全 文 ：网络优先数字出版时间：２０１４?７?２２
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广西科学院学报　 ２０１４，３０（３）：１８１～１８４
Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｇｕａｎｇｘｉ　Ａｃａｄｅｍｙ　ｏｆ　Ｓｃｉｅｎｃｅｓ　 Ｖｏｌ．３０，Ｎｏ．３　Ａｕｇｕｓｔ　２０１４
收稿日期：２０１４－０６－０３
修回日期：２０１４－０７－０７
作者简介：莫勇生（１９８４－），男，助理研究员，主要从事植物组织培养
和食用菌方面的研究。
＊广西自然科学基金项目（２０１０ＧＸＮＳＦＢ０１３０２）资助。
濒危药材红芽大戟组培快繁影响因素研究＊
Ｉｎｆｌｕｅｎｃｉｎｇ　Ｆａｃｔｏｒｓ　ｏｎ　Ｒａｐｉｄ　Ｐｒｏｐａｇａｔｉｏｎ　ｏｆ　Ｋｎｏｘｉａ
ｃｏｒｙｍｂｏｓａ　Ｗｉｌｄ
莫勇生，孙文波，张红岩
ＭＯ　Ｙｏｎｇ－ｓｈｅｎｇ，ＳＵＮ　Ｗｅｎ－ｂｏ，ＺＨＡＮＧ　Ｈｏｎｇ－ｙａｎ
（广西科学院生物研究所，广西南宁　５３０００７）
（Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ　ｏｆ　Ｂｉｏｌｏｇｙ　ｏｆ　Ｇｕａｎｇｘｉ　Ａｃａｄｅｍｙ　ｏｆ　Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ｎａｎｎｉｎｇ，Ｇｕａｎｇｘｉ，５３０００７，Ｃｈｉｎａ）
摘要：【目的】研究濒危药材红芽大戟（Ｋｎｏｘｉａ　ｃｏｒｙｍ　ｂｏｓａ　Ｗｉｌｄ）最适宜的组培快繁方法，为规模化生产红芽
大戟提供依据。【方法】选取红芽大戟不同组织器官为外植体，采用不同配方的培养基培养，研究影响外植体
诱导分化、增殖和生根的因素，筛选获得最佳培养基。【结果】外植体采用茎尖优于叶轴、叶片，茎尖接种于
ＭＳ＋１．５ｍｇ／Ｌ　６－ＢＡ＋０．１５ｍｇ／Ｌ　ＮＡＡ，萌芽率为１００％，ＭＳ＋３．０ｍｇ／Ｌ　６－ＢＡ＋０．３０ｍｇ／Ｌ　ＮＡＡ最适用于
继代增殖培养，１／２ＭＳ＋２．０ｍｇ／Ｌ　ＩＢＡ＋０．２ｍｇ／Ｌ　ＮＡＡ最合适生根培养。【结论】选取合适的外植体，采用
适宜的培养条件和培养基，可以有效地进行红芽大戟的组培快繁。
关键词：红芽大戟　外植体　组织培养　影响因素
中图分类号：Ｓ５６７．２３９　　文献标识码：Ａ　　文章编号：１００２－７３７８（２０１４）０３－０１８１－０４
Ａｂｓｔｒａｃｔ：【Ｏｂｊｅｃｔｉｖｅ】Ｔｏ　ｅｓｔａｂｌｉｓｈ　ｔｉｓｓｕｅ　ｃｕｌｔｕｒｅ　ａｎｄ　ｒａｐｉｄ　ｐｒｏｐａｇａｔｉｏｎ　ｏｆ　Ｋｎｏｘｉａ　ｃｏｒｙｍ　ｂｏｓａ
Ｗｉｌｄ，ａｎｄ　ｐｒｏｖｉｄｅ　ａｄｖｉｃｅｓ　ｆｏｒ　ｉｎｄｕｓｔｒｉａｌ　ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ　ｏｆ　ＫｎｏｘｉａｃｏｒｙｍｂｏｓａＷｉｌｄ．【Ｍｅｔｈｏｄｓ】
Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｔｉｓｓｕｅ　ｏｒ　ｏｒｇａｎｓ　ｏｆ　Ｋｎｏｘｉａ　ｃｏｒｙｍ　ｂｏｓａ　Ｗｉｌｄ　ａｓ　ｅｘｐｌａｎｔｓ　ａｒｅ　ｃｕｌｔｕｒｅｄ　ｉｎ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ
ｇｒｏｗｔｈ　ｍｅｄｉａ　ｆｏｒ　ｔｈｅ　ｓｅｌｅｃｔｉｏｎ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｏｐｔｉｍｕｍ　ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ　ｓｃｈｅｍｅ．Ｔｈｅ　ｆａｃｔｏｒｓ　ａｆｆｅｃｔｉｎｇ
ｅｘｐｌａｎｔｓ　ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ，ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ，ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｒｏｏｔｉｎｇ　ｃｕｌｔｕｒｅ　ｍｅｄｉｕｍ　ａｒｅ　ｓｔｕｄｉｅｄ　ｆｏｒ
ｓｃｒｅｅｎｉｎｇ　ｔｈｅ　ｂｅｓｔ　ｃｕｌｔｕｒｅ　ｍｅｄｉｕｍ．【Ｒｅｓｕｌｔｓ】Ｕｓｉｎｇ　ｍｅｒｉｓｔｅｍｓ　ｏｆ　ｙｏｕｎｇ　ｐｌａｎｔｓ　ａｓ　ｅｘｐｌａｎｔｓ
ｃｕｌｔｕｒｅｄ　ｉｎ　ＭＳ＋６－ＢＡ　１．５ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ　０．１５ｍｇ／Ｌ　ｍｅｄｉｕｍ　ｉｓ　ｔｈｅ　ｂｅｓｔ　ｗａｙ　ｆｏｒ　ｉｎｄｕｃｉｎｇ
ｍｅｒｉｓｔｅｍｓ　ａｎｄ　ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ　ｒａｔｅ　ｉｓ　１００％．ＭＳ＋６－ＢＡ　３．０ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ　０．３ｍｇ／Ｌ　ｉｓ　ｓｕｉｔａｂｌｅ
ｆｏｒ　ｔｈｅ　ｓｕｂｃｕｌｔｕｒｅ　ｖａｌｕｅ－ａｄｄｅｄ　ｃｕｌｔｕｒｅ，１／２ＭＳ＋ＩＢＡ　２．０ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ　０．２ｍｇ／Ｌ　ｉｓ　ｓｕｉｔａｂｌｅ
ｆｏｒ　ｒｏｏｔｉｎｇ　ｃｕｌｔｕｒｅ．【Ｃｏｎｃｌｕｓｉｏｎ】Ｇｉｖｅｎ　ｔｈｅ　ａｐｐｒｏｐｒｉａｔｅ　ｃｕｌｔｕｒｅ　ｃｏｎｄｉｔｉｏｎｓ　ａｎｄ　ｔｈｅ　ｓｕｉｔａｂｌｅ　ｍｅ－
ｄｉｕｍ　ｃａｎ　ｓｕｃｃｅｓｓｆｕｌｙ　ａｃｈｉｅｖｅ　ｔｈｅ　ｔｉｓｓｕｅ　ｃｕｌｔｕｒｅ　ｏｆ　Ｋｎｏｘｉａ　ｖａｌｅｒｉａｎｏｉｄｅｓ．
Ｋｅｙ　ｗｏｒｄｓ：Ｋｎｏｘｉａ　ｃｏｒｙｍ　ｂｏｓａ　Ｗｉｌｄ，ｅｘｐｌａｎｔｓ，ｔｉｓｓｕｅ　ｃｕｌｔｕｒｅ，ｉｎｆｌｕｅｎｃｉｎｇ　ｆａｃｔｏｒｓ
　　【研究意义】红芽大戟（Ｋｎｏｘｉａ　ｃｏｒｙｍ　ｂｏｓａ
Ｗｉｌｄ）系茜草科红芽大戟属，多年生、直立草本植
物。国内主要分布于台湾、广东、香港、海南、广西等
省区，生长于低海拔旷野草丛中。红芽大戟主要以
地下块根入药 ，其主要成分为蒽醌类化合物，主治
胸腹积水，痰饮喘满，水肿腹胀，二便不利，痈肿疮毒
等，具有泻水、解毒、散结、抗菌的功效，特别是对金
黄色葡萄球菌和绿脓杆菌有较强的抑制作用［１］。我
国红芽大戟年需求量几十万公斤，但其年产量不足
两万公斤，而且原产地云南，广东，广西等省野生资
源历经几十载大肆采挖，濒临枯竭，种质资源受到严
重的破坏。为了保护我国这味珍稀天然野生药材不
遭受人类采挖灭绝之灾，国家医药管理局列其为一
级保护野生中药材，并且对产区封禁［２，３］。因此开
展红芽大戟的基础研究，具有十分重要的意义。红
DOI:10.13657/j.cnki.gxkxyxb.20140722.003
芽大戟种子繁殖非常缓慢，自然繁殖的种子发芽率
不到１％，用常规方法储藏一年以上的种子基本丧
失活力，几乎不能出苗［４，５］。因此，利用组织培养技
术对红芽大戟进行快繁，在较短时间内生产出大量
的优质种苗，减少野生资源的过度采挖，为人工种植
提供种苗，扩大人工栽培面积，满足药商生产企业对
红芽大戟原材料的需求，稳定红芽大戟药材市场，为
我国红芽大戟制药行业的健康可持续发展提供坚强
后盾。【前人研究进展】目前红芽大戟的组培研究开
展不多，虽都能够诱导出芽和生根，但组培产生的苗
较弱，生根率低且根系不发达导致后期下地炼苗成
活率不高，制约了人工栽培红芽大戟的发展。【本研
究切入点】选取幼苗不同部位作为外植体，采用 ＭＳ
基本培养基加入不同浓度的激素，分析研究诱导分
化、继代增殖、生根培养情况。【拟解决的关键问题】
筛选获得最佳的组培快繁外植体以及最适宜培养基
配方，达到组培过程中生根前的壮苗培养及生根率
高且根系发达的目的，快速为人工种植提供优质的
组培苗。
１　材料和方法
１．１　试验材料
　　２０１０年冬季采挖于广西上林县白圩镇覃排村
马山坡的野生块茎，埋土种植于广西南宁市大岭路
９８号广西科学院生物研究所种苗穗圃，２０１１年６月
为实生半年幼苗。
１．２　试验方法
１．２．１　培养基的配制
　　不同浓度的诱导分化培养基配制：以 ＭＳ为基
本培养基，加入４个浓度水平的６－ＢＡ和ＮＡＡ：（１）
１．０ｍｇ／Ｌ　６－ＢＡ、０．１０ｍｇ／Ｌ　ＮＡＡ，（２）１．５ｍｇ／Ｌ　６－
ＢＡ、０．１５ｍｇ／Ｌ　ＮＡＡ，（３）２．０ｍｇ／Ｌ　６－ＢＡ、０．２０ｍｇ／
Ｌ　ＮＡＡ，（４）２．５ｍｇ／Ｌ　６－ＢＡ、０．２５ｍｇ／Ｌ　ＮＡＡ，２％
蔗糖，０．４％琼脂。
　　不同浓度的继代增殖培养基配制：以 ＭＳ为基
本培养基，加入４个浓度水平的６－ＢＡ和ＮＡＡ：（１）
２．０ｍｇ／Ｌ　６－ＢＡ、０．２０ｍｇ／Ｌ　ＮＡＡ，（２）２．５ｍｇ／Ｌ　６－
ＢＡ、０．２５ｍｇ／Ｌ　ＮＡＡ，（３）３．０ｍｇ／Ｌ　６－ＢＡ、０．３０ｍｇ／
Ｌ　ＮＡＡ，（４）３．５ｍｇ／Ｌ　６－ＢＡ、０．３５ｍｇ／Ｌ　ＮＡＡ，２％
蔗糖，０．４％琼脂。
　　不同浓度的生根培养基配制：以１／２ＭＳ为基本
培养基，加入４个浓度水平的ＩＢＡ 和 ＮＡＡ：（１）
１．０ｍｇ／Ｌ　ＩＢＡ、０．１ｍｇ／Ｌ　ＮＡＡ，（２）２．０ｍｇ／Ｌ　ＩＢＡ、
０．２ｍｇ／Ｌ　ＮＡＡ，（３）３．０ｍｇ／Ｌ　ＩＢＡ、０．３ｍｇ／Ｌ
ＮＡＡ，（４）４．０ｍｇ／Ｌ　ＩＢＡ、０．４ｍｇ／Ｌ　ＮＡＡ，１％蔗糖，
０．４％琼脂。
　　ｐＨ值均为５．８。
１．２．２　外植体的处理
　　外植体的选择：选高为２０～３０ｃｍ的健壮苗株，
取茎尖、叶轴、叶片３个部位作为外植体各４０段
（张）带回实验室进行处理。
　　外植体的消毒：将３个部位的外植体置于不同
烧杯中，流水冲洗４ｍｉｎ，茎尖、叶轴切成３～４ｃｍ小
段，叶片切成约１．５ｃｍ×１．５ｃｍ的片状分别放入玻
璃瓶中［６］，在超净工作台上，把预处理好的外植体分
类放入带盖容器当中，先用次氯酸钠溶液浸泡消毒
３～４ｍｉｎ，用蒸馏水洗３～４次，倒入浓度０．１２％的
升汞溶液浸泡，时间分别为茎尖３～４ｍｉｎ，叶轴
５ｍｉｎ，叶片６ｍｉｎ，浸泡后用蒸馏水洗４～５次，最后
将外植体取出放置于无菌滤纸上，吸干水分，放入接
种碟中待用。
　　外植体的接种：切去外植体两端及周围褪色坏
死的组织，切成约２～３ｃｍ的小段或１．０ｃｍ×１．０ｃｍ
的小块，按其生长极性插入诱导分化培养基中，叶片
平放在培养基面上。各部位的外植体在不同浓度的
诱导分化培养基中各接２０瓶，１瓶放１个外植体，
共接种２４０瓶。
１．２．３　外植体的培养
　　接种的外植体，置于光照培养室中，光照强度
２０００～２２００Ｌｘ，光照时间１２ｈ／ｄ，培养温度２５～
２８℃。培养６ｄ后，观察污染率。将获得的无菌外植
体进行芽诱导培养，３个部位的无菌外植体每瓶放５
个接种于不同浓度的诱导分化培养基中。当外植体
诱导出新芽长至约２～３ｃｍ时，去掉底部的愈伤组
织接种于不同浓度的继代增殖培养基中进行增殖培
养。几次增殖培养后，选取健壮的继代苗切成单节
接种于不同浓度的生根培养基中进行生根培养。
　　污染率＝污染个数／接种个数；增殖系数＝一个
周期内形成的有效苗数／接种苗数。
２　结果与分析
２．１　无菌外植体的筛选
　　３个部位作为外植体培养６ｄ后，统计污染率，
结果得出叶片、叶轴、茎尖污染率分别为３７．５％，
２５％，１０％，茎尖的消毒时间比前两者短，但污染率
却低于它们。可能的原因是由于茎尖相对于叶轴和
叶片生长时间短，接触外界环境的时间也短，外界杂
菌附着较少，容易彻底消毒。因此，选择红芽大戟植
２８１ 广西科学院学报　２０１４年８月　第３０卷 第３期
株的茎尖作为外植体是获取无菌外植体较为科学和
理想的方式。
２．２　无菌外植体的培养
　　３个部位的无菌外植体培养４～５ｄ后均分化白
色的愈伤组织，１０～１２ｄ后茎尖萌发浅绿新芽并生
长（图１），叶轴和叶片未能出芽；２０ｄ后茎尖的萌芽
率达７０％～１００％。继代增殖培养８～１０ｄ后产生
丛生芽（图２），１０～１２ｄ后底部开始出现须根，２０～
３０ｄ后可以分化出较多的淡黄色小根（图３）。结果
看出在４种不同浓度的诱导分化培养基中，茎尖均
能较好地诱导出芽，而叶轴和叶片只能分化出愈伤
组织，未能出芽，原因应该与茎尖上的顶芽有关，顶
芽是植物生长过程中的一种初级状态，在培养基和
培养条件均适合它生长时，就会萌发，且顶芽不经过
愈伤组织分化诱导出芽，直接诱导产生丛芽。因此，
在红芽大戟的组培快繁中，选择茎尖作为外植体明
显优于叶轴和叶片。
图１　诱导培养效果
Ｆｉｇ．１　Ｃｕｌｔｕｒｅ　ｅｆｆｅｃｔ　ｏｆ　ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ　ｃｕｌｔｕｒｅ
图２　增殖培养效果
Ｆｉｇ．２　Ｃｕｌｔｕｒｅ　ｅｆｆｅｃｔ　ｏｆ　ｖａｌｕｅ－ａｄｄｅｄ　ｃｕｌｔｕｒｅ
２．３　不同浓度的培养基对红芽大戟茎尖组织培养
各阶段的影响
２．３．１　诱导分化阶段
　　表１结果显示，在４种不同浓度的培养基中，茎
尖均能顺利诱导出芽，但是处于中低浓度的６－ＢＡ
（１．５ｍｇ／Ｌ）更有利于茎尖的萌芽（１００％），原因可能
与茎尖上自带的激素水平有关，低激素浓度不足以
打破其休眠，高浓度则导致其内部激素失衡反而抑
制其芽的萌发。
图３　生根培养效果
Ｆｉｇ．３　Ｃｕｌｔｕｒｅ　ｅｆｆｅｃｔ　ｏｆ　ｒｏｏｔｉｎｇ　ｃｕｌｔｕｒｅ
表１　不同激素浓度对茎尖诱导出芽的影响
Ｔａｂｌｅ　１　Ｅｆｆｅｃｔｓ　ｏｆ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｈｏｒｍｏｎｅ　ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎｓ　ｏｎ　ｉｎ－
ｄｕｃｔｉｏｎ　ｏｆ　ｓｈｏｏｔ　ｔｉｐ　ｓｐｒｏｕｔｉｎｇ
激素水平
Ｈｏｒｍｏｎｅ　ｌｅｖｅｌｓ（ｍｇ·Ｌ－１）
６－ＢＡ　 ＮＡＡ
无菌外
植体数
Ｎｕｍｂｅｒ
ｏｆ　ｓｔｅｒｉｌｅ
ｅｘｐｌａｎｓ
萌芽数
Ｂｕｄ
ｎｕｍｂｅｒ
诱芽率
Ｂｕｄｄｉｎｇ
ｒａｔｅ（％）
芽的颜色
Ｂｕｄ
ｃｏｌｏｒ
１．０　 ０．１０　 ２０　 １２　 ６０
淡绿色
Ｌｉｇｈｔ　ｇｒｅｅｎ
１．５　 ０．１５　 １７　 １７　 １００
绿色
Ｇｒｅｅｎ
２．０　 ０．２０　 １８　 １４　 ７７．８
绿色
Ｇｒｅｅｎ
２．５　 ０．２５　 １５　 １０　 ６６．７
淡绿色
Ｌｉｇｈｔ　ｇｒｅｅｎ
２．３．２　继代增殖阶段
　　表２结果显示，由于诱导分化阶段培养基中的
激素进入体内积累，在继代繁殖中，中等浓度
的６－ＢＡ（３ｍｇ／Ｌ）反而更好的促进丛生芽的产生。
随着继代代数增加，６－ＢＡ的积累导致组织中细胞分
裂素浓度的增加，从而加速苗细胞分裂速度，增殖率
得以提高。增殖率随着继代代数增加而相应增加的
现象是６－ＢＡ浓度与苗幼态化两个因素共同作用的
结果，与文献［７］的结论类似。
表２　不同浓度激素对茎尖继代增殖的影响
Ｔａｂｌｅ　２　Ｅｆｆｅｃｔｓ　ｏｆ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｈｏｒｍｏｎｅ　ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎｓ　ｏｎ　ｓｈｏｏｔ
ｔｉｐ　ｓｕｂｃｕｌｔｕｒｅ　ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎ
激素水平
Ｈｏｒｍｏｎｅ　ｌｅｖｅｌｓ（ｍｇ·Ｌ－１）
６－ＢＡ　 ＮＡＡ
原种苗数
Ｓｅｅｄ
ｎｕｍｂｅｒ
诱出苗数
Ｎｕｍｂｅｒ　ｏｆ
Ｐｌａｎｔｌｅｔｓ
增殖系数
Ｍｕｌｔｉｐｌｉｃａｔｉｏｎ
ｃｏｅｆｆｉｃｉｅｎｔ
２．０　 ０．２０　 ２５　 ３５　 １．４
２．５　 ０．２５　 ２５　 ４０　 １．６
３．０　 ０．３０　 ２５　 ６０　 ２．４
３．５　 ０．３５　 ２５　 ３０　 １．２
３８１莫勇生等：濒危药材红芽大戟组培快繁影响因素研究 　 　　
２．３．３　生根阶段
　　表３结果显示，ＩＢＡ浓度为２．０ｍｇ／Ｌ的生根率
为７０％，其他浓度根系较少且气生根较多。原因可
能是ＩＢＡ与６－ＢＡ均属于生长素，生长素在植物体
内要处于一个适宜的浓度水平才能对植物生长起到
积极作用，太高或太低均制约植物的正常生长，这也
与芽诱导，继代增殖阶段情况相似。
表３　不同ＩＢＡ浓度对茎尖诱导生根的影响
Ｔａｂｌｅ　３　Ｅｆｆｅｃｔｓ　ｏｆ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ＩＢＡ　ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎｓ　ｏｎ　ｓｈｏｏｔ　ｔｉｐ
ｒｏｏｔ　ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ
激素水平
Ｈｏｒｍｏｎｅ　ｌｅｖｅｌｓ
（ｍｇ·Ｌ－１）
ＩＢＡ　 ＮＡＡ
接种株数
Ｉｎｏｃｕｌａｔｉｏｎ
ｏｆ　ｐｌａｎｔｓ
生根株数
Ｒｏｏｔｉｎｇ
ｐｌａｎｔｓ
生根率
Ｒｏｏｔｉｎｇ
ｒａｔｅ（％）
每株根数
Ｎｕｍｂｅｒ
ｏｆ　ｒｏｏｔｓ
ｐｅｒ　ｐｌａｎｔ
１．０　 ０．１　 ４０　 ８　 ２０　 ４～５
２．０　 ０．２　 ４０　 ２８　 ７０　 ８～１０
３．０　 ０．３　 ４０　 ４　 １０　 ３～４
４．０　 ０．４　 ４０　 ０　 ０　 ０
３　结论
　　红芽大戟组培快繁的最佳外植体是茎尖，其在
污染率控制和诱导芽时间方面都优于叶轴和叶片。
诱导分化、继代、生根培养基最佳配方分别为 ＭＳ＋
６－ＢＡ　１．５ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ　０．１５ｍｇ／Ｌ＋２％蔗糖＋
０．４％ 琼 脂，ＭＳ＋６－ＢＡ　３．０ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ　０．
３０ｍｇ／Ｌ＋２％ 蔗糖 ＋０．４％ 琼脂，１／２ＭＳ＋ＩＢＡ
２．０ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ　０．２ｍｇ／Ｌ ＋１％蔗糖＋０．４％琼
脂。在２０００～２２００Ｌｘ的光照强度培养下，红芽大
戟试管苗植株普遍出现失绿的现象，大部分叶子呈
淡黄绿色，叶子也不厚泽，这可能是由于红芽大戟为
喜光植物［８］，光照强度影响试管苗的光合作用及其
形态建成，相关培养条件试验有待进一步研究。在
生根培养阶段，出现较多的气生根，影响了瓶内空间
和后期炼苗质量，相关优化的生根培养基配方需要
进一步深入研究和探讨，完善和建成红芽大戟组培
快繁技术体系。
参考文献：
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［Ｊ］．Ｔｒｏｐｉｃａｌ　ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ　ｓｃｉｅｎｃｅ　ａｎｄ　ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，
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Ｈｅ　Ｍ　Ｑ，Ｈｕ　Ｙ　Ｓ，Ｈｕａｎｇ　Ｊ　Ｊ．Ｓｔｕｄｙ　ｏｎ　ｅｃｏｌｏｇｉｃａｌ　ｅｎｖｉ－
ｒｏｎｍｅｎｔ　ａｎｄ　ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ　ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓｔｉｃｓ　ｏｆ　Ｋｎｏｘｉａ
ｖａｌｅｒｉａｎｏｉｄｅｓ［Ｊ］．Ｒｅｓｏｕｒｃｅｓ　ｏｆ　Ｗｉｌｄ　Ｐｌａｎｔｓ　Ｃｈｉｎａ，
１９９４（２）：１２－１４．
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西植物，１９９７，１７（２）：１４９－１５１．
Ｃｈｅｎ　Ｆ　Ｑ，Ｑｉｕ　Ａ　Ｊ．Ｃｕｌｔｉｖａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｍｅｄｉｃｉｎａｌ　ｐｌａｎｔ
Ｋｎｏｘｉａ　ｖａｌｅｒｉａｎｏｉｄｅｓ　ｏｒｇａｎｉｚａｔｉｏｎ［Ｊ］．Ｇｕｉｈａｉａ，１９９７，
１７（２）：１４９－１５１．
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果研究［Ｊ］．广西科学，２０１２，１９（４）：３７４－３７６．
Ｚｈｏｕ　Ｃ　Ｍ，Ｌｖ　Ｍ　Ｆ，Ｃｈｅｎ　Ｋ，ｅｔ　ａｌ．Ｍｕｌｔｉｐｌｉｃａｔｉｏｎ　ｉｎ　ｔｈｅ
ｓｕｃｃｅｓｓｉｖｅ　ｔｒａｎｓｆｅｒ　ｃｕｌｔｕｒｅ　ｏｆ　Ｌｉｔｓｅａｃｕｂｅｂａ［Ｊ］．Ｇｕａｎ－
ｇｘｉ　Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，２０１２，１９（４）：３７４－３７６．
［８］　傅兵，汤丽云，徐祥浩．药用植物红芽大戟的生态特性
研究［Ｊ］．华南农业大学学报，１９９６，１７（４）：７１－７７．
Ｆｕ　Ｂ，Ｔａｎｇ　Ｌ　Ｙ，Ｘｕ　Ｘ　Ｈ．Ｓｔｕｄｙ　ｏｎ　ｔｈｅ　ｅｃｏｌｏｇｉｃａｌ　ｃｈａｒ－
ａｃｔｅｒｉｓｔｉｃｓ　ｏｆ　ｍｅｄｉｃｉｎａｌ　ｐｌａｎｔ　Ｋｎｏｘｉａ　ｖａｌｅｒｉａｎｏｉｄｅｓ
［Ｊ］．Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｓｏｕｔｈ　Ｃｈｉｎａ　Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，
１９９６，１７（４）：７１－７７．
（责任编辑：竺利波）　　
４８１ 广西科学院学报　２０１４年８月　第３０卷 第３期