全 文 ： ［收稿日期］ ２０１２－０８－２７；２０１２－１０－２０修回
［基金项目］ 贵州省固体废弃物综合利用科技创新人才团队项目（黔科合人才团队（２０１０）４０１１）
［作者简介］ 叶 敏（１９７９－），女，硕士，从事中草药活性成分的分离与纯化。
［文章编号］１００１－３６０１（２０１２）１２－０７６０－０１７２－０４
红托竹荪多糖的提取工艺及其体外抗氧化活性
叶 敏
（毕节学院 化学与化工学院，贵州 毕节５５１７００）
［摘 要］为探明红托竹荪多糖的提取工艺及其体外抗氧化活性，采用水提醇沉法提取多糖，以多糖提
取率为考察指标，通过单因素试验和正交试验，确定红托竹荪多糖的提取工艺条件；采用分光光度法测定多
糖对羟自由基和超氧阴离子自由基的清除作用以及还原能力。结果表明，红托竹荪多糖提取的最佳工艺条
件为料液比１∶２５（ｇ／ｍＬ），在８０℃下提取３ｈ，提取２次，红托竹荪多糖具有较好的还原能力，对·ＯＨ和
Ｏ－２ ·具有较强的清除作用，其ＩＣ５０值分别为０．５１ｍｇ／ｍＬ和０．８３ｍｇ／ｍＬ。结论：红托竹荪多糖具有明显
的体外抗氧化活性。
［关键词］红托竹荪；多糖；提取工艺；抗氧化活性
［中图分类号］Ｑ５３９ ［文献标识码］Ａ
Ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ａｎｄ ｉｎ ｖｉｔｒｏ Ａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔ Ａｃｔｉｖｉｔｙ ｏｆ
Ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓ ｆｒｏｍ Ｄｉｃｔｙｏｐｈｏｒａ ｒｕｂｒｏｖａｌｖａｔａ
ＹＥ Ｍｉｎ
（Ｓｃｈｏｏｌ ｏｆ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ａｎｄ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ，Ｂｉｊｉｅ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｂｉｊｉｅ，Ｇｕｉｚｈｏｕ５５１７００，Ｃｈｉｎａ）
Ａｂｓｔｒａｃｔ：Ｔｏ ｅｘｐｌｏｒｅ ｔｈｅ ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ａｎｄ ｉｎ ｖｉｔｒｏ ａｎｔｉｏｘｉｄａｔｉｏｎ ｏｆ ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓ ｆｒｏｍ
Ｄ．ｒｕｂｒｏｖａｌｖａｔａ．Ｏｎ ｔｈｅ ｂａｓｉｓ ｏｆ ｓｉｎｇｌｅ－ｆａｃｔｏｒ ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔｓ，ｔｈｅ ｏｐｔｉｍａｌ ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ ｃｏｎｄｉｔｉｏｎｓ ｏｆ
Ｄ．ｒｕｂｒｏｖａｌｖａｔａ ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓ ｂｙ ｗａｔｅｒ ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ ａｎｄ ａｌｃｏｈｏｌ ｐｒｅｃｉｐｉｔａｔｉｏｎ ｗｅｒｅ ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｅｄ ｗｉｔｈ
ｏｒｔｈｏｇｏｎａｌ ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ ｄｅｓｉｇｎ．Ｍｅａｎｗｈｉｌｅ，ｔｈｅ ｓｐｅｃｔｒｏｐｈｏｔｏｍｅｔｒｙ ｗａｓ ｕｓｅｄ ｔｏ ｍｅａｓｕｒｅ ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓ
ｔｏ ｈｙｄｒｏｘｙｌ ｆｒｅｅ ｒａｄｉｃａｌｓ ａｎｄ ｓｕｐｅｒｏｘｉｄｅ ｆｒｅｅ ｒａｄｉｃａｌ ｓｃａｖｅｎｇｉｎｇ ｅｆｆｅｃｔ ａｎｄ ｒｅｄｕｃｉｎｇ ｐｏｗｅｒ．Ｔｈｅ ｒｅｓｕｌｔｓ
ｓｈｏｗｅｄ ｔｈａｔ ｔｈｅ ｏｐｔｉｍａｌ ｃｏｎｄｉｔｉｏｎｓ ｗｅｒｅ ｔｈｅ ｒａｔｉｏ ｏｆ ｓｏｌｉｄ－ｌｉｑｕｉｄ １∶２５（ｇ／ｍＬ），ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ
８０℃，ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ ｔｉｍｅ ３ｈ，ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ ｔｗｉｃｅ．Ｔｈｅ ｒｅｄｕｃｉｎｇ ｐｏｗｅｒ ｗａｓ ｅｘｃｅｌｅｎｔ ａｎｄ ｔｈｅ Ｄ．ｒｕｂｒｏｖａｌｖａｔａ
ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓ ｈａｄ ｐｏｗｅｒｆｕｌ ａｂｉｌｉｔｙ ｔｏ ｃｌｅａｒ ｏｆｆ ｈｙｄｒｏｘｙｌ ｆｒｅｅ ｒａｄｉｃａｌｓ（ＩＣ５０＝０．５１ｍｇ／ｍＬ）ａｎｄ ｓｕｐｅｒｏｘｉｄｅ
ｆｒｅｅ ｒａｄｉｃａｌｓ（ＩＣ５０＝０．８３ｍｇ／ｍＬ）．Ｃｏｎｃｌｕｓｉｏｎ：Ｄ．ｒｕｂｒｏｖａｌｖａｔａ ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓ ｈａｓ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ ｉｎ ｖｉｔｒｏ
ａｎｔｉｏｘｉｄａｔｉｏｎ．
Ｋｅｙ ｗｏｒｄｓ：Ｄｉｃｔｙｏｐｈｏｒａ ｒｕｂｒｏｖａｌｖａｔａ；ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓ；ｅｘｔｒａｃｔ ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ；ａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔ ａｃｔｉｖｉｔｙ
红托竹荪（Ｄｉｃｔｙｏｐｈｏｒａ ｒｕｂｒｏｖａｌｖａｔａ）是藏穆
等于１９７６年在云南发现并命名的新种，是中国特产
的竹荪种类，主要分布在贵州、云南等高山地区的刚
竹等林下［１］。红托竹荪是竹荪家族中的珍品，不仅
外形美丽，营养丰富，而且味道鲜美，深受消费者欢
迎，是市场上商品价格较高的一类食用真菌。研究
发现，食用菌多糖能提高机体免疫能力，能激活和提
高网状内皮系统（ＲＥＳ）、巨噬细胞的吞噬能力，能清
除老化细胞和异物，直接杀灭肿瘤细胞，还可以活化
Ｔ、Ｂ淋巴细胞，促进干扰素和白细胞介素的产生而
抑制肿瘤的生长［２］。近年来对红托竹荪的研究发
现，其中含有多种氨基酸、维生素、多糖和多种无机
盐等。除其营养价值外，同时还具有一定的防病保
健作用，多糖是红托竹荪子实体中的重要组成成分
之一［３］。目前国内对红托竹荪生物学特性和栽培技
术的研究报道较多，但对其活性研究相对较少，贵州
省毕节地区为我国红托竹荪的主产地之一，对红托
竹荪的开发研究刻不容缓。因此，试验对其中的红
托竹荪多糖进行提取，并对其体外抗氧化作用进行
了研究，以期对红托竹荪多糖资源的开发利用提供
理论依据。
１ 材料与方法
１．１ 材料
１．１．１ 试验材料 红托竹荪子实体（购于毕节地
区织金县），５０℃烘干后粉碎成粉末。
１．１．２ 主要试剂 葡萄糖（中国药品生物制品检
定所），蒽酮，浓硫酸，ＮａＮＯ２、Ａｌ（ＮＯ３）３、乙醇、邻二
氮菲、邻苯三酚、铁氰化钾、三氯乙酸等均为分析纯。
１．２ 仪器
电子分析天平ＦＡ２００４Ｎ（上海菁海仪器有限公
司），可见分光光度计 Ｖ－５８００，（上海元析仪器有限
公司），离心机８００（金坛市富华有限公司），旋转蒸
发器ＲＥ－２０００Ｂ（上海亚荣生化仪器厂），电热干燥
箱２０２－３（金坛市精达仪器制造厂）。
１．３ 方法
１．３．１ 红托竹荪多糖的提取［４］ 称取红托竹荪粉
末５ｇ，置于圆底烧瓶中，按一定的料液比，水浴温度
贵州农业科学 ２０１２，４０（１２）：１７２～１７５
Ｇｕｉｚｈｏｕ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ
和浸提时间在热水浴中浸提数次，过滤，合并浸提
液，减压浓缩。在浓缩液中加入９５％乙醇调至乙醇
终浓度为８０％，醇沉、离心，沉淀依次用无水乙醇、
丙酮、无水乙醚洗涤，干燥后得粗多糖。将粗多糖用
蒸馏水溶解，ｓｅｖａｇｅ法游离蛋白，离心、沉淀、干燥
得精制粗多糖。
多糖提取率＝
粗多糖质量
原料质量 ×１００％
１）单因素试验。Ａ，料液比。准确称取红托竹
荪粉末５ｇ，以水为提取剂，在８０℃水浴中浸提３ｈ，
改变料液比，考察料液比对红托竹荪多糖提取率的
影响。Ｂ，浸提温度。准确称取红托竹荪粉末５ｇ，
以水为提取剂，按１∶３０的料液比浸提３ｈ，提取１
次，改变温度，考察浸提温度对红托竹荪多糖提取率
的影响。Ｃ，浸提时间。准确称取红托竹荪粉末５
ｇ，以１∶３０的料液比用水在８０℃浸提１次，提取不
同时间，研究浸提时间对红托竹荪多糖提取率的影
响。Ｄ，提取次数。准确称取红托竹荪粉末５ｇ，以
１∶３０的料液比用水在８０℃浸提３ｈ，提取不同次
数，研究提取次数对红托竹荪多糖提取率的影响。
２）正交试验。在单因素试验结果的基础上，以
多糖提取率为考察指标，选取料液比（Ａ）、浸提时间
（Ｂ）、浸提温度（Ｃ）、提取次数（Ｄ）作为考察因素进行
正交试验。正交试验设计见表１。
表１ 红托竹荪多糖提取工艺正交试验设计
Ｔａｂｌｅ １ Ｏｒｔｈｏｇｏｎａｌ ｔｅｓｔ ｄｅｓｉｇｎ Ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ
ｏｆ Ｄ．ｒｕｂｒｏｖａｌｖａｔａ ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓ
水平
Ｌｅｖｅｌ
Ａ料液比／
（ｇ／ｍＬ）
Ｓｏｌｉｄ－
ｌｉｑｕｉｄ ｒａｔｉｏ
Ｂ浸提
时间／ｈ
Ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ
ｔｉｍｅ
Ｃ浸提
温度／℃
Ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ
ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ
Ｄ提取
次数
Ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ
ｆｒｅｑｕｅｎｃｙ
１ １∶２０ ２ ６０ １
２ １∶２５ ３ ７０ ２
３ １∶３０ ４ ８０ ３
１．３．２ 葡萄糖标准曲线的绘制［５］ 精确称取
１０５℃干燥至恒重的葡萄糖标准品１００ｍｇ，用蒸馏
水溶解定容至１００ｍＬ容量瓶中，配成１ｍｇ／ｍＬ的
葡萄糖标准溶液。分别吸取葡萄糖标准溶液０ｍＬ、
０．１ｍＬ、０．２ｍＬ、０．４ｍＬ、０．６ｍＬ、０．８ｍＬ于６支
１０ｍＬ具塞管中，用蒸馏水补至１．００ｍＬ，摇匀，在
冰水浴中缓慢加入４．００ｍＬ蒽酮－硫酸试剂，摇匀，
冷却后置于沸水浴中反应１０ｍｉｎ，取出，立即用水
冷却至室温，于６２５ｎｍ波长处测定吸光度（以第１
管作为空白）。以吸光度为纵坐标，葡萄糖标准溶液
质量浓度为横坐标绘制标准曲线，得到回归方程
ｙ＝６．８１４ｘ＋０．０７５８，Ｒ２＝０．９９５ ５。
１．３．３ 红托竹荪多糖的含量测定 精密称取
０．０２ｍｇ粗多糖，加水溶解并定容至１００ｍＬ容量瓶
中，取１ｍＬ，按１．３．２的方法测定吸光度，并按标准
曲线计算多糖含量。
１．３．４ 红托竹荪多糖体外抗氧化作用的测定
１）还原能力的测定［６］。取不同浓度多糖样品
溶液１ｍＬ，加入２．５ｍＬ磷酸盐缓冲溶液（ｐＨ ６．６）
和２．５ｍＬ １％铁氰化钾溶液，摇匀，于５０℃水浴中
保温２０ｍｉｎ后取出，再加入２．５ｍＬ １０％三氯乙酸
溶液，混合后离心，取上清液２．５ｍＬ并加入２．５ｍＬ
蒸馏水和０．５ｍＬ ０．１％三氯化铁溶液，迅速混匀
后，在７００ｎｍ波长处测吸光度，吸光度的大小则反
映了样品还原能力的大小。
２）清除羟自由基（·ＯＨ）的能力测定。多糖对
羟自由基的清除作用实验按照文献［７］的方法进行。
在１．５ｍＬ ５ｍｍｏｌ／Ｌ邻二氮菲无水乙醇溶液中加
入４．０ｍＬ ０．７５ｍｏｌ／Ｌ磷酸盐缓冲溶液（ｐＨ ７．４），
充分混匀后加入 ７．５ ｍｍｏｌ／Ｌ 硫酸亚铁溶液
１．０ｍＬ，每加１种试剂立即摇匀，然后加入２．５ｍＬ
不同浓度的多糖样品溶液，最后加入１％Ｈ２Ｏ２１．０
ｍＬ。将反应液于３７℃水浴中保温１ｈ，在５３６ｎｍ
处测吸光度Ａ（样品）。空白组以等体积的蒸馏水代
替样品溶液测吸光度Ａ（空白）；对照组以蒸馏水代
替１％Ｈ２Ｏ２和样品溶液测吸光度Ａ（对照），按下式
计算多糖对羟自由基的清除率：
清除率＝Ａ
（样品）－Ａ（空白）
Ａ（对照）－Ａ（空白）×１００％
３）清除超氧阴离子自由基（Ｏ－２ ·）能力的测
定［８－９］。取 ５０ ｍｍｏｌ／Ｌ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ 缓 冲 溶 液
（ｐＨ ８．２）４．５ｍＬ，加入４．２ｍＬ蒸馏水，混匀后在
２５℃水浴中保温２０ｍｉｎ，取出后立即加入在２５℃水
浴中预热的 ３ ｍｍｏｌ／Ｌ 邻苯三酚 ０．３ ｍＬ，（以
１０ｍｍｏｌ／Ｌ ＨＣｌ代替邻苯三酚作为空白），迅速摇
匀后倒入比色管中，在３２５ｎｍ下每隔３０ｓ测定吸
光度，计算线性范围内每分钟吸光度的增加。样品
管在加邻苯三酚前，先加样品溶液１ｍＬ，蒸馏水补
充体积。按下式计算多糖对羟自由基的清除率：
清除率＝ΔＡ０－ΔＡΔＡ０
×１００％
公式中，ΔＡ０ 为邻苯三酚自氧化速率，△Ａ为
加入多糖溶液后邻苯三酚的自氧化速率，单位均为
吸光度每分钟的增加值。
２ 结果与分析
２．１ 不同因素对红托竹荪多糖提取率的影响
２．１．１ 料液比 由图１可知，多糖提取率随料液
比增加而增大。当料液比为１∶３０时，提取率为
７．４２％，继续增大料液比，提取率趋于稳定，料液比
越大，浓缩时间越长，花费成本越高，故提取时料液
比选择１∶３０。
２．１．２ 浸提温度 当温度小于８０℃时，多糖的提
取率随温度的增加而增加，温度超过８０℃，提取率
有所下降（图１），可能是因为温度过高，使多糖分
解。
２．１．３ 浸提时间 当浸提时间小于３ｈ，多糖提取
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叶 敏 等 红托竹荪多糖的提取工艺及其体外抗氧化活性
ＹＥ Ｍｉｎ ｅｔ ａｌ Ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ａｎｄ ｉｎ ｖｉｔｒｏ Ａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔ Ａｃｔｉｖｉｔｙ ｏｆ Ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓ ｆｒｏｍ Ｄｉｃｔｙｏｐｈｏｒａ ｒｕｂｒｏｖａｌｖａｔａ
图１ 不同料液比、浸提温度、浸提时间、提取次数红托竹荪多糖的提取率
Ｆｉｇ．１ Ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｒａｔｉｏ ｏｆ ｓｏｌｉｄ－ｌｉｑｕｉｄ、ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ、ｔｉｍｅ、ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ ｆｒｅｑｕｅｎｃｙ ｏｎ ｙｉｅｌｄ ｏｆ ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓ
率随着时间的增加而增加。但超过３ｈ，提取率增
加不明显（图１），说明多糖基本上全部溶于热水中，
提取在３ｈ已基本上达到平衡。
２．１．４ 提取次数 由图１可知，多糖提取率随着
浸提次数的增加而增加。提取至第４次时，提取率
有所下降，说明多糖已基本提尽。
２．２ 红托竹荪多糖提取的最佳工艺
由表２可知，料液比（Ａ）、浸提时间（Ｂ）、浸提温
度（Ｃ）、提取次数（Ｄ）４个因素对多糖提取率的主次
影响顺序为Ｃ＞Ｂ＞Ｄ＞Ａ，并得到最佳工艺条件为
料液比１∶２５（ｇ／ｍＬ），浸提时间３ｈ，浸提温度
８０℃，提取２次，即Ａ２Ｂ２Ｃ３Ｄ２。在此最佳提取条件
下进行验证试验，测得红托竹荪多糖的提取率为
７．２３％。
表２ 红托竹荪多糖提取的正交试验结果Ｌ９（３４）
Ｔａｂｌｅ ２ Ｔｈｅ ｒｅｓｕｌｔ ｏｆ ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ ｔｏ Ｄ．ｒｕｂｒｏｖａｌｖａｔａ ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓ ｉｎ Ｌ９（３４）ｏｒｔｈｏｇｏｎａｌ ｔｅｓｔ
试验编号
Ｎｏ．
Ａ料液比／（ｇ／ｍＬ）
Ｓｏｌｉｄ－ｌｉｑｕｉｄ ｒａｔｉｏ
Ｂ浸提时间／ｈ／
Ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ ｔｉｍｅ
Ｃ浸提温度／℃／
Ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ
Ｄ提取次数
Ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ ｆｒｅｑｕｅｎｃｙ
多糖提取率（％）
Ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ ｙｉｅｌｄ
１ １ １ １ １ ５．３６
２ １ ２ ２ ２ ６．９８
３ １ ３ ３ ３ ７．１２
４ ２ １ ２ ３ ５．９８
５ ２ ２ ３ １ ７．０３
６ ２ ３ １ ２ ６．５１
７ ３ １ ３ ２ ６．６２
８ ３ ２ １ ３ ５．９９
９ ３ ３ ２ １ ６．２９
ｋ１ ６．４８７ ５．９８７ ５．９５３ ６．２２７
ｋ２ ６．５０７ ６．６６７ ６．４１７ ６．７０３
ｋ３ ６．３００ ６．６４０ ６．９２３ ６．３６３
Ｒ ０．２０７ ０．６８０ ０．９７０ ０．４７６
图２ 红托竹荪多糖的体外抗氧化性
Ｆｉｇ．２ Ｔｈｅ ｉｎ ｖｉｖｏ ａｎｔｉｏｘｉｄａｔｉｏｎ ｏｆ Ｄ．ｒｕｂｒｏｖａｌｖａｔａ ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓ
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贵 州 农 业 科 学
Ｇｕｉｚｈｏｕ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ
２．３ 体外抗氧化性
２．３．１ 还原能力 还原能力考察了活性物质提供
电子或氢原子的能力，它是物质抗氧化能力的一种
表现形式［８］。由图２可知，随红托竹荪多糖浓度的
增加，吸光度逐渐增加，表明其还原能力随着浓度增
加而增大。
２．３．２ 对羟自由基的清除能力 羟自由基是目前
已知的氧化性最强的自由基，反应性极强，几乎可以
和所有细胞成分发生反应，对机体危害极大［８］。由
图２可知，红托竹荪多糖对羟基自由基的抑制能力
随着浓度的增加而增强，不同浓度的红托竹荪多糖
对羟自由基均具有一定的抑制能力。红托竹荪多糖
对羟 自 由 基 的 半 数 抑 制 质 量 浓 度 （ＩＣ５０）为
０．５１ｍｇ／ｍＬ。结果表明，红托竹荪多糖具有明显
的抑制羟自由基的能力。
２．３．３ 对超氧阴离子自由基的清除作用 如图２
所示，红托竹荪多糖对超氧阴离子自由基的清除作
用随着多糖浓度的增加而增加，当红托竹荪多糖的
浓度为０．８ｍｇ／ｍＬ，对超氧阴离子自由基的清除作
用达５０％，多糖在大于１ｍｇ／ｍＬ时，随浓度的增
加，其清除率的增加变缓。对超氧阴离子自由基的
半数抑制质量浓度（ＩＣ５０）为０．８３ｍｇ／ｍＬ，结果表
明，红托竹荪多糖对超氧阴离子具有明显的清除作
用。
３ 讨论与结论
自由基是细胞正常代谢的产物，但过多的活性
氧自由基通过脂质过氧化反应破坏ＤＮＡ、抑制蛋白
质合成，对各种生物大分子具有潜在的危险并导致
许多疾病的产生。自由基种类较多，其中以·ＯＨ
和Ｏ－２ ·的危害最严重［１０］。因此，清除自由基的抗
氧化剂的研究普遍受到人们的关注，其中寻找安全、
有效的天然抗氧化剂已成为当前研究的热点。
试验采用水提醇沉法提取了红托竹荪多糖并研
究其体外抗氧化活性。得到最佳工艺条件为料液比
１∶２５（ｇ／ｍＬ），在８０℃下提取３ｈ，提取２次，在此
最佳提取条件下进行试验验证，测得红托竹荪多糖
的提取率为７．２３％。通过测定还原力、超氧阴离子
自由基和羟自由基的清除率试验来评价红托竹荪多
糖的抗氧化活性，结果表明，红托竹荪多糖具有较好
的还原能力和自由基清除效果。随着多糖浓度的增
加，其还原能力和抑制自由基能力有一定程度的提
高，从ＩＣ５０的效果来看，红托竹荪多糖对羟自由基的
清除率高于对超氧阴离子的清除效果。说明红托竹
荪多糖具有明显的体外抗氧化活性。
［参 考 文 献］
［１］ 饶 军，张云珍．红托竹荪的栽培［Ｊ］．生物学通报，
１９９８，３３（４）：４５－４７．
［２］ Ｃｈｅｎ Ｙ Ｙ，Ｃｈａｎｇ Ｈ Ｍ．Ａｎｔｉｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｖｅ ａｎｄ ｄｉｆｆｅｒ－
ｅｎｔｉａｔｉｎｇ ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅ ｆｒａｃｔｉｏｎ ｆｒｏｍ Ｆｕ－
ｌｉｎｇ（Ｐｏｒｉａ ｃｏｃｏｓ）ｏｎ ｈｕｍａｎ ｌｅｕｋｅｍｉｃ Ｕ９３７ａｎｄ ＨＬ－６０
ｃｅｌｓ［Ｊ］．Ｆｏｏｄ ａｎｄ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｔｏｘｉｃｏｌｏｇｙ，２００４，４２：
７５９－７６９．
［３］ 连 宾，郁建平．红托竹荪多糖的提取分离及组成研
究［Ｊ］．食品科学，２００４，２５（３）：４３－４５．
［４］ 朱晓宦，吴向阳，仰榴青，等．马齿苋粗多糖的提取及
清除羟自由基活性作用［Ｊ］．江苏大学学报：医学版，
２００７，１７（１）：５７－６０．
［５］ 杨秀英，王书林．蒽酮－硫酸比色法测定枇杷叶中可溶
性多糖的含量［Ｊ］．亚太传统医药，２００８，４（８）：２６－２７．
［６］ 李金凤，段玉清，马海乐，等．板栗壳中多酚的提取及
体外抗氧化性研究［Ｊ］．林产化学与工业，２０１０，３０
（２）：５３－５８．
［７］ 何玲玲，王 新，刘 彬，等．板栗多糖的分离纯化及
抗氧化活性研究［Ｊ］．食品与机械，２０１０，２６（２２）：７２－
７５．
［８］ 杜晶晶，杨宏志．沙棘多糖抗氧化活性的研究［Ｊ］．黑
龙江八一农垦大学学报，２０１１，２３（２）：４９－５２．
［９］ 王宗君，廖丹葵．茶树菇多糖抗氧化活性研究［Ｊ］．食
品研究与开发，２０１０，３１（１）：５０－５５．
［１０］ 李 晓，冯 雷，胡尊丽，等．马齿苋多糖的抗氧化活
性研究［Ｊ］．中国生化药物杂志，２０１０，３１（４）：２４４－
２４６．
（责任编辑：孙小岚）
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叶 敏 等 红托竹荪多糖的提取工艺及其体外抗氧化活性
ＹＥ Ｍｉｎ ｅｔ ａｌ Ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ａｎｄ ｉｎ ｖｉｔｒｏ Ａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔ Ａｃｔｉｖｉｔｙ ｏｆ Ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓ ｆｒｏｍ Ｄｉｃｔｙｏｐｈｏｒａ ｒｕｂｒｏｖａｌｖａｔａ