全 文 ：·论 著· 中国当代医药 2015 年 6 月第 22 卷第 18 期
CHINA MODERN MEDICINE Vol. 22 No. 18 June 2015
白花败酱草（Patrina villosa Juss.）为败酱科植物，
味辛、苦，性寒 [1]，含有正三十二碳酸、正三十二烷醇、
棕榈酸、齐墩果酸、奥伦胺乙酸化物（aurentiamide ace-
tate）、胡萝卜苷、β-谷甾醇、7β-羟基-β-谷甾醇、豆甾
醇[2]。 白花败酱草提取物具有镇静、催眠、抑菌、耐缺
氧、抗前列腺增生、抗肿瘤等作用 [3-11]。 氧化应激和氧
自由基损伤是许多疾病组织损伤的主要分子机制之
一。 超氧化物歧化酶（SOD）是抗氧化系统中一种重要
的抗氧化酶， 是生物体产生的一种天然抗氧化酶，它
能清除体内超氧化物自由基，防止氧自由基对机体直
接或间接的损伤。丙二醛（MDA）为脂质过氧化反应的
产物，能引起细胞的损伤，MDA 含量升高说明机体脂
质过氧化反应较多。因此本研究通过分析白花败酱草
乙醇提取物对 SOD 活性和 MDA 含量的影响来研究
白花败酱草乙醇提取物对小鼠抗氧化作用的影响。
1 材料与方法
1.1 药品
白花败酱草乙醇提取物：取干燥白花败酱草全草
300 g， 加入 10 倍 70％的乙醇水浴回流热提取 3 次，
每次 40 min，合并提取液，抽滤得白花败酱草乙醇提
取物浸膏。 置冰箱中备用。 临用时用生理盐水稀释至
所需浓度。
1.2 动物
昆明种小鼠，32 只，体重（20±2）g，雌雄各半，由
江西中医药大学实验动物中心提供。
1.3方法
1.3.1 分组 取昆明种小鼠 32 只， 随机分为生理盐水
组，5.0、10.0、20.0 mg/kg白花败酱草乙醇提取物组。
1.3.2 给药 给药组每天灌胃给予 5.0、10.0、20.0 mg/kg
的白花败酱草乙醇提取物，生理盐水组喂以同体积的
白花败酱草乙醇提取物对小鼠抗氧化作用的影响
何光华 1 曾 靖 2▲ 谭晓彬 1 江丽霞 1
1.赣南医学院第一附属医院，江西赣州 341000；2.赣南医学院，江西赣州 341000
[摘要] 目的 研究白花败酱草乙醇提取物对小鼠抗氧化作用的影响。 方法 取昆明种小鼠 32 只， 随机分为生理
盐水组，5.0、10.0、20.0 mg/kg白花败酱草乙醇提取物组。连续给药 10 d，次日小鼠拉颈椎脱臼处死，取心、脑、肝等
组织，检测心、脑、肝等组织中的超氧化物歧化酶（SOD）的活性、丙二醛（MDA）的含量。 结果 10.0、20.0 mg/kg 白
花败酱草乙醇提取物能显著升高小鼠心、脑、肝等组织中 SOD 活性（P<0.05 或 P<0.01），显著降低心、脑、肝等组
织中 MDA 含量（P<0.05 或 P<0.01）。 结论 白花败酱草乙醇提取物可清除体内脂质过氧化物，减轻机体的过氧
化损伤，具有明显的抗氧化作用。
[关键词] 白花败酱草乙醇提取物；超氧化物歧化酶；丙二醛；抗氧化作用
[中图分类号] R285.5 [文献标识码] A [文章编号] 1674-4721（2015）06（c）-0004-03
Anti-oxidation effect of ethanol extract of Patrina villosa Juss. in mice
HE Guang-hua1 ZENG Jing2▲ TAN Xiao-bin1 JIANG Li-xia1
1.The First Affiliated Hospital of Gannan Medical University,Jiangxi Province,Ganzhou 341000,China;2.Gannan Med-
ical University,Jiangxi Province,Ganzhou 341000,China
[Abstract] Objective To study the antioxidant effect of ethanol extract of Patrinia villosa Juss. in mice model. Meth-
ods Thirty-two Kunming mice were randomly divided into 4 groups,intragastric administrated for 10 consecutive days,
with normal saline and different doses of ethanol extract of Patrinia villosa Juss. (5.0,10.0,20.0 mg/kg),respectively.The mice
were sacrificed by cervical dislocation,the activity of superoxide dismutase (SOD) and the content of malondialdehyde (MDA)
in mice hearts,brains and livers were determined by kits respectively. Results Ethanol extract of Patrinia villosa Juss. at
10.0 mg/kg and 20.0 mg/kg dose could significantly increase the SOD activity (P<0.05 or P<0.01),and decrease the
MDA content in mice hearts,brains and livers (P<0.05 or P<0.01). Conclusion Ethanol extract of Patrinia villosa Juss. can
eliminate the lipid peroxides and release the peroxidation injury,it shows significant antioxidation effect in mice model.
[Key words] Ethanol extract of Patrinia villosa Juss.;SOD;MDA;Anti-oxidation effect
[作者简介] 何光华（1961-），男，本科，副主任药师，主要从
事医院药学研究
▲通讯作者：曾靖，教授，硕士生导师，主要从事心脑血管药
理、中药药理研究
4
中国当代医药 2015 年 6 月第 22 卷第 18 期
CHINA MODERN MEDICINE Vol. 22 No. 18 June 2015
·论 著·
生理盐水。
1.4 样品制备及指标测定
连续给药 10 d，次日小鼠拉颈椎脱臼处死，取心、
脑、肝等组织，制成 10%匀浆，于-80℃保存备用。检测
心、脑、肝等组织中 SOD 活性、MDA 含量。 其中，SOD
和 MDA 测定试剂盒购自南京建成生物工程研究所。
SOD和 MDA测定按试剂盒说明书进行。
1.5 统计学方法
采用统计软件 SPSS 14.0 对实验数据进行分析，
计量资料数据以均数±标准差（x±s）表示，多组间比较
采用方差分析，组间两两比较采用 t 检验。 计数资料
以率表示，采用 χ2检验。 以 P < 0.05为差异有统计学
意义。
2 结果
2.1 白花败酱草乙醇提取物对小鼠心肌组织中 SOD
活性和 MDA含量的影响
与生理盐水组比较，10.0、20.0 mg/kg 白花败酱草
乙醇提取物能显著升高小鼠心肌组织中 SOD 活性，
降低 MDA含量（P<0.05或 P<0.01）（表 1）。
表 1 各组对心肌组织中 SOD 活性和 MDA 含量的影响（x±s，n=8）
与生理盐水组比较，*P<0.05，**P<0.01
2.2 白花败酱草乙醇提取物对小鼠脑组织中 SOD 活
性和 MDA含量的影响
与生理盐水组比较，10.0、20.0 mg/kg 白花败酱草
乙醇提取物能显著升高小鼠脑组织中 SOD 活性，降
低 MDA的含量（P<0.05或 P<0.01）（表 2）。
表 2 各组对脑组织中 SOD 活性和 MDA 含量的影响（x±s，n=8）
与生理盐水组比较，*P<0.05，**P<0.01
2.3 白花败酱草乙醇提取物对小鼠肝组织中 SOD 活
性和 MDA含量的影响
与生理盐水组比较，10.0、20.0 mg/kg 白花败酱草
乙醇提取物能显著升高小鼠肝组织中 SOD 活性，降
低 MDA的含量（P<0.05或 P<0.01）（表 3）。
表 3 各组对肝组织中 SOD 活性和 MDA 含量的影响（x±s，n=8）
与生理盐水组比较，*P<0.05，**P<0.01
3讨论
目前已发现不少疾病的发生、发展、防治及诊断
均与自由基有关， 氧自由基损伤直接或间接与机体
各系统和各脏器有关 [12]。当组织损伤时氧自由基含量
明显增加， 体内内源性抗氧化酶系统活性则明显降
低，其中以 SOD 活性降低最为明显[13]。 SOD 是抗氧化
系统中一种重要的抗氧化酶， 它能清除超氧化物自
由基，防止其对机体造成直接或间接的损伤，从而起
到保护机体的作用。 SOD 活性降低，机体无法清除过
多的氧自由基，因此引发过多的脂质过氧化反应，从
而导致组织细胞损伤 [14]。 MDA 则是脂质过氧化过程
中产生的代谢中间产物， 它反映组织细胞的损伤程
度。 其含量升高说明机体脂质过氧化反应较多，组织
细胞损伤就多 [15-16]。 为了防止氧自由基损伤，常应用
外源性抗氧自由基药物。 笔者通过应用白花败酱草
乙醇提取物观察其对小鼠抗氧化作用， 结果显示，
10.0、20.0 mg/kg 的白花败酱草乙醇提取物可显著升
高心、 脑、 肝等组织中 SOD 活性， 显著降低组织中
MDA 含量， 提示白花败酱草乙醇提取物具有清除体
内脂质过氧化物作用， 可通过提高机体自由基清除
剂的活性， 抑制自由基的产生， 减少脂质过氧化反
应，减轻机体的过氧化损伤，保护组织免受自由基的
攻击，具有明显的抗氧化作用，但其具体机制还需进
一步研究。
[参考文献]
[1] 宋立人 .现代中药大辞典 [M].北京 ：人民卫生出版社 ，
2001：1268.
[2] 彭金咏，范国荣，吴玉田，等.白花败酱草化学成分研究[J].
中国中药杂志，2006，31（2）：128-130.
[3] 陈燕萍，曾靖，叶和扬，等.白花败酱草水提取液中枢抑
制作用的研究[J].中国药物与临床，2005，5（6）：439-440.
[4] 钟星明，蒋绍祖，曾靖，等.白花败酱草提取物对小鼠睡
眠功能和自发活动的影响[J].中国临床康复，2004，8（30）：
6688-6689.
[5] 戴聪杰，林培庆.白花败酱草乙醇提取液的抑菌作用及
其稳定性研究[J].食品与机械，2011，27（6）：157-159.
[6] 万国兰，李洪亮，杨庆春，等.白花败酱草提取物耐缺氧
作用的研究[J].时珍国医国药，2008，19（5）：1130-1131.
生理盐水组
白花败酱草乙醇
提取物组
-
5.0
10.0
20.0
149.2±11.8
162.4±13.5
186.7±12.3*
206.2±13.8**
43.2±3.8
37.5±3.1
31.5±2.2*
26.6±2.1**
组别 剂量（mg/kg） SOD（U/ml） MDA（nmol/ml）
生理盐水组
白花败酱草乙醇
提取物组
-
5.0
10.0
20.0
162.2±13.3
180.6±14.5
203.1±14.6*
215.2±14.7**
40.3±2.6
36.1±2.3
31.2±1.8*
26.4±2.2**
组别 剂量（mg/kg） SOD（U/ml） MDA（nmol/ml）
生理盐水组
白花败酱草乙醇
提取物组
-
5.0
10.0
20.0
132.1±12.4
145.6±12.7
169.8±12.2*
180.8±12.8**
31.3±2.0
26.4±1.8
22.3±1.7*
19.2±1.6**
组别 剂量（mg/kg） SOD（U/ml） MDA（nmol/ml）
（下转第 10页）
5
·论 著· 中国当代医药 2015 年 6 月第 22 卷第 18 期
CHINA MODERN MEDICINE Vol. 22 No. 18 June 2015
[7] 王灵丽.白花败酱总皂苷抗小鼠宫颈癌的活性探讨[J].国
际中医中药杂志，2011，33（12）：1083-1085.
[8] 宋婷，孙晖，路娟，等.白花败酱草体外抗肿瘤活性部位
筛选[J].时珍国医国药，2012，23（10）：2410-2412.
[9] 郭晓秋，徐洁，曾玲，等.白花败酱草提取物对小鼠前列腺
增生的实验研究[J].中国当代医药，2013，20（33）：33-34.
[10] 陈磊，张涛，田黎明，等.白花败酱草提取物对小鼠 U14
宫颈癌细胞的抑制作用 [J].中国老年学杂志，2010，30
（8）：1091-1093.
[11] 张涛，田黎明，王昭，等.白花败酱草对 U14荷瘤鼠肿瘤细
胞周期和 PCNA表达的影响[J].黑龙江医药科学，2011，
34（3）：84-85.
[12] 方允中，郑荣梁.自由基生物学的理论与应用[M].北京：
科学出版社，2002：823-824.
[13] Herskowitz A，Choi S，Ansari AA，et al.Cytokine mRNA
expression in post ischemic/reperfusion myocardium [J].Am
J Pathol，1995，146（2）：419-428.
[14] Mair P，Mair J，Bleier J，et al.Reperfusion after cardio-
pledig cardioc arrest effect on intracoronary leukocyte elas-
tase release and oxygen free radical mediated lipid per-
oxidation[J].Acta Anaesthesiol Scand，1995，39（7）：960-
967.
[15] Aydemir O，Naziroglu M，Celebi S，et al.Antioxidant ef-
fects of alpha - ，gamma- and succinate -tocopherols in
guinea pig retina during ischemia-reperfusion injury [J].
Pathophysiology，2004，11（3）：167-171.
[16] Pannicke T，Uckermann O，Iandiev I，et al.Altered mem-
brane physiology in Muller glial cells after transient is-
chemia of the rat retina[J].Glia，2005，50（1）：1-11.
（收稿日期：2015-01-26 本文编辑：卫 轲）
NK4，a novel hepatocyte growth factor variant，on in vitro
angiogenesis of human vascular endothelial cells [J].Clin
Cancer Res，1999，5（2）：3695-3703.
[12] Chen H，Fok KL，Jiang X，et al.CD147 regulates apoptosis
in mouse spermatocytes but not spermatogonia [J].Hum
Reprod，2012，27（6）：1568-1576.
[13] Chen H，Fok KL，Yu S，et al.CD147 is required for matrix
metalloproteinases-2 production and germ cell migration
during spermatogenesis[J].Mol Hum Reprod，2011，17（7）：
405-414.
[14] Smedts AM，Lele SM，Modesitt SC，et al.Expression of an
extracellular matrix metalloproteinase inducer （basigin）
in the human ovary and ovarian endometriosis [J].Fertil
Steril，2006，86（1）：535-542.
[15] Hadler -Olsen E，Winberg JO，Uhlin -Hansen L.Matrix
metalloproteinases in cancer： their value as diagnostic
and prognostic markers and therapeutic targets[J].Tumour
Biol，2013，34（4）：2041-2051.
[16] Brezillon S，Pietraszek K，Maquart FX，et al.Lumican effects
in the control of tumour progression and their links with
metalloproteinases and integrins [J] .FEBS J ，2013，280
（10）：2369-2381.
[17] Chen H，Lam FK，Jiang X，et al.New insights into germ
cell migration and survival/apoptosis in spermatogenesis：
Lessons from CD147[J].Spermatogenesis，2012，2（4）：264-
272.
[18] Havelka P，Oborna I，Brezinova J，et al.Apoptosis and
expression of Bcl -2 in human endometrium in natural
and artificial cycles[J].Acta Univ Palacki Olomuc Fac Med，
2005，149（2）：303-307.
[19] Kim JH，Yang YI，Lee KT，et al.Costunolide induces
apoptosis in human endometriotic cells through inhibition
of the prosurvival Akt and nuclear factor kappa B
signaling pathway[J].Biol Pharm Bull，2011，34（5）：580-
585.
[20] Park JS，Lee JH，Kim M，et al.Endometrium from women
with endometriosis shows increased proliferation activity
[J].Fertil Steril，2009，92（4）：1246-1249.
[21] Korkmaz D，Bastu E，Dural O，et al.Apoptosis through
regulation of Bcl-2，Bax and Mcl-1 expressions in endo-
metriotic cyst lesions and the endometrium of women
with moderate to severe endometriosis[J].J Obstet Gynaecol
Res，2013，33（4）：725-728.
（收稿日期：2015-02-05 本文编辑：卫 轲）
（上接第 5页）
10