全 文 ：园林科技 2012年第3期 总第125期
1 引言
香石蒜（Lycoris incarnata）是石蒜科石蒜属的多
年生草本鳞茎植物 [1]，其下部为褐色或黑褐色膜质
皮包裹的鳞茎， 鳞茎卵球形。 它是石蒜属中一种稀
有的自然杂交后代，产于中国湖北、云南等省份。 其
花为肉红色并有红色中肋，边缘呈波形，仅稍反曲，
如图 1 A。开花时间在 9~10月，异花授粉，花后种子
多不能成熟花葶枯萎；叶展于 3~5 月，其叶带状或
狭剑状，绿色，中间淡色带不明显，笔挺向上，如图
1B。 石蒜属植物不仅具有观赏价值，而且也具有广
泛的药理活性作用 [2]，但由于本属植物一般通过自
然分球繁殖，繁殖系数低，多数种每年仅能分生 1~2
个子球，而子球到开花需要 3~4 年时间，因此大大
制约了这一优良稀有品种的规模化生产。迄今为止，
石蒜属的常见种如石蒜 （Lycoris radiata）、 忽地笑
（Lycoris aurea）、长筒石蒜（Lycoris longtub）等已经掌
握了组培快繁技术 [3-5]，但稀有的香石蒜的组培快繁
技术尚未见报道。
2 材料与方法
2.1 试验材料
于 2009 年 1~3 月选择露地 1~2 年生的香石蒜
（Lycoris incarnata）鳞茎作为试验材料。 试验前 1~2
周停止对供试植株浇水， 将鳞茎放入 4℃冰箱冷藏
4~6 周， 这对于提高外植体的分化能力有显著的效
果并可以降低污染率[6]。
2.2 试验方法
选取完好无损的 1~2 年生的香石蒜鳞茎，要求
其大小一致，无病虫害。石蒜属植物在组培过程中的
污染多数是由于细菌引起的[7]，所以灭菌是一个不可
忽视的环节。切去根部和颈部，剥去外层的褐色膜质
表皮，流水冲洗 20min 左右后用洗洁精浸泡 20min，
然后再流水冲洗 1h；在无菌条件下用 75%的酒精溶
液浸泡 2min，再用 0.1%的 HgCl2 溶液溶液浸泡
15min；再用无菌水冲洗 5~6 次，每次 2min；灭菌后
用无菌纸吸干鳞茎表面的水分，将鳞茎切留距基盘
1/3 的高度，每个鳞茎平均对切为 4 块，然后将每片
香石蒜的组培快繁技术研究
单 卓 1 张海珍 2 黄冠军 2 赵 赟 2 徐云茜 2 周 虹 2
（1.山东省台儿庄区农业局， 山东 277400； 2.杭州植物园， 杭州 310013）
摘 要： 本文以香石蒜鳞茎为材料，研究不同激素浓度配比对香石蒜组培快繁的影响，并找出各阶段最适于香石蒜
组培快繁的激素比例。结果表明：MS +NAA1 mg/L +6-BA5 mg/L为诱导培养基的最佳选择，此时出芽率达最大值且长
势良好，分别为 70.8%；MS + NAA0.5 mg/L +6-BA 5mg/L时增殖效果最好，长势旺；含 NAA 1mg/L的 1/2MS生根培
养基生根较理想，生长良好，平均每个小鳞茎生 4.1条根。
关键词： 香石蒜；组培；诱导；鳞茎
图 1 香石蒜的花叶形态
A：香石蒜花（夏季）； B：香石蒜叶（冬季）
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园林科技 2012年第3期 总第125期
分内外两层切开，每块有 3~4层鳞片。
2.2.1 初代培养
将切好的外植体接入含 NAA（0.2、0.4、1、1.5mg/
L），6-BA（2、5、7、10mg/L），蔗糖 25g/L，植物凝胶 2g/
L 的 MS 诱导培养基中进行诱导培养，诱导培养 3d
后鳞片膨胀卷曲，30~35d 后鳞片之间可见小鳞茎
产生。
2.2.2 增殖培养
发现小鳞茎后，将生长于诱导培养基上外植体
转接于含 6-BA （3、5、10mg/L），NAA （0.2、0.5、1.0、
1.5 mg/L），蔗糖 25g/L，植物凝胶 2g/L 的 MS 增殖培
养上进行增殖培养； 培养 15~20d 后统计增殖后的
小鳞茎个数及生长状况。
2.2.3 生根培养
待小鳞茎直径为 0.3~0.8cm 时，将其接种到含
NAA（0.2、1、2 mg/L），蔗糖 25g/L 和植物凝胶 2g/L
的 1/2MS 生根培养基中，20d 左右小鳞茎基部生出
根系。
2.2.4 培养基的配制与培养条件
1） 培养基的配制与灭菌
以 MS、1/2MS 为基本培养基，根据试验需要向
其中加入 NAA、6-BA、蔗糖 、植物凝胶 ，pH 调至
5.8，经 120℃高温高压灭菌 20min。
2） 培养条件
培养室温度为 25±2℃，光照时间为 12h/d，光照
强度为 2500lx左右。
3 结果与分析
将香石蒜外植体接种到含不同激素配比的诱导
培养基中，在培养室培养 30d，对其进行观察和数据
统计。 激素在整个组培过程中包括诱导、增殖、生根
均起到关键作用，对培养的效果好坏起着决定性的
作用[8]。将外植体接种于不含任何激素的 MS培养基
中也会诱导成功，但是诱导率低且需要时间较长。将
外植体接种于培养基中后，3~4d 左右鳞片开始膨胀
张开或芽叶膨大卷曲，如图 2A 所示。 然后经过 20d
左右在鳞片间的夹角处开始出现米粒状突起，再过
10~15d长成小鳞茎。
3.1 不同激素配比对诱导阶段的影响
本试验结果表明，由表 1 可知，当 NAA 浓度不
变，不同浓度的 6-BA 出芽率不同，随着 6-BA 浓度
的增加至 5 或 7mg/L，出芽率、成芽率均逐渐增加到
达一个顶点，然后开始下降。其它浓度的 6-BA也能
分化芽，但不是芽长势不好就是成芽数少。 当 6-BA
浓度不变，只改变 NAA 的过程中，不同浓度的 NAA
时出芽率也不同，随着 NAA浓度的增加其出芽率变
化的大趋势是在不断上升，当 NAA 浓度为 1mg/L
时，出芽率达最大值，此时成芽数也达最大值。
同时，浓度的配比是一个不能忽视的问题。并不
是所含激素浓度越高的培养基所培养出的外植体的
成芽率就越高，例如 NAA0.2 mg/L+6-BA10 mg/L 比
NAA0.2 mg/L +6-BA7 mg/L 的成芽率低，NAA1mg/L
+6-BA7mg/L 比 NAA 1mg/L+6-BA 5mg/L 的成芽率
激素配比编号 激素配比 NAA+6-BA（mg/L） 外植体个数
出芽的
外植体数
出芽率（%） 成芽数 成芽系数
1 0.2+2 22 8 36.4 16 2.1
2 0.2+5 20 9 45 17 1.9
3 0.2+7 24 12 50 24 2
4 0.2+10 20 5 25 5 1
5 0.4+2 26 10 38.5 24 2.4
6 0.4+5 18 10 55.6 25 2.5
7 0.4+7 24 11 45.8 27 2.5
8 0.4+10 26 12 46.2 21 1.8
9 1+2 20 8 40 10 1.3
10 1+5 26 18 70.8 76 4.2
11 1+7 22 14 63.6 36 2.5
12 1+10 20 10 50 20 2.0
表 1 不同激素配比的诱导率比较
注：成芽系数=成芽数/出芽的外植体数
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NAA
浓度
（mg/L）
小鳞
茎个
数
生根的
小鳞茎
个数
平均每个
小鳞茎生
根条数
生根率
（%）
根系状态
0 12 8 2 67
黄白色，生长
一般，根较细弱
0.2 12 10 2 83
白色，根系粗壮，
生长缓慢且根少
1 12 11 4.1 92 白色，生长良好
2 12 12 6.2 100
白色，生长过于
旺盛，根系过多
表 3 不同浓度的 NAA 对小鳞茎生根率的比较
图 2 香石蒜组培快繁全过程
A：接入培养基3d的鳞片张开；B：NAA1mg/L+6-BA5mg/L的
MS培养基诱导出小鳞茎；C：NAA0.5mg/ml+6-BA5mg/ml增
殖效果；D：NAA1.5mg/ml+6-BA10mg/ml增殖效果，周围出
现丛生芽；E：NAA1mg/L的1/2MS生根培养基诱导生根。
NAA+6-BA(mg/L) 小鳞茎个数
增殖后获得的小鳞
茎数
增值系数 生长状况
0.2+3 12 14 1.2 芽增殖较少，长势一般
0.2+5 12 28 2.3 芽增殖较好，长势一般
0.2+10 12 20 1.7 芽增殖较好，长势旺
0.5+3 12 31 2.6 芽增殖好，长势旺
0.5+5 12 40 3.3 芽增殖好，长势旺
0.5+10 12 37 3.0 芽增殖好，长势旺
1.0+3 12 16 1.3 芽增殖少，长势一般
1.0+5 12 33 2.8 芽增殖好，长势旺
1.0+10 12 19 1.6 芽增殖少，出现少量玻璃化
1.5+3 12 16 1.3 增殖较少，有生根现象
1.5+5 12 29 2.4 增殖较好，有轻微生根现象
1.5+10 12 28 2.3 小植株周围出现丛生芽，并伴有轻微生根现象
表 2 不同激素配比的增殖率的比较
低。 最终结果显示诱导培养基的最佳激素浓度配比
是 NAA1 mg/L +6-BA 5mg/L，此时出芽率和成芽系
数均达最大值且长势良好，如图 2 B 所示，分别为
70.8%、4.2，见表 1。
3.2 不同激素配比对增殖阶段的影响
激素是培养基中的关键物质，其用量虽小，但在
组培中起着明显的调节作用。 适宜的激素配比可以
使增殖系数达到最大，获得更多的小鳞茎。当诱导出
小鳞茎后，将其切成单株。将每个小鳞茎分别接种到
含不同激素的增殖培养基中进行增殖培养。 20~30d
后在原来小鳞茎的基部长出新的鳞茎。总的来说，如
表 2 所示，当 NAA 为 0.5mg/L 时，小鳞茎长势较好，
芽增殖效果佳。 随着 NAA浓度的增加，逐渐有生根
现象出现，这主要是因为当 NAA/6-BA 大于一定值
时会促进根系的生成 。 比如 NAA1.5 mg/L +6 -
BA3mg/L 的培养基中就有部分鳞茎出现生根现象，
这并不是一个好现象，因为这样会影响鳞茎的增殖。
当 6-BA 为 5 或 10mg/L 时，增殖效果较好，但是在
6-BA 为 10mg/L 时，部分出现玻璃化现象。 结果发
现在 NAA1.5 mg/L +6-BA10mg/L 的浓度配比下小
鳞茎周围出现丛生芽，并伴有生根现象，但是丛生芽
很难长成小鳞茎，如图 2 C所示。 NAA 0.5 mg/L +6-
BA 5mg/L 时增殖效果最好，长势旺，如图 2 D 所示，
见表 2。
3.3 不同激素配比对生根阶段的影响
将增殖获得的生长健壮的高约 4~5cm 的小鳞
茎接入含不同激素的 1/2MS 生根培养基中，诱导不
定根的产生。NAA是生长素，6-BA是细胞分裂素促
进芽的形成，此时的生根培养基只需加入 NAA而不
需要 6-BA。20d后统计生根情况。如表 3所示，发现
含 NAA1mg/L 的 1/2MS 生根培养基生根较理想，生
长良好，平均每个小鳞茎生 4.1条根。NAA浓度过低
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式发展的途径和集约化发展的模式等具体的对策。
希望通过本研究为北京园林绿化发展战略的制定提
供参考依据，使北京园林绿化抓住机遇，发挥优势，
摆脱瓶颈，早日建设成为世界一流水平的园林。
参考文献
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立 60 周年首都城市园林绿化事业发展巡礼. 中国园林，2009
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[5] 袁 牧，张晓光，杨 明. SWOT 分析在城市战略规划中
的应用和创新.城市规划， 2007（4）:53-58
时，当 NAA 为 0.2mg/L 时生出的根特别粗壮，生长
特别缓慢。 NAA浓度过高时，当 NAA为 2mg/L时生
出的根生长过于旺盛，根系过多。 如图 2 E所示。
4 讨论
香石蒜鳞茎中含有淀粉、糖类、生物碱等物质，
这些物质大大增加了组培过程中污染率及褐变率，
大大降低了诱导率。 鳞茎 4℃低温冷藏后黏液减少，
并可使淀粉和多糖一部分转化为可溶性糖 [9] ，减少
褐化，提高石蒜外植体诱导率，同时也验证了何树
兰、王燕等人的试验结果[ 10-11]。
通过试验可以看出，在香石蒜的组培快繁过程
中，影响其诱导、增殖、生根阶段的不仅是激素的含
量，适当的激素配比更为重要。 例如 NAA0.2mg/L +
6-BA10mg/L比 NAA0.2mg/L +6-BA7mg/L 的成芽率
低 ，NAA1mg/L +6 -BA7mg/L 比 NAA1mg/L +6 -
BA5mg/L的成芽率低。MS +NAA1mg/L +6-BA5mg/L
为诱导培养基的最佳选择， 此时出芽率和成芽系数
均达最大值且长势良好，分别为 70.8%、4.2。 在增殖
过程中， 当 NAA含量较高时会促进根系的生成，抑
制芽的生成。 当 6-BA 含量过高时玻璃化现象较为
严重。 在 NAA1.5mg/L+6-BA10mg/L 的浓度配比下
小鳞茎周围出现丛生芽，并伴有生根现象，但是丛生
芽很难长成小鳞茎。 结果表明，MS + NAA0.5mg/L +
6-BA5mg/L 时增殖效果最好，长势旺。 在生根过程
中，小鳞茎接种在含 NAA 1mg/L 的 1/2MS 生根培养
基生根较理想，生长良好，平均每个小鳞茎生 4.1
条根。
参考文献
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