全 文 ：北方园艺２０１４（２３）：７９～８２ ·生物技术·
第一作者简介：王珍（１９９０－），女，硕士研究生，研究方向为植物细
胞遗传学。Ｅ－ｍａｉｌ：ｃｈｉｌａｉｄｅａｉｗａｎｇｚｈｅｎ＠ｑｑ．ｃｏｍ．
责任作者：王振英（１９６５－），女，博士，教授，研究方向为植物抗性分
子生物学。
基金项目：天津市农委重点资助项目（５ＫＮ１３００１）；天津师范大学
应用开发研究基金资助项目（５２ＸＫ１２１０）。
收稿日期：２０１４－０７－１４
大蒜气生鳞茎快繁体系研究
王 珍，范 宝 莉，任 春 雪，顾 增 惠，刘 晓 颖，王 振 英
（天津师范大学 生命科学学院，天津３００３８７）
摘 要：以宝坻大蒜气生鳞茎为试材，比较了不同低温处理时间、不同诱导培养基对试管苗
诱导率的影响，优化了气生鳞茎快繁体系。结果表明：低温处理１４ｄ，试管苗的诱导率最高；诱导
生根的最佳培养基为ＭＳ基本培养基。由于气生鳞茎诱导试管苗不经过脱分化和再分化过程，
所以不会产生遗传变异。
关键词：宝坻大蒜；气生鳞茎；植物脱毒；快繁
中图分类号：Ｓ ６３３．４０３．５３ 文献标识码：Ａ 文章编号：１００１－０００９（２０１４）２３－００７９－０４
大蒜（Ａｌｉｕｍ ｓａｔｉｖｕｍＬ．）属百合科（Ｌｉｌｉａｃｅａ）葱属
（Ａｌｉｕｍ ｔｉｓｔａｌｏｓｕｍ），在我国栽培历史有２０００余年，遍及
全国各地。大蒜以鳞茎（地蒜）、蒜薹和幼株食用，还可
以生产青蒜和蒜黄，是群众最喜爱的主要蔬菜之一。宝
坻大蒜“六瓣红”是津沽名优特产之一，营养价值高，具
有强力杀菌、防治癌症、排毒清肠、降低血糖和防治心脑
血管疾病等功效。但是大蒜通常以蒜瓣进行无性繁殖，
在长期的无性繁殖过程中，因病毒逐年积累并代代相
传，使种性逐渐退化，蒜头变小，产量、品质大幅下降。
大蒜采用气生鳞茎（天蒜）繁殖时，天蒜采自蒜薹（花薹）
顶端的花苞（生长点），而大蒜生长点部位一般不带病
毒，因而可自然脱毒［１］。
目前已建立了以茎尖［２］、根尖［３］、全展叶［４］、贮藏
叶［５］、茎盘切块［６］和花原始体［７］等为外植体的大蒜组织
培养再生体系。大蒜的离体再生途径主要有愈伤组织
途径和不定芽途径。愈伤组织途径是通过外植体的脱
分化实现的，但是愈伤组织再生途径的效率不高，因此
建立一种新的高效的大蒜快繁体系是非常必要的。大
蒜气生鳞茎在生产实践上主要被用来提纯及复壮［８］，但
由于只有成熟的气生鳞茎才能做“种子”，而培养成熟的
气生鳞茎会争夺地蒜的营养，影响地蒜的产量，降低种
蒜的收益。该研究利用未成熟的大蒜气生鳞茎作为外
植体直接诱导试管苗，使大蒜实现天然脱毒的同时，又
避免愈伤组织途径脱分化、再分化、繁殖系数低以及容
易产生遗传变异的缺憾，同时不影响地蒜的正常生长，
以期为宝坻大蒜的脱毒快繁和种质创新打下基础。
１ 材料与方法
１．１ 试验材料
供试材料为宝坻大蒜“六瓣红”的气生鳞茎。
１．２ 试验方法
１．２．１ 气生鳞茎的形态学解剖 选取３个花苞，按体积
的大小从中挑取１０颗气生鳞茎进行排序，分别称量并
记录气生鳞茎重量，并进行形态学解剖，观察其是否含
有贮藏叶。统计重量为何值时气生鳞茎中不再含有贮
藏叶。因为只有含有贮藏叶，气生鳞茎才有可能诱导生
成试管苗。３次重复。
１．２．２ 培养基的配置 以 ＭＳ培养基为基本培养基，
添加不同种类和浓度的激素，ｐＨ ５．８；高温高压灭菌
２０ｍｉｎ；待冷却至６０℃时，分装到２００ｍＬ的组培瓶中，
每瓶约３５ｍＬ，盖紧瓶盖备用。试验中所用培养基为：试
管苗诱导培养基：ＭＳ基础培养基＋１．０ｍｇ／Ｌ ＮＡＡ＋
５．０ｍｇ／Ｌ ＫＴ；试管苗生根培养基：ＭＳ基础培养基。
１．２．３ 大蒜气生鳞茎的低温处理 在不影响地蒜生长
的前提下将尚未成熟的花苞采摘下来，４℃保存，共设置
低温７、１４、２８、８４ｄ４个处理，用于试管苗诱导试验。
１．２．４ 接种及试管苗的诱导 取生长良好有贮藏叶的
宝坻大蒜气生鳞茎，用７５％的乙醇浸泡１０ｍｉｎ，用无菌
水冲洗，滤纸吸干，再用０．１％的ＨｇＣｌ２ 灭菌１０ｍｉｎ，用
无菌水冲洗３次，滤纸吸干，接入试管苗诱导培养基上，
每瓶接入７颗气生鳞茎，每个处理２０瓶，按１．２．３下的
方法低温处理。培养条件为日温２５℃，夜温２０℃，光照
１ ５００ｌｘ，光照时间１４ｈ／ｄ。培养４９ｄ，每７ｄ进行观察
统计诱导率。
１．２．５ 生根培养 将诱导出来的生长旺盛的苗转入生
根培养基中，诱导生根，生根培养基为 ＭＳ基础培养基。
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·生物技术· 北方园艺２０１４（２３）：７９～８２
３５ｄ之后统计生根率。
１．２．６ 试管苗的练苗及移栽 生根后的试管苗，待其长
到３片真叶、生根３～４条时，室温开瓶练苗，７～１０ｄ后
将小植株从试管中取出，洗去根部培养基将其移栽至灭
菌的珍珠岩、蛭石和泥炭土（１∶３∶６）中，移栽后保持日
温２５℃，夜温１５℃，在组织培养室中放置３０ｄ壮苗，之
后移栽到大田。
１．２．７ 气生鳞茎试管苗根尖和地蒜根尖染色体的观察
待地蒜根（对照）和气生鳞茎诱导的试管苗的根长到
１ｃｍ时将根取下，用卡诺固定液固定２４ｈ，于７０％乙醇
中保存，用于染色体观察。将根在１ｍｏｌ／Ｌ盐酸、６０℃条
件下解离８ｍｉｎ，蒸馏水冲洗３遍，用滤纸将处理好的根
擦干，取根尖，用卡宝品红染色８ｍｉｎ，压片，进行染色体
的观察。
２ 结果与分析
２．１ 气生鳞茎大小与储藏叶的关系
气生鳞茎是否含有贮藏叶是其能否发芽的关键，只
有含有贮藏叶的气生鳞茎才有可能被诱导生成试管苗，
所以，在气生鳞茎诱导培养之前，对不同大小的气生鳞
茎做形态学解剖，找出气生鳞茎的重量与是否含有贮藏
叶之间的关联，最终通过称重挑选带有贮藏叶的气生鳞
茎进行试管苗诱导。从表１可以看出，在第１组中重量
为０．００９３ｇ的气生鳞茎含有贮藏叶，重量为０．００７６ｇ的
气生鳞茎不含有贮藏叶，第２组中重量为０．００８９ｇ的含
有贮藏叶，重量为０．００７８ｇ的不含有贮藏叶，在第３组
中重量为０．００８８ｇ的含有贮藏叶，重量为０．００８２ｇ不含
有贮藏叶。３次试验中不含贮藏叶的气生鳞茎重量的平
均值为０．００９ｇ，所以，选取重量大于０．００９ｇ的气生鳞茎
用于试管苗的诱导，弃掉重量小于０．００９ｇ的气生鳞茎。
表１ 不同重量的气生鳞茎与贮藏叶的关系
Ｔａｂｌｅ １ Ｔｈｅ ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐ ｂｅｔｗｅｅｎ ａｅｒｉａｌ ｂｕｌｂ ｗｅｉｇｈｔ ａｎｄ ｓｔｏｒａｇｅ ｌｅａｆ
组数
Ｇｒｏｕｐ
ｎｕｍｂｅｒ
编号
Ｎｕｍｂｅｒ
重 量
Ｗｅｉｇｈｔ
／ｇ
是否含有贮藏叶
Ｗｈｅｔｈｅｒ ｉｔ ｃｏｎｔａｉｎ
ｓｔｏｒａｇｅ ｌｅａｆ
能否诱导试管苗
Ｗｈｅｔｈｅｒ ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ
ｐｌａｎｔｌｅｔｓ
组数
Ｇｒｏｕｐ
ｎｕｍｂｅｒ
编号
Ｎｕｍｂｅｒ
重 量
Ｗｅｉｇｈｔ
／ｇ
是否含有贮藏叶
Ｗｈｅｔｈｅｒ ｉｔ ｃｏｎｔａｉｎ
ｓｔｏｒａｇｅ ｌｅａｆ
能否诱导试管苗
Ｗｈｅｔｈｅｒ ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ
ｐｌａｎｔｌｅｔｓ
组数
Ｇｒｏｕｐ
ｎｕｍｂｅｒ
编号
Ｎｕｍｂｅｒ
重 量
Ｗｅｉｇｈｔ
／ｇ
是否含有贮藏叶
Ｗｈｅｔｈｅｒ ｉｔ ｃｏｎｔａｉｎ
ｓｔｏｒａｇｅ ｌｅａｆ
能否诱导试管苗
Ｗｈｅｔｈｅｒ ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ
ｐｌａｎｔｌｅｔｓ
１ ０．１８８３ 是 能 １ ０．１７２４ 是 能 １ ０．１６５５ 是 能
２ ０．１４１５ 是 能 ２ ０．１５６７ 是 能 ２ ０．１５１９ 是 能
３ ０．０９０３ 是 能 ３ ０．１２０３ 是 能 ３ ０．０９５１ 是 能
４ ０．０５０２ 是 能 ４ ０．０６７６ 是 能 ４ ０．０８３０ 是 能
第１ ５ ０．０４２３ 是 能 第２ ５ ０．０４７８ 是 能 第３ ５ ０．０５９２ 是 能
组 ６ ０．０１７０ 是 能 组 ６ ０．０２５０ 是 能 组 ６ ０．０２７７ 是 能
７ ０．０１１５ 是 能 ７ ０．０１６２ 是 能 ７ ０．０１２５ 是 能
８ ０．００９３ 是 能 ８ ０．００８９ 是 能 ８ ０．００８８ 是 能
９ ０．００７６ 否 否 ９ ０．００７８ 否 否 ９ ０．００８２ 否 否
１０ ０．００２８ 否 否 １０ ０．００５３ 否 否 １０ ０．００６３ 否 否
２．２ 不同时间低温处理对试管苗诱导率的影响
从表２可以看出，低温处理７、１４、２８、８４ｄ的气生鳞
茎，培养７ｄ后，前３种处理的气生鳞茎诱导率基本相
近，分别为２．０９％、２．１６％、２．１２％，而低温处理８４ｄ的
表２ 不同时间低温处理试管苗的诱导率
Ｔａｂｌｅ ２ Ｔｈｅ ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ ｒａｔｅ ｏｆ ｐｌａｎｔｌｅｔｓ ｕｎｄｅｒ
ｌｏｗ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ ｗｉｔｈ ｄｉｆｅｒｅｎｔ ｔｉｍｅ
诱导时间
Ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ
ｔｉｍｅ／ｄ
诱导率Ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ ｒａｔｅ／％
低温处理７ｄ
Ｌｏｗ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ
ｔｒｅａｔｍｅｎｔ ｆｏｒ
７ｄａｙｓ
低温处理１４ｄ
Ｌｏｗ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ
ｔｒｅａｔｍｅｎｔ ｆｏｒ
１４ｄａｙｓ
低温处理２８ｄ
Ｌｏｗ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ
ｔｒｅａｔｍｅｎｔ ｆｏｒ
２８ｄａｙｓ
低温处理８４ｄ
Ｌｏｗ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ
ｔｒｅａｔｍｅｎｔ ｆｏｒ
８４ｄａｙｓ
７ ２．０９ ２．１６ ２．１２ ０
１４ １５．２４ １７．３５ １４．８６ ０
２１ ２６．８３ ４７．４７ ４２．７２ ２．２４
２８ ４９．２ ６５．２４ ４８．１１ １９．２４
３５ ５５．６２ ７３．４７ ４４．６８ ２７．７５
４２ ６１．３５ ７７．２６ ４２．２４ ３０．２６
４９ ６４．２４ ７９．７１ ３６．８５ ３２．７１
５６ ６７．７９ ８２．６０ ３６．８５ ３３．２４
６３ ７１．４３ ８１．６６ ３４．２４ ３６．５７
７０ ６８．６１ ８１．６６ ３４．２４ ３８．６５
气生鳞茎，培养７ｄ后诱导率为０，到２１ｄ时才达到
２．２４％，此时低温处理１４ｄ的气生鳞茎诱导率已经达到
４７．４７％；培养到第７０天时，试管苗的诱导率分别为
６８．６１％、８１．６６％、３４．２４％、３８．６５％，显然低温处理１４ｄ
的气生鳞茎萌发率和试管苗的诱导率都高于其它低温
处理组。
２．３ 大蒜气生鳞茎可以直接诱导试管苗
由图１可以看出，在接入诱导培养基７ｄ后，气生鳞
茎的表面开始变绿（图Ｂ）；生长１４ｄ后，部分气生鳞茎
的内部开始长出嫩芽（图Ｃ）；２１ｄ后，气生鳞茎诱导生成
的苗逐渐长大，数量开始增多，诱导率逐渐增大（图Ｄ）；
生长２８ｄ后，气生鳞茎诱导出的苗不断生长，出苗率不
断增加；发育至４９ｄ时，苗已长至１０ｃｍ左右，生长强
壮、呈深绿色（图Ｅ－Ｈ）。每个宝坻大蒜的花苞平均含有
７０颗气生鳞茎，其中６５颗含有贮藏叶，可用于试管苗的
诱导，一个花苞平均可以获得试管苗４０株（繁殖系数为
４０），与用地蒜繁殖大蒜（繁殖系数为６）相比，效率提高
了６．６７倍。
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北方园艺２０１４（２３）：７９～８２ ·生物技术·
注：Ａ：气生鳞茎刚接入诱导培养基；Ｂ：生长７ｄ；Ｃ：生长１４ｄ；Ｄ：生长２１ｄ；Ｅ：生长２８ｄ；Ｆ：生长３５ｄ；Ｇ：生长４２ｄ；Ｈ：生长４９ｄ。
Ｎｏｔｅ：Ａ：Ａｅｒｉａｌ ｂｕｌｂ ｖａｃｃｉｎａｔｅ ｔｏ ｉｎｄｕｃｔｉｖｅ ｍｅｄｉｕｍ；Ｂ：ｇｒｏｗｔｈ ｆｏｒ ７ｄａｙｓ；Ｃ：ｇｒｏｗｔｈ ｆｏｒ １４ｄａｙｓ；Ｄ：ｇｒｏｗｔｈ ｆｏｒ ２１ｄａｙｓ；Ｅ：ｇｒｏｗｔｈ ｆｏｒ ２８ｄａｙｓ；Ｆ：ｇｒｏｗｔｈ ｆｏｒ
３５ｄａｙｓ；Ｇ：ｇｒｏｗｔｈ ｆｏｒ ４２ｄａｙｓ；Ｈ：ｇｒｏｗｔｈ ｆｏｒ ４９ｄａｙｓ．
图１ 气生鳞茎诱导试管苗
Ｆｉｇ．１ Ａｅｒｉａｌ ｂｕｌｂｉｌｓ ｉｎｄｕｃｅ ｐｌａｎｔｌｅｔｓ
２．４ 试管苗的生根培养
有９％的气生鳞茎试管苗在诱导培养基上出现生根
现象，但绝大多数的试管苗没有生根。将未生根的试管
苗接种在生根培养基上（ＭＳ基础培养基），６ｄ后，部分
试管苗出现生根现象，继续培养到４５ｄ时，试管苗的生
根率达到９５％以上（图２）。
图２ 气生鳞茎试管苗的生根情况
Ｆｉｇ．２ Ｒｏｏｔｓ ｏｆ ｐｌａｎｔｌｅｔ ｉｎｄｕｃｅｄ ｆｒｏｍ ａｅｒｉａｌ ｂｕｌｉｌｓ
２．５ 试管苗练苗及移栽
为了提高试管苗对外界环境条件的适应性，提高其
光合作用的能力，促使组培苗健壮，移栽成活率高，试管
苗必需经过一段时间的练苗后方可移栽。该研究共移
栽试管苗３３０株，成活３３０株，成活率为１００％。
２．６ 气生鳞茎试管苗与地蒜染色体观察分析
从图３可以看出，Ａ为大蒜根尖细胞分裂前期图，Ｂ
为细胞分裂中期图，能清晰的看出细胞中含有１６条染
色体。Ｃ为细胞分裂后期图。Ｄ为气生鳞茎试管苗根尖
细胞分裂前期图，Ｂ为细胞分裂中期图，能清晰的看出细
胞中含有１６条染色体。Ｆ为细胞分裂后期图。上述结
果说明，用气生鳞茎直接诱导的试管苗细胞染色体数
目、形态结构正常，诱导过程中没有发生染色体变异，进
一步说明不经过脱分化和再分化过程，对保持大蒜品种
的遗传特性有现实意义。
３ 讨论
用大蒜愈伤组织进行脱毒和快繁虽然有诸多优点，
但大蒜愈伤组织在脱分化和再分化过程中普遍存在着
染色体的高变异率，Ｍａｇｇｉｏｎｉ等［９］用叶片外植体诱导的
愈伤组织，只有４５．９％的细胞是二倍体，其它为八倍体、
三倍体、四倍体、非整倍体，还有２０％的细胞含很多染色
体。为了保持大蒜的遗传特性，同时又能进行大蒜的脱
毒、快繁，生产上常常用成熟的气生鳞茎做“种子”进行
大蒜提纯、复壮繁殖。张绍文等［１０］对大蒜气生鳞茎利用
价值进行研究，发现用成熟的天蒜播种，其增殖倍数均
在３０倍以上，但留天蒜植株的地蒜产量较不留株减产
２２．６％～３３．０％。该研究建立了用未成熟的气生鳞茎进
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·生物技术· 北方园艺２０１４（２３）：７９～８２
注：Ａ～Ｃ为大蒜根尖染色体观察；Ｄ－Ｆ为气生鳞茎试管苗根尖染色体观察。Ａ：前期图；Ｂ：中期图；Ｃ：后期图；Ｄ：前期图；Ｅ：中期图；Ｆ：后期图。
Ｎｏｔｅ：Ａ－Ｃ ｏｂｓｅｒｖａｔｉｏｎ ｏｆ ｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅ ｉｎ ｇａｒｌｉｃ ｒｏｏｔ ｔｉｐ；Ｄ－Ｆ ｏｂｓｅｒｖａｔｉｏｎ ｏｆ ｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅ ｉｎ ｐｌａｎｔｌｅｔｓ ｒｏｏｔ ｔｉｐ．Ａ：ｐｒｏｐｈａｓｅ Ｂ：ｍｅｔａｐｈａｓｅ；Ｃ：ａｎａｐｈａｓｅ；Ｄ：ｐｒｏ－
ｐｈａｓｅ；Ｅ：ｍｅｔａｐｈａｓｅ；Ｆ：ａｎａｐｈａｓｅ．
图３ 大蒜和气生鳞茎试管苗染色体观察
Ｆｉｇ．３ Ｏｂｓｅｒｖａｔｉｏｎ ｏｆ ｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅ ｉｎ ｇａｒｌｉｃ ｒｏｏｔ ｔｉｐ ａｎｄ ｐｌａｎｔｌｅｔｓ ｒｏｏｔ ｔｉｐ
行大蒜脱毒快繁的技术体系，在不影响地蒜生长的情况
下实现了大蒜快繁。
大蒜气生鳞茎的萌发受到贮藏时间、温度、气生鳞
茎大小、植物激素配比等多种因素的影响。低温处理时
间对气生鳞茎试管苗的诱导率有一定的影响，李小川
等［１１］、Ｓｅａｂｒｏｏｋ［１２］认为气生鳞茎在４℃的低温条件下贮
藏一定的时间能够打破其休眠，促进试管鳞茎的萌发。
但该研究发现，虽然低温贮藏能够促进气生鳞茎的萌
发，但是低温贮藏时间有一定的限度，该研究用４℃低温
贮藏气生鳞茎１４ｄ，试管苗的诱导率最高能达到８１．６６％，
而随着贮藏时间的增加其诱导率逐渐降低，可能是由于
低温贮藏时间长，引起气生鳞茎内源代谢发生紊乱，从
而造成气生鳞茎的生理活性降低，因此低温贮藏时间应
在１４ｄ左右为宜。
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Ｒｅｓｅａｒｃｈ ｏｎ ｔｈｅ Ｒａｐｉｄ Ｐｒｏｐａｇａｔｉｏｎ Ｓｙｓｔｅｍ ｏｆ Ｇａｒｌｉｃ Ｂｕｌｂｉｌｓ
ＷＡＮＧ Ｚｈｅｎ，ＦＡＮ Ｂａｏ－ｌｉ，ＲＥＮ Ｃｈｕｎ－ｘｕｅ，ＧＵ Ｚｅｎｇ－ｈｕｉ，ＬＩＵ Ｘｉａｏ－ｙｉｎｇ，ＷＡＮＧ Ｚｈｅｎ－ｙｉｎｇ
（Ｃｏｌｅｇｅ ｏｆ Ｌｉｆｅ Ｓｃｉｅｎｃｅ，Ｔｉａｎｊｉｎ Ｎｏｒｍａｌ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｔｉａｎｊｉｎ ３００３８７）
Ａｂｓｔｒａｃｔ：Ｔａｋｉｎｇ ｔｈｅ ｂｕｌｂｉｌｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｂａｏｄｉ ｇａｒｌｉｃ ａｓ ｍａｔｅｒｉａｌｓ，ｔｈｅ ｃｏｎｄｉｔｉｏｎｓ ｏｆ ｔｈｅ ｒａｐｉｄ ｐｒｏｐａｇａｔｉｏｎ ｓｙｓｔｅｍ ｗｅｒｅ ｏｐｔｉｍｉｚｅｄ
ｂｙ ｃｏｍｐａｒｉｎｇ ｔｈｅ ｄｉｆｅｒｅｎｔ ｌｏｗ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅｓ ｐｒｏｃｅｓｓｉｎｇ ｔｉｍｅ ａｎｄ ｄｉｆｅｒｅｎｔ ｍｅｄｉｕｍ ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ ｒａｔｅ．Ｔｈｅ ｒｅｓｕｌｔｓ ｓｈｏｗｅｄ
ｔｈａｔ ｔｈｅ ｈｉｇｈｅｓｔ ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ ｒａｔｅ ｏｆ ｐｌａｎｔｌｅｔｓ ｗａｓ ａｃｑｕｉｒｅｄ ｗｈｅｎ ｐｒｏｃｅｓｓｅｄ ｕｎｄｅｒ ｌｏｗ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ｆｏｒ ｔｗｏ ｗｅｅｋｓ．Ｔｈｅ ｂａｓｉｃ
ＭＳ ｍｅｄｉｕｍ ｗａｓ ｔｈｅ ｂｅｓｔ ｍｅｄｉｕｍ ｆｏｒ ｒｏｏｔ ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ．Ｓｉｎｃｅ ｂｕｌｂｉｌｓ ｉｎｄｕｃｅｄ ｐｌａｎｔｌｅｔｓ ｗｉｔｈｏｕｔ ｄｅｄｉｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ ａｎｄ
ｒｅ－ｄｉｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ ｐｒｏｃｅｓｓ，ｓｏ ｉｔ ｗｏｕｌｄ ｎｏｔ ｐｒｏｄｕｃｅ ｇｅｎｅｔｉｃ ｖａｒｉａｔｉｏｎ．
Ｋｅｙｗｏｒｄｓ：Ｂａｏｄｉ ｇａｒｌｉｃ；ｂｕｌｂｉｌ；ｖｉｒｕｓ ｅｌｉｍｉｎａｔｉｏｎ；ｒａｐｉｄ ｐｒｏｐａｇａｔｉｏｎ
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