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淡竹叶中竹叶黄酮的纯化工艺研究



全 文 :淡竹叶中竹叶黄酮的纯化工艺研究*
初阳1,杨倩2
(1.中国医科大学附属第一医院药学部,沈阳 110001;2.沈阳药科大学,110024)
摘 要 目的 优选淡竹叶中竹叶黄酮纯化工艺。方法 以淡竹叶中总黄酮含量为指标,对树脂上样浓度、上样液
pH、上柱吸附流速、树脂药材比、乙醇洗脱浓度、洗脱速度进行优化。结果 pH为 6. 0 的高浓度竹叶黄酮提取液上样,水
洗至流出液无色,以 80%乙醇、2. 0 mL·min -1洗脱至流出液无黄酮颜色反应,收集洗脱液。洗脱液固形物中总黄酮的平
均纯度为 57. 5%。结论 采用该工艺纯化竹叶总黄酮,有效成分含量高,方法重复性好,适于工业化生产。
关键词 淡竹叶;黄酮;大孔树脂;纯化
中图分类号 R284. 2;R927. 1 文献标识码 A 文章编号 1004 - 081(20012)05 - 0648 - 03
淡竹叶为禾本科植物淡竹叶 Lophatherum gracile
Brongn.的干燥茎叶,其味甘、淡,性寒,归心、胃、小肠
经,具有清热除烦、利尿功效,多用于热病烦渴、口舌生
疮、小便赤色、淋痛等症[1]。竹叶黄酮是淡竹叶中黄
酮类物质的总称,也是淡竹叶发挥主要治疗作用的有
效成分。目前市售竹叶黄酮含量一般为 24%,笔者在
本实验中探索一种安全易行且适于工业化大生产的提
高竹叶黄酮的方法。
1 仪器与试药
1. 1 仪器 UV-9100 紫外-可见分光光度计(北京瑞
利分析仪器公司) ,FA1104 电子天平(上海民桥精密
科学仪器有限公司) ,电热恒温水浴锅(天津市泰斯特
仪器有限公司) ,真空干燥箱(上海医用仪器厂) ,
RE52CS旋转蒸发仪(上海亚荣生化仪器厂) ,SZ-97 自
动三重纯水蒸馏器(上海亚荣生化仪器厂)。
1. 2 试药 淡竹叶饮片(陕西天士力植物药业有限
责任公司,批号:20090110,经沈阳药科大学陆金才教
授鉴定为淡竹叶 Lophatherum gracile Brongn 茎叶) ,芦
丁对照品(中国食品药品检定研究院,批号:100080-
200707) ,D101 型非极性大孔吸附树脂(河北沧州宝恩
化工 有 限 公 司,净 品 型)。无 水 乙 醇 (批 号:
20101023)、石油醚(批号:20100315)均为天津市富宇
精细化工有限公司提供,分析纯。95%乙醇(沈阳市
富康消毒药剂厂,批号:20100315)。亚硝酸钠
(NaNO2,批号:20090509)、氢氧化钠(NaOH,批号:
20101102)、硝酸铝[Al(NO3)3,批号:20100820]均由
天津市博迪化工有限公司提供。盐酸(HCl,沈阳经济
技术开发区试剂厂,批号:20110320) ,三重蒸馏水(实
收稿日期 2011 - 09 - 14 修回日期 2011 - 12 - 13
基金项目 * 沈阳市科学技术计划项目(1091142-9-00)
作者简介 初阳(1980 -) ,女,辽宁沈阳人,讲师,主管药
师,硕士,主要从事中药药剂学研究。电话:024 - 83282156,E-
mail:chuyang1980@ yahoo. com. cn。
验室自制,批号:20110109)。
2 方法与结果
2. 1 上柱液的制备 取淡竹叶 10 g,70 ℃下以 70%
乙醇 250 mL水浴回流 2 h,将提取液浓缩,得到竹叶黄
酮供试品溶液[2]。
2. 2 竹叶黄酮的测定 将“2. 1”项下竹叶黄酮供试
品溶液加入 50 mL量瓶,80%乙醇定容。精密吸取上
述溶液 2 mL置 50 mL量瓶,并以 80%乙醇补充至 12.
0 mL。加入 5% NaNO2溶液 1. 5 mL,混匀,放置 6 min
后加入 10% Al(NO3)3溶液 1. 5 mL,混匀,6 min 后再
加入 4% NaOH溶液 20. 0 mL,混匀,用水定容。以阴
性对照为空白,于 510 nm波长处测吸光度(A)值[3]。
2. 3 树脂对竹叶黄酮的吸附情况考察
2. 3. 1 静态吸附量与解吸率的测定 室温下,影响大
孔吸附树脂吸附性能的主要因素有上样液浓度和上样
液 pH[4-6],故笔者分别以供试液浓度和 pH 为考察指
标进行单因素考察,以确定最佳上样条件。
①上样液浓度考察:分别准确称取预处理湿树脂
10. 0 g,置 250 mL 具塞三角瓶,分别精密加入已知浓
度(C0,0. 02,0. 04,0. 06 mg·mL
-1)、pH 6. 0 的竹叶
黄酮水溶液 100 mL,置于摇床上 100 r·min -1振摇 24
h,充分吸附后滤过,测定各滤液中黄酮浓度(C1) ,并
按下式计算黄酮的吸附量(Q,mg·g -1)[6]。Q =(C0
- C1)× 110 /10。分别取经上法吸附饱和的树脂,置
250 mL锥形瓶,各加入 95%乙醇 100 mL,室温浸泡,置
于摇床,100 r·min -1振摇 24 h,充分解吸后滤过,测
定各滤液中黄酮浓度,以下式计算解析率(R解) :R解 =
C解·V /Q[C解:解吸液浓度(mg·mL
-1) ,V:解吸液体
积(mL) ,Q:黄酮吸附量(mg·g -1) ]。结果见表 1。
当上样液为 0. 06 mg·mL -1时,大孔树脂的 Q和 R解均
达到最大。
·846· Herald of Medicine Vol. 31 No. 5 May 2012
表 1 不同浓度样品静态吸附量与解析率测定结果
浓度
C1 Q C解
(mg·mL -1)
R解 /%
0. 02 0. 006 0. 18 0. 012 6. 67
0. 04 0. 010 0. 34 0. 020 5. 98
0. 06 0. 017 0. 50 0. 033 7. 72
②上样液 pH:分别准确称取经预处理的湿树脂
10. 0 g,置 250 mL 具塞三角瓶,分别精密加入考察
“2. 3. 1”项①中 Q 和 R解较大的浓度 C0的竹叶黄酮水
溶液 100 mL,调节 pH 至 5. 0,6. 0,7. 0,摇床上
100 r·min -1振摇 24 h,充分吸附后滤过,按该项下测
定黄酮的 Q与 R解。结果见表 2,上样液 pH6. 0,大孔
树脂 Q和 R解均达到最大,故粗提液 pH为 6. 0 为树脂
的最佳吸附 pH。
表 2 不同 pH条件下静态吸附量与解析率测定结果
pH
C1 /
(mg·mL -1)
Q /
(mg·g - 1)
C解 /
(mg·mL -1)
R解 /%
5. 0 0. 004 0. 52 0. 037 7. 10
6. 0 0. 006 0. 50 0. 042 8. 40
7. 0 0. 013 0. 43 0. 011 2. 67
2. 3. 2 动态吸附考察 取经预处理的 D101 大孔树
脂湿法装柱,确认无明显气泡及断层后考察竹叶黄酮
的动态吸附。
①上柱吸附流速对黄酮保留率的影响:取竹叶黄
酮提取液,精密吸取 10 mL,分别以 2,4,6,8,
10 BV·h -1(BV:流出液的体积相当于床体积的倍数,
倍床体积)的流速上柱吸附,收集流出液,静止 1 h。
然后以 10 BV·h -1流速清洗,收集流出液。合并两次
流出液,测定竹叶黄酮含量,计算竹叶黄酮在树脂柱的
保留率。结果 2,4,6,8,10 BV·h -1样品保留率分别
为 90. 2%,89. 9%,87. 7%,82. 5%和 74. 9%。表明上
柱吸附流速过快,竹叶黄酮损失较大,当吸附流速 < 4
BV·h -1时,竹叶黄酮保留率较高。
②树脂(干)药材比的考察:调整竹叶黄酮提取液
的上柱量,使树脂药材比(干树脂与水提液中竹叶药
材的质量比)分别为 8∶1,6∶1,4∶1,2∶1,水洗至无
色,以 80%乙醇溶液作为洗脱溶液,2 BV·h -1解吸,
收集洗脱液,测定竹叶黄酮的转移率。结果树脂药材
比为 8∶1,6∶1,4∶1,2∶1 时,转移率分别为 89.
0%,89. 3%,88. 6%和 86. 2%。表明随着树脂药材比
的增大,竹叶黄酮的转移率有所增加。树脂药材比在
4∶1 ~ 8∶1 纯化效果较好,考虑到大孔吸附树脂的成
本,选择树脂药材比为 4∶1。
③乙醇浓度:将 0. 057 mg·mL -1竹叶黄酮浓缩液
上树脂柱,先以水洗至洗脱液无色,分别选取 20%,
40%,60%,80%,95%乙醇溶液以 2. 0 mL·min -1连
续洗脱,收集不同浓度洗脱液各 100 mL,分取 2 mL洗
脱液至 5 个 10 mL量瓶,测定总黄酮浓度,并计算提取
物纯度,以确定最佳洗脱液浓度。结果见表 3。当乙
醇浓度为 80%时,总黄酮含量最高。
表 3 不同乙醇浓度对提取物总黄酮含量的影响
乙醇浓度 /% C /(mg·mL -1) P /%
20 0. 021 23. 3
40 0. 032 41. 6
60 0. 050 51. 1
80 0. 051 57. 3
95 0. 047 52. 7
④ 洗 脱 速 度:经 以 上 条 件 确 定,将
0. 057 mg·mL -1竹叶黄酮浓缩液上树脂柱,先以水洗
至洗脱液无色,然后选取 80%乙醇溶液分别以1. 5,2.
0,2. 5,3. 0 mL·min -1流速洗脱至洗脱液无黄酮显色
反应,达到洗脱完全,收集不同流速洗脱液,浓缩,冷冻
干燥,测定总黄酮含量,计算提取物纯度,结果洗脱速
度分别为 1. 5,2. 0,2. 5,3. 0 mL·min -1时,提取物纯
度分别为 52. 8%,58. 1%,49. 5%,43. 2%。当洗脱速
度为2. 0 mL·min -1时总黄酮含量最高,故洗脱速度确
定为2. 0 mL·min -1。
2. 3. 3 D101 大孔树脂最佳纯化工艺的确定 经以上
吸附条件的筛选,确定 D101 大孔树脂的最佳纯化工
艺。即:pH 6. 0 竹叶黄酮提取液以树脂药材比 4∶1,
吸附流速 4 BV·h -1上样,先以水洗至流出液无颜色,
然后以 80%乙醇、2. 0 mL·min -1洗脱至流出液无黄
酮颜色反应。将洗脱液浓缩,减压蒸发,真空干燥称质
量并以“总黄酮含量测定”项下方法测定总黄酮含量,
计算提取物纯度。结果表明,3 次平行实验结果分别
为56. 8%,58. 2%,57. 6%,平均纯度 57. 5%。
3 讨论
上样液浓度对大孔吸附树脂的吸附与解吸附有明
显影响。在一定的浓度范围内,浓度越高,大孔吸附树
脂的吸附与解吸附越高,但浓度不可能无限升高,若浓
度超过 0. 06 mg·mL -1,则提取物过浓,流动性不好,
不易上样,且损失较多。提取物为0. 06 mg·mL -1时,
竹叶黄酮提取物溶液与大孔树脂接触充分,吸附较好,
同时保证了解吸附率的提高。pH 对 D101 型大孔吸
·946·医药导报 2012 年 5 月第 31 卷第 5 期
附树脂吸附与解吸附有较大影响。在酸性条件下对竹
叶黄酮的吸附性能较好,解吸附性能也较好。这可能
与提取物呈弱酸性有关,当 pH≤6 时,黄酮提取物为
分子形态,利于大孔树脂的吸附。采用 20% ~ 95%乙
醇冲洗,竹叶总黄酮含量在 80%时纯度较高,乙醇浓
度较高,能将总黄酮洗脱完全。但当浓度达到 95%
时,不仅竹叶黄酮被洗脱,其他脂溶性物质也被洗脱,
反而使纯度降低。
采用大孔树脂法对淡竹叶中黄酮类化合物的提取
液进行分离和纯化,经纯化后得到的固形物中总黄酮
的平均纯度为 57. 5%,比市售的竹叶黄酮制剂纯度
(24%)提高约 34%,含量较高,满足中药有效部位的
制剂要求。
洗脱速度对总黄酮含量也有明显影响,当洗脱速
度过快时,洗脱溶液没有与大孔吸附树脂上的总黄酮
充分接触,洗脱不完全。洗脱速度过慢时,无法带动总
黄酮流出大孔树脂。因此,洗脱流速也是关键。
由于黄酮类化合物对光、热、湿敏感,易分解变质,
因此经提取纯化制备的竹叶黄酮提取液和冻干粉末都
必须置于避光的阴凉干燥处保存。
参考文献
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科技出版社,2003:133.
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吸附工艺影响因素考察[J].中成药,2007,29(2) :199 -
202.
DOI 10. 3870 /yydb. 2012. 05. 035
尼美舒利缓释片的制备与体外释放度考察
郑稳生,方夏琴,王璐璐,张宇佳,马书键
(中国医学科学院药物研究所,药物传输技术与新型制剂北京重点实验室,北京 100050)
摘 要 目的 考察制备尼美舒利骨架缓释片的最佳缓释材料、缓释材料含量和制片压力。方法 采用正交实验,
从片剂外观、释放度确定缓释片处方和工艺。结果 通过指标评价体系比较 3 种缓释材料[羟丙基甲基纤维素
(HPMC)、kollidon和卡波姆]的性能,其中 kollidon压片性能最佳,片剂外观完整光滑,指标得分均达 12 分(总 15 分) ,
HPMC缓释性能最佳。通过最佳处方和工艺制得的 3 批骨架片外观完整光滑,缓释片释放行为最接近 Higuchi释放,12 h
平均累积释放达 96. 05%。结论 该制备工艺简单可行。
关键词 尼美舒利;缓释;正交实验;体外释放
中图分类号 R971. 1;R927. 1 文献标识码 A 文章编号 1004 - 0781(2012)05 - 0650 - 03
尼美舒利(nimesulide)溶解度小,口服给药存在胃
肠道不良反应,生物半衰期较短,普通制剂服用后血药
浓度波动大等问题[1-4]。为减少用药次数,进一步降低
其胃肠道不良反应,笔者运用缓释材料制备每天给药
两次的尼美舒利骨架片,以期避免普通制剂的血药浓
度峰谷现象。笔者采用正交实验考察羟丙基甲基纤维
素(hydroxypropyl methylcellulose,HPMC)、kollidon 及
卡波姆对骨架片释放度的影响,着重研究缓释材料对
制剂释放效果的影响,并评价不同缓释材料的作用特
收稿日期 2011 - 07 - 10 修回日期 2011 - 10 - 04
作者简介 郑稳生(1966 -) ,男,安徽潜山人,副研究员,
博士,主要从事药物传输技术及新型制剂研究。电话:010 -
63165233,E-mail:zhengwensheng@ imm. ac. cn。
点,对缓释制剂处方的设计及优化具有一定参考价
值[9]。
1 仪器与试药
1. 1 仪器 RC-8D 溶出度测试仪(天津市光学仪器
厂)、HP8453 UV检测器、DP30A 单冲压片机(北京国
药龙立科技有限公司)。
1. 2 试药 尼美舒利原料(河北九天生物制品有限
公司,含量 > 99. 0%,批号:091101) ,尼美舒利对照品
(中国食品药品检定研究院,批号:100555-200501) ,羧
甲基纤维素钠(武汉科技有限公司,含量:99%) ,
HPMC(日本信越公司,SH 100000) ,kollidon SR(BASF
公司) ,卡波姆 974P(北京市海淀会友精细化工厂)。
·056· Herald of Medicine Vol. 31 No. 5 May 2012