全 文 :书 [收稿日期] 2012-08-01;2012-10-17修回
[基金项目] 韩山师范学院2011年大学生创新性实验(实践)项目“微波辅助提取土人参黄酮类化合物及其抗氧化性研究”(2011043)
[作者简介] 刘晓珍(1990-),女,在读本科,研究方向:药学。E-mail:1052180980@qq.com
*通讯作者:张福平(1966-),男,高级实验师,从事园艺学方面的教学与研究。E-mail:hsfpzh@126.com
[文章编号]1001-3601(2012)11-0691-0192-04
土人参黄酮类化合物的提取及其抗氧化性
刘晓珍,汤艳姬,陈斯钊,周洁纯,王惠敏,张福平*
(韩山师范学院 生物系,广东 潮州521041)
[摘 要]为更好地开发和利用土人参,采取微波辅助方法,探究土人参黄酮类化合物的最佳提取工艺
及其抗氧化性。结果表明:土人参黄酮类化合物提取的最佳工艺为乙醇浓度80%、固液比1∶40(g∶mL)、
浸提温度60℃、浸提时间1.0h、微波功率160W、微波时间40s,此工艺条件下提取率达11.42%,比常规提
取高0.62%。土人参黄酮类化合物具有清除羟自由基、超氧离子自由基和抗油脂氧化的作用,其抗氧化性
明显,且在微波辅助下提取率高,值得开发利用。
[关键词]土人参;黄酮;提取;抗氧化性
[中图分类号]R284.1 [文献标识码]A
Extraction of Flavonoids from Talinum paniculatum
and It’s Antioxidant Activity
LIU Xiaozhen,TANG Yanji,CHEN Sizhao,ZHOU Jiechun,WANG Huimin,ZHANG Fuping*
(Department of Biology,Hanshan Normal University,Chaozhou,Guangdong521041,China)
Abstract:In order to develop and utilize T.paniculatumbetter,With the microwave-assisted method,
the best extraction technology of flavonoids from T.paniculatum and its oxidation resistance were
studied.The results showed that the best condition is:ethanol concentration 80%,material-liquid ratio 1∶
40(g∶mL),extraction temperature 60℃,extraction time 1.0h,microwave power 160W,microwave
time 40s.The yield of flavonoids could be up to 11.42%in the condition,more than 0.62%higher than
conventional extraction.T.paniculatumflavonoids could clear up hydroxyl radicals,super oxygen free
radicals and resist grease oxidation,the antioxidant activity was significantly,and with the microwave-
assisted method it had a higher extraction yield,which was worthy of exploiting.
Key words:Talinum paniculatum,flavonoids,extraction,antioxidant activity
土 人 参 [Talinum paniculatum (Jacq.)
Gaertn.]为马齿苋科土人参,属一年生草本植物,别
名假人参、参草等,原产热带美洲。土人参具有很好
的药用价值,根健脾润肺,益气生津;叶凉血拔毒;茎
叶可凉拌、炒食,味道鲜嫩、营养丰富,根可炖汤或泡
酒,是一种天然的药食兼用蔬菜[1]。在我国已有较
多栽培研究[2],有一定的开发利用前景。近年的药
理实验[3]研究表明,黄酮类化合物具有多种生物活
性,主要表现在清热解毒、清除自由基、抗癌等作用。
尤其是植物黄酮以其纯天然、高活性等特点得到国
内外科研人员的极大关注[4-9],而有关土人参黄酮物
质的研究未见报道。目前,从植物中提取抗氧化物
质的方法大多采用传统的固液浸提法,该方法存在
时间长、劳动强度大等缺点。微波辅助提取是近年
发展起来的新方法,具有简单、快速、高效的特点,已
被用于天然产物有效成分的提取。
试验以土人参为原料,探讨用微波辅助法从土
人参中提取黄酮类化合物的最佳工艺及其抗氧化性
测定,为更好地开发和利用土人参资源提供理论依
据。
1 材料与方法
1.1 材料
1.1.1 材料 土人参粉末,将采自韩山师范学院
校内土人参洗净晾干切碎,60℃烘干至恒重,经粉粹
机多次粉粹并过60目筛,经石油醚脱脂干燥后即
可。猪油为市售。
1.1.2 试剂 芦丁、无水乙醇、亚硝酸钠、硝酸铝、
氢氧化钠、三氯甲烷、冰乙酸、碘化钾、硫代硫酸钠、
硫酸亚铁、邻二氮菲、过氧化氢和2,6-二叔丁基对
甲苯酚(BHT),均为分析纯。
1.1.3 仪器 HH-8数显恒温水浴锅(江苏金坛
市亿通电子有限公司),101-A数显式电热恒温干燥
箱(上海阳光实验仪器有限公司),JJ-2组织捣碎机
(江苏金坛市亿通电子有限公司),ESJ120-4电子天
平(沈阳龙腾电子有限公司),WD800G微波炉(佛
山市顺德区格兰仕微波炉电器有限公司),WFJ7200
可见分光光度计[龙尼柯(上海)仪器有限公司],高
速离心机(上海安亭科学仪器厂)。
1.2 方法
1.2.1 芦丁标准曲线的制备
1)波长的选择。精确称取芦丁标准品25.00
贵州农业科学 2012,40(11):192~195
Guizhou Agricultural Sciences
mg,配制成浓度为0.25g/L芦丁标准液。分别吸
取芦丁标准液和土人参样品液1.00mL于50mL
的容量瓶中,加入质量分数为5%的 NaNO21.5
mL,摇匀,放置6min后,加入质量分数为10%的
Al(NO3)31.5mL,摇匀,放置6min,加入质量分数
为4%的NaOH 20mL,摇匀显色,用浓度为80%的
乙醇定容至刻度,摇匀静置10min,在340~520nm
探究最佳吸收波长。
2)芦丁标准曲线的建立[4]。精确吸取0mL、
0.2mL、0.4mL、0.6mL、0.8mL、1.0mL、1.2mL、
1.4mL、1.6mL的芦丁标准溶液分别置于50mL容
量瓶中,按照1.2.1中第一步的操作,以吸光度为纵
坐标、芦丁标准液浓度为横坐标,绘制标准曲线。
1.2.2 土人参黄酮化合物的提取及含量的测定
将土人参粉末按照一定乙醇浓度、固液比、浸提温
度、浸提时间、微波时间、微波功率进行提取,离心得
上清液,定容至25mL。取定容好的提取液1mL
于50mL的容量瓶中,按照1.2.1中第一步的操
作,在最佳吸收波长条件下测定系列样品的吸光度。
按公式(1)计算土人参总黄酮类化合物的提取率[5]。
提取率= C×D×Vm×B×1 000×100%
(1)
式中,V 为提取液定容体积(mL),B为吸取测
定体积(mL),C为线性方程计算出的总黄酮浓度
(g/L),D 为测定时定容体积(mL),m 为称取的样
品质量(g)。
1.2.3 单因素试验
1)乙醇浓度。在固液比1∶30(g∶mL,下
同)、浸提温度50℃、浸提时间1.5h、微波功率320
W、微波时间40s的条件下改变乙醇浓度60%、
70%、80%、90%、95%,测定乙醇浓度对土人参黄酮
化合物提取率的影响。
2)固液比。在乙醇浓度70%、浸提温度50℃、
浸提时间1.5h、微波功率320W、微波时间40s的
条件下改变固液比1∶20、1∶30、1∶40、1∶50、1∶
60,测定固液比对土人参黄酮化合物提取率的影响。
3)浸提温度。在乙醇浓度70%、固液比1∶
30、浸提时间1.5h、微波功率320W、微波时间40s
的条件下改变浸提温度40℃、50℃、60℃、70℃、
80℃,测定浸提温度对土人参黄酮化合物提取率的
影响。
4)浸提时间。在乙醇浓度70%、固液比1∶
30、浸提温度50℃、微波功率320W、微波时间40s
的条件下改变浸提时间0.5h、1.0h、1.5h、2.0h、
2.5h,测定浸提时间对土人参黄酮化合物提取率的
影响。
5)微波功率。在乙醇浓度70%、固液比1∶
30、浸提温度50℃、浸提时间1.5h、微波时间40s
的条件下改变微波功率160W、320W、480W、640
W、800W,测定微波功率对土人参黄酮化合物提取
率的影响。
6)微波时间。在乙醇浓度70%、固液比1∶
30、浸提温度50℃、浸提时间1.5h、微波功率320
W 的条件下改变微波时间10s、20s、30s、40s、50
s,测定微波时间对土人参黄酮化合物提取率的影
响。
1.2.4 土人参黄酮化合物提取工艺条件优化 根
据单因素的试验结果,选取乙醇浓度、固液比、微波
功率和浸提时间为考察对象,进行L9(34)正交试
验[10](表1)。
1.2.5 验证实验 根据试验结果所得,在最佳工
艺条件下做平行试验,探究土人参中的总黄酮在此
工艺条件下的提取率稳定性。
表1 土人参黄酮类化合物提取的正交试验设计
Table 1 The orthogonal experiment of extraction of
flavonoids from Talinum paniculatum
水平
Level
A乙醇
浓度/%
Ethanol
concentration
B固液比
(g∶mL)
Material-
liquid rate
C浸提
时间/h
Extraction
time
D微波
功率/W
Microwave
power
1 70 1∶40 1.0 160
2 80 1∶50 1.5 320
3 90 1∶60 2.0 480
1.3 常规提取法与微波辅助法结果的比较
通过溶剂提取法[乙醇浓度80%、固液比1∶
40、浸提温度60℃、浸提时间1.5h]与微波辅助提
取法提取率的比较,进一步探究微波辅助提取土人
参中总黄酮是否有一定的优越性。
1.4 土人参黄酮类化合物抗氧化性的研究
1.4.1 清除羟自由基(·OH)的测定 采用芬顿
试剂生成羟基自由基,按照参考文献[6]的方法,测
定土人参黄酮提取液对羟自由基清除作用,每个样
品平行3次,按公式(2)计算:
·OH清除率=A1-A2A0-A2×100%
(2)
式中,A1为加入试样及 H2O2的吸光度,A2为蒸
馏水替代试样的吸光度,A0为蒸馏水替代试样及
H2O2的吸光度。
1.4.2 清除超氧阴离子自由基(O-2 ·)的测定
按参考文献[7]的方法,测定土人参黄酮提取液对超
氧阴离子自由基的清除作用,每个试样作3个平行
样,取平均值。按公式(3)计算:
O-2 ·清除率=
A对照-A加样
A对照
(3)
1.4.3 抗油脂过氧化值(POV)的测定 称取50g
猪油7份,1为空白对照,2~6分别加入浓度
0.02%、0.1%、0.5%、2.5%、12.5%土人参黄酮提
取液,并与7(0.02%BHT)的抗氧化效果进行比
较,将7个烧杯置于60℃恒温箱中,每隔24h滴定
1次,按公式(4)计算:
POV=
(V2-V1)×C×0.126 9
M
(4)
式中,V1为样品消耗硫代硫酸钠标准滴定溶液
体积(mL),V2为试剂空白消耗硫代硫酸钠标准溶
液滴定体积(mL),C为硫代硫酸钠标准滴定溶液的
·391·
刘晓珍 等 土人参黄酮类化合物的提取及其抗氧化性
LIU Xiaozhen et al The Extraction of Flavonoids from Talinum paniculatum and It’s Antioxidant Activity
浓度(mol/L),m为试样质量(g)。
2 结果与分析
2.1 最适波长的选择
由图1表明:芦丁标准液和土人参样品液的吸收
曲线形状相同,均在360nm处有最大吸收值,故试验
选取360nm作为土人参黄酮提取的最适波长。
吸
光
值
Ab
so
rp
tio
n%
va
lu
e
0.8
0.6
0.4
0.2
0
340%%%%360%%%380%%%%%400%%%%420%%%%%440%%%%460%%%%480%%%500%%%520
波长 /nm
Wavelength
芦丁标准液
土人参样品液
图1 芦丁标准曲线与土人参样品液的吸收曲线比较
Fig.1 The comparison of rutin standard curve
with sample absorption curve
2.2 标准曲线的制作
根据试验方法制得芦丁标准曲线(图2),得回
归方程:y=2.028 3x+0.001 4,R2=0.997 7。从
图2可知,芦丁浓度与吸光度具有很好的相关性。
吸
光
值
Ab
so
rp
tio
n%
va
lu
e
0.20
0.15
0.10
0.05
0.00
0%%%%%%%%%%%%%%%%%0.02%%%%%%%%%%%%%%%0.04%%%%%%%%%%%%%%0.06%%%%%%%%%%%%%%%%0.08%%%%%%%%%%%%%0.1
浓度 /(g/L)
Concentration
y=%2.028%3x+%0.001%4
%R2=%0.997%7
图2 芦丁标准曲线
Fig. The standard curve of rutin
2.3 不同因素对黄酮提取率的影响
2.3.1 乙醇浓度 由图3可知,随着乙醇浓度的
增加,黄酮提取率逐渐增加,当浓度达到80%~
90%时,黄酮提取率达到最大值,乙醇浓度的再次增
加,黄酮提取率反而降低。因此,提取剂乙醇浓度在
70%~90%为宜。
2.3.2 固液比 随着固液比的增加,黄酮提取率
逐渐升高。固液比在1∶(40~60),黄酮类物质溶
出逐渐达到饱和,黄酮提取率变化趋于稳定(图3)。
故固液比在1∶(40~60)比较适宜。
2.3.3 浸提温度 随着温度的增加,黄酮的提取
率增加,但当温度超过60℃时,提取率趋于稳定。
因此,把土人参总黄酮提取的温度定为60℃,不将
其作为正交试验的影响因素(图3)。
2.3.4 浸提时间 随着浸提时间的延长,黄酮的
提取率逐渐增加,但超过1h后,提取率上升缓慢,
当时间超过1.5h后提取率反而开始下降。故土人
参总黄酮提取的浸提时间在1~2h较适宜(图3)。
2.3.5 微波功率 由图3可知,微波功率在160~
320W,土人参黄酮提取率不断上升,超过320W
后,提取率开始下降。故土人参总黄酮提取的微波
功率在160~320W较适宜。
2.3.6 微波时间 随着微波时间的增加,黄酮的
提取率逐渐上升,但上升趋势相对缓慢,40s时提取
率最佳。故把土人参总黄酮提取的微波功率定为
40s,不将其作为正交试验的影响因素(图3)。
2.4 最佳工艺条件的选择
由表2知,各因素对土人参黄酮化合物提取率的
影响主次为A>C>D>B,即乙醇浓度>微波功率>
浸提时间>固液比。经过方差分析,A因素和C因素
对土人参黄酮化合物提取率的影响显著。因此,在工
艺操作中要多加注意。综合分析表明,土人参黄酮化
合物的最佳提取工艺为A2B1C1D2,即乙醇浓度80%、
固液比1∶40、浸提时间1.0h、微波功率160W。
提
取
率
/%
Ex
tra
ct
io
n%
ra
te
%o
f%f
la
vo
no
id
s 12
9
6
3
0
60%%%%%%%%%%70%%%%%%%%%%%80%%%%%%%%%%90%%%%%%%%%%95
乙醇浓度 /%
Ethanol%concentration
Ex
tra
ct
io
n%
ra
te
%o
f%f
la
vo
no
id
s 12
9
6
3
0
1∶20%%%%1∶30%%%%%1∶40%%%%1∶50%%1∶60
固液比 /(g∶mL)
Ratio%of%solid%to%liquid
Ex
tra
ct
io
n%
ra
te
%o
f%f
la
vo
no
id
s 12
9
6
3
0
40%%%%%%%%%50%%%%%%%%%%60%%%%%%%%%%%70%%%%%%%%%80
浸提温度 /℃
Extraction%temperature
Ex
tra
ct
io
n%
ra
te
%o
f%f
la
vo
no
id
s 12
9
6
3
0
0.5%%%%%%%1.0%%%%%%%%%%1.5%%%%%%%%%%2.0%%%%%%%2.5
浸提时间 /h
Extraction%time
Ex
tra
ct
io
n%
ra
te
%o
f%f
la
vo
no
id
s 12
9
6
3
0
160%%%%%%%320%%%%%%%%480%%%%%%%%%640%%%%%%800
微波功率 /W
Microwave%power
Ex
tra
ct
io
n%
ra
te
%o
f%f
la
vo
no
id
s 12
9
6
3
0
10%%%%%%%%%%20%%%%%%%%%%30%%%%%%%%%%40%%%%%%%%%%50
微波时间 /s
Microwave%time
提
取
率
/%
提
取
率
/%
提
取
率
/%
提
取
率
/%
提
取
率
/%
图3 不同因素对黄酮提取率的影响
Fig.3 Effect of different factors on extraction rate of flavonoids
·491·
贵 州 农 业 科 学
Guizhou Agricultural Sciences
表2 土人参黄酮化合物提取 的L9(34)正交试验结果
Table 2 L9(34)orthogonal text results of extraction of flavonoids from Talinum paniculatum
序号
Serial number
A乙醇浓度/%
Ethanol concentration
B固液比/(g:mL)
Material-liquid rate
C浸提时间/h
Extraction time
D微波功率/W
Microwave power
提取率/%
Extraction rate
1 1 1 1 1 9.75
2 1 2 2 2 9.23
3 1 3 3 3 9.01
4 2 1 2 3 10.23
5 2 2 3 1 10.63
6 2 3 1 2 11.35
7 3 1 3 2 10.44
8 3 2 1 3 10.22
9 3 3 2 1 10.05
K1 27.99 30.42 31.32 30.43
K2 32.21 30.08 29.51 31.02
K3 30.71 30.41 30.08 29.46
R1 9.33 10.14 10.44 10.14
R2 10.74 10.03 9.84 10.34
R3 10.24 10.13 10.03 9.82
R 1.41 0.11 0.60 0.52
2.5 验证结果
通过正交试验得到的土人参黄酮化合物最佳工
艺并不在正交表的试验中,需做验证试验。用最佳
工艺做3次平行试验,得平均提取率为11.42%。且
稳定性好,比正交试验6的提取率略高。
2.6 常规提取法与微波辅助法结果的比较
称取土人参粉末1.00g两份,一份按1.2.2步
骤进行微波辅助提取,另一份用常规方法提取。结
果表明,用微波辅助提取比常规提取高0.62%。微
波辅助提取具有明显的优越性。
2.7 抗氧化性的测定
2.7.1 羟自由基(·OH)的清除效果 由图4可
知,土人参黄酮化合物对·OH 的清除效果表现出
量效关系。当黄酮类化合物浓度在0.23mg/mL时
清除率达到87.04%,其IC50小于0.20mg/mL,与
文献[6]中的材料红薯叶相比,土人参中的黄酮类化
合物对·OH具有较强的清除作用。
2.7.2 超氧离子自由基(O-2 ·)的清除效果 由
图4可知,土人参黄酮化合物对O-2 ·的清除作用
清
除
率
/%
Cl
ea
ra
nc
e
100
80
60
40
20
0
0.11%%%%%%%%%%%%%0.14%%%%%%%%%%%%%%%%0.17%%%%%%%%%%%%%%0.2%%%%%%%%%%%%%%%%%%0.23
浓度 /(mg/mL)
Concentration
超氧离子自由基
羟自由基
图4 土人参黄酮类化合物对·OH、O-2 ·的清除效果
Fig.4 The clearance effect of flavonoids Talinum
paniculatum on hydroxyl radical and
superoxide radical
过
氧
化
值
/(
m
eq
/k
g)
Pe
ro
xi
de
%v
al
ue
10
8
6
4
2
0
0%%%%%%%%%%%%%%%%%24%%%%%%%%%%%%%%%%%%48%%%%%%%%%%%%%%%%%%72%%%%%%%%%%%%%%%%%%96%%%%%%%%%%%%%120
时间 /h
Time
空白
0.02%%BHT
0.02%总黄酮浓度(下同)
0.10%
0.50%
2.50%
12.50%
图5 不同浓度的土人参黄酮类化合物与
BHT抗氧化效果比较
Fig.5 Comparison the antioxidant effect of flavonoids of
Talinum paniculatum in different concentration
with BHT
表现出量效关系。在黄酮类化合物浓度0.23mg/
mL时清除率达到70.9%,其IC50小于0.23mg/
mL,与文献[8]中材料莲子壳相比,土人参中的黄酮
类化合物对O-2 ·具有较强的清除作用。
2.7.3 对油脂的抗氧化效果 从图5可知,土人
参黄酮化合物对猪油有一定的抗氧化效果。黄酮化
合物浓度在0.02%~2.50%,抗氧化能力是逐渐增
强且高于0.02%BHT,当浓度达到12.5%时,抗氧
化能力开始下降。故土人参黄酮提取液浓度在
0.50%~2.50%,具有较好的抗氧化作用。
3 结论
微波辅助提取土人参黄酮类化合物的最佳工艺
为乙醇浓度80%、固液比1∶40(g∶mL)、浸提温度
60℃、浸提时间1.0h、微波功率160W、微波时间
40s,此工艺条件下,土人参黄酮类化合物的提取率
为11.42%,比常规提取高0.62%,比香柏[9]的高
6.13%,比八角[5]的低0.77%。
(下转第199页)
·591·
刘晓珍 等 土人参黄酮类化合物的提取及其抗氧化性
LIU Xiaozhen et al The Extraction of Flavonoids from Talinum paniculatum and It’s Antioxidant Activity
与传统提取方法相比,总黄酮的提取率,超声波
细胞破碎法>乙醇回流提取法>沸水提取法,且超
声细胞破碎法所需时间短、提取温度低、能耗少,设
备简单,提取方便,说明超声波细胞破碎法提取效果
较好,在生产中有更强的竞争优势。
[参 考 文 献]
[1] 郁建生.草珊瑚总黄酮:中国.200610051245.2[P].
2007-05-09.
[2] Graham J G,Quinn M L,Fabricant D S,et al.
Plants used against cancer-an extension of the work
of Jonathan Hartwel[J].Journal of Ethnopharmacol-
ogy,2000,73(3):347-377.
[3] Wakte P S,Sachin B S,Patil A A,et al.Optimiza-
tion of microwave,ultra-sonic and supercritical car-
bon dioxide assisted extraction techniques for curcu-
min from Curcuma longa[J].Separation and Purifica-
tion Technology,2011,79(1):50-55.
[4] 郁建生,李英伦.草珊瑚总黄酮提取工艺比较研究
[J].江苏农业科学,2006(5):136-138.
[5] 李胜华,伍贤进,郁建平,等.超声波提取鱼腥草叶总
黄酮优化工艺研究[J].食品科学,2006,27(12):270-
273.
[6] 郁建生,郁建平.草珊瑚总黄酮提取工艺及其含量动
态变化[J].中国中药杂志,2007,32(04):307-309.
[7] 林丽萍,杨 鹏,何辉良.决明子蒽醌的超声法提取工
艺优化[J].贵州农业科学,2011,38(06):185-187.
[8] 肖莉杰,王丽艳,荆瑞勇,等.微波辅助提取脐橙皮多
糖的工艺研究[J].贵州农业科学,2010,39(06):204-
2.
(责任编辑:孙小岚
櫁櫁櫁櫁櫁櫁櫁櫁櫁櫁櫁櫁櫁櫁櫁櫁櫁櫁櫁櫁櫁櫁櫁櫁櫁櫁櫁櫁櫁櫁櫁櫁櫁櫁櫁櫁櫁櫁櫁櫁櫁櫁櫁櫁櫁櫁櫁櫁櫁
)
(上接第195页)
土人参黄酮化合物对羟自由基和超氧离子自由
基都具有清除作用,其IC50值分别小于0.20mg/mL
和0.23mg/mL,比文献[6]的红薯叶和文献[8]莲
子壳均具有较高的清除能力。此外,土人参黄酮化
合物浓度在0.50%~2.50%,比0.02%BHT有较
好的抗氧化作用。研究表明,土人参黄酮类化合物
是良好的天然抗氧化剂,提取方法简单且成本低,稳
定性好,具有广泛的开发前景和利用价值,值得综合
利用和加强资源开发。
[参 考 文 献]
[1] 张福平,陈蔚辉.粤东地区野生蔬菜资源调查研究
[J].汕头大学学报:自然科学版,2005,20(4):71-80.
[2] 柏广利,吴志鹏,张宗俊,等.土人参无公害栽培技术
[J].上海蔬菜,2010(6):69-70.
[3] 曹纬国,刘志勤,邵 云,等.黄酮类化合物药理作用
的研究进展[A].西北植物学报,2003,23(12):2241-
2247.
[4] 张福平,连少虹,陈蔚辉.佛手柑黄酮类化合物提取工
艺研究[J].食品研究与开发,2005,26(6):99-101.
[5] 舒 馨,刘雄民,王 巧.八角和八角残渣总黄酮提取
工艺优化[J].食品科学,2010,31(6):65-69.
[6] 陆 英,吴朝比,蒋华军,等.红薯叶黄酮分离纯化工
艺及抗氧化性研究[J].食品科学,2009,30(14):114-
118.
[7] 杨润亚,明永飞,王 慧.无花果叶中总黄酮的提取及
其抗氧化活性测定[J].食品科学,2010,31(16):78-
82.
[8] 黄迪惠,胡崇琳,HusamM Credy,等.莲子壳提取物
中黄酮类物质的抗氧化活性及结构初探[J].食品科
学,2009,30(23):209-213.
[9] 伏劲松,王 博,蔡光华,等.香柏总黄酮的提取工艺
优化[J].食品科学,2011,32(2):5-8.
[10] 刘魁英.食品研究常用的试验设计与数据分析方法
[J].食品科学,2000,21(12):103-105.
(责任编辑:孙小岚)
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胡美忠 等 细胞破碎法提取草珊瑚总黄酮的工艺优化
HU Meizhong et al Study on total flavone extraction by cel disruption from Sarcandra glabra