全 文 ：• 604 • 中华中医药杂志(原中国医药学报)2011年3月第26卷第3期 CJTCMP , March 2011, Vol . 26, No.3
·研究报告·
壮药薯莨中表儿茶素的化学分析
苏青，刘婧，黄瑞松
（广西壮族自治区民族医药研究院，南宁 530001）
摘要：目的：建立薯莨药材中表儿茶素的分析方法。方法: 以表儿茶素作为对照品，通过薄层色谱法（TLC）、
高效液相色谱法（HPLC）对薯莨药材中的表儿茶素进行定性定量分析。结果：5个不同产地的薯莨药材均含表儿
茶素，其含量在0.06％-0.50％之间；表儿茶素在0.046－0.552µg范围内与峰面积具有良好线性关系（r=0.9999），
平均回收率为99.28％，RSD为1.34％。结论: 文章建立的方法准确可靠、重现性好、专属性强；不同产地的薯莨药
材均含有表儿茶素成分，但含量有差异。
关键词：薯莨；表儿茶素；薄层色谱法；高效液相色谱法
基金资助：广西科技厅课题（No.桂科能05112001-3A7）
Chemical analysis of epicatechin of zhuang medicine Dioscorea cirrhosa Lour.
SU Qing, LIU Jing, HUANG Rui-song
( National Medical Research Institute of Guangxi Zhuang Autonomous Region, Nanning 530001, China )
Abstract: Objective: To establish a analyse method of Epicatechin in Dioscorea cirrhosa Lour. from different habitats
in Guangxi. Methods: Epicatechin in Dioscorea cirrhosa Lour. was identifi ed quantitatively by thin-layer chromatography (TLC),
and determined by HPLC. Results: The spots of TLC were clear and concentrative. According to the selected chromatographic
conditions,the calibration curve for Epicatechin was linear (r=0.9999) in the range of 0.046-0.552µg,and the average recovery
was 99.28％with RSD being 1.34％. The content of Epicatechin in 5 samples of Dioscorea cirrhosa Lour was 0.06%-0.50%.
Conclusion: The methods are sensitive, accurate, reproducible and exclusive. Epicatechin were found in 5 samples but has some
difference among the different habitats.
Key words: Dioscorea cirrhosa Lour.; Epicatechin; TLC; HPLC
Fund assistance: Project of Guangxi Science and Technology Agency (No.05112001-3A7)
通讯作者：苏青，广西南宁市明秀东路234号广西壮族自治区民族医药研究院，邮编：530001，电话：0771-3130064
E-mail: nnsq2009@163.com
薯莨也名红孩儿，系薯蓣科植物薯莨（Dioscorea cirrhosa
Lour.）的块茎，为常用壮药，产于我国广西、广东等地，具有止
血、活血、养血等功效，用于产后腹痛、崩漏、咯血、上消化道出
血、痢疾等症[1]。薯莨含有表儿茶素、鞣质等化学成分[1]。《中国
药典》（1977版）一部曾收载薯莨（红孩儿）药材品种和“薯莨
片（红孩儿片）”薯莨提取物，但无其TLC鉴别和含量测定[2]。
本试验拟对广西不同产地薯莨药材中的表儿茶素进行定性定
量分析研究，旨在为更好地挖掘薯莨药材资源提供科学依据。
材料
1. 药品 薯莨药材：自采，1－5号（产地：靖西、德保、南宁市
郊、凌云、天等），经品种鉴定均为薯蓣科植物薯莨（Dioscorea
cirrhosa Lour.）的块茎；表儿茶素（110878-200102）购于中国
药品生物制品检验所。
2. 试剂 HPLC流动相所用甲醇为色谱纯（美国Fisher公
司）；水为超纯水；硅胶G（青岛海洋化工厂生产）；其余试剂均
为分析纯。
3. 仪器 岛津LC-20A HPLC系统，LC solution色谱工作站
（日本岛津公司），YOKO-ZS紫外分析摄影仪（武汉药新技术
开发有限公司），1/105电子分析天平XS205BDU（瑞士梅特勒
公司），As7240BT超声波清洗器（天津奥特赛恩斯仪器有限
公司）。
方法与结果
1. 薯莨的TLC鉴别
1.1 供试品溶液的制备 分别称取1－5号本品粉末（60目）
各0.4g，加甲醇10mL，超声处理30min，滤过，滤液蒸干，残渣加
甲醇2mL使溶解，摇匀，即为供试品溶液。
1.2 对照品溶液的制备 取表儿茶素对照品，加甲醇制成
每1mL含1mg的溶液，摇匀，即为对照品溶液。
1.3 薄层层析 照薄层色谱法（中国药典2010年版一部附
录VIB）试验，吸取上述5种供试品溶液各1－3μL、对照品溶液
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置50mL容量瓶中，加甲醇-水（1:1）混合溶液至刻度，摇匀，再精
密吸取1mL置10mL容量瓶中，加甲醇-水（1:1）混合溶液至刻度，
摇匀，制成每1mL含表儿茶素23μg的对照品溶液。
2.3 供试品溶液的制备 精密称定本品1号粉末（60目）约
0.1g，置25mL量瓶中，加甲醇-水（1:1）混合溶液15mL，超声处理
20min，并加甲醇-水（1:1）混合溶液至刻度，摇匀，滤过，取续滤
液再用微孔滤膜（0.45μm）滤过，取滤液即为供试品溶液。
2.4 线性关系考察 精密称取表儿茶素对照品23mg，置
50mL容量瓶中，加甲醇-水（1:1）混合溶液至刻度，摇匀，再分
别精密吸取0.10、0.40、0.80、1.00、1.20mL置10mL量瓶中，各
加甲醇-水（1:1）混合溶液稀释至刻度，摇匀。各取10μL进样，
以峰面积为纵坐标，进样量（μg）为横坐标，绘制标准曲线，
得回归方程为Y=8.06×105X-4326.3，r=0.9999。表儿茶素在
0.046-0.552μg范围内与峰面积呈良好线性关系。
2.5 精密度试验 精密吸取上述1号供试品溶液20μL，依
法进样5次，其RSD为0.48％。表明仪器的精密度良好。
2.6 稳定性试验 精密吸同一供试品溶液（1号）20μL，分
别于室温下放置0、2、4、6、8、10h后依法进样，测得表儿茶
素含量分别为0.51%、0.51%、0.51%、0.50%、0.50%，RSD为
1.08％。表明本品供试液在10h内基本稳定。
2.7 重复性试验 精密称定1号样品约0.1g各6份，按“2.3”
项下步骤制得待测溶液。各进样20μL，依法测定。样品的表儿
茶素平均含量为0.51％，RSD为0.81％，说明该法重复性好。
2.8 加样回收率试验 精密称定同一批号的样品6份，每份
0.1g，分别精密加入表儿茶素对照品溶液适量，按上述“2.3”项
下步骤操作制得待测溶液。各进样20μL，依法测定，计算回收
率。结果平均回收率为99.28%，RSD为1.34％（n=6），表明本法
测定结果准确。详见表1。
表2 样品中表儿茶素含量测定结果（n=3）
药材批号
1
2
3
4
5
产地
靖西
德保
南宁市郊
凌云
天等
平均含量（%）
0.50
0.06
0.06
0.16
0.39
1μL，分别点于同一以羧甲基纤维素钠为黏合剂的硅胶G薄层板
上，以甲苯-醋酸丁酯-甲醇-甲酸（70:10:20:0.5）为展开剂，展
开，取出，晾干，喷以重氮化试液，热风吹至斑点显色清晰，日光
下检视。1-5号供试品色谱中，在与对照品色谱相应的位置上，
显一个相同的橙黄色斑点。详见图1。
图1 薯莨药材TLC色谱图
注：1-5号薯莨供试品（1.靖西县；2.德保县；3.南宁市郊；4.凌
云县；5.天等县），6.表儿茶素对照，a.表儿茶素。
2. 薯莨的HPLC含量测定
2.1 色谱条件 色谱柱：Hypersil ODS2 C18柱（250mm×4.6 mm，
5μm）；流动相：甲醇-水（35:65）；流速：0.8mL/min；检测波
长：280nm；柱温：室温；进样量：20μL。色谱柱理论塔板数按
表儿茶素峰计算应不小于3 000，表儿茶素与相邻峰的分离度
R>1.5。见图2。
2.2 对照品溶液的制备 精密称取表儿茶素对照品11.5mg，
表1 表儿茶素回收率测定结果
序号
1
2
3
4
5
6
取样中
0.0592
0.0594
0.0598
0.0595
0.0595
0.0599
加入
0.0598
0.0598
0.0598
0.0598
0.0598
0.0598
测得
0.1178
0.1182
0.1202
0.1183
0.1188
0.1202
回收率（%）
97.99
98.33
101.00
98.33
99.16
100.84
平均（%）
99.28
RSD（%）
1.34
表儿茶素量（mg）






B



A
图2 空白样品（A）、对照品表儿茶素（B）和薯莨药材（C）的
HPLC图
注：a：表儿茶素。







C
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2.9 样品测定 精密称取1-5号本品粉末约0.1g（60目，
n=3），按“2.3”项下步骤制得供试品溶液。分别精密吸取对照
品溶液及供试品溶液各20μL，依法测定。结果见表2。
讨论
笔者对5个不同产地的薯莨进行表儿茶素成分TLC鉴别，
结果所有被检测的样品均可检测到表儿茶素。提示表儿茶素为
薯莨药材的共有的化学组分。
依据TLC定性分析结果，笔者采用HPLC法对薯莨药材所
含表儿茶素化学成分进行了定量测定。结果在本HPLC色谱条
件下，1-5号薯莨药材的表儿茶素含量在0.06%-0.50%之间。提
示不同产地的薯莨药材虽均含共有成分表儿茶素，但其含量有
差异。
另外，试验中笔者曾采用文献[3]的流动相0.04mol/L枸橼酸
溶液-N，N-二甲基酰-四氢呋喃（45:8:2）进行表儿茶素含量测定，
结果发现该流动相中含有盐，对色谱柱有一定的损害。经反复试
验探讨后，改以甲醇-水（35:65）流动相时，所测定得到的表儿茶素
色谱峰保留时间适宜，且在供试品色谱中表儿茶素峰与相邻杂
质峰分离度大于1.5，达到了良好的基线分离。详见图2。
薯莨药用历史悠久，但目前关于薯莨的化学成分的研究却
很少，其有效部位和有效成分均尚不明确[4]。这使薯莨的临床
应用受到了较大的局限。本试验建立了薯莨中表儿茶素的TLC
法和HPLC法的分析方法，填补了评价薯莨药材质量的空白，为
深入研究薯莨的化学成分和药理活性、开发疗效确切、质量稳
定的新剂型薯莨制剂提供了可靠的科学依据。
参 考 文 献
[1] 梁启成,钟鸣.中国壮药学.南宁:广西民族出版社,2005:482
LIANG Qi-cheng,ZHONG Ming.Zhuang of China Pharmacy.
Nanning:Guangxi Nationalities Publishing House,2005:482
[2] 国家药典委员会编.中国药典1977年版.北京:人民卫生出版
社,1978:648
Chinese Pharmacopoeia Commission.Pharmacopoeia of People,s
Republic of China 1977.Beijing:People,s Medical Publishing
House,1978:648
[3] 国家药典委员会编.中国药典2005年版.北京:化学工业出版
社,2005:8
Chinese Pharmacopoeia Commission.Pharmacopoeia of People,s
Republic of China 2005.Beijing:Chemical Industry House,2005:8
[4] 钟超,严奉祥.薯莨的研究进展.现代医药卫生,2007,23(5):675-676
ZHONG Chao,YAN Feng-xiang.Study of progress on the Chinese
drug Dioscorea cirrhosa Lour.Modern Medicine Hygiene,2007,23
(5):675-676
（收稿日期：2010年7月8日）
不同种质黄芩蛋白质电泳的鉴别研究
林慧彬1，路俊仙1，崔璐2，韩丽丽2，李真2，林建群3，林建强3
（1山东省中医药研究院中药资源研究室，济南 250014；2山东中医药大学，济南 250014；3山东大学生命
科学院微生物技术国家重点实验室，济南 250100）
摘要：目的：研究比较不同种质黄芩蛋白质的差异。方法：采用蛋白质聚丙烯酰胺凝胶电泳方法。结果：
沙滩黄芩的蛋白质主要分布在相对分子量10.0-70.0kDa之间，且分布较均匀，一级条带主要集中在20.0-30.0kDa；
不同产地黄芩的蛋白质条带在相对分子量66.0、70.0、112.0kDa处染色较深，蛋白质含量较高，与沙滩黄芩有显著
差异。花粉红色及玫红色的黄芩，电泳条带数目较少，染色较浅，但其一级条带和紫花黄芩的条带基本相同。结
论：黄芩与沙滩黄芩的蛋白质电泳差别大于不同种质黄芩之间的差异。证实蛋白质电泳结果较相近的黄芩具有较
近的亲缘关系。
关键词：黄芩；种质；蛋白质电泳
基金资助：2009年山东省农业良种工程重大课题（No.2009LZ201-03），2007年山东省中医药发展计划课题
（No.2007-120）
Identifi cation study on protein gel electrophoresis of different germplasm of Baicalin
LIN Hui-bin1, LU Jun-xian1, CUI Lu2, HAN Li-li2, LI Zhen2, LIN Jian-qun3, LIN Jian-qiang3
( 1Research Laboratory of Chinese Medicinal Resources, Shandong Institute of TCM, Jinan 250014, China; 2Shandong University
of TCM, Jinan 250014, China; 3School of Life Sciences, State Key Lab of Microbial Technology,
Shandong University, Jinan 250100, China )
·研究报告·
通讯作者：林建群，济南市山大南路27号山东大学生命科学院微生物技术国家重点实验室，邮编：250100，电话： 0531-88364426
E-mail: Jianqunlin@sdu.edu.cn