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应用ISSR标记分析12份臂形草种质的遗传差异



全 文 :陈晓斌 男,1982年生,在读硕士研究生,E-mail:chenxiaobin8204@163.com。
*通讯作者 蒋昌顺,电话:0898-23300114,E-mail:changshunj@yahoo.com.cn。
收稿日期:2008-01-29 修回日期:2008-05-22
热 带 作 物 学 报
CHINESEJOURNALOFTROPICALCROPS
Vol.29No.3
Jun.2008
第 29卷 第 3期
2008年 6月
应用ISSR标记分析12份臂形草种质的遗传差异
陈晓斌 1,2 邹冬梅 1 田维敏 1 蒋昌顺 1*
1 中国热带农业科学院热带作物栽培生理学重点开放实验室
2 海 南 大 学 农 学 院
海南 儋州 571737
摘 要 选用 17条 ISSR引物分析 12份臂形草种质遗传差异,结果表明:臂形草种质间的多态性高,17条引
物产生了 286条 DNA片段,其中 280条具有多态性,多态性比率高达 97.90%;每个引物可扩增出 6~23条
DNA片段,平均 16.8条,种质间遗传相似系数变化范围为 0.486~0.968,平均值为 0.681;通过聚类分析可将 12
份臂形草种质分为两类:一类为巴拉草和湿生臂形草,其余品种则聚为另一类。
关键词 臂形草 ISSR标记 遗传差异
中图分类号 S543.9
臂形草(Brachiaria,又名旗草,英文名 Palisadegrass或 Signalgrass)属于禾本科臂形草属的一年生或
多年生牧草,有文献报道,全属约50种,我国产 6种,其中海南产 2种[1~5],另周自玮[6]报道,臂形草全属
共 97种,中国产 9种。主要分布于热带及亚热带地区,既可用于建植人工草地,又可用于水土保持,是
优良的放牧型和水土保持型牧草。中国热带农业科学院最早于1963年从斯里兰卡引进珊状臂形草(B.
brizantha),尔后又从哥伦比亚国际热带农业中心(CIAT)引进5个臂形草属牧草新品种[1]。我国早期对臂
形草属牧草主要是做引育种的工作,最近几年,在臂形草属牧草种子生产、牧草产量和饲用价值等方面
做了大量的研究,在臂形草属牧草内生菌方面也做了初步的研究[7~16]。而利用分子标记技术对臂形草属
进行遗传差异的研究,至今仍未见报道。因此,开展臂形草种质的遗传多样性及亲缘关系的研究对臂形
草品种的鉴定、选育及利用很有必要,同时对臂形草属植物的分类提供借鉴。简单重复序列间区 (Inter-
simplesequencerepeat,简称 ISSR)标记技术由加拿大蒙特利尔大学的 Zietkiwicz等于 1994年提出[17~20]。
Nagaoka和 Ogihara用 ISSR引物对小麦的研究结果表明,此类引物的分析结果与 RFLP分析结果一样
可靠,并发现(AC)n引物能扩增出更多的多态性[17,20]。Kojima等首先将 ISSR标记用于一粒小麦遗传作
图,结果表明ISSR标记分布于整个染色体组,其在图上所处的位置与 RFLP相似[21]。近年来,ISSR标记
在牧草研究中得到了广泛应用。例如,魏臻武等采用 12个ISSR引物对苜蓿55个品种的遗传多样性进
行了分析[22,23]。Dangi等在对胡卢巴属(Trigonela)的研究中,从100个ISSR引物中选用了14个有效引物
对17个T.foenum-graecum居群进行了遗传多样性研究 [24]。肖海峻等利用 ISSR标记对鹅观草属 20个
种,6个变种,共60份材料进行了遗传多样性检测[25]。ISSR标记已广泛应用在遗传连锁图谱构建、基因
定位、种质资源鉴定、植物分类、进化和遗传多样性等方面的研究[17,20,22~29]。本研究通过对12份臂形草种
质进行ISSR标记分析其遗传差异,为今后的深入研究提供参考。
1 材料与方法
1.1 植物材料
由中国热带农业科学院热带作物品种资源研究所提供的 12份臂形草种质(表 1),均栽种于热带作
物品种资源研究所牧草中心基地。采摘适量各品种的嫩叶,并置于超低温冰箱中保存。
1.2 化学试剂
CTAB、Tris碱、EDTA、PVP、Agrose等均购于宝生物工程(大连)有限公司;2×TaqPCRMasterMix
3期 陈晓斌等:应用 ISSR标记分析 12份臂形草种质的遗传差异
购于天根生化科技(北京)有限公司;34条ISSR
引物[18]由生工生物工程(上海)有限公司和
Invitrogen公司合成,从中筛选出 17条引物用
于ISSR-PCR反应(表2)。
1.3 实验仪器
移液枪(德国Eppendorf公司);核酸蛋白分
析仪(德国 Eppendorf公司);高速冷冻离心机
(德国sigama公司);PCR仪(德国 Biometra公
司);Uvidoc凝胶成像系统(德国 Biometra公
司);电泳仪(德国Biometra公司)。
1.4 DNA提取与检测
利用改良的 CTAB法提取臂形草的总
DNA[18],具体步骤如下:取嫩叶约 0.5g在液氮冷冻下研磨成粉末,迅速转入 2mL离心管,加入 800μL
预冷的 CTAB-free缓冲液(200mmol/LTris-HCl,50mmol/LEDTA-Na2,250mmol/LNaCl,1%巯基乙醇
V/V)并迅速混匀,置于冰上 10min;4℃,8000r/min离心 5min,弃上清,加入 600μL65℃预热的 2×
CTAB提取缓冲液(2%CTAB,100mmol/LTris-HCl,25mmol/LEDTA-Na2,1.5mol/LNaCl,1%巯基乙
醇V/V),充分混匀后置于65℃水浴40min,每隔15min轻摇1次,使样品充分悬浮在提取缓冲液中;取
出离心管,待冷却后加入等体积的苯酚 /氯仿 /异戊醇(25∶24∶1,V/V),轻轻颠倒混匀,4℃,12000r/min
离心6min;取上清,加入等体积氯仿/异戊醇(24∶1,V/V),轻轻颠倒混匀,4℃,12000r/min离心 6min;
取上清,加入等体积冰冷的异丙醇,轻轻颠倒混匀,置于 4℃沉淀 30min;4℃,7000r/min离心 7min,
弃上清,用 70%乙醇洗涤沉淀 2~3次,风干,加入 100μLTE(10mmol/LTris-HCl,1mmol/LEDTA)溶
解,加入1μL10mg/L的RnaseA,4℃保存。
用 1.0%琼脂糖凝胶电泳检测,用核酸蛋白分析仪检测 DNA的浓度和纯度,并用无菌水稀释到均
一浓度50ng/μL。
1.5 ISSR分析
PCR反应体系为20μL,其中包括:模板DNA1.0μL(50ng);ISSR引物1.0μL(10pmol/μL);2×Taq
PCRMasterMix10.0μL;ddH2O8.0μL。PCR反应程序为:94℃预变性3min;然后94℃变性45s,52℃
1 热研3号俯仰臂形草 B.decumbenscv.ReyanNo.3 国际热带农业中心(CIAT)
2 热研6号珊状臂形草 B.brizanthacv.ReyanNo.6 国际热带农业中心(CIAT)
3 珊状臂形草 B.brizantha 国际热带农业中心(CIAT)
4 珊状臂形草CIAT6387 B.brizanthaCIAT6387 国际热带农业中心(CIAT)
5 Mekong珊状臂形草 B.brizanthaMekong 国际热带农业中心(CIAT)
6 泰国刚果臂形草 B.ruziziensiscv.Thailand 泰国(Thailand)
7 FM9201/1873杂交臂形草 B.hybridFM9201/1837 国际热带农业中心(CIAT)
8 Mulato1臂形草 B.hybridcv.Mulato1 国际热带农业中心(CIAT)
9 Mulato2臂形草 B.hybridcv.Mulato2 国际热带农业中心(CIAT)
10 巴拉草 B.muica(Forssk.)Stapf. 斯里兰卡(SriLanka)
11 杂交臂形草CIAT360601 B.hybridCIAT360601 国际热带农业中心(CIAT)
12 湿生臂形草 B.humidicola(Rendle)Schweickt. 澳大利亚(Australia)
序号 种质名称 学名 来源
表 1 12份臂形草种质的名称及来源
809 (AG)8G 841 (GA)8Y(C/T)C
817 (CA)8A 842 (GA)8Y(C/T)G
818 (CA)8G 846 (CA)8R(A/G)T
823 (TC)8C 847 (CA)8R(A/G)C
825 (AC)8T 848 (CA)8R(A/G)G
829 (TG)8C 855 (AC)8Y(C/T)T
830 (TG)8G 857 (AC)8Y(C/T)G
835 (AG)8Y(C/T)C 891 H(A/C/T)V(A/C/G)H(A/C/T)(TG)7
840 (GA)8Y(C/T)T
说明:Y=(C,T);R(A/G);H=(A,C,T)(i.e.notG);V=(A,C,G)(i.e.notT)
编号 引物序列 编号 引物序列
表 2 17条 ISSR引物编号及序列
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热 带 作 物 学 报 29卷
或 56℃退火 1min,72℃延伸 90s,36个循环;最后 72℃延伸 5min。PCR产物上样于 1.5%的琼脂糖
凝胶,150V电泳至溴酚蓝指示剂离胶孔3/4处为止。电泳完毕后在Uvidoc凝胶成像系统上观察照相。
1.6 数据统计与分析
电泳图谱中迁移率一致的条带被认为具有同源性,按照同一位置上DNA条带的有无进行统计,分
别记录为1(有)或0(无),形成原始的表型数据矩阵。利用 NTSYS-pcVersion2.10y软件对遗传变异程
度进行数据处理,分析不同种质之间的遗传关系。
2 结果与分析
2.1 ISSR-PCR扩增结果
12份臂形草引进品种的 ISSR-PCR部分引物扩增结果见图 1。从筛选出的 17个 ISSR引物扩增谱
带统计结果来看,每个引物可扩增出 6~23条 DNA片段,平均每个引物扩增 16.8条 DNA片段,17个引
物共产生 286条谱带,其中 280条具有多态性,多态性比率为 97.90%。并且从大多数引物的扩增图谱
可以看出:巴拉草和湿生臂形草与其他臂形草的DNA条带存在的差异性较明显(图A10中的箭头所
指表示唯一缺失性,其它表示唯一具有性)。
2.2 遗传相似系数
利用 NTSYS-pcVersion2.10y软件对 17个 ISSR引物扩增出的 286条 DNA片段分析计算供试材
料间的遗传相似系数(图略),结果表明,12份臂形草引进品种间的遗传相似系数变化范围为
0.486~0.968,平均值为 0.681。其中,FM9201/1873杂交臂形草和 Mulato1臂形草的遗传相似系数
(0.968)最大,表明这两个品种的亲缘关系较近,遗传差异很小。巴拉草和湿生臂形草的遗传相似系数为
0.598,它们与其余的臂形草种质间的相似系数均小于 0.601。由此可见,巴拉草和湿生臂形草与其余臂
形草种质的亲缘关系较远,遗传差异较大,存在较高的遗传多样性。
2.3 聚类分析
用 NTSYS-pcVersion2.10y软件对 12份不同来源的臂形草进行聚类分析,得分子树状图(图 2),
从聚类图中可以看出 12份臂形草种质在遗传相似系数为 0.585的水平上可分为 A和 B两类,A类群
仅为巴拉草和湿生臂形草两份种质;B类群包括10份材料,其中热研3号俯仰臂形草、热研6号珊状臂
形草和珊状臂形草CIAT6387聚在一起成为一个亚类C,珊状臂形草、FM9201/1873杂交臂形草、Mulato1
臂形草和杂交臂形草 CIAT360601聚成另一个亚类 D,亚类 C和 D先聚在一起,然后先后与 Mekong臂
形草、Mulato2臂形草、泰国刚果臂形草聚在一起形成 B类群。
2.4 臂形草种质的主坐标分析
主坐标分析以12份臂形草种质的遗传相似性系数为基础,产生的二维图见图 3。可以发现,主坐标
A为引物 809,B为引物 825;
M为 200bpDNALadderMarker;1~12为表 1中的种质编号
图 1 臂形草 ISSR-PCR扩增结果
312
3期 陈晓斌等:应用 ISSR标记分析 12份臂形草种质的遗传差异
分析结果与聚类分析结果一致。巴拉草和湿生臂形草与其它臂形草种质的遗传距离较远,它们具有较
高的遗传多样性,分布于二维图的左边偏下;热研 3号俯仰臂形草、热研 6号珊状臂形草和珊状臂形草
CIAT6387在二维图的右上方排列;珊状臂形草、FM9201/1873杂交臂形草、Mulato1臂形草和杂交臂形
草CIAT360601在二维图的右下方排列;其余臂形草种质则位于二维图的中部偏右。
3 讨 论
ISSR标记技术结合了 RAPD标记技术和 SSR标记技术的优点,具有实验操作简单、快速、高效、遗
传多态性高、重复性好、无需知道任何靶标序列的SSR背景信息等特点,被广泛应用到各类研究中。本
1~12为表 1中的种质编号;A,B,C,D为类群编号
图 2 12份臂形草种质间的 ISSR聚类分析图
1~12为表 1中的种质编号;A,B,C,D为类群编号
图 3 基于 ISSR数据获得的 12份臂形草种质的前两个主坐标的二维图
313
热 带 作 物 学 报 29卷
实验首次用ISSR标记分析了12份臂形草种质遗传差异,在所用的 17条ISSR引物中共扩增出 286条
谱带,其中280条具有多态性,多态性比率为97.90%,遗传相似系数为0.486~0.968,平均值为 0.681,表
明臂形草的遗传多样性是比较丰富的。以上研究结果表明,ISSR标记适合于臂形草种质遗传多样性分
析和种质鉴定。
通过聚类分析在阈值为0.585的水平上可将这12份臂形草种质分成两类,其中巴拉草和湿生臂形
草为一类群,其余种质为另一类群,从中可以看出俯仰臂形草、珊状臂形草和杂交臂形草较为接近,它
们的亲缘关系也应该较近。如果在阈值为0.684的水平上则可将这 12份臂形草种质分为三类(与主坐
标分析结果一致),其中巴拉草和湿生臂形草各为一类,其余种质还是为另一类群,这与周自玮在臂形
草属牧草的分类及种质资源中的分类一致,其将巴拉草归为第Ⅲ组,湿生臂形草为Ⅵ组,而俯仰臂形
草、珊状臂形草和泰国刚果臂形草(路氏臂形草)为Ⅴ组[6]。供试材料中的4种杂交臂形草,其中Mulato1
臂形草由珊状臂形草和刚果臂形草杂交而来,Mulato2臂形草杂交亲本为俯仰臂形草和刚果臂形草,因
此 Mulato1臂形草和 Mulato2臂形草都归为Ⅴ组。由于 FM9201/1873杂交臂形草和杂交臂形草
CIAT360601是直接从国外引进,未知其杂交亲本,但通过聚类分析和主坐标分析可以发现,它们与珊状
臂形草和 Mulato1臂形草非常接近,因此它们的亲缘关系非常近,应该都与珊状臂形草有关联。
本实验只对臂形草的 12份种质做了初步的遗传差异分析,证明了ISSR标记在臂形草种质间进行
遗传差异分析的可行性,可为后续的研究工作提供借鉴。
参 考 文 献
1刘国道,白昌军,何华玄,等.臂形草属牧草品种比较试验[J].草业科学,1999,16(1):22~24
2唐 军,易克贤,白昌军,等.臂形草品种及其营养价值初评(简报)[J].草地学报,2007,15(4):398~340
3何华玄,白昌军,韦家少,等.海南省西南半干旱地区臂形草引种试验[J].热带农业科学,2005,25(3):4~6
4白昌军,刘国道,何华玄,等.热研 14号网脉臂形草的选育[J].热带作物学报,2006,27(3):11~16
5白昌军,刘国道,王东劲,等.热研 15号刚果臂形草的选育与利用[J].草地学报,2007,15(6):566~571
6周自玮,钟 声,奎嘉祥,等.臂形草属牧草的分类及种质资源[J].云南农业大学学报,2005,20(2):247~251
7张如莲,白昌军,蔡碧云.臂形草五品种种子质量比较[J].种子,2004,23(11):75~76,92
8杨连珍,白昌军,刘国道.臂形草属牧草种子生产试验[J].热带作物学报,2004,25(2):81~86
9杨连珍.热研 6号珊状臂形草种子产量和质量的研究[D].华南热带农业大学,2004
10李志丹,白昌军,王文强,等.刈割周期、施肥量对 5种臂形草属牧草产量与品质的影响[J].热带农业科学,2006,26(4):10~13
11邹冬梅,蒋昌顺,阮云泽.不同施肥处理对热研 3号俯仰臂形草种子产量的影响[J].热带农业科学,1999(5):51~55
12张如莲,龙开意.不同温度处理对臂形草种子发芽速率的影响[J].四川草原,2005(7):27、28
13洪彩香,张如莲,陈志权.不同处理方法对 3种臂形草属牧草种子发芽率的影响[J].热带农业科学,2004,24(2):13~17
14郇树乾,刘国道,白昌军,等.4种臂形草种子萌发期及苗期的耐盐性比较[J].热带作物学报,2007,28(1):15~18
15郇树乾,刘国道,张绪元,等.NaCl胁迫对刚果臂形草种子萌发及幼苗生理效应的研究[J].中国草地,2004,26(6):45~49
16郭志凯,王 蓉,蔡吉苗,等.臂形草内生真菌菌株 HND5的分离、抗性评价及其初步鉴定[J].热带作物学报,2007,28(2):92~96
17朴红梅,李万良,穆 楠,等.ISSR标记的研究与应用[J].吉林农业科学,2007,32(5):28~30
18周延清.DNA分子标记技术在植物研究中的应用[M].北京:化学工业出版社,2005.9~30,143~156
19ZietkiewiczE,RafalskiA,LabμdaD.Genomefingerprintingbysimplesequencerepeat(SSR)-anchoredpolymerasechainreactionamplifi-
cation[J].Genomics,1994,20:176~183
20孙 洪,程 静,詹克慧,等.ISSR标记技术及其在作物遗传育种中的应用[J].分子植物育种,2005,3(1):123~127
21KojimaT,NagaokaT,NodaK.GeneticlinkagemapofISSRandRAPDmarkersinEinkornwheatinrelationtothatofRFLPmarkers[J].
TheorApplGenet,1998,96:37~45
22魏臻武.利用 SSR,ISSR和 RAPD技术构建苜蓿基因组 DNA指纹图谱[J].草业学报,2004,13(3):62~67
23魏臻武,符 昕,耿小丽,等.苜蓿遗传多样性和亲缘关系的 SSR和 ISSR分析[J].草地学报,2007,15(2):118~123
24解新明,卢小良.SSR和 ISSR标记及其在牧草遗传与育种研究中的应用前景[J].草业科学,2005,22(2):30~37
25肖海峻,徐 柱,李临航,等.利用 ISSR标记研究鹅观草属种质资源的遗传多样性[J].华北农学报,2007,22(4):146~150
26王明明,宋振巧,王建华.ISSR标记技术及其在药用植物遗传育种中的应用[J].中草药,2007,38(1):134~137
314
3期 陈晓斌等:应用 ISSR标记分析 12份臂形草种质的遗传差异
27王建波.ISSR分子标记及其在植物遗传学研究中的应用[J].遗传,2002,24(5):613~616
28谢佳燕,张知彬.ISSR标记技术及其在遗传多样性研究中的应用[J].兽类学报,2004,24(1):71~77
29徐 红,王燕燕,魏丹红,等.不同产地丹参药材的 ISSR分析与鉴别[J].中药新药与临床药理,2007,18(6):454~457
AssessmentofGeneticDiversityof12Signal
GrassGermplasmsbyISSRMarkers
ChenXiaobin1,2 ZouDongmei1 TianWeimin1 JiangChangshun1
1KeyOpenLaboratoryforCultivationandPhysiologyofTropicalCrops,CATAS Danzhou Hainan 571737
2ColegeofAgronomy,HainanUniversity Danzhou Hainan 571737
Abstract Geneticdiversityof12accessionsofsignalgrass(BrachiaraGriseb)wasevaluatedbyusing17ISSR
primerswithinter-simplesequencerepeat(ISSR)markers.Theresultsshowedthathighgeneticdiversityinthe
signalgrassgermplasmswasdetected.Atotalof286bandswereamplifiedfrom17primers,ofwhich280bands
(97.90%)werepolymorphic,and6to23polymorphicbandscouldbeamplifiedfromeachprimer,withanaverage
of16.8.ThemeangeneticsimilarityvaluebasedonISSRmarkersamong12accessionsofsignalgrasswas0.681,
rangingfrom0.486to0.968.Clusteranalysisshowed12accessionsofsignalgrasscouldbeclassifiedinto2
groups.OnegroupincludedB.mutica(Forssk.)StapfandB.humidicola(Rendle)Schweick,andtherestoftheac-
cessionswereclusteredintotheothergroup.
Keywords signalgrass ISSRmarkers geneticdiversity
315