全 文 ：收稿日期:2012-11-21 接受日期:2013-03-20
基金项目:福建省公益类科研院所项目(2011Ｒ1024-4) ;福建省财
政专项;福州市科技计划项目(2011G93)
* 通讯作者 E-mail:hongduanlq@ 163． com;xinjianliu@ 163． net
天然产物研究与开发 Nat Prod Ｒes Dev 2013，25:1576-1581
文章编号:1001-6880(2013)11-1576-06
棘托竹荪孢子粉抗氧化活性研究
王彦辉1，2，林陈强2，邱宏端1* ，陈济琛2，林新坚2*
1 福州大学生物科学与工程学院，福州 350008;2福建省农科院土壤与肥料研究所，福州 350001
摘 要:采用水提与醇提两种方法，通过 DPPH自由基、羟基自由基、还原力、超氧自由基和对 Fe2 +的螯合力五
种评价模型研究破壁与未破壁竹荪孢子粉的抗氧化活性。结果表明:不同的提取方法抗氧化效果不同，水提与
醇提 DPPH自由基清除率、超氧阴离子自由基清除率和还原力较强，尤其超氧阴离子自由基清除率最高，可达
88． 10%;在羟基自由基清除率和对 Fe2 +的螯合力中，醇提比水提的抗氧化效果明显;破壁孢子粉相比未破壁的
抗氧化活性强;不同极性有机溶剂对破壁竹荪孢子粉的抗氧化活性有影响;破壁竹荪孢子粗多糖有较好的 DP-
PH自由基清除效果;初步测定了孢子粉的粗多糖、总黄酮和总多酚的含量，为开发竹荪孢子粉提供基础依据。
关键词:竹荪;破壁孢子粉;抗氧化活性
中图分类号:Q946;Ｒ285 文献标识码:A
Studies on Antioxidant Activities of Dictyophora echinovolvata spore
WANG Yan-hui1，2，LIN Chen-qiang2，QIU Hong-duan1* ，CHEN Ji-chen2，LIN Xin-jian2*
1College of Biological Science and Technology，Fu Zhou University，Fuzhou Fujian 350008，China;
2The Soil and Fertilizer Institute，Fujian Academy of Agricultural Sciences，Fuzhou Fujian 350001，China
Abstract:The aim of this study was to study the antioxidant activity of water-extract and ethanol-extract of the broken
Dictyophora echinovolvata spore and unbroken spore using five appraisal models including DPPH radical，hydroxyl radi-
cal，reducing power，superoxide radicals and Fe2 + chelating power． The results showed that different extraction methods
exhibited different antioxidant activity，water-extract and ethanol-extract had better activities on DPPH radical，superox-
ide radical and reducing power，especially on superoxide radical the scavenging rate was up to 88． 10%;Ｒegarding hy-
droxyl radical and Fe2 + chelating power，the antioxidant activity of the ethanol-extract was obviously better;The broken
D． echinovolvata spore had different antioxidant activity with different solvents，and the DPPH radical scavenging effect of
its crude polysaccharide was better;The broken D． echinovolvata spore had higher antioxidant activity than unbroken
spore． In addition，the content of crude polysaccharide，total flavonoids and total polyphenol of the spores were deter-
mined in this study． The results provided a basis for future study of D． echinovolvata spore．
Key words:Dictyophora echinovolvata;broken spore;antioxidant activity
竹荪是一种名贵的食用真菌，其营养丰富，香味
浓郁，滋味鲜美，历史上列为“宫廷贡品”、“菌中皇
后”。现代医学研究证明，竹荪具有滋补强壮、益气
补脑、宁神健脑之功效，且含有能抑制肿瘤的成分。
竹荪子实体主要可分为三大部分:菌盖、菌体和菌
托。菌盖上着生的孢体，约占竹荪子实体干重的
12%。竹荪具有抗氧化活性，对其活性成分的研究
主要集中在竹荪菌体抗氧化活性。Yang-Lin Hua 通
过水提、凝胶过滤纯化竹荪多糖，发现其具有较强的
体内抗氧化活性［1］。Jeng-Leun Mau 等研究了包括
竹荪在内的四种特殊食用菌的抗氧化活性，发现竹
荪甲醇提取物抗氧化活性最高［2］。庄永亮等发现
红托竹荪菌盖多糖具有较强的还原能力和抑制羟基
自由基的能力，且随浓度升高抑制羟基自由基的能
力相应提高［3］。李波等发现七种云南产食用菌中
竹荪的甲醇提取物抗氧化活性较突出，其总酚含量
为 15. 44 mg /g［4］。江玉姬等对 26 种食用菌子实体
水提和醇提液进行了总还原能力、羟自由基、超氧阴
离子自由基和 DPPH自由基的清除能力测定发现竹
荪的综合抗氧化活性较高，且水提活性相比醇提
高［5］。然而，对于竹荪孢子抗氧化的作用至今未见
报道，本文拟通过其抗氧化的作用研究，提高竹荪资
源利用率，研发新产品。
1 材料与仪器
1． 1 材料
棘托竹荪(Dictyophora echino-volvata Zane) ，
2012 年 6 ～ 9 月源于福建省顺昌县。
1． 2 仪器与设备
紫外可见分光光度计［UV-2800AH 型，尤尼柯
(上海)仪器有限公司］;电子分析天平(AＲ1530，美
国) ;超低细菌型超纯水器(SPW-10TJ 型，上海赛鸽
电子科技有限公司) ;低速大容量离心机(DL-5 型，
上海安亭科学仪器厂) ;旋转蒸发器(Ｒ209 型，上海
申生科技有限公司) ;循环水多用式真空泵(SHB-
B95 型，郑州长城科工贸有限公司) ;低温冷却液循
环泵(DL1030 型，上海申生科技有限公司)。实验
所用有机试剂购于国药集团。
2 实验方法
2． 1 竹荪孢子收集与破壁竹荪孢子制备
2． 1． 1 竹荪孢子收集
采集新鲜的竹荪，将菌盖剥离，用纯水洗涤，过
滤，5000 rpm离心 5 min，将获得孢子烘干，过筛;竹
荪破壁孢子粉，由福建省仙芝楼生物公司破壁，破壁
率达 90%以上。
2． 1． 2 孢子粉水提液制备
分别精确称取破壁与未破壁竹荪孢子粉 1 g 于
50 mL锥形瓶，料液比 1 ∶ 30 加入超纯水，室温条件
下超声震荡 10 min后于 90 ℃水浴中浸提 3 h，5000
rpm离心 5 min，上清转移至 50 mL 容量瓶中，沉淀
按上述步骤再次浸提，离心，合并浓缩，定容至 50
mL。
2． 1． 3 孢子粉醇提液制备
分别精确称取破壁与未破壁的竹荪孢子粉 1 g
于 50 mL锥形瓶，80%乙醇，料液比 1∶ 30，室温条件
下超声震荡 10 min后于 80 ℃水浴中回流提取 3 h，
5000 rpm离心 5 min 上清转移至 50 mL 容量瓶中，
沉淀按上述步骤再次浸提，离心，合并浓缩，定容至
50 mL。
2． 2 抗氧化活性测定
2． 2． 1 DPPH自由基清除能力测定
参照 Vattem等的方法［6，7］进行。吸取竹荪孢子
粉的水提液和醇提液 2 mL(初提液稀释 10 倍)于
20 mL比色管中，加入 2 mL 60 μmol /L DPPH溶液，
摇匀，室温避光放置 30 min，于 517 nm 测吸光度
(As) ，空白对照为 2 mL 水或醇加 2 mL 60 μmol /L
DPPH溶液(Ao) ，以 2 mL 样品加入 2 mL 双蒸水或
醇作为样品对照(Ax) ，消除样品颜色的干扰，阳性
对照为抗坏血酸(Vc)。每个样品重复三次取平均
值。清除率 Ｒ按下式计算:
Ｒ =［1-(As-Ax)/Ao］× 100%
2． 2． 2 羟基自由基清除能力测定
参照陈留勇的水杨酸法［8］，并略作改动。反应
体系中含 2 mL 6 mmol /L H2O2，2 mL 6 mmol /L
FeS04，2 mL 6 mmol /L水杨酸-乙醇溶液，待测溶液 2
mL，H2O2 最后加入启动反应。36 ～ 37 ℃水浴反应
30 min后，12000 rpm离心 6 min，以水为参比在 510
nm下测定吸光度，重复三次取平均值(Ax)。空白
对照(Ao)为 2 mL 双蒸水或醇代替待测溶液。以 2
mL 6 mmol /L FeS04，2 mL 6 mmol /L水杨酸-乙醇，2
mL待测溶液和 2 mL双蒸水或醇作为样品对照消除
样品颜色的干扰(Axo)。阳性对照为抗坏血酸
(Vc)。清除率 Ｒ计算公式为:
Ｒ =(Ao-(Ax-Axo) )/ Ao × 100%
其中 Ao 为空白对照吸光度，Ax 为加入待测溶
液后的吸光度，Axo为待测溶液的本底吸收值。
2． 2． 3 总还原力测定
总还原力测定参考 Oyaizu(1988)法［9，10］，并略
作改进。取样品溶液 0． 2 mL，加 2 mL 0． 2 mol /L、
pH 6． 6 磷酸缓冲溶液和 2 mL 1%铁氰化钾(K3Fe
(CN)6)溶液于 1． 5 mL 离心管中混匀。50 ℃水浴
20 min，加 2 mL 0． 4 mol /L 三氯乙酸溶液，5000 r /
min离心 10 min，取上清液 2 mL 加 2 mL 蒸馏水和
0． 4 mL 0． 02%三氯化铁(FeC13)溶液，混合均匀，室
温下反应 10 min，700 nm下检测吸光度。三次重复
取平均值，阳性对照为抗坏血酸(Vc)。
2． 2． 4 超氧阴离子自由基清除能力测定
根据张志军的方法［11］，3 mL pH 8． 2 Tris-HCl
缓冲液和 1 mL待测样品，25 ℃水浴 20 min 后加入
3 mL 7 mmol /L 的邻苯三酚，反应 4 min 后加 10
mol /L HCl终止反应，以 Tris-HCl 缓冲液作参比，在
420 nm处测吸光度，三次重复取平均值，对照组
(Ao)以蒸馏水或醇代替，空白组(Axo)为不加邻苯
三酚，阳性对照为抗坏血酸(Vc)。
清除率 Ｒ =(Ao-(Ax-Axo) )/ Ao × 100%
其中 Ao 为空白对照吸光度，Ax 为加入待测溶
液后的吸光度，Axo为待测溶液的本底吸收值。
7751Vol. 25 王彦辉等:棘托竹荪孢子粉抗氧化活性研究
2． 2． 5 对 Fe2 +的螯合能力测定
参考 Decker等的方法［12，13］并作适当修改，移取
1 mL样品，加 2． 5 mL提取溶剂混匀，各加 0． 1 mL 2
mmol /L FeCl2 溶液充分混匀，加 0． 2 mL 5 mmol /L
Ferrozine溶液混匀反应 10 min，在波长 562 nm处测
定其吸光度，重复三次取平均值，以 1mL 双蒸水或
醇代替样品作为对照组(Ao) ，空白组(Axo)不加
FeCl2，EDTA-Na2 为阳性对照。
螯合力 Ｒ = (Ao-(Ax-Axo) )/ Ao × 100%
其中 Ao 为空白对照吸光度，Ax 为加入待测溶
液后的吸光度，Axo为待测溶液的本底吸收值。
2． 3 粗多糖含量测定
参考 NY /T1676-2008 食用菌中粗多糖含量的
测定。
2． 4 总多酚含量测定［14］
分别移取没食子酸标准液(20、40、60、80、100
μg /mL)、水、待测提取液各 1 mL 于 20 mL 比色管
中，在每个试管中内分别加入 5． 0 mL 10%福林酚试
剂，摇匀，反应 5 ～ 8 min，加入 4． 0 mL 7． 5% Na2CO3
溶液，加水定容至刻度，摇匀，室温下放置 60 min，
765 nm下测定吸光度。以没食子酸标准液浓度为
横坐标，吸光值为纵坐标绘制标准曲线。
2． 5 总黄酮含量测定
分别吸取 0、2、4、6、8、10 mL 芦丁标准液(0． 1
mg /mL)及 10 mL待测提取液于 25 mL容量瓶中，加
水至 10 mL，加入 5%亚硝酸钠 1 mL 摇匀后静置 6
min，加入 10%硝酸铝溶液 1 mL，摇匀后静置 6 min，
再加入 1 mol /L NaOH溶液 10 mL，用 60%的乙醇溶
液定容至 25 mL，静置 12 min 后，在 510 nm 处测定
其吸光度。以芦丁浓度为横坐标，吸光度(A)为纵
坐标绘制标准曲线。
2． 6 不同萃取溶剂对破壁竹荪孢子粉提取物抗氧
化活性影响
竹荪孢子粉水提液分别用石油醚、正丁醇、氯仿
和甲醇萃取，合并减压浓缩定容至 50 mL，DPPH 法
检测抗氧化活性。
2． 7 破壁竹荪孢子粉粗多糖的提取及抗氧化活性
测定
称取破壁竹荪孢子粉，料液比 1∶ 30，90 ℃水浴
浸提 3 h，5000 rpm离心 5 min，沉淀再次浸提，合并
减压浓缩后加入三倍体积的 95%乙醇溶液，4 ℃过
夜，5000 rpm离心 5 min取沉淀，真空冷冻干燥至恒
重即为竹荪孢子粗多糖。配制不同浓度的粗多糖溶
液，DPPH法检测抗氧化活性。
3 结果与分析
3． 1 竹荪孢子粉抗氧化能力
3． 1． 1 竹荪孢子粉提取物对 DPPH 自由基清除能
力
竹荪孢子粉提取物稀释 10 倍，对 DPPH自由基
清除力见图 1。由图可知，DPPH 的清除能力破壁-
醇提(PC)＞破壁-水提(PH)＞未破壁-醇提(WH)
＞未破壁-水提(WC) ，对数据进行多重比较(P ＜
0. 05) ，结果表明，竹荪孢子粉乙醇提取物对 DPPH
自由基清除能力与水提物之间无显著性差异，破壁
处理后的提取物(PC、PH)与未破壁处理(WH、WC)
有显著性差异，其中破壁-醇提(PC)清除能力可达
75． 56%，抗坏血酸(VC)当量为 583． 3 μg /g。未破
壁醇提提物 DPPH自由基清除效果相比水提物有显
著性差异，说明破壁处理的竹荪孢子粉更有利于
DPPH抗氧化活性物质的提取，且竹荪孢子粉水溶
性和脂溶性的活性物质都具有较强的 DPPH自由基
清除效果。
3． 1． 2 羟基自由基清除能力
如图 2 所示，竹荪孢子粉对羟基自由基的清除
力:破壁-醇提(PC)＞未破壁-醇提(WC)＞破壁-水
提(PH)＞未破壁-水提(WH) ，破壁-醇提(PC)的清
8751 天然产物研究与开发 Vol. 25
除率可达 54． 36%，抗坏血酸(VC)当量为 11． 87
mg /g。可见，无论是醇提还是水提，破壁竹荪孢子
粉羟基自由基清除效果显著高于未破壁样品，醇提
效果明显高于水提，表明孢子粉中脂溶性的活性物
质对羟基自由基的清除效果更强。
3． 1． 3 总还原力
采用铁氰化钾法测定竹荪孢子粉提取物还原力
结果如图 3 所示，竹荪孢子粉粗提液的总还原力:破
壁-水提(PH)＞ 破壁-醇提(PC)＞ 未破壁-水提
(WH)＞未破壁-醇提(WC) ，可以看出，竹荪孢子粉
提取液的总还原力水提液比醇提液高，可能是水提
液有还原糖的存在，破壁-水提(PH)的总还原力为
1． 090，抗坏血酸(VC)当量为 2． 701 mg /g。破壁孢
子粉与未破壁孢子粉相比具有较强的还原力。
3． 1． 4 超氧阴离子自由基清除能力
竹荪孢子粉提取物对超氧阴离子的清除能力如
图 4 所示。清除力依次为破壁-水提(PH)＞破壁-
醇提(PC)＞ 未破壁-水提(WH)＞ 未破壁-醇提
(WC) ，由图看出，破壁孢子粉水提和醇提对超氧阴
离子自由基的清除率都可以达到 80%以上，其中破
壁-水提(PH)清除率为 88． 10%，VC 当量为 23． 43
mg /g。竹荪孢子粉的多糖等水溶性成分对超氧自
由基清除率与醇提脂溶性物质对超氧阴离子自由基
清除能力都较强，水提相比醇提有显著性差异;破壁
与未破壁的相比，破壁竹荪孢子粉无论醇提还是水
提对超氧自由基的清除效果都显著高于未破壁孢子
粉，可能由于破壁样品有利于竹荪孢子超氧阴离子
清除物质的提取。
3． 1． 5 Fe2 +的螯合力
如图 5 所示，Fe2 +的螯合力大小依次为破壁-醇
提(PC)＞未破壁-醇提(WC)＞破壁-水提(PH)＞
未破壁-水提(WH) ，水提液对 Fe2 +的螯合力较低，
醇提液的效果较好，其中破壁-醇提(PC)螯合力为
68． 10%，EDTA-Na2 当量为 2． 105 mg /g。可见竹荪
孢子粉脂溶性成分更容易与 Fe2 +螯合阻止 Fenton
反应的发生。
3． 2 竹荪孢子粉粗多糖含量
竹荪孢子抗氧化活性物质除小分子物质外，粗
多糖也具有抗氧化活性。采用国标的方法测定竹荪
孢子粗多糖含量，结果表明，破壁竹荪孢子粉的多糖
含量为 8． 61 g /100 g，未破壁竹荪孢子的粗多糖含量为
5． 66 g /100 g，破壁竹荪孢子能提高粗多糖含量。
3． 3 竹荪孢子粉总多酚含量
以没食子酸为阳性对照，得回归方程 y =
0. 0047x + 0． 0141(r = 0． 9991) ，说明没食子酸浓度
在 20 ～ 100 μg /mL 时线性关系良好。根据标曲换
算样品多酚含量，由表 1 可知，通过福林酚的方法测
定，不同的处理不同的提取方法，多酚的含量也不相
同，其多酚含量破壁-水提(PH)＞ 未破壁-水提
(WH)＞破壁-醇提(PC)＞未破壁-醇提(WC) ，其中
破壁-水提(PH)总多酚含量为 5． 531 mg /g为最高。
3． 4 竹荪孢子粉总黄酮含量测定
本实验采用芦丁为对照品，以芦丁浓度为横坐
标，510 nm 处吸光值为纵坐标，得回归方程 y =
0. 5257x + 0． 0041(r = 0． 9997) ，根据回归方程计算
样品总黄酮含量。由表 1 可以看出，竹荪孢子粉的
黄酮含量破壁-水提(PH)＞破壁-醇提(PC)＞未破
壁-水提(WH)＞ 未破壁-醇提(WC) ，其中水提
(PH)优于醇提(PC) ，破壁高于未破壁，破壁-水提
9751Vol. 25 王彦辉等:棘托竹荪孢子粉抗氧化活性研究
表 1 竹荪孢子粉总多酚与总黄酮含量
Table 1 Total polyphenols and flavonoids of D． echinovolvata spore
不同处理
Different treatment
总多酚含量
Total polyphenol content(mg /g)
总黄酮含量
Total flavonoids content(mg /g)
破壁-水提(PH)broken spore-water extract 5． 531 3． 271
破壁-醇提(PC)broken spore-ethanol extract 3． 914 1． 911
未破壁-水提(WH)unbroken spore-water extract 4． 127 1． 378
未破壁-醇提(WC)unbroken spore-ethanol extract 3． 000 0． 998
黄酮含量为 3． 271 mg /g。
3． 5 不同萃取溶剂对破壁竹荪孢子粉提取物抗氧
化活性的影响
分别用石油醚、正丁醇、氯仿和甲醇对水提浸膏
进行萃取，DPPH自由基清除率检测抗氧化活性，结
果发现，如图 6 所示，四种有机溶剂萃取中甲醇萃取
对 DPPH自由基清除率最大，为 63． 10%，其次为正
丁醇、氯仿，石油醚 DPPH 清除率为 1． 59%。与水
提相比，甲醇萃取液的抗氧化活性下降 15%，说明
破壁竹荪孢子粉水提液中可能存在抗氧化活性多糖
等一些水溶性活性物质。相同浓度条件下，不同极
性有机溶剂萃取中正丁醇相抗氧化活性相对较强，
可作为竹荪孢子粉小分子抗氧化活性物质分离纯化
的萃取溶剂。
3． 6 破壁竹荪孢子粉粗多糖抗氧化活性
通过水提醇提的方法得到竹荪孢子粉粗多糖，
分别配制 0． 1、0． 2、0． 3、0． 4、0． 5 mg /mL 粗多糖溶
液进行 DPPH自由基清除力抗氧化活性检测，发现
如图 7 所示，粗多糖 0． 1 mg /mL 时对 DPPH 自由基
清除力为 30． 86%，随着竹荪孢子粉粗多糖浓度的
增大，DPPH自由基清除力也逐渐增大，0． 5 mg /mL
时 DPPH自由基清除力可达 83． 66%，说明竹荪孢
子粉粗多糖具有较好的 DPPH清除效果。
4 结论
本研究采用 DPPH 自由基清除率、羟基自由基
清除率、还原力、超氧自由基清除率和对 Fe2 +的螯
合力对竹荪孢子粉的抗氧化效果进行评价。实验结
果发现，五种模型对不同处理不同提取方法的评价
效果不同。通过统计分析，除 DPPH自由基外，破壁
样品水提和醇提对超氧自由基清除率、羟基自由基
清除率、Fe2 +的螯合力及还原力有显著差异，破壁处
理后的竹荪孢子粉与未破壁的竹荪孢子粉相比具有
较显著的抗氧化活性，说明破壁竹荪孢子粉更有利
于活性物质的提取。针对竹荪孢子粉的抗氧化活
性，初步检测了与抗氧化可能有关的活性成分，其中
破壁-水提样品粗多糖含量可达 8． 61 g /100 g，总多
酚含量 5． 531 mg /g，总黄酮含量 3． 271 mg /g。
采用不同极性的有机溶剂对破壁竹荪水提液进
行浸提发现，甲醇的 DPPH自由基清除效果最好，但
相对水提液的 DPPH 自由基清除率下降 15%，据此
推断竹荪孢子粉还存在其他水溶性的抗氧化活性物
质，并通过竹荪孢子粉粗多糖的提取及 DPPH 自由
基清除率的测定，发现竹荪孢子粉粗多糖确实有较
强的抗氧化活性，且随着竹荪孢子粗多糖浓度的增
大，其 DPPH自由基清除率也相应增大。相同浓度
0851 天然产物研究与开发 Vol. 25
条件下，不同极性有机溶剂萃取液中正丁醇对竹荪
孢子粉水提浸膏萃取效率最高。
本论文初步研究了竹荪孢子粉的抗氧化活性，
为竹荪资源合理利用、竹荪新产品开发及提高农产
品附加值提供依据。
参考文献
1 Hua YL，Yang B，Tang J，et al． Structral analysis of water-
soluble polysaccharides inthe fruiting body of Dictyophora in-
dusiata and their in vivo antioxidant activites． Carbohyd
Polym，2012，87:343-347．
2 Man JL，Lin HC，Ma JT，et al． Non-voltile taste components
of several specialty mushrooms． Food Chem，2001，73:461-
466．
3 Zhuang YL(庄永亮) ，Sun LP(孙丽平) ，Shang XL(尚小
丽)． Extraction and antioxidant activities of polysaccharides
from Pileus of Dictyophora rubrovalvata． Chem Ind Forest
Prod(林产化学与工业) ，2011，31(3) :45-48．
4 Li B(李波) ，Xu GH(徐贵华) ，Lu F(芦菲) ，et al． Study on
antioxidant activity of seven kinds of yunnan mushroom． Edi-
ble Fungi(食用菌) ，2010，2:66-67．
5 Jiang YJ，Wang HY． Antioxidant activities of mushrooms and
extraction process optimization for Dictyophora echinovolvata．
Chin J Tropical Crops，2011，32:1075-1081．
6 Niu PF(牛鹏飞) ，Chou NX(仇农学) ，Du Y(杜寅)． Sepa-
ration of polyphenols from apple pomace based on different
polarities and their antioxidative activities in vitro． Trans
CSAE (农业工程学报) ，2008，24:238-242．
7 Vattm DA，Lin Y，Labbe ＲG，et al． Phenolic antioxidnat mo-
bilization in cranberry pomace by solid-state bioprocessing u-
sing food grade fungus Lentinus edodes and effect on antimi-
crobial activity against select food bonre pathogens． Innov
Food Sci Emerg Tech，2004，5:81-91．
8 Chen LY(陈留勇) ，Meng XJ(孟宪军) ，Jia W(贾薇) ，et
al． The study on the antitumor activity and scavenging free
radical and immune effect of the water-soluble polysaccha-
rides from A． Persica． L． var． seleropersica． Food Sci (食品科
学) ，2004，25:167-170．
9 Chen X(陈欣) ，Gong L(龚兰) ，Liu GH(刘冠卉)． Extrac-
tion and ferric reducing antioxidant power of polysaccharides
from four edible fungi． Food Sci(食品科学) ，2010，31:140-
144．
10 Oyaizu M． Antioxidative activity of browning products of glu-
cosam inefractionated by organic solvent and thin layer chro-
matography． Nippon Shokuhin Kogyo Gakkaishi，1986，35:
771-775．
11 Zhang ZJ(张志军) ，Li SF(李淑芳) ，Wei XS(魏雪生) ，et
al． Study on antioxidant activity of Ganoderma Lucidum poly-
saccharide． Chem Bioeng(化学与生物工程) ，2011，28(3) :
63-65．
12 Dong Y(董怡) ，Lin LZ(林恋竹) ，Zhao MM(赵谋明)． An-
tioxidant activity of different solvent extracts from Ｒabdosia
serra (Maxim．)Hara Ｒoots． Food Sci(食品科学) ，2011，32
(15) :39-42．
13 Decker EA，Welch B． Ｒole of ferritin as a lipid oxidation cat-
alyst in muscle food． J Agric Food Chem，1990，38:674-677．
14 Lv QJ(吕群金) ，Yi JＲ(衣杰荣) ，Ding Y(丁勇)． Determi-
nation of polyphenol in carambola by folin-ciocalteu colori-
metry． Hunan Agric Sci(湖南农业科学) ，2009，7:
櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵
99-101．
(上接第 1514 页)
12 Justyna K，Ｒobert CS，Christopher AＲ，et al. Stereoselective
synthesis of bulky 1，2-diols with alcohol dehydrogena-
ses. Catalysis Sci Technol，2012，2:1580-1589.
13 Liu Ｒ(刘荣). Investigation on chemical constituens of eight
higher fungi and one medicinal plant. Kunming:Kunming In-
stitute of Botany，Chinese Academy of Sciences (中国科学
院昆明植物研究所) ，PhD. 2010. 71.
14 Yin HQ(尹宏权) ，Qi XL(齐秀兰) ，Hua HM(华会明) ，et
al. The chemical constituents from Saussurea lappa C. B
Clarke. Chin J Med Chem(中国药物化学杂志) ，2005，15:
217-220.
15 Sven A，Stefan K，Heike W，et al. Dietary Derived Sesquiter-
penes from Phyllodesmium lizardensis . J Nat Prod，2009，72:
298-300.
1851Vol. 25 王彦辉等:棘托竹荪孢子粉抗氧化活性研究