全 文 ：２０１２年１０月 皖西学院学报 Ｏｃｔ．，２０１２
第２８卷第５期 Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｗｅｓｔ　Ａｎｈｕｉ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ Ｖｏｌ．２８　ＮＯ．

５
紫萁不同器官、不同生长期黄酮含量比较研究
夏　艳１，２，赵海泉１，张　莉２
（１．安徽农业大学 生命科学学院，安徽 合肥２３００６１；２．皖西学院 生物与制药工程学院，安徽 六安２３７０１２）
摘　要：采集同一环境不同生长时期的紫萁，经过杀青、烘干、粉碎、脱脂、乙醇浸提，再用亚硝酸钠－硝酸铝比色法测定紫萁各
部位的黄酮含量。结果表明：在同一生长期，根状茎的黄酮含量较高，其次是叶片；在同一部位，黄酮化合物的含量随生长期变化。
关键词：紫萁；黄酮；生长期；不同器官
中图分类号：Ｒ９１７　　　　文献标识码：Ａ　　　　文章编号：１００９－９７３５（２０１２）０５－００１２－０４
　＊　收稿日期：２０１２－０８－２８
基金项目：安徽省教育厅重点项目（ＫＪ２０１０Ａ３２８）和皖西学院
抗体制备及其质量检测中心资助。
作者简介：夏艳（１９７９－），女，安徽六安人，硕士研究生，研究方
向：微生物工程；通讯作者：赵海泉（１９５９－），男，安徽六安人，教授，硕
士生导师，研究方向：微生物生理学。
　　紫萁（Ｏｓｍｕｎｄａ　ｊａｐｏｎｉｃａ　Ｔｈｕｎｂ）属紫萁科紫萁属
多年生草本蕨类植物［１］，别名老虎牙、紫萁贯众等［２］。
其嫰叶干制后称为“薇菜”，并具有很高的营养价值，是
人们喜爱的一种山野菜［３］。黄酮类物质具有抗氧化、
抗菌、抗过敏降血糖、降血脂等功能，具有广阔开发前
景［４］。本研究对不同生活时期紫萁的不同部位进行黄
酮含量比较研究，为紫萁黄酮的开发利用提供依据。
１　材料和方法
１．１　材料
紫萁植株分别于２００８年４月２２日和５月７日
采于安徽省金寨县的响洪甸水库南边的山地。
按张莉等人的方法［５］将采集来的紫萁划分为６
个生长期：生长期Ⅰ（幼叶拳卷期）；生长期Ⅱ；生长期
Ⅲ；生长期Ⅳ；隔年的紫萁定为生长期Ⅴ；孢子体定为
Ⅵ。分离各个部位（根状茎、植株地上部分、叶柄部
分、叶片部分），所得各部分采用水蒸气杀青５分钟，
１０３℃烘干，粉碎，过４０目筛，干燥保存［５］。
１．２　仪器与试剂
１．２．１　仪器
ＴＵ－１９０１紫外可见光分光光度计（北京普析通
用仪器设备有限公司）；１０１ＡＳ－２型不锈钢数显电热
鼓风干燥箱（上海浦东跃欣科学仪器厂）；ＨＨ－４数显
恒温水浴锅（国华电器有限公司）等。
１．２．２　试剂
芦丁为标准品、亚硝酸钠、硝酸铝、氢氧化钠、乙
醇、无水乙醚等均为国产分析纯。
１．３　紫萁黄酮类化合物的提取［６］
将干燥后的各生长期的样品分别称取约３ｇ，用
乙醚脱脂后用７０％乙醇，在９０℃水浴中回流浸提，
浸提固液比第一次采用１∶１５（ｇ∶ｍｌ），以后每次固
液比为１∶７（ｇ∶ｍｌ），浸提时间每次均为２ｈ。共浸
提１１次，收集１１次浸提液与２５０ｍｌ容量瓶中，并用
７０％乙醇定容至２５０ｍｌ。
１．４　提取液中黄酮类化合物含量的测定［７］
采用陈乃富等人［７］的亚硝酸钠－硝酸铝比色法。
由标准系列的测定得回归方程：Ｙ＝１２．０６４　Ｘ－
０．０１８，相关系数ｒ＝０．９９９６
提取液中黄酮类化合物的测定：取一定量的粗黄
酮提取液在６　０００ｒ／ｍｉｎ下离心１０ｍｉｎ，取上层清液
测定其黄酮含量。
２　结果与分析
２．１　同生长期不同部位的黄酮含量差异
Ⅰ期和Ⅱ期部分器官没有完全形成，因此不同部
位的黄酮含量差异未进行分析。
２．１．１　生长Ⅲ期紫萁各部位的黄酮含量
生长期Ⅲ紫萁各部位黄酮含量见表１。从表１
可以看出，紫萁根状茎的黄酮含量很高，叶片、植株地
上部分（整体）和叶柄的黄酮含量近似且较低。以植株
地上部分（整体）为标准进行比较分析，与根状茎的黄
酮含量差异极显著，而与其他部分比较差异不显著。
２１
表１　紫萁生长Ⅲ期黄酮含量结果分析（Ｘ±Ｓ）
紫萁部位 净重（ｇ） 吸光度（Ａ） 黄酮含量（％）
植株地上部分（整体） ３．００２３±０．０００３　 ０．１９４１±０．００３３　 １．４９８±０．０４３２
叶柄部分 ３．００１６±０．０００２　 ０．１７３８±０．００２３　 １．３２０±０．０３４７
叶片部分 ３．００１４±０．０００２　 ０．１７０９±０．００３０　 １．５６８±０．０２４４
根状茎 ３．００４２±０．０００４　 ０．５５７４±０．００３８　 ３．５３１±０．０３３７＊＊
　　　　　注：＊＊差异极显著（Ｐ＜０．０１）
２．１．２　生长Ⅳ期紫萁各个部位的黄酮含量
生长期Ⅳ各部位的黄酮含量见表２。从表２可
以看出，紫萁叶片和植株地上部分（整体）的黄酮含量
近似且较高；叶柄部分的黄酮含量低。以植株地上部
分（整体）为标准进行比较分析，与叶柄的黄酮含量差
异显著；与叶片部分比较差异不显著。
表２　紫萁生长Ⅳ期黄酮含量结果分析（Ｘ±Ｓ）
紫萁部位 净重 （ｇ） 吸光度（Ａ） 黄酮含量（％）
植株地上部分（整体） ３．００５９±０．０００４　 ０．１４３８±０．００２５　 １．１２４３±０．０２４１
叶柄部分 ３．００４７±０．０００１　 ０．１１５６±０．００２０　 ０．８７４９±０．０４３３＊
叶片部分 ３．００４８±０．０００２　 ０．１７２１±０．００３１　 １．２４３７±０．０６２３
　　　　　注：＊差异显著（Ｐ＜０．０５）
２．１．３　生长Ⅴ期紫萁各个部位的黄酮含量
生长Ⅴ期各部位的黄酮见表３。从表３可以看
出，紫萁根状茎的黄酮含量最高，其次是叶片部分和
植株的地上部分，叶柄部分的黄酮含量最低。以植株
地上部分（整体）为标准进行比较分析，与叶柄、叶片
和根状茎的黄酮含量差异都极显著。
表３　紫萁生长Ⅴ期黄酮含量结果分析（Ｘ±Ｓ）
紫萁部位 净重（ｇ） 吸光度（Ａ） 黄酮含量（％）
植株地上部分 ３．００３１±０．０００４　 ０．３４５６±０．００３１　 ２．７２３３±０．０４２２
叶柄部分 ３．００４４±０．０００２　 ０．１９８２±０．００２３　 １．３６５２±０．０５４１＊＊
叶片部分 ３．００８７±０．０００４　 ０．５２４６±０．００３５　 ４．０４３８±０．０４７３＊＊
根状茎 ３．００６４±０．０００３　 ０．８９６９±０．００１４　 ８．１２２３±０．０２３５＊＊
　　　　　注：＊＊差异极显著（Ｐ﹤０．０１）
２．１．４　生长Ⅵ期的紫萁各个部位的黄酮含量
生长期Ⅵ各部位的黄酮见表４。从表４可以看
出，紫萁孢子部分的黄酮含量最高；叶柄部分的黄酮
含量最低。以植株地上部分（整体）为标准进行比较
分析，与叶柄和孢子的黄酮含量差异都极显著。
表４　紫萁生长Ⅵ期黄酮含量结果分析（Ｘ±Ｓ）
紫萁部位 净重 （ｇ） 吸光度（Ａ） 黄酮含量（％）
植株地上部分 ３．００３１±０．０００２　 ０．３５４８±０．００１０　 ２．５７４９±０．０１３７
叶柄部分 ３．００４３±０．０００１　 ０．１８７０±０．００２５　 １．４１５３±０．０３４７＊＊
孢子 ３．００４３±０．０００２　 ０．６２８８±０．００２５　 ４．６２０４±０．０３３９＊＊
　　　　　注：＊＊差异极显著（Ｐ＜０．０１）
２．２　同一部位不同生长期的黄酮含量差异
２．２．１　不同生长期的紫萁植株地上部分的黄酮含量
不同生长期的紫萁植株地上部分的黄酮含量如
表５所示。从表５可以看出，在紫萁前两个生长期植
株地上部分的黄酮含量逐渐增加，在生长期Ⅲ和生长
期Ⅳ时，黄酮含量急剧下降，随后在生长期Ⅴ和生长
期Ⅵ时，黄酮含量又逐渐增加。以植株地上部分生长
期Ⅳ（含量最低）为标准进行比较分析，与生长期Ⅲ有
显著差异；与其他几组有极显著差异。
２．２．２　不同生长期的紫萁叶柄部分的黄酮含量
不同生长期的紫萁叶柄部分的黄酮含量如表６
所示。从表６可以看出，紫萁在生长期Ⅳ叶柄部分的
黄酮含量最低，其他各期都较高且含量相近。以生长
期Ⅳ（含量最低）为标准进行比较分析，与其他几组有
极显著差异。
３１
表５　紫萁植株地上部分不同生长期黄酮含量结果分析（Ｘ±Ｓ）
紫萁生长期 净重（ｇ） 吸光度（Ａ） 黄酮含量（％）
生长期Ⅰ ３．００２４±０．０００１　 ０．２６９８±０．００３４　 ２．２９３２±０．０３４７＊＊
生长期Ⅱ ３．００５２±０．０００４　 ０．２１３９±０．００２４　 ３．００４２±０．０４１８＊＊
生长期Ⅲ ３．００２３±０．０００３　 ０．１９４１±０．００３３　 １．４９８±０．０４３２＊
生长期Ⅳ ３．００５９±０．０００４　 ０．１４３８±０．００２５　 １．１２３９±０．０２４１
生长期Ⅴ ３．００３１±０．０００４　 ０．３４５６±０．００３１　 ２．７２３３±０．０４２２＊＊
生长期Ⅵ ３．００３１±０．０００２　 ０．３５４８±０．００１０　 ２．５７４９±０．０１３７＊＊
　　　　　注：＊差异显著（Ｐ＜０．０５）；＊＊差异极显著（Ｐ＜０．０１）
表６　紫萁叶柄部部分不同生长期黄酮含量结果分析（Ｘ±Ｓ）
紫萁生长期 净重（ｇ） 吸光度（Ａ） 黄酮含量（℅）
生长期Ⅲ ３．００１６±０．０００２　 ０．１７３８±０．００２３　 １．３２０±０．０３４７＊＊
生长期Ⅳ ３．００４７±０．０００１　 ０．１１５６±０．００２０　 ０．８７±０．０４３３
生长期Ⅴ ３．００４４±０．０００２　 ０．１９８２±０．００２３　 １．３６５２±０．０５４１＊＊
生长期Ⅵ ３．００４３±０．０００１　 ０．１８７０±０．００２５　 １．４１５３±０．０３４７＊＊
　　　　　注：＊＊差异极显著（Ｐ＜０．０１）
２．２．３　不同生长期紫萁叶片部分的黄酮含量差异
不同生长期的紫萁叶片部分的黄酮含量如表７
所示。从表７可以看出，紫萁生长期Ⅳ叶片部分的黄
酮含量最低，生长期Ⅴ最高。以生长期Ⅳ（含量最低）
为标准进行比较分析，与生长期Ⅲ有显著差异；与生
长期Ⅴ有极显著差异。
表７　紫萁叶片部部分不同生长期黄酮含量结果分析（Ｘ±Ｓ）
紫萁生长期 净重（ｇ） 吸光度（Ａ） 黄酮含量（％）
生长期Ⅲ ３．００１４±０．０００２　 ０．１７０９±０．００３０　 １．５６８±０．０２４４＊
生长期Ⅳ ３．００４８±０．０００２　 ０．１７２１±０．００３１　 １．２４３７±０．０６２３
生长期Ⅴ ３．００８７±０．０００４　 ０．５２４６±０．００３５　 ４．０４３８±０．０４７３＊＊
　　　　　注：＊差异显著（Ｐ＜０．０５）；＊＊差异极显著（Ｐ＜０．０１）
２．２．４　不同生长期紫萁根状茎部分的黄酮含量差异
不同生长期的紫萁根状茎部分的黄酮含量如表
８所示。从表８可以看出，紫萁根状茎部分的黄酮含
量整体较高；其中紫萁生长期Ⅴ的黄酮含量很高，紫
萁生长期Ⅲ较低。以紫萁生长期Ⅲ（含量最低）为标
准进行比较分析，与紫萁生长期Ⅴ有极显著差异。
表８　紫萁根状茎部分不同生长期黄酮含量结果分析（Ｘ±Ｓ）
紫萁生长期 净重（ｇ） 吸光度（Ａ） 黄酮含量（％）
生长期Ⅲ ３．００４２±０．０００４　 ０．５５７４±０．００３８　 ３．５３１２±０．０３３７
生长期Ⅴ ３．００６４±０．０００３　 ０．８９６９±０．００１４　 ８．１２２３±０．０２３５＊＊
　　　　　注：＊＊差异极显著（Ｐ＜０．０１）
３　小结
从以上分析结果可以看出，紫萁叶柄部分的黄酮
含量普遍很低，紫萁根状茎部分的黄酮含量普遍很
高。在同一部位的不同生长期，紫萁植株地上部分的
黄酮含量在生长期Ⅰ和生长期Ⅱ逐渐增加，在随后紫
萁生长期Ⅲ和生长期Ⅳ的黄酮含量一直降低，在紫萁
生长期Ⅴ的黄酮含量又升高，在生长期Ⅵ的黄酮含量
又下降；叶片部分的黄酮含量随生长期的变化而逐渐
升高，在紫萁生长期Ⅴ黄酮含量达到最高；叶柄部分
的黄酮含量一直较低，随生长期的变化不明显；在生
长期Ⅵ的孢子体中，孢子部分的黄酮含量较高。综上
可知，紫萁在同一生活时期不同部位之间的黄酮含量
是存在差异的，具体机理还有待于进一步研究。
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ｆｏｒ　ｉｔｓ　Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　Ｏｒｇａｎｓ　ａｎｄ　Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　Ｇｒｏｗｉｎｇ　Ｐｅｒｉｏｄｓ
ＸＩＡ　Ｙａｎ１，２，ＺＨＡＯ　Ｈａｉ－ｑｕａｎ１，ＺＨＡＮＧ　Ｌｉ　２
（１．Ｃｏｌｌｅｇｅ　ｏｆ　Ｌｉｆｅ　Ｓｃｉｅｎｃｅ，Ａｎｈｕｉ　Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｈｅｆｅｉ　２３００３６，Ｃｈｉｎａ；
２．Ｃｏｌｌｅｇｅ　ｏｆ　Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ　ａｎｄ　Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ　Ｅｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ，Ｗｅｓｔｅｒｎ　Ａｎｈｕｉ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｌｕａｎ２３７０１２，Ｃｈｉｎａ）
Ａｂｓｔｒａｃｔ：Ｏｓｍｕｎｄａ　ｊａｐｏｎｉｃａ　Ｔｈｕｎｂ　ｏｆ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｇｒｏｗｉｎｇ　ｐｅｒｉｏｄｓ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｓａｍｅ　ｐｌａｃｅ　ｗａｓ　ｓｅｌｅｃｔｅｄ，ａｆｔｅｒ　ｆｉｎａｌｉｚｉｎｇ，ｄｒｙｉｎｇ，ｍａｓｈｉｎｇ，
ｄｅｇｒｅａｓｉｎｇ，ｓｏａｋｉｎｇ　ａｎｄ　ｅｘｔｒａｃｔｉｎｇ　ｂｙ　ｅｔｈａｎｏｌ，ｕｓｉｎｇ　ＮａＮＯ２ａｎｄ　Ａｌ（ＮＯ３）３，ｔｈｅ　ｆｌａｖａｎｏｉｄｓ　ｃｏｎｔｅｎｔ　ｉｎ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｐａｒｔ　ｏｆ　ｔｈｅｍ　ｗａｓ
ｄｅｔｅｒｍｉｎｅｄ　ｂｙ　ｃｏｌｏｒｉｍｅｔｒｉｃ　ａｎａｌｙｓｉｓ．Ｔｈｅ　ｒｅｓｕｌｔｓ　ｓｈｏｗｅｄ　ｔｈａｔ　ｔｈｅ　ｆｌａｖａｎｏｉｄｓ　ｃｏｎｔｅｎｔ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｒｈｉｚｏｍｅ　ｗａｓ　ｈｉｇｈｅｓｔ，ａｎｄ　ｓｅｃｏｎｄｒｙ　ｉｎ
ｔｈｅ　ｌｅａｆ　ｐａｒｔ　ｏｆ　ｐｅｔｉｏｌｅ　ａｔ　ｔｈｅ　ｓａｍｅ　ｇｒｏｗｔｈ　ｔｉｍｅ；ｉｎ　ｔｈｅ　ｓａｍｅ　ｏｆ　ｐｌａｎｔ，ｔｈｅ　ｆｌａｖａｎｏｉｄｓ　ｃｏｎｔｅｎｔ　ｃｈａｎｇｅｄ　ｗｉｔｈ　ｔｈｅ　ｇｒｏｗｉｎｇ　ｐｅｒｉｏｄｓ．
Ｋｅｙ　ｗｏｒｄｓ：Ｏｓｍｕｎｄａ　ｊａｐｏｎｉｃａ　Ｔｈｕｎｂ；ｆｌａｖａｎｏｎｅ；ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｇｒｏｗｉｎｇ　ｐｅｒｉｏｄ；ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｏｒｇ
櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢櫢
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Ｓｔｕｄｉｅｓ　ｏｎ　Ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ　ａｎｄ　Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ　Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ
ｏｎ　Ｓｅｓａｍｉｎ：ａ　Ｂｉｏａｃｔｉｖｅ　Ｓｕｂｓｔａｎｃｅ
ＨＥ　Ｘｉａｏ－ｍｅｉ　１，２，ＺＨＵ　Ｘｕｎ１，２
（１．Ｃｏｌｌｅｇｅ　ｏｆ　Ｂｉｏｌｏｇｙ　ａｎｄ　Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ　Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ，Ｗｅｓｔ　Ａｎｈｕｉ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｌｕａｎ２３７０１２，Ｃｈｉｎａ；
２．Ａｎｈｕｉ　Ｐｌａｎｔ　Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ　Ｔｒａｉｎｉｎｇ　Ｃｅｎｔｒｅ，Ｌｕａｎ２３７０１２，Ｃｈｉｎａ）
Ａｂｓｔｒａｃｔ：Ａｌｃｏｈｏｌ　ａｓ　ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ　ｓｏｌｖｅｎｔ，ｔｈｅ　ｏｐｔｉｍｕｍ　ｃｏｎｄｉｔｉｏｎ　ｏｆ　ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ　ｏｆ　ｓｅｓａｍｉｎ　ｆｒｏｍ　ｓｅｓａｍｅ　ｏｉｌ　ｗａｓ　ｏｂｔａｉｎｅｄ　ｂｙ　ｓｉｎｇｌｅ
ｆａｃｔｏｒ　ｔｅｓｔｓ　ａｎｄ　ｏｒｔｈｏｇｏｎａｌ　ｔｅｓｔ．Ｔｈｅｎ　ｔｈｅ　ｃｒｕｄｅ　ｅｘｔｒａｃｔ　ｓｅｓａｍｉｎ　ｗａｓ　ｐｕｒｉｆｉｅｄ　ｗｉｔｈ　ａｌｃｏｈｏｌ　ｓｏｌｖｅｎｔ，ｄｅｔｅｒｍｉｎｉｎｇ　ｔｈｅ　ｓｅｓａｍｉｎ　ｍｅｌｔ－
ｉｎｇ　ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ　ａｎｄ　ａｎａｌｙｚｉｎｇ　ｂｙ　ＨＰＬＣ．Ｔｈｅ　ｒｅｓｕｌｔ　ｓｈｏｗｅｄ　ｔｈａｔ　ｔｈｅ　ｏｐｔｉｍｕｍ　ｃｏｎｄｉｔｉｏｎｓ　ｆｏｒ　ｔｈｅ　ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ　ａｒｅ　ａｓ　ｆｏｌｏｗｉｎｇｓ：ｓｏｌ－
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