全 文 ：收稿日期：２０１１－０６－２０
基金项目：陕西省科技厅“１３１１５”工程中心项目（２０１０ＺＤＧＣ－２３－１８）
作者简介：裴会鹏（１９８６－），男，河南安阳人，在读硕士研究生，研究方向：植物生物技术。Ｅ－ｍａｉｌ：ｐｅｉｈｕｉｐｅｎｇ＠ｅｙｏｕ．ｃｏｍ
＊通讯作者：杨培君（１９６０－），男，陕西汉中人，教授，硕士，主要从事资源植物方面研究。Ｅ－ｍａｉｌ：ｙａｎｇ＠ｓｎｕｔ．ｅｄｕ．ｃｎ
参薯多糖检测及其体外抗氧化能力研究
裴会鹏，黄　俊，吴凯旋，杨培君＊
（陕西理工学院 生物科学与工程学院，陕西 汉中７２３００１）
摘要：以参薯 （Ｄｉｏｓｃｏｒｅａ　ａｌａｔａ　Ｌ．）块茎为研究材料，采用热水浸提、Ｓａｖａｇｅ法除蛋白、乙醇沉淀及
有机溶剂纯化的方法，获得参薯粗多糖。通过蒽酮－硫酸显色法测定参薯的多糖含量，研究了参薯
粗多糖体外对羟自由基（·ＯＨ）和过氧化氢（Ｈ２Ｏ２）的清除能力。结果表明：参薯多糖含量高达
１９．１７％，参薯粗多糖对羟自由基（·ＯＨ）和过氧化氢（Ｈ２Ｏ２）具有一定的清除活性，抗氧化能力与
多糖浓度之间存在良好的相关性。当粗多糖质量浓度分别达到９．０ｍｇ／ｍＬ和０．５ｍｇ／ｍＬ时，对
羟自由基和过氧化氢的清除率可达到１００％。参薯多糖具有较好的体外抗氧化作用，是一种具有
开发价值的天然抗氧化剂。
关键词：参薯；多糖；体外抗氧化作用
中图分类号：Ｑ９４６．３　　文献标识码：Ａ　　文章编号：１００４－３２６８（２０１１）１１－０１１３－０４
Ｄｅｔｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ　ａｎｄ　Ａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔ　Ａｃｔｉｖｉｔｙ　ｉｎ　ｖｉｔｒｏ　ｏｆ
Ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓ　ｆｒｏｍ　Ｄｉｏｓｃｏｒｅａ　ａｌａｔａ
ＰＥＩ　Ｈｕｉ－ｐｅｎｇ，ＨＵＡＮＧ　Ｊｕｎ，ＷＵ　Ｋａｉ－ｘｕａｎ，ＹＡＮＧ　Ｐｅｉ－ｊｕｎ＊
（Ｓｃｈｏｏｌ　ｏｆ　Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ　Ｓｃｉｅｎｃｅ　ａｎｄ　Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ，Ｓｈａａｎｘｉ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ　ｏｆ　Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，Ｈａｎｚｈｏｎｇ　７２３００１，Ｃｈｉｎａ）
Ａｂｓｔｒａｃｔ：Ｔｈｅ　ｔｕｂｅｒ　ｏｆ　Ｄｉｏｓｃｏｒｅａ　ａｌａｔａ　ｗａｓ　ｕｓｅｄ　ａｓ　ｔｅｓｔ　ｍａｔｅｒｉａｌ　ｔｏ　ｄｅｔｅｒｍｉｎｅ　ｔｈｅ　ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅ
ａｎｄ　ｔｈｅ　ａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔ　ａｃｔｉｖｉｔｙ　ｉｎ　ｖｉｔｒｏ．Ｔｈｅ　ｍｅｔｈｏｄｓ　ｃｏｎｔａｉｎｅｄ　ｈｏｔ　ｗａｔｅｒ　ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ，Ｓｅｖａｇｅ　ｒｅｍｏｖａｌ
ｐｒｏｔｅｉｎ，ｐｒｅｃｉｐｉｔａｔｉｏｎ　ｂｙ　ｅｔｈａｎｏｌ，ｐｕｒｉｆｙｉｎｇ　ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅ　ｂｙ　ｏｒｇａｎｉｃ　ｓｏｌｖｅｎｔｓ，ｐｒｏｄｕｃｉｎｇ　ｐｏｌｙｓａｃ－
ｃｈａｒｉｄｅ　ｏｆ　Ｄ．ａｌａｔａ．Ｍｏｒｅｏｖｅｒ，ｔｈｅ　ａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔ　ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ　ｉｎ　ｖｉｔｒｏ　ｏｆ　Ｄ．ａｌａｔａｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅ　ｏｎ　ｈｙ－
ｄｒｏｘｙｌ　ｒａｄｉｃａｌｓ（·ＯＨ）ａｎｄ　ｈｙｄｒｏｇｅｎ　ｐｅｒｏｘｉｄｅ（Ｈ２Ｏ２）ｗｅｒｅ　ｒｅｓｅａｒｃｈｅｄ　ｗｉｔｈ　ａｎｔｈｒｏｎｅ－ｓｕｌｆｕｒｉｃ
ａｃｉｄ　ｃｏｌｏｒｉｍｅｔｒｉｃ．Ｔｈｅ　ｒｅｓｕｌｔｓ　ｉｎｄｉｃａｔｅｄ　ｔｈａｔ　ｔｈｅ　ｃｏｎｔｅｎｔ　ｏｆ　Ｄ．ａｌａｔａ　ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅ　ｗａｓ　１９．１７％
ａｎｄ　ｈａｄ　ａ　ｃｌｅａｒｉｎｇ　ａｂｉｌｉｔｙ　ｏｎ·ＯＨ　ａｎｄ　Ｈ２Ｏ２，ｔｈｅ　ａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔ　ａｃｔｉｖｉｔｙ　ｗａｓ　ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ　ｃｏｒｒｅｌａｔｅｄ
ｗｉｔｈ　ｉｔｓ　ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ．Ｔｈｅ　ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅ　ｃｏｍｐｌｅｔｅｌｙ　ｓｃａｖｅｎｇｅｄ　ｔｈｅ　ｈｙｄｒｏｘｙｌ　ａｎｄ　ｈｙｄｒｏｇｅｎ　ｐｅｒ－
ｏｘｉｄｅ　ｆｒｅｅ　ｒａｄｉｃａｌｓ　ｗｈｅｎ　ｉｔｓ　ｍａｓｓ　ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ　ｗａｓ　９．０ｍｇ／ｍＬ　ａｎｄ　０．５ｍｇ／ｍＬ　ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ．Ｄ．
ａｌａｔａｃａｎ　ｂｅ　ｕｓｅｄ　ａｓ　ａ　ｒｅｓｏｕｒｃｅ　ｏｆ　ｐｌａｎｔ　ａｃｔｉｖｅ　ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓ　ｗｉｔｈ　ａ　ｓｔｒｏｎｇ　ａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔ　ｅｆｆｅｃｔ，
ａｎｄ　ｃａｎ　ｂｅ　ｅｘｐｌｏｉｔｅｄ　ａｓ　ａ　ｎａｔｕｒａｌ　ａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔ．
Ｋｅｙ　ｗｏｒｄｓ：Ｄｉｏｓｃｏｒｅａ　ａｌａｔａ　Ｌ．；Ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅ；Ａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔ　ａｃｔｉｖｉｔｙ　ｉｎ　ｖｉｔｒｏ
　　参薯 （Ｄｉｏｓｃｏｒｅａ　ａｌａｔａ　Ｌ．）属薯蓣科薯蓣属多
年生草质缠绕藤本，又名大薯、脚板山药等［１］。参薯
块茎中含有薯蓣皂苷元、多糖、多酚等多种成分。薯
蓣属植物为重要的资源植物之一，薯蓣具健脾、补
肺、固肾、益精之功效［２］。有研究表明，薯蓣植物粗
提物对禁食大鼠和兔子有降血糖的作用，能控制四
氧嘧啶引起的高血糖，其乙醇提取物的水溶液部分
与降血糖活性有关［３］。传统的用药习惯，常将参薯
作为淮山药入药，《浙江省中药炮制规范》亦明确把
其列为淮山药的一个品种来源，而２０１０版《中国药
典》中没有记载。但参薯在形状、显微、理化鉴别上
与怀山药都有差异［４］。
多糖是一类重要的植物活性物质，是生命有机
体的重要组成部分，并与维持生命所需的多种生理
　河南农业科学，２０１１，４０（１１）：１１３－１１６
　Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｈｅｎａｎ　Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ　Ｓｃｉｅｎｃｅｓ
DOI:10.15933/j.cnki.1004-3268.2011.11.028
功能有关，具有促进免疫、抗肿瘤、抗突变、降血脂、
抗病毒等作用。近年来，对植物活性多糖的研究倍
受关注，关于多糖的分离纯化、结构及生理活性等方
面已有报道，但关于参薯粗多糖体外抗氧化能力的
研究还未见报道。随着多糖研究的不断深入，活性
多糖将被应用于更多的领域，为人类健康和安全提
供更有利的帮助。本研究测定了参薯中多糖的含
量，探究了粗多糖体外抗氧化能力，旨在为综合评价
参薯的资源学地位提供科学依据。
１　材料和方法
１．１　材料与仪器
参薯块茎采自于陕西省城固县栽培种，块茎清洗
干净、切片，６０℃干燥，粉碎，过０．６３ｍｍ孔径筛备用。
葡萄糖、硫酸亚铁、双氧水、乙醇、乙醚、磷酸二氢钠、
磷酸氢二钠、蒽酮、硫酸、邻二氮菲等化学试剂均为国
产分析纯。
紫外分光光度计（ＵＶ－２５５０日本岛津）、旋转蒸发
仪（ＲＶ１０德国ＩＫＡ）、高速冷冻离心机、电子天平（梅
特勒ＡＬ２０４，精确度０．０００　１ｇ）、数显恒温水浴锅（北
京科伟）、移液器（芬兰大龙）、索氏提取仪等。
１．２　参薯多糖的提取与精制
准确称取２０．０ｇ参薯块茎粉末，用滤纸包好置于
索氏提取装置，加入乙醚（４０～６０℃）回流５ｈ，挥干材
料中的乙醚。脱脂后的材料用９５％乙醇２００ｍＬ，
９０℃回流１ｈ，趁热抽滤，滤渣重复提取一次。挥干乙
醇后，按浸提温度１００℃、浸提时间４ｈ、料液比１∶２０
（ｍｇ／ｍＬ）提取，将提取液冷却后离心，沉淀物按同样
条件重复一次，合并提取液。提取液旋转蒸发浓缩至
１００ｍＬ左右，用Ｓｅｖａｇ法脱蛋白，离心，到无蛋白层出
现为止。收集的水层中加入４倍量的无水乙醇使得
醇含量达到８０％，于４℃冰箱静置１２ｈ，抽滤，沉淀用
无水乙醇、丙酮、乙醚反复洗涤多次，６０℃烘干，置干
燥器中至恒定质量，备用。
１．３　葡萄糖标准曲线的绘制
１．３．１　标准溶液的配制　精确称取０．１ｇ葡萄糖于
１０５～１１０℃烘干３ｈ，冷却后用纯水溶解并定容于
１００ｍＬ容量瓶，作为母液，分别吸取母液１．０ｍＬ、
２．０ｍＬ、３．０ｍＬ、４．０ｍＬ和５．０ｍＬ于５个５０ｍＬ的容
量瓶中并定容。得到葡萄糖标准溶液的梯度为：
２０ｍｇ／Ｌ、４０ｍｇ／Ｌ、６０ｍｇ／Ｌ、８０ｍｇ／Ｌ和１００ｍｇ／Ｌ。
１．３．２　蒽酮－硫酸溶液的配制　准确称取０．３３ｇ蒽
酮，加１００ｍＬ浓硫酸，置于棕色瓶中，混合摇匀置于
冰箱中（现配现用）。
１．３．３　标准曲线的绘制　分别取纯水、２０ｍｇ／Ｌ、
４０ｍｇ／Ｌ、６０ｍｇ／Ｌ、８０ｍｇ／Ｌ和１００ｍｇ／Ｌ葡萄糖标准
溶液各１．０ｍＬ于试管中，分别在冰水浴中缓慢加入
８．０ｍＬ　０．２％蒽酮－硫酸溶液摇匀后于沸水浴中，水
浴１０ｍｉｎ后，迅速置于冰水浴中冷却，静置１０ｍｉｎ
后，在紫外－可见分光光度计上，于６２０ｎｍ检测。
１．４　参薯多糖含量制备
１．４．１　样品溶液的绘制　准确称取参薯粉末２．０ｇ，
用９５％乙醇９０℃回流１ｈ，趁热抽滤，滤渣重复提取
一次，挥干乙醇后的材料，按料液比１∶２０（ｍｇ／ｍＬ），
提取温度１００℃，提取时间４ｈ，抽滤，滤渣按同样方法
重复提取一次，合并水提液，定容至２５０ｍＬ，再吸取
２．５ｍＬ定容至５０ｍＬ容量瓶，得样品溶液。
１．４．２　样品溶液多糖含量测定　精密吸取１．４．１制
备的样品溶液１．０ｍＬ于试管中，按１．３项的方法测
定吸光度，用回归方程计算多糖浓度（Ｃ），按下面的公
式计算多糖含量。
多糖含量＝ＣＤ／ｍ×１００％，式中：Ｄ为样品溶液
的稀释因素，ｍ为材料质量。
１．４．３　重现性试验　精密称取同批参薯粉末５份各
２．０ｇ，按１．４．１项的方法同时制备样品溶液。吸取
１．０ｍＬ样品液于试管中，按１．３项的方法测定吸光
度，计算参薯多糖含量。
１．４．４　精密度试验　精密吸取样品溶液１．０ｍＬ分
别置于试管，按１．３项的方法测吸光度，平行测
定５次。
１．４．５　稳定性试验　精密吸取样品溶液于试管中，
按１．３项的方法测定吸光度，每３０ｍｉｎ测一次，连续
测２ｈ，考察稳定性。
１．４．６　回收率试验　准确吸取３份已知质量浓度的
供试样品溶液０．５ｍＬ于试管中，分别加入２０ｍｇ／Ｌ、
４０ｍｇ／Ｌ和６０ｍｇ／Ｌ的标准葡萄糖溶液０．５ｍＬ，按
１．３项的方法测定吸光度值，按下式计算回收率。
回收率（％）＝（加标试样测定值－试样测定值）／
加标量×１００。
１．５　参薯多糖体外抗氧化作用
１．５．１　参薯粗多糖溶液制备　取１．２项制备的粗多
糖１．０ｇ，定容至１００ｍＬ得１０ｍｇ／ｍＬ母液，然后再稀
释配制不同浓度的粗多糖溶液，备用。
１．５．２　参薯多糖对羟自由基（·ＯＨ）的清除体系　
采用邻二氮菲－Ｆｅ２＋氧化法［５］，Ｈ２Ｏ２／Ｆｅ体系可以通
过Ｆｅｎｔｏｎ反应产生·ＯＨ，·ＯＨ把邻二氮菲－Ｆｅ２＋
水溶液氧化为邻二氮菲－Ｆｅ３＋后，其５３６ｎｍ最大吸
收峰消失。取０．７５ｍｍｏｌ／Ｌ邻二氮菲溶液１．０ｍＬ，
加入１５０ｍｍｏｌ／Ｌ、ｐＨ７．４磷酸缓冲液（ＰＢ）１．５ｍＬ充
·４１１· 河南农业科学 第４０卷　
分混匀后，加入０．７５ｍｍｏｌ／Ｌ　ＦｅＳＯ４ 溶液１．０ｍＬ，每
加一管，立即混匀，加０．０１％ Ｈ２Ｏ２１．０ｍＬ，最后以超
纯水补充至总体积为１０．０ｍＬ。反应液３７℃保温
１ｈ，测定波长５３６ｎｍ处的吸光度Ａ损伤。参薯多糖对
·ＯＨ清除作用，依上法，分别加入１．０ｍＬ不同质量
浓度多糖溶液后再加入０．０１％ Ｈ２Ｏ２，３７℃保温１ｈ，
测Ａ加样。未损伤管为不加 Ｈ２Ｏ２ 及多糖溶液。以维
生素Ｃ为对照。具体加样量见表１。
清除率（％）＝［（Ａ加样－Ａ损伤）／（Ａ未损伤－Ａ损伤）］
×１００。
表１　清除·ＯＨ多糖加样量 ｍＬ　
试剂 未损伤管 损伤管 样品管
邻二氮菲 １．０　 １．０　 １．０
磷酸缓冲液（ＰＢ） １．５　 １．５　 １．５
ＦｅＳＯ４ １．０　 １．０　 １．０
不同质量浓度多糖或维生素Ｃ － － １．０
Ｈ２Ｏ２ － １．０　 １．０
蒸馏水 ６．５　 ５．５　 ４．５
总体积 １０．０　 １０．０　 １０．０
１．５．３　参薯多糖对过氧化氢（Ｈ２Ｏ２）的清除体系［６］
　加入由５０ｍｍｏｌ／Ｌ的磷酸缓冲液（ｐＨ７．４）配制的
５ｍｍｏｌ／Ｌ的Ｈ２Ｏ２ 溶液２．８ｍＬ，再加入不同质量浓
度的多糖溶液１．０ｍＬ，用纯净水补齐至１０．０ｍＬ，
２５℃放置１０ｍｉｎ后，于波长２３０ｎｍ处测定吸光度值
Ａ样品，对照为不加多糖溶液。以维生素Ｃ作为对照。
具体加样量见表２。
清除率（％）＝（Ａ样品－Ａ对照）／Ａ对照×１００。
表２　清除Ｈ２Ｏ２ 多糖加样量 ｍＬ　
试剂 对照管 样品管
Ｈ２Ｏ２ ２．８　 ２．８
不同浓度多糖或维生素Ｃ － １．０
蒸馏水 ７．２　 ６．２
总体积 １０．０　 １０．０
２　结果与分析
２．１　葡萄糖标准曲线结果
依据１．３．３项测得吸光度（Ａ）为横坐标，以葡萄
糖标准溶液的浓度梯度（Ｃ）为纵坐标做标准曲线。得
到标准曲线的回归方程Ｃ＝３５３．２６Ａ＋２．０１５　３，ｒ２＝
０．９９９　３。表明在２０～１００μｇ／ｍＬ范围内葡萄糖质量
浓度与吸光度具有良好的线性关系（图１）。
２．２　重现性试验结果
按照１．４．３项方法，在同等条件下进行５次重复
试验，得到的多糖含量为１９．１７％，ＲＳＤ值为１．２５％
（ｎ＝５），小于５％，表明本试验的重复性良好（表３）。
图１　葡萄糖标准曲线
表３　重现性试验结果（ｎ＝５）
项目
样品编号
１　 ２　 ３　 ４　 ５
多糖含量／％ １９．０５　 １９．０８　 １８．８８　 １９．４６　 １９．３７
ＲＳＤ／％ １．２５
２．３　精密度试验结果
按照１．４．４项方法，精密吸取样品溶液１．０ｍＬ分
别置于试管，按１．３项方法测吸光度，平行测定５次，得
到ＲＳＤ＝０．２８％，小于５％，表明精密度良好（表４）。
表４　精密度试验结果（ｎ＝５）
项目
样品编号
１　 ２　 ３　 ４　 ５
多糖含量／％ １９．０４　 １９．０８　 １９．０７　 １９．０１　 １９．１５
ＲＳＤ／％ ０．２８
２．４　稳定性试验结果
按照１．４．５项精密吸取样品溶液于试管中，按
１．３项方法测定吸光度，每３０ｍｉｎ测一次，连续测
２ｈ，多糖含量在２ｈ内基本保持不变，其ＲＳＤ值为
３．３５％，表明该方法稳定性良好（表５）。
表５　稳定性试验结果
项目
时间／ｈ
０　 ０．５　 １　 １．５　 ２
吸光度（Ａ） ０．２１１　 ０．２１２　 ０．２１０　 ０．１９９　 ０．１９８
ＲＳＤ／％ ３．３５
２．５　加样回收率试验结果
准确吸取３份已知质量浓度的供试样品溶液
０．５ｍＬ于试管中，分别加入２０ｍｇ／Ｌ、４０ｍｇ／Ｌ和
６０ｍｇ／Ｌ的标准葡萄糖液０．５ｍＬ，按１．３项方法测定
吸光度值，结果见表６，加样回收率达到９７．２９％，
ＲＳＤ为１．００％。
表６　加样回收率试验结果（ｎ＝３）
样品
编号
样品含
量／μｇ
加入标
品量／μｇ
测得
值／μｇ
回收
率／％
平均回
收率／％
ＲＳＤ／
％
１　 １０．０　 ４７．９４　 ９８．４０
２　 ３８．１０　 ２０．０　 ５７．４８　 ９６．９０　 ９７．２９　 １．００
３　 ３０．０　 ６７．０７　 ９６．５７
·５１１·　第１１期　　　　　　　　　裴会鹏等：参薯多糖检测及其体外抗氧化能力研究
２．６　参薯多糖对羟自由基（·ＯＨ）的清除活性
参薯多糖对 Ｈ２Ｏ２／Ｆｅ２＋体系通过Ｆｅｎｔｏｎ反应
产生的·ＯＨ具有清除作用，且随质量浓度的增加，
清除率上升，二者呈正相关。当粗多糖质量浓度达
到９ｍｇ／ｍＬ时，清除率达到１００％，作为对照的维
生素Ｃ为０．８ｍｇ／ｍＬ时，清除率已经达到１００％，
根据半数有效浓度ＥＣ５０［７］，维生素Ｃ对·ＯＨ的清
除能力远远优于参薯多糖（图２）。
图２　参薯多糖和维生素Ｃ对·ＯＨ的清除能力
２．７　参薯多糖对过氧化氢（Ｈ２Ｏ２）的清除活性
参薯多糖和维生素Ｃ对Ｈ２Ｏ２ 均有清除能力，且
随质量浓度增大，清除能力显著提高，呈较好的量效关
系，结果见图３。当粗多糖质量浓度达到０．５ｍｇ／ｍＬ
时清除率达到１００％，对照维生素Ｃ为１．６ｍｇ／ｍＬ时
清除率达到１００％。根据半数有效浓度ＥＣ５０，参薯多糖
对Ｈ２Ｏ２的清除活性强于维生素Ｃ。
图３　参薯多糖和维生素Ｃ对Ｈ２Ｏ２ 的清除作用
３　讨论
本试验结果表明，参薯粗多糖对羟自由基
（·ＯＨ）和过氧化氢（Ｈ２Ｏ２）都有一定的清除作用，
当粗多糖质量浓度达到９ｍｇ／ｍＬ时，对羟自由基清
除率达到 １００％，当粗多糖质量浓度达到 ０．５
ｍｇ／ｍＬ时，对过氧化氢清除率达到１００％。维生素
Ｃ对·ＯＨ 的清除能力远远优于参薯多糖，但参薯
粗多糖对 Ｈ２Ｏ２ 的清除活性强于维生素Ｃ。张泽庆
等［８］采用与本研究相同的方法研究了防风多糖对
·ＯＨ的清除作用，结果表明，在多糖质量浓度为
８．０ｍｇ／ｍＬ时，防风多糖对·ＯＨ 的清除率接近
７０％，而参薯多糖在８ｍｇ／ｍＬ时，清除率就已经达
到８０％，所以参薯多糖对·ＯＨ清除力强于防风多
糖。茹巧美等［９］研究了忽地笑多糖对 Ｈ２Ｏ２ 的清除
作用，结果表明忽地笑多糖对 Ｈ２Ｏ２ 的清除率达
５０％时所需的质量浓度小于０．１ｍｇ／ｍＬ，而参薯多
糖清除 Ｈ２Ｏ２ 的能力明显弱于忽地笑多糖。
根据试验结果可知，参薯块茎中的多糖含量高
达１９．１７％，与姜芳婷等［１０］报道的广西参薯多糖含
量（１７．５６％）相近，较官波等［１１］报道的山药多糖含
量（２．５６％）高出数倍。并且参薯产量为７　５００～
３０　０００ｋｇ／ｈｍ２，要高于同属植物产量，因此参薯可
作为一种植物活性多糖类药物源。
在提取参薯多糖的过程中，发现有大量黏液存
在，而在参薯黏液方面的研究还未曾报道。为确定
参薯的资源学地位，本研究还将在其他有效成分方
面进行研究，以期为参薯的综合开发和利用提供科
学依据。
参考文献：
［１］　裴鉴，丁志遵．中国植物志（第十六卷，第一分册）［Ｍ］．
北京：科学出版社，１９８５：１１７－１１９．
［２］　江苏新医学院．中药大辞典［Ｍ］．上海：科学技术出版
社，１９８５：１６６－１６８．
［３］　Ｍａｕｒｉｅ　Ｍ．Ｔｈｅ　ｈｙｐｏｇｌｙｃｅｍｉｃ　ｐｒｉｎｃｉｐｌｅ　ｏｆ　ｄｉｏｓｃｏｒｅａ　ｄｕ－
ｍｅｔｏｒｕｍ［Ｊ］．Ｐｌａｎｔ　Ｍｅｄ，１９９０，５６（１）：１１９．
［４］　王元梁，赖剑锋．怀山药的伪品参薯、脚板苕的鉴别
［Ｊ］．海峡药学，２００２，１４（４）：２８－３０．
［５］　金鸣，蔡亚欣，李金荣，等．邻二氮菲－Ｆｅ２＋氧化法检测
Ｈ２Ｏ２／Ｆｅ２＋产生的羟自由基［Ｊ］．生物化学与生物物理
进展，１９９６，２３（６）：５５３－５５５．
［６］　茹巧美，真明，郑海雷．忽地笑多糖的体外抗氧化和抑
菌活性研究［Ｊ］．中药材，２００８，３１（１０）：１５３６－１５４０．
［７］　林丽清，黄丽英，郑艳洁，等．金线莲多糖的提取及清除
氧自由基作用的研究［Ｊ］．福建中医学院学报，２００６，１６
（５）：３７－３９．
［８］　张泽庆，田应娟，张静．防风多糖的抗氧化活性研究
［Ｊ］．中药材，２００８，３１（２）：２６８－２７２．
［９］　茹巧美，裴真明，郑海雷．忽地笑多糖的体外抗氧化和
抑菌活性研究［Ｊ］．中药材，２００８，３１（１０）：１５３６－１５４０．
［１０］　姜芳婷，李明静，史会齐，等．山药及其同属植物参薯
中多糖含量的测定［Ｊ］．化学研究，２００４，１５（３）：
４７－４９．
［１１］　官波，郑文诚．山药多糖提取工艺的优化［Ｊ］．食品与
机械，２０１０，２６（１）：９８－１０１．
·６１１· 河南农业科学 第４０卷