全 文 ： 2012, Vol. 33, No. 02 食品科学 ※工艺技术78
超声 -微波协同萃取紫参薯花青素工艺
裴志胜，张海德 *，袁腊梅，辛晓晨，盛灵芝
(海南大学食品学院，海南 海口 570228)
摘 要：以海南产紫参薯为原料，采用Box-Behnken中心组合试验设计优化紫参薯花青素的超声 -微波协同萃取工
艺。分别采用时间模式与恒温模式两种方法，在单因素试验基础上，以花青素提取率为响应值，采用三因素三水
平的响应面分析法进行试验。结果表明：恒温模式时，在额定超声功率 50W、料液比 1:48(g/mL)、萃取时间 283s、
微波控制温度 46℃工艺条件下，紫参薯提取率达 79.38%，较时间模式下高 10.63%，超声 -微波协同萃取的总花青
素质量浓度为 48.42mg/L，即 4.37mg/g。
关键词：紫参薯；花青素；超声 - 微波协同萃取；响应面优化
Ultrasonic/Microwave-Assisted Extraction (UMAE) of Anthocyanins From Purple Yam
PEI Zhi-sheng，ZHANG Hai-de*，YUAN La-mei，XIN Xiao-chen，SHENG Ling-zhi
(College of Food Science, Hainan University, Haikou 570228, China)
Abstract ：Purple yam planted in Hainan province (Dioscoreaceae, Dioscorea alata Linn) was used as the raw material to explore
the optimal extraction process parameters of anthocyanins by ultrasonic/microwave assisted extraction technology. The optimal
extraction process conditions were explored through Box-Benhnken central composite design. The results showed that the
optimal extraction process conditions at the fixed temperature mode were ultrasonic power of 50 W, ultrasonic frequency of 40
kHz, material-liquid ratio of 1:48 (g/mL), extraction time of 283 s and extraction temperature of 46 ℃. Under the optimal extraction
conditions, the yield of anthocyanins was up to 79.38%, which revealed an enhancement by 10.63% compared with the fixed
time mode. The total content of anthocyanins was 48.42 mg/L, namely 4.37 mg/g.
Key words：purple yam；anthocyanins；ultrasonic/microwave-assisted extraction (UMAE)；response method
中图分类号：TS201.2 文献标识码：A 文章编号：1002-6630(2012)02-0078-06
收稿日期：2011-06-28
基金项目：教育部高等学校博士学科点专项科研基金项目(20080565000)；农业部热带作物种质资源保护专项(10RZZY-33)；
海南大学 211工程建设创新人才培养项目
作者简介：裴志胜(1985—)，男，硕士研究生，研究方向为农产品深加工。E-mail：pzs183@163.com
*通信作者：张海德(1970—)，男，教授，博士，研究方向为农产品深加工。E-mail：zhanghaide@163.com
参薯来源于薯蓣科植物参薯(Dioscorea alata L.)的
根茎，可入药。海南参薯种植历史悠久，《正德琼台
志》一书中就有过详细记载[1]。其主要分布于亚热带及
热带地区，富含碳水化合物、蛋白质、多糖、各种
维生素及人体所需微量元素，长期食用可强体、抗病。
紫参薯肉呈紫红色，富含色素。
花青素(Anthocyanins)是一种水溶性色素，常见于
花、果实的组织中及茎叶的表皮细胞与下表皮层。花
青素作为天然色素，具有较高的安全性能，属于功能
性食品添加剂。花青素对人体有抗氧化、强血管弹性、
改善循环系统、抑制炎症和过敏等保健功效[ 2 ]。
超声 -微波协同萃取技术将超声振动与开放式微波
两种作用方式结合，利用微波的高能作用与超声波的空
化作用，实现对样品进行快速、高效、可靠的处理。
国内对于紫参薯的超声 -微波协同萃取花青素未见报道。
本实验通过响应面法优化超声 -微波协同萃取紫参薯花青
素工艺，确定其最佳工艺条件，旨在为紫参薯花青素
纯化与活性研究等提供一定参考。
1 材料与方法
1.1 材料、试剂与仪器
新鲜紫参薯由海南大学农学院提供，洗净、去
皮、切片，于 4 0℃真空条件下干燥，粉碎备用。
氯化钾、醋酸钠、盐酸、柠檬酸、磷酸氢二钠
79※工艺技术 食品科学 2012, Vol. 33, No. 02
均为分析纯。
HB12-44型粉碎机；CP225D型分析天平；UV-2450
型紫外 -可见分光光度计 北京普析通用仪器有限责任
公司；HH-8型数显恒温水浴锅；DC-1006型低温恒温
槽；DZF-6053型真空干燥箱；Hettich32R型高速冷冻
离心机；pH s-2c型精密酸度计；Alpha 1-4 LSC型冷
冻干燥机 德国Christ公司；CW2000超声 -微波协同
仪由上海新拓微波溶样测试有限公司生产，工作原理见
图 1，样品容器与功率为 50W的超声波换能器紧密粘结
后置于微波辐射内使产生直接超声振动，同时，磁控
管上发射天线的微波(0～80W可调节)通过波导管作用于样品
与溶剂，受热溶剂蒸气经冷凝管冷却并回流至样品容器。
1.2 方法
1.2.1 紫参薯色素的提取及测定
1.2.1.1 紫参薯色素最大吸收波长的确定
色苷及其衍生物特征吸收峰的范围。故本实验选择在波
长 538nm处测定紫参薯色素提取液的吸光度。
1.2.1.2 pH值示差法测定吸光度[4]
分别用 0.025mol/L pH1.0(± 0.1)氯化钾缓冲液和
pH4.5(± 0.1)的醋酸钠缓冲液，将样品稀释适当倍数，暗
处静置平衡 130min，蒸馏水做空白，用 1cm比色杯，在
最大吸收波长 538nm和 700nm处测定稀释液的吸光度。
根据 Fuleki等[4]的计算方法转换花青素浓度。

A×MW×DF×1000
TAcy花青素质量浓度 /(mg/L)＝——————————

ε×1
式中：A 为吸光度；ε为矢车菊花素 -3 - 葡萄糖苷
的消光系数，26900 [5](L/(cm·mg))；DF为稀释因子；
MW为矢车菊花素 -3-葡萄糖苷的相对分子质量，449.2；
A＝(A538nm pH1.0－ A700nm pH1.0)－(A538nm pH4.5－ A700nm pH4.5)。
1.2.1.3 提取率的测定
取处理后原料约 1.000g，在 40℃、料液比 1:30(g/mL)
条件下，多次重复提取，直到提取液为无色，停止继
续提取，合并各次提取液，测出 T A c y 总，计算提取率。

TAcy
提取率/%＝————× 100

TAcy总
1.2.2 超声 -微波协同萃取两种模式下萃取提取工艺单
因素试验[6-9]
1.2.2.1 恒温模式萃取提取工艺单因素试验
使仪器自动控制微波的输出功率，使实际的工作温
度等于温度设定值，微波的输出功率为经过 PID运算后
的功率，超声功率为额定 5 0 W。
微波控制温度：料液比 1:40，分别采用不同的萃
取温度(20、30、40、50、60℃)提取，提取时间 120s，
收集提取液，8000r/min离心处理。
提取液料液比：分别采用不同的料液比[ 1 : 2 0、
1:40、1:60、1:80、1:100(g/mL)]进行提取，提取时间 120s，
提取温度 50℃，收集提取液，8000r/min离心处理。
萃取时间：料液比 1:40，提取温度 50℃，提取时
间分别设定为 60、120、180、240、300s，收集提取
液，8000r/min离心处理。
1.2.2.2 时间模式萃取提取工艺单因素试验
仅受控于时间，微波输出功率等于设定值，超声
功率为额定 50W。
萃取时间：料液比 1:40，提取时间分别设定为 60、
90、120、150、180s，微波功率 60W，冷却收集提
取液，8000r/min离心处理。
微波萃取功率：料液比 1:40，提取时间 120s，微
波功率分别设定为 20、40、60、80、100W，冷却收
图 1 超声 - 微波协同萃取装置示意图
Fig.1 Schematic diagram of the combined ultrasonic and
microwave device
水循环
磁控管
聚焦微波
样品容器
超声波压电换能器
图 2 紫参薯色素紫外 - 可见光谱图
Fig.2 UV-visible spectrum of purple yam anthocyanins
3.200
2.405
1.610
0.815
0.020
236.00, 3.0141
A
波长/nm
200 300 400 500 600 700
284.00, 1.6720
538.00, 0.6158
紫参薯粉 1.000g放入 50mL烧杯中，加入 50mL蒸
馏水作为提取剂[3]，充分混合均匀，在恒温水浴箱中 45
℃水浴浸取 60min，浸取液经过离心定容，然后在紫外
分光光度计进行光谱扫描。
由图2可知，紫参薯色素的粗提取液在紫外区270～
285nm和可见区 510～540nm之间有吸收峰出现，属于花
2012, Vol. 33, No. 02 食品科学 ※工艺技术80
集提取液，8000r/min离心处理。
提取液料液比：料液比分别设定为 1 :20、1 :40、
1:60、1:80、1:100(g/mL)，进行提取，提取时间 120s，
微波功率 60W，收集提取液，8000r/min离心处理。
1.2.3 超声 -微波协同萃取提取工艺响应面试验
恒温模式：在单因素试验的基础上，以料液比、
微波控制温度、萃取时间 3因素为考察对象，采用响应
面并试验设计，以获取最佳工艺参数。
时间模式：在单因素试验的基础上，以料液比、
萃取时间、微波萃取功率 3因素为考察对象，采用响应
面分析并设计试验，以获取最佳工艺参数。
1.2.4 统计学分析[10]
使用 SAS 9.0及Design-Expert软件对数据进行统计
学分析，每组试验均重复 3 次，试验数据表示为“平
均值±标准偏差”。
2 结果与分析
2.1 单因素试验
2.1.1 恒温模式
2.1.1.1 微波控制温度
由图 3可知，微波控制温度对紫参薯花青素的提取
率影响不大，但由于花青素类物质属于热敏性物质，故
提取温度不宜过高，故选择 40～60℃作为紫参薯中花青
素提取的萃取温度。
2.1.1.2 料液比
由图 4可知，当料液比小于 1:40时，花青素提取
率随料液比的变化不大，考虑过高的料液比会增加后续
的能耗，增加成本，故选择料液比在 1:40～1:80(g/mL)
范围内较好。
2.1.1.3 萃取时间
由图 5 可知，随着提取时间的延长，花青素的提
取率在 240s达到最高，300s时又呈现下降趋势。可能
是由于花青素易富含酚羟基可作为H供体，提取时间过
长被空气中的氧气所氧化，故萃取时间选择在 1 8 0～
300s 范围内较好。
2.1.2 时间模式
2.1.2.1 萃取时间
图 4 料液比对紫参薯花青素提取率的影响
Fig.4 Effect of material-liquid ratio on extraction rate of purple yam
anthocyanins
80
70
60
50
40
30
20
10
0
花
青
素
提
取
率
/%
料液比(g/mL)
1:20 1:40 1:60 1:80 1:100
图 5 萃取时间对紫参薯花青素提取率的影响
Fig.5 Effect of extraction time on extraction rate of purple yam
anthocyanins
74.5
74.0
73.5
73.0
72.5
72.0
71.5
71.0
70.5
70.0
69.5
69.0
花
青
素
提
取
率
/%
60 120 180 240 300
超声 -微波协同萃取时间 /s
图 6 萃取时间对紫参薯花青素提取率的影响
Fig.6 Effect of extraction time on extraction rate of purple yam
anthocyanins
70
68
66
64
62
60
58
56
花
青
素
提
取
率
/%
60 90 120 150 180 210
超声 -微波协同萃取时间 /s
由图 6可知，在 660～180s内，随着时间的延长花
青素提取率升高，但 210s 后降低，可能是由于随着萃
取时间的延长，提取温度升高，使花青素类物质分解
与氧化，故萃取时间选择在 150～210s 范围内较好。
2.1.2.2 微波功率
由图 7 可知，由于随着微波功率的增加，提取温
度的升高，可能使花青素类物质分解，故微波功率选
择在 60～100s范围内较好。
图 3 萃取微波控制温度对紫参薯花青素提取率的影响
Fig.3 Effect of extraction temperature on extraction rate of purple yam
anthocyanins
80
70
60
50
40
30
20
10
0
花
青
素
提
取
率
/%
超声 -微波协同萃取温度/℃
20 30 40 50 60
81※工艺技术 食品科学 2012, Vol. 33, No. 02
2.1.2.3 料液比
由图 8可知，料液比在 1:40时花青素提取率达到较
高水平，考虑过高的料液比会增加后续的能耗，增加
成本，故料液比选择在 1:20～1:60范围内较好。
2.2 响应面试验[11-13]
2.2.1 时间模式
因素
编码
水平
1 0 － 1
料液比(g/mL) X1 1:60 1:40 1:20
提取时间 /s X2 210 180 150
微波功率 /W X3 100 80 60
表 1 时间模式响应面分析试验因素与水平
Table 1 Factors and levels of orthogonal tests at the condition of fixed
time mode
试验号 料液比 提取时间 微波功率 提取率/%
1 － 1 － 1 0 58.00
2 － 1 1 0 62.93
3 1 － 1 0 67.31
4 1 1 0 65.76
5 0 － 1 － 1 64.25
6 0 － 1 1 61.25
7 0 1 － 1 67.04
8 0 1 1 63.08
9 － 1 0 － 1 63.11
10 1 0 － 1 68.46
11 － 1 0 1 61.08
12 1 0 1 67.88
13 0 0 0 66.58
14 0 0 0 67.27
15 0 0 0 65.96
表 2 时间模式响应面中心组合试验设计及结果
Table 2 Design and results of response surface central composite
tests
2.2.1.1 回归模型的检验
以料液比 X1、提取时间 X2、微波功率 X3为试验因
素，花青素提取率(Y )为考察指标的回归模型为：
Y＝－0.53173＋0.007529X1＋0.010385X2＋0.001903X3－
0.000023X12－ 0.000027X1X2＋ 9.053× 10 － 6X1X3－
0.000024X22－ 4.028× 10－ 6X2X3－ 0.000013X32
来源 自由度 平方和 均方 F值 P值
模型 9 0.012426 0.001381 20.17972 0.002046
线性 3 0.009316 0.003105 45.38907 0.000475
平方 3 0.001985 0.000662 9.669158 0.015972
交互 3 0.001125 0.000375 5.48094 0.048809
残差 5 0.000342 0.000068
失拟误差 3 0.000257 0.000086 2.006599 0.349679
纯误差 2 0.000085 0.000043
总和 14 0.012768
R2=0.97326，R2Adj=0.9250
表 3 时间模式回归模型方差分析
Table 3 Variance analysis of regression models
图 7 微波功率对紫参薯花青素提取率的影响
Fig.7 Effect of microwave power on extraction rate of purple yam
anthocyanins
70
68
66
64
62
60
58
56
54
52
花
青
素
提
取
率
/%
20 40 60 80 100
微波功率/W
图 8 料液比对紫参薯花青素提取率的影响
Fig.8 Effect of material-liquid ratio on extraction rate of purple yam
anthocyanins
64
63
62
61
60
59
58
57
56
55
花
青
素
提
取
率
/%
料液比(g/mL)
1:20 1:40 1:60 1:80 1:100
由表 3可知，此模型 R2为 0.97326，R2Adj为 0.9250。
响应面回归模型达到极显著水平(P＝ 0.002046＜ 0.01)，
说明该二次模型能够拟合真实的试验结果，试验误
差小 [ 1 4 - 1 5 ]。表 3 表明，在所选择因素水平范围内，
对结果影响的大小顺序为料液比＞微波功率＞提取
时间。
2.2.1.2 两因素交互作用分析
因素水平编码如表 1所示，响应面分析方案及试验
结果如表 2所示。采用Design-Expert软件对所得数据进
行分析。回归分析结果见表 3。
2012, Vol. 33, No. 02 食品科学 ※工艺技术82
来源 估计值 标准误差 t值 P值
X1 0.030357 0.002924 10.38077 0.000143
X2 0.009995 0.002924 3.417758 0.018884
X3 － 0.01196 0.002924 － 4.0897 0.00945
X12 － 0.00938 0.004305 － 2.17979 0.081135
X1X2 － 0.0162 0.004136 － 3.91595 0.011228
X1X3 0.003621 0.004136 0.875605 0.421309
X22 － 0.02163 0.004305 － 5.02373 0.004022
X2X3 － 0.00242 0.004136 － 0.58436 0.584352
X32 － 0.00534 0.004305 － 1.24151 0.26948
表 4 时间模式回归方程系数显著性检验
Table 4 Significance test for regression coefficients of regression
models
由表 4可知，所得模型中仅料液比 X1与提取时间 X2
交互作用达到显著水平(P＜ 0.05)，其他因素交互效应均
不显著。作料液比 X 1与提取时间 X 2两因素交互作用对
花青素含量影响响应面图见图 9。
2.2.2 恒温模式
恒温模式响应面分析试验因素水平编码如表 5 所
示，响应面分析方案及试验结果如表 6 所示。采用
Design-Expert软件对所得数据进行分析，回归分析结果
见表 7 。
因素 水平
编码
1 0 － 1
料液比(g/mL) X1 1:40 1:60 1:80
提取时间 /s X2 180 240 300
微波控制温度 /℃ X3 40 50 60
表 5 恒温模式响应面分析试验因素与水平表
Table 5 Design and results of response surface tests at the condition of
fixed temperature mode
试验号 料液比 提取时间 微波控制温度 提取率/%
1 － 1 － 1 0 74.26
2 － 1 1 0 79.14
3 1 － 1 0 72.53
4 1 1 0 78.68
5 0 － 1 － 1 72.18
6 0 － 1 1 73.07
7 0 1 － 1 78.95
8 0 1 1 75.27
9 － 1 0 － 1 77.86
10 1 0 － 1 74.52
11 － 1 0 1 76.23
12 1 0 1 74.10
13 0 0 0 79.11
14 0 0 0 79.08
15 0 0 0 78.91
表 6 恒温模式响应面中心组合试验结果及预测值
Table 6 Experimental and predicted values of central composite
design
2.2.2.1 回归模型的检验
以料液比 X1、提取时间 X2、微波控制温度 X3为试
验因素，花青素提取率(Y )为考察指标的回归模型为：
Y＝－0.29483＋0.000179X1＋0.003838X2＋0.024149X3－
0.000023X12＋2.661×10－ 6X1X2＋0.000028X1X3－5.477×
10－ 6X 22－ 0.000019X 2X 3－ 0.00022X32
来源 自由度 平方和 均方 F值 P值
模型 9 0.009856 0.001095 27.68574 0.000962
线性 3 0.006031 0.00201 50.82231 0.000362
平方 3 0.003226 0.001075 27.18719 0.0016
交互 3 0.000599 0.0002 5.047724 0.056694
残差 5 0.000198 0.00004
失拟误差 3 0.000195 0.000065 54.30284 0.018137
纯误差 2 2.40× 10-6 1.20× 10-6
总和 14 0.010054
R2=0.9803；R2Adj=0.9449
表 7 恒温模式回归模型方差分析
Table 7 Variance analysis of regression models
由表 7可知，此模型的 R2为 0.9803，R2Adj为 0.9449。
响应面回归模型达到极显著水平(P＝ 0.000962＜ 0.01)，
说明该二次模型能够拟合真实的试验结果，试验误差
小。在所选择因素水平范围内，对结果影响的大小顺
序为：提取时间＞料液比＞温度。
2.2.2.2 两因素交互作用分析
由表 8可知，所建立的提取数据模型中仅提取时间
X2与微波控制温度 X3交互作用达到显著水平(P＜ 0.05)。
其他因素交互效应均不显著。作提取时间 X2与微波控制
温度 X 3 两因素交互作用图，见图 10。
固定水平：微波功率 8 0 W。
图 9 时间模式处理时间和料液比交互作用对花青素含量影响的
响应面
Fig.9 Response surface plots for the effect of cross-interaction among
extraction time and material-liquid ratio on the content of
anthocyanins from purple yam
69
66
63
60
57
提
取
率
/%
1.0
0.5
0.0
－ 0.5
－1.0 －1.0－ 0.5
0.0
0.5
1.0
B：处理时间 A：
料液
比
83※工艺技术 食品科学 2012, Vol. 33, No. 02
来源 估计值 标准误差 t值 P值
X1 － 0.00958 0.002224 － 4.30901 0.00765
X2 0.02501 0.002224 11.24718 0.0001
X3 － 0.00605 0.002224 － 2.72037 0.041757
X12 － 0.01037 0.003273 － 3.16675 0.024905
X1X2 0.003194 0.003145 1.015538 0.356444
X1X3 0.003002 0.003145 0.954715 0.383566
X22 － 0.01847 0.003273 － 5.6418 0.002427
X2X3 － 0.01143 0.003145 － 3.63323 0.01501
X32 － 0.02321 0.003273 － 7.09101 0.000864
表 8 恒温模式回归方程系数显著性检验
Table 8 Significance test for regression coefficients of regression
models
2.2.3 最佳条件优化
2.2.3.1 恒温模式
将回归方程用 LINGO语言进行分析，得到最佳方
案为：在额定超声功率为 50W条件下，料液比 1:48.08
(g/mL)、提取时间 282.72s、微波控制温度 45.73℃，紫
参薯花青素提取率的理论值为 80.43%。
验证响应面法的可行性，料液比 1:48(g/mL)、萃取
时间 283s、微波控制温度 46℃对紫参薯粉末进行提取验
证实验。3次平行实验得到实际平均提取率为 79.38%，
与理论值相比，其相对误差约为 1. 31%。
2.2.3.2 时间模式
将回归方程用LINGO语言进行分析，得到最佳方案
为：在额定超声功率为 50W条件下，料液比 1:60(g/mL)、
萃取时间 176.47s、微波功率 65.64W，紫参薯花青素提
取率的理论值为 69.01%。
验证响应面法的可行性，料液比 1:60(g/mL)、萃取
时间 176s、微波功率 66W对紫参薯粉末进行提取验证
实验。3次平行实验得到实际平均提取率为 68.75%，与
理论值相比，其相对误差约为 0. 38%。
在恒温模式条件下，紫参薯花青素的提取率明显高
于时间模式条件。在时间模式条件下，在一定的功率条
件下，提取温度随着提取时间增加而不断上升，对于花
青素类热敏物质高温对其的破坏也较严重。而在恒温模
式条件下则有效的控制温度对花青素类热敏物质的影响，
故其花青素提取率要远高于时间模式条件下的提取。
3 结 论
采用Box-Behnken型的中心组合试验设计原理，建
立紫参薯超声波微波协同萃取辅助提取的数学模型。在
采用恒温模式条件下的最佳工艺参数为：在额定超声功
率 50W条件下，料液比 1:48(g/mL)、萃取时间 283s、
微波控制温度 46℃，在此工艺条件下的紫参薯的提取率
达 79.38%，即超声 -微波协同萃取的总花青素质量浓度
为 48.42mg/L，即 4.37mg/g。可知紫参薯是一种极具开
发价值的花青素提取原料[16]。
参 考 文 献 ：
[1] 王茀能, 汪飞杰, 王天云. 海南岛大薯毛薯等资源考察初报[J]. 作物
品种资源, 1991(2): 8.
[2] 毛颖异, 张立实. 花青素研究进展[DB/OL]. (2008-12-04). http://d.g.
wanfangdata.com.cn/Conference_7110500.aspx2008-12.
[3] 黄光文, 张卫军, 赵雨云. 参薯紫色素的提取工艺和稳定性研究[J].
零陵学院学报, 2004, 25(3): 60-62.
[4] FULEKI T. FRANCIS F J. Quantitative method for anthocyanins .
extraction and determination of total anthcyanins in cranberries[J]. Jour-
nal of Food Science, 1968, 33(3): 266-274.
[5] LEE J, DURST R W, WROLSTAD R E. Determination of total mono-
meric anthocyanin pigment content of fruit juices, beverages, natural
colorants, and wines by the ph differential method: collaborative study
[J]. Journal of AOAC INTERNATIONAL, 2005, 88(5): 1269-1278.
[6] 杨朝霞. 紫甘薯花色苷色素提取纯化工艺研究及组分分析[D]. 青岛:
青岛大学, 2004.
[7] 邹世春, 帅率, 栾天罡, 等. 超声 -微波协同萃取装置用于土壤中多
环芳烃的分析[J]. 分析化学, 2006, 34(6): 889-893.
[8] CHEN Yiyong, GU Xiaohong, HUANG Shen-quan, et al. Optimization of
ultrasonic/microwave assisted extraction (UMAE) of polysaccharides from
Inonotus obliquus and evaluation of its anti-tumor activities[J]. Interna-
tional Journal of Biological Macromolecules, 2010, 46(4): 429-435.
[9] WANG Jing, Sun Baoguo, CAO Yanping, et al. Optimization of ultra-
sound-assisted extraction of phenolic compounds from wheat bran[J].
Food Chemistry, 2008, 106(2): 804-810.
[10] ZHANG Lianfu, LIU Zelong. Optimization and comparison of ultra-
sound/microwave assisted extraction (UMAE) and ultrasonic assisted
extraction (UAE) of lycopene from tomatoes[J]. Ultrasonics
Sonochemistry, 2008, 15(5): 731-737.
[11] 易阳, 张名位, 廖森抬, 等. 龙眼多糖超声波 -酶解辅助提取工艺优
化[J]. 农业机械学报, 2010, 41(5): 131-136.
[12] HUANG Liying, CAO Yangyuan, CHEN Guonan. Purification of quercetin
in Anoectochilu roxburghii (Wall) Lindl using UMAE by high-speed
counter-current chromatography and subsequent structure identification[J].
Separation and Purification Technology, 2008, 61(1): 101-107.
[13] 詹太华. 紫脚板薯色素的提取、理化性质及体外抗氧化活性的研究
[D]. 南昌: 南昌大学, 2008.
[14] 刘钟栋, 李坤, 高莉, 等. 蔗糖多酷合成工艺的响应面法优化[J]. 农
业机械学报, 2008, 39(2): 85-88.
[15] 全国文献工作标准化技术委员会第七分委员会. GB 6718—1986 食
品添加剂: 萝卜红[S]. 北京: 中国标准出版社, 1986.
[16] 刘超, 王征, 李鑫, 等. 高效液相色谱法分析不同品种紫甘薯中花青
素组分及其含量[J]. 中国食品与营养, 2008(8): 19-21.
固定水平：料液比 1:60(g /mL)。
图 10 微波控制温度和处理时间交互作用对花青素含量影响的
响应面
Fig.10 Response surface plots for effect of cross-interaction among
extraction temperature and extraction time on the content of
anthocyanins from purple yam
80.200
78.075
75.950
73.825
71.700
提
取
率
/%
1.0
－1.0－ 0.5
0.0
0.5
1.0
C ：温度
B：
处理
时间
0.5
0.0
－ 0.5
－1.0