱仪(2996型二极管阵列
检测器),美国 Waters公司;Synergy HT96孔板
酶标仪,Bio-TEK公司。
1.3金耳子实体的预处理
样品T1置于烘箱65℃干燥24h后,再经过
粉碎机粉碎成100目细粉,得样品“T1-1”。准确
称取100.00mg样品T1置于50mL离心管中,
加入 85% 乙醇 25 mL,充分混匀,室温超声
30min,过滤;滤渣再经85%乙醇洗涤1次置于
烘箱65℃干燥后得样品“T1-2”待用。
1.4预处理前后金耳子实体多糖含量测定
1.4.1葡萄糖标准曲线的绘制
葡萄糖标样于105℃下干燥至恒重后,参照
文献方法[11]于490nm处测定吸光度值,绘制标
DOI:10.16488/j.cnki.1005-9873.2013.01.010
食 用 菌 学 报 第20卷
准曲线。
1.4.2总糖含量测定
分别称取预处理前、后云南金耳子实体样
品“T1-1”和“T1-2”100mg,置于50mL离心管
中,加蒸馏水25mL,摇匀,静置1h,然后放入
100℃的恒温水浴锅提取2h,取上清液1.0mL
放入2.0mL离心管中,13400 g离心10min,取
上清液加蒸馏水稀释至0.1mg/mL左右作为
供试液。准确量取供试液1.0mL置于15mL
试管中,采用苯酚硫酸法[11]测定总糖含量,重复
3次。
1.4.3甘露醇、海藻糖、阿糖醇含量测定
分别取样品供试液“T1-1”和“T1-2”1mL,
去离子水定容至25mL。样品悬浮液稀释20
倍,过0.22μm 微孔滤膜上机测定。采用周
帅[12]等建立的高效阴离子色谱法进行糖醇和寡
糖的测定。
1.5金耳子实体多糖提取条件的优化
1.5.1提取时间
样品“T1-2”分别加热提取1、2和3h,料液
比为1∶100,其它提取条件和测定方法同1.4.2,
考察不同提取时间对金耳子实体多糖含量测定
的影响。
1.5.2提取温度
样品“T1-2”分别在60、80和100℃的恒温
水浴锅中加热提取,料液比为1∶100,其它提取条
件和测定方法同1.4.2,考察不同提取温度对金
耳子实体多糖含量测定的影响。
1.5.3料液比
样品“T1-2”加蒸馏水至料液比分别为1∶50、
1∶100、1∶250和1∶500g/mL,其它提取条件和测
定方法同1.4.2,考察不同料液比对金耳子实体
多糖含量测定的影响。
1.6方法学考察
1.6.1稳定性实验
准确吸取 1.4.2中“T1-2”样品供试液
1.0mL,用苯酚硫酸法分别在样品放置1、10、
30、60、90和120min时测定吸光度,平行测定6
次,计算RSD值,考察稳定性。
1.6.2精密度实验
准确吸取标准样品液1mL(0.04mg/mL),
用苯酚硫酸法连续 6 次测定吸光度,计算
RSD值。
1.6.3重现性实验
取同一批样品“T1-2”,平行制备供试液6
份,测定其多糖含量。
1.6.4加样回收率实验
取同一批样品“T1-2”5份,每份50mg,按
照样品所含多糖量的100%加入葡萄糖标准品
进行提取,取样测定多糖含量并计算标准品回
收率。
1.7不同地域金耳子实体多糖含量测定
分别称取85%乙醇预处理过的云南、四
川、西藏金耳子实体干品粉末(T1-2,T2-2,
T3-2)100mg,在优化的提取条件下进行提
取,采用苯酚-硫酸法测定不同地域金耳子实
体多糖含量。
2 结果与分析
2.1预处理前后金耳子实体多糖含量测定结果
2.1.1葡萄糖标准曲线的绘制
葡萄糖标准溶液浓度与吸光度的归方程为y
=0.0983x -0.0119(y:标样浓度,x:吸光度),
R2=0.9989,线性范围为0.93~39.93μg/mL。
2.1.2预处理前后金耳子实体糖含量
乙醇预处理前后的云南金耳子实体的多糖
含量分别为33.68%和29.14%,两者相差4%左
右(表1);未经处理的金耳子实体中,阿糖醇、海
藻糖、甘露醇总含量达6.87%;其中,海藻糖含量
2.59%,经过85%乙醇处理后,大部分干扰物质
海藻糖被除去(表1),剩余部分不影响多糖含量
的测定。结果表明,经过85%乙醇预处理,样品
中的海藻糖等还原糖基本除去,测得的总糖含量
可视为多糖含量。
2.2多糖提取条件
由图1可知,随着提取时间的延长,金耳子
实体的多糖含量实测值升高,但2h后,多糖含量
增幅不明显(图1-A);在供试提取温度范围内,随
着提取温度的升高,金耳子实体的多糖含量测定
值升高,在100℃时,含量测定值达到最高(图1-
B);在试验范围内,金耳子实体的多糖含量随着
料液比的提高而升高,料液比为1∶500时,多糖
含量测定值最高(图1-C)。
综合上述实验结果,金耳子实体多糖含量测
定的最佳提取条件为提取时间2h,提取温度
100℃,料液比1∶500(g/mL)。
09
第1期 张 忠,等:金耳多糖含量测定方法
表1 预处理前后金耳子实体中总糖和可溶性糖含量
Table 1 Total and soluble saccharide levels in T.aurantiafruit bodies
样品
Sample*
成分Component(%)
总糖
Total saccharide
阿糖醇
Arabitol
海藻糖
Trehalose
甘露醇
Mannitol
T1-1 33.68±0.67 1.97±0.01 2.59±0.05 2.31±0.03
T1-2 29.14±0.89 0.02±0.01 0.77±0.01 0.09±0.01
*T1-1:Yunnan wild fruit bodies(purchased from Yunnan Tianzhixun Wild Mushroom Co.Ltd),were dried at 65℃for 24 h and
ground to a powder to pass a 100 mesh sieve;T1-2:T1-1 sample(100 mg)suspended in25 mL85%ethanol and exposed to ultrasound
(KQ-600P ultrasonic cleaner,600 W)for 30 min at room temperature,After colecting the solid residue by filtration,the procedure was
repeated and the solid residue was dried at 65℃to constant weight
图1 提取条件对金耳子实体多糖含量测定的影响
Fig.1 Polysaccharide levels in extracts of T.aurantia fruit bodies prepared under different conditions
2.3方法学考察
2.3.1稳定性、精密度、重现性实验
稳定性、精密度和重复性实验中多糖含量的
RSD值分别为0.09%、0.50%和3.71%,说明运
用建立的方法测定金耳中多糖含量,稳定性、精
密度和重复性均良好。
2.3.2加样回收率实验
加样回收率结果表明,标样回收率在
95.13%~99.62%之间,平均回收率为97.23%,
RSD值为1.76%,说明该方法对多糖检测特异性
良好。
2.4不同地域金耳子实体多糖含量测定
对不同来源的金耳子实体的多糖含量进行
测定,四川金耳子实体的多糖含量最高,为
40.55%,云南金耳子实体的多糖含量为34.5%,
西藏金耳子实体的多糖含为37.04%。
3 小结
由于金耳比一般食用菌中多糖含量要高得
多,可达40%,提取液粘度大,因此,最佳提取条
件中的料液比高达1∶500,同时发现运用85%乙
醇也可以有效去除金耳中影响多糖含量测定的
干扰物质。实验证明建立的测定方法简便快捷、
准确性高、重现性好、测定结果可靠,可用于金耳
中多糖含量的测定。
参考文献
[1]BANDONI RJ,ZANG M.On an undescribed
Tremellafrom China[J].Mycologia,1990,82(2):
270-273.
[2]刘正南.金耳的经济价值与开发利用状况[J].中国
食用菌,1991,14(1):2.
[3]谢红,刘春卉,苏槟楠,等.金耳8254的营养价值和
药理研究[J].中国食用菌,2000,19(6):39-41.
[4]KIHO T,MORIM0T0H,KOBAYASHI T,et al.
Effect of a polysaccharide from the bodies of
Tremella aurantia on glucose metabolism in mouse
liver[J].Biosci Biotechnol Biochem,2000,64:417-
419.
[5]KIHO T,KOCHI M,USUI S,et al.Antidiabetic
effect of an acidic polysaccharide (TAP)from
Tremella aurantia and its degradation product
(TAP—H)[J].Biol Pharm Bul,2001,24(12):
1400-1403.
[6]张雯,瞿伟菁.复方金耳多糖对高血糖SD大鼠降糖
效应的研究[J].华东师范大学学报(自然科学版,动
物学专辑),1999:86-90.
[7]汪虹,瞿伟菁,褚书地,等.金耳菌丝体多糖对小鼠
高脂血症的防治作用[J].营养学报,2002,24(4):
431-432.
19
食 用 菌 学 报 第20卷
[8]李卫旗,陈云龙,吴学谦.金耳多糖的分离纯化与结
构分析[J].食品科学,1998,19(7):20-23.
[9]刘春泉,李大婧,刘荣.蒽酮-硫酸法测定北冬虫夏草
多糖含量[J].江苏农业科学,2006,(2):122-124.
[10]薛俊杰,唐庆九,刘艳芳,等.蛹虫草水溶性多糖含
量测定方法的比较与优化[J].菌物学报,2012,31
(3):443-449.
[11]陈靖,邹艳丽,徐成东,等.方秆蕨中多糖含量的测
定[J].安徽农业科学,2012,40(6):3280-3281.
[12]周帅,薛俊杰,刘艳芳,等.高效阴离子色谱-脉冲安
培检测法分析食用菌中海藻糖、甘露醇和阿糖醇
[J].食用菌学报,2011,18(1):49-52.
Determination of Polysaccharide in Tremella aurantia
Fruit Bodies Using Phenol-sulfuric Acid Method
ZHANG Zhong,TANG Qingjiu*,ZHOU Shuai,ZHANG Jingsong,YANG Yan,
LIU Yanfang,TANG Chuanhong
(Institute of Edible Fungi,Shanghai Academy of Agricultural Sciences,Key Laboratory of Edible Fungi
Resources and Utilization(South),Ministry of Agriculture,P.R.China,National Engineering Research
Center of Edible Fungi,National R&D Center for Edible Fungi Processing,Key Laboratory of
Agricultural Genetics and Breeding of Shanghai,Shanghai 201403,China)
Abstract:Previous attempts to accurately determine polysaccharide levels in Tremela aurantia fruit bodies
have largely been unsuccessful due to the highly viscous nature of sample material and the presence of
interfering compounds.We now describe a simple and sensitive phenol-sulfuric acid-based method for the
accurate determination of polysaccharide in T.aurantia fruit bodies in which samples were first pretreated
by ultrasound-assisted extraction with 85% ethanol to remove soluble reducing saccharides that interfered
with the polysaccharide assay.Maximum extraction of polysaccharide from residue material folowing
pretreatment was achieved using a solid-liquid ratio of 1∶500(g/mL),an extraction temperature of 100℃
and a 2hextraction time.Our phenol-sulfuric acid-based determination method is straightforward,highly
accurate and reproducible,and suitable for the quantitative determination of polysaccharide in T.aurantia
fruit bodies.
Key words:Tremela aurantia;polysaccharide determination;fruit body
[本文编辑] 于荣利
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