全 文 :第39卷 第12期
2011年12月
西北农林科技大学学报(自然科学版)
Journal of Northwest A&F University(Nat.Sci.Ed.)
Vol.39 No.12
Dec.2011
DOI:CNKI:61-1390/S.20111025.2130.030 网络出版时间:2011-10-25 21:30
网络出版地址:http://www.cnki.net/kcms/detail/61.1390.S.20111025.2130.030.html
长角豆组织培养繁育技术研究
*
田小霞1,2,姜春前1,黄钦才1,白彦锋1,陈祥义1,曲 昇1
(1中国林业科学研究院 林业研究所,北京100091;2北京草业与环境研究发展中心,北京100097)
[摘 要] 【目的】探讨长角豆“卡苏达”(Ceratonia siliqua L.‘Casuda’)的组织培养快速繁育技术,为其在我国
的成功引种及种质资源保存奠定基础。【方法】以引自西班牙的长角豆“卡苏达”种子为外植体,培养无菌苗后,取其
茎段作为组培材料,在筛选出初代基本培养基的基础上,又进行了继代增殖培养基和生根诱导培养基的筛选,最后对
长角豆组培生根苗进行了炼苗和移植。【结果】长角豆种子无菌苗在DKW+1.0mg/L 6-BA+0.1mg/L IBA+25
g/L蔗糖的增殖培养基上生长最好;最适继代增殖培养基为DKW+0.8mg/L 6-BA+0.1mg/L IBA+60mg/L L-赖
氨酸+25g/L蔗糖;最佳生根培养基为1/2DKW+0.4mg/L IBA+20g/L蔗糖,生根率为93.33%,生根苗移栽后
的平均成活率达到92.36%。【结论】成功建立了长角豆的组织培养再生体系,为长角豆“卡苏达”的快速繁育提供了
技术支持。
[关键词] 长角豆;外植体;L-赖氨酸;组织培养
[中图分类号] S580.43 [文献标识码] A [文章编号] 1671-9387(2011)12-0081-06
Tissue culture and rapid propagation of Ceratonia siliqua L.
TIAN Xiao-xia1,2,JIANG Chun-qian1,HUANG Qin-cai 1,
BAI Yan-feng1,CHEN Xiang-yi 1,QU Sheng1
(1 Research Institute of Forestry,Chinese Academy of Forestry,Beijing100091,China;
2 Beijing R&D Center for Grasses and Environment,Beijing100097,China)
Abstract:【Objective】The study was to explore the tissue culture and rapid propagation technology of
the Ceratonia siliqua L.‘Casuda’,which would lay a basis for the successful introduction and storage of
germplasm resources.【Method】The C.siliqua L.‘Casuda’seeds from Spain were taken as explants,then
the aseptic seedlings were cultured.The stem segments of the aseptic seedlings were taken as materials,af-
ter the primary basic mediums screening,screening the secondary proliferation culturing mediums and roots
induction mediums was performed,finaly,the aseptic seedlings were practiced and transplanted.【Result】
In the primary culture period,the most appropriate medium was DKW+1.0mg/L 6-BA+0.1mg/L IBA+
25g/L sugar.DKW+0.8mg/L 6-BA+0.1mg/L IBA+60mg/L L-lysine+25g/L sugar for subculture.
The recommended medium for rooting stage was 1/2DKW+0.4mg/L IBA+20g/L sugar,and the roo-
ting percentages were up to 93.33%.The average survival rate of transplanting was up to 92.36%.【Con-
clusion】The tissue culture regeneration system was established,which provides technical support for rapid
multiplication of Ceratonia siliqua L.‘Casuda’.
Key words:Ceratonia siliqua L.;explant;L-Lysine;tissue culture
* [收稿日期] 2011-05-19
[基金项目] 国家林业局“948”项目“长角豆等多用途树种栽培技术引进”(2001-05)
[作者简介] 田小霞(1980-),女,山西长治人,助理研究员,主要从事园林植物栽培技术研究。E-mail:tianxi8002@126.com
[通信作者] 姜春前(1963-),男,安徽全椒人,研究员,主要从事农业、林业和森林可持续经营研究。
E-mail:jiangchq@caf.eforestry.ac.cn
DOI:10.13207/j.cnki.jnwafu.2011.12.030
长角豆(Ceratonia siliqua L.)是苏木科长角豆
属植物,为常绿灌木或小乔木树种。长角豆极耐干
旱,能在年降雨量200mm的地区存活,其覆盖裸露
地面的能力强且适应性广,是优良的水土保持树种。
但长角豆耐寒性较差,在-7 ℃以下温度易受冻
害[1]。因此,原产于地中海地区贫瘠干旱土壤中的
长角豆,现已广泛种植于世界的温带干旱地区。由
于长角豆花期较长且荚果为暗红色,因此还可用作
园林观赏树种。长角豆果实为荚果,果内总糖含量
高达48%~56%(其中蔗糖含量占32%~38%),可
用于发酵生产工业酒精,还可提取豆胶,既是可口的
营养品,又可作为化妆品、药品、食品的天然增稠剂
和稳定剂等,具有较高的经济价值[2-4]。
目前,长角豆的无性繁殖通常采用嫁接方式,但
由于存在嫁接苗培育周期长、操作要求高、管护严
格、愈合时间较长、部分接穗当年不能萌发新梢、嫁
接成活率低等缺点,因而使得长角豆的快速繁殖受
到限制[5]。另外,长角豆采用枝条扦插方式也很难
生根。因此,在国际互换贸易协会(IRTA)的支持
下,国外对长角豆的扦插繁殖研究已经进行了15
年,但至今尚未能在生产中得到有效的推广和应
用[5]。组织培养作为一种高效的无性繁殖方式而倍
受人们的青睐,李佳等[6]对木本芦荟的繁殖研究表
明,木本芦荟扦插繁殖速度较慢,且容易积累病菌,
影响生长,甚至退化,而采用组织培养技术可以有效
除菌、复壮并提高繁殖系数,加快繁殖速度;王薇
等[7]对旋果苣的繁殖研究证明,采用播种、扦插、嫁
接等传统繁殖方法时繁殖系数不高,成活率较低,很
难应用于大规模育苗,而组织培养解决了这一难题;
彭东辉等[8]对紫毛野牡丹的研究表明,直接利用带
芽茎段进行快速繁殖,可不受季节和外界环境限制,
能在短时间内繁殖出较大数量的再生植株。
总体来看,国内外对长角豆的相关研究甚少,国
内仅有黄永祥[9]、罗建勋等[10]对其进行了引种试验
研究,尚未见关于长角豆组织培养的研究报道。为
此,本研究开展了长角豆的组织培养繁育技术试验,
以引自西班牙国家农业所的长角豆种子为外植体,
探讨了不同基本培养基和不同质量浓度激素对长角
豆芽增殖和生根的影响,以期为其组织培养快繁体
系的建立及其规模化育苗奠定基础。
1 材料与方法
1.1 外植体的培养
长角豆“卡苏达”种子2005年引种于西班牙国
家农业所,经过4~6℃的低温催芽后,挑选色泽鲜
艳、饱满、无虫、无损伤的籽粒,在蒸馏水中冲洗30
min;滤干水后在超净工作台上用体积分数70%酒
精消毒3min,无菌水冲洗1次,再用1g/L HgCl2
灭菌15min,无菌水冲洗4次[11];最后接种于无激
素的1/2MS培养基(pH为5.8)中进行萌发,获得
无菌苗。
1.2 基本培养基的筛选
种子萌发后切取长角豆无菌苗腋芽茎段,进行
初次 增 殖 培 养 试 验,分 别 采 用 MS[12]、B5[13]、
WPM[14]、DKW[15]4种基本培养基。其中均添加有
1mg/L细胞分裂素(6-BA)、0.1mg/L 吲哚丁酸
(IBA)和25g/L蔗糖,以观察不同基本培养基对长
角豆腋芽茎段增殖培养的影响。每瓶接种5个单
芽,每处理10瓶,60d后调查统计,计算增殖系数。
增殖系数是指调查时有效芽数与接种时外植体数的
比值,有效芽是指长度0.5cm以上的丛生芽。
1.3 继代增殖培养基的筛选
选取初次增殖培养中生长较好的基本培养基中
的腋芽为试验材料,切成带1个腋芽的茎段进行接
种,每一处理10瓶,每瓶接种6个,重复3次,60d
后调查统计。所用培养基为初次增殖培养中筛选出
的最佳基本培养基,其中附加不同质量浓度的6-BA
(0.8,1.0,1.2 mg/L)、IBA(0.05,0.10,0.15
mg/L)和L-赖氨酸(60,90,120mg/L),同时在每个
培养基中均添加25g/L蔗糖和5.5g/L琼脂粉,
pH值为5.8。试验采用L9(34)正交试验设计[16]。
具体设计详见表1。
表1 筛选长角豆无菌苗茎段继代增殖培养基的L9(34)正交试验因素与水平
Table 1 L9(34)orthogonal test factors and levels of screening the subculture
medium of the Ceratonia siliqua L.aseptic seedling stem segments mg/L
水平
Level
因素Factor
6-BA
A
IBA
B
L-赖氨酸
L-Lys
C
1 0.8 0.05 60
2 1.0 0.10 90
3 1.2 0.15 120
28 西北农林科技大学学报(自然科学版) 第39卷
1.4 生根培养基的筛选
生根培养选用1/2DKW 为基本培养基,分别
添加0.2,0.4,0.6,1.0mg/L IBA及20mg/L蔗
糖,组成4种生根培养基,依次简写为 DR1、DR2、
DR3 和DR4。将诱导后的不定芽剪成长2~3cm的
茎段插入培养基进行生根诱导,以观察IBA对不定
根生根诱导的影响。试验共设4个处理,每处理6
次重复,每重复7瓶,每瓶接种5个。
以上所有试验均在光照条件下完成,光照时间
为14h/d,光照强度为1 500~2 000lx,培养室内温
度(25±2)℃,30d后进行调查与统计。
1.5 炼苗及移植
长角豆组培生根苗的炼苗及移植在中国林业科
学院智能温室内完成。当试管生根苗普遍出根1~
2cm后进行炼苗移植。将组培苗运进温室,5d后
揭开瓶盖,再搁置1d。从瓶里取出组培苗,用清水
洗掉根上的培养基,移植到装有消毒草炭土和珍珠
岩(体积比为3∶1)基质的10cm×10cm塑料杯
中。栽后喷水保湿,覆上薄膜,密封4d后揭膜检查
基质干湿情况,适当补加水分,继续覆膜保湿,1周
后通小口透气,10d后揭膜常规管理,30d后观察
其移植效果。移栽试验采用完全随机区组试验,3
次重复,每重复移栽组培苗37株。
1.6 数据分析
试验数据采用 SPSS软件进行方差分析和
Duncan氏多重比较。
2 结果与分析
2.1 长角豆组织培养中基本培养基的筛选
在长角豆无菌苗获取的过程中,其种子在1/2
MS培养基中12d可膨胀,但种子周边培养基呈黑
褐色,种子未见萌发;12d后将膨胀种子重新转接于
1/2MS新鲜培养基上,种子开始萌发,60d后幼苗
株高达到5~7cm。
将长角豆无菌苗幼嫩茎段接种于不定芽诱导培
养基中,结果(表2)和(图1)表明,长角豆的增殖系
数与株高在 MS、B5、WPM 和DKW 4种培养基之
间表现出显著差异(P<0.05)。长角豆无菌苗幼嫩
茎段在DKW培养基上生长最好,芽增殖系数最高,
为2.62,且整齐粗壮,茎秆充实直立呈浅红色,叶片
平展呈绿色,为最适宜长角豆不定芽诱导的增殖培
养基;在 MS培养基上的生长情况次之,增殖系数为
1.28,苗枯黄数大于DKW 培养基,个别芽顶梢出现
死亡,这是 MS培养基中的硝态氮和铵态氮含量过
高造成的普遍现象;而在 WPM和B5 培养基上生长
较差,增殖系数均小于1,无增殖效果。
表2 不同基本培养基对长角豆无菌苗幼嫩茎段增殖培养的影响
Table 2 Effect of different mediums on multiplication culture of the Ceratonia siliqua L.aseptic seedling stem segments
基本培养基
Basic medium
增殖系数
Rate of multiplication
接种芽数
Number of buds
有效芽数 Number of effective bud
≥0.5~1cm ≥1.0~3cm ≥3.0~5cm ≥5cm
DKW 2.62a 50 39 38 45 9
MS 1.28b 50 31 25 8 0
WPM 0.94c 50 21 16 3 0
B5 0.60c 50 24 6 0 0
注:同列数据后标不同小写字母者表示在P=5%水平上差异显著。表4同。
Note:Data in the same column with different lowercase letters in the P=5%level mean significant difference.Table 4is the same.
图1 4种基本增殖培养基对长角豆无菌苗幼嫩茎段的增殖培养效果
Fig.1 Effect pictures of 4basic mediums on the multiplication culture on the Ceratonia siliqua L.
aseptic seedling stem segments
38第12期 田小霞,等:长角豆组织培养繁育技术研究
2.2 长角豆组织培养中继代增殖培养基的筛选
由表2可知,长角豆在DKW 培养基中增殖较
好,但幼苗生长缓慢,培养60d后幼苗高度达到5.0
cm以上的只有9个。为了提高幼苗生长速度,在继
代增殖最佳培养基优选之前,以DKW 为基本培养
基附加L-赖氨酸(L-Lys)、L-谷氨酰胺、抗坏血酸和
黑碳粉进行比较试验,结果显示,附加L-Lys时的培
养效果较好,可以显著改善幼苗的生长状况。因此,
在进行继代增殖培养基优选时,另外增加了L-Lys
作为重要的影响因素之一。
表3 长角豆组织培养中继代增殖培养基筛选的正交试验结果
Table 3 Orthogonal test results of screening the multiplication culture medium in tissue culture of the Ceratonia siliqua L.
编号
Number
因素Factor
6-BA/(mg·L-1)
A
IBA/(mg·L-1)
B
L-Lys/(mg·L-1)
C
增殖系数
Rate of multiplication
1 0.8 0.05 60 3.73
2 0.8 0.10 90 4.17
3 0.8 0.15 120 3.17
4 1.0 0.05 90 1.68
5 1.0 0.10 120 2.52
6 1.0 0.15 60 1.87
7 1.2 0.05 120 1.00
8 1.2 0.10 60 2.28
9 1.2 0.15 90 1.93
K1 11.07 6.41 7.88 K=22.35
K2 6.07 8.97 7.78 K2=499.52
K3 5.21 6.97 6.69
x1 3.69 2.14 2.63
x2 2.02 2.99 2.59
x3 1.73 2.32 2.23
R 1.96 0.85 0.4
注:Kn(n=1,2,3)表示n个水平的总和;xn表示相应的平均值。R为最大水平与最小水平的间距。
Note:Kn(n=1,2,3)expresses the levels of the sum of nlevels;xnexpresses the average of corresponding levels.Rshowed the difference
between the maximum and minimum.
由表3可知,各处理对长角豆不定芽的增殖效
果有显著差异,尤其以6-BA的增殖作用最为明显。
根据R值判断,3个因素对不定芽的增殖作用大小
依次表现为6-BA>IBA>L-Lys。比较xn 值可知,
对长角豆芽增殖效果最好的组合式为 A1B2C1,即
0.8mg/L 6-BA+0.10mg/L IBA+60mg/L L-
Lys。因此,适合长角豆增殖培养的最佳培养基配方
为DKW+0.8mg/L 6-BA+0.1mg/L IBA+60
mg/L L-Lys+25g/L蔗糖。
2.3 长角豆组织培养中生根培养基的筛选及移植
将增殖培养后的不定芽剪取2~3cm茎段置于
生根培养基中进行生根诱导,12d后不定芽基部开
始有不定根形成,培养30d的生根情况见表4和图
2。
表4 生根培养基中不同质量浓度IBA对长角豆茎段不定根诱导的影响
Table 4 Effect of the different concentrition IBA on the inducion of adventitious roots
on the stem segments of Ceratonia siliqua L.
培养基
Medium IBA
/(mg·L-1)
外植体数
Number of
explants
生根数
Number of
rooting
生根率/%
Rooting rate
根系生长情况
Cases of root growth
DR1 0.2 60 8 13.33c 根系细长Slender
DR2 0.4 60 56 93.33a 根系正常Normal root
DR3 0.6 60 24 40.00b 根粗短,不正常Short,abnormal root
DR4 1.0 60 28 46.67b 根粗短,不正常Short,abnormal root
由表4可知,长角豆不定芽茎段在DR2 培养基
中的生根率最高,达93.33%。由茎端直接生根,茎
端出根处未见愈伤组织团块形成,每株根数为3~5
条,侧根多,根系正常(图2)。虽然DR3 和DR4 培
养基也可诱导产生不定根,生根率分别为40.00%
和46.67%,但在不定芽基部形成了大量的愈伤组
织,在这些愈伤组织上产生了许多畸形不定根,根粗
短,侧根少,根系不正常,且不定芽出现干枯死亡现
象。DR1 培养基上的生根率最低,只有13.33%,且
根系细长。可见,当培养基中IBA 质量浓度偏低
48 西北农林科技大学学报(自然科学版) 第39卷
时,达不到诱导不定根发生的效果;而IBA质量浓
度>0.4mg/L时,又会使其生根诱导受到限制。因
此,长角豆的最适生根培养基为1/2DKW+0.4
mg/L IBA+20g/L蔗糖。
图2 不同生根培养基对长角豆茎段
不定根的诱导效果
Fig.2 Induction effect on the the stem segments
adventitious root of the Ceratonia siliqua L.
in different rooting mediums
于长角豆组培生根苗根长普遍为1~2cm时进
行移植,调查统计结果显示,首批移栽了254株,成
活率为92.36%。成活的长角豆幼苗虽然矮小,但
茎秆充实,硬挺直立,叶片较舒展,表面有蜡质层。
幼苗生长缓慢,移栽1年后植株高为50~60cm(图
3)。
图3 移栽1年后的长角豆组培苗
Fig.3 Tissue culture seedling of Ceratonia siliqua L.
transplanted one year later
3 结论与讨论
本研究以长角豆成熟种子为外植体,建立了长
角豆的组织培养体系:诱导培养基为DKW 基本培
养基中附加1.0mg/L 6-BA和0.1mg/L IBA;增
殖培养基为 DKW 基本培养基中附加0.8mg/L
6-BA、0.1mg/L IBA 和60mg/L L-赖氨酸;在
1/2DKW基本培养基中进行生根培养,其中附加
0.4mg/L IBA,生根率最高可达93.33%。
长角豆种子起初在1/2MS培养基只膨胀不萌
发,再次转入1/2MS新鲜培养基后才能萌发,这可
能是由于长角豆荚果中含有大量的浓缩型单宁(其
干质量占种子干质量的16%~20%)[17],种子膨胀
后渗出的单宁对幼芽生长产生了抑制作用所致。
本研究将长角豆无菌苗幼嫩茎段接种于4种不
定芽诱导培养基中,试验发现DKW 基本培养基的
诱导效果最好,这可能与基本培养基中的矿物组分
含量有关,特别是 K+、Ca2+、Mg2+、Fe2+ 的含量。
从长角豆荚果矿物组分的含量看,长角豆含 K+、
Ca2+、Mg2+、Fe2+等元素较多,其生长过程中也相应
需要吸收这些矿物元素[13]。MS培养基营养丰富,
但硝态氮、铵态氮含量过高,而长角豆必需的 K+、
Ca2+、Mg2+、Fe2+反而偏低,导致其在 MS上生长不
良。WPM属于矿物元素含量低的培养基;B5 属于
KNO3 含量高(250mg/L)的培养基,其硝态氮含量
过高,而矿物元素达不到长角豆生长的需求,因此长
角豆在B5、WPM 2种培养基上生长不佳[18]。DKW
属于K+、Ca2+、Mg2+、Fe2+含量均较高的培养基,
因而适合长角豆生长。由此推断,在研究某种植物
的组织培养快速繁殖体系时,首先可从该植物的矿
物组分研究入手,根据其矿物组分及含量选择相对
应的基本培养基,将会使试验工作变得简捷而有效。
对长角豆茎段诱导产生不定芽的研究表明,带
芽茎段有较强的分生能力,是较理想的外植体。在
组织培养过程中,愈伤组织的诱导、芽苗的发育受到
细胞分裂素与生长素的调控[19]。细胞分裂素能诱
导不定芽形成,削弱顶端优势,促进侧芽的萌发;生
长素能促进细胞伸长,诱导愈伤组织和根的发生,增
强顶端优势[20]。在本研究中,6-BA对继代芽分化
的影响大于IBA,很好地验证了这一结果。因此,通
过调节培养基中生长调节剂的含量,合适的生长调
节剂含量可使不定芽分化速度大大加快,在短期内
可繁殖出大量种苗,既保持了品种的优良性状,又提
高了产量和品质[21]。
长角豆组培苗生长缓慢,根据长角豆种子中含
有较丰富的L-赖氨酸,因此在继代增殖培养试验中
附加了L-赖氨酸。试验结果初步表明,附加L-赖氨
酸可起到促进幼苗增殖的效果。据报道,长角豆果
肉中含有丙氨酸、甘氨酸、亮氨酸、脯氨酸、酪氨酸、
苯丙氨酸等[22],因此推测长角豆在生长过程中可能
需要多种氨基酸,本试验验证了这一推理,证明添加
L-赖氨酸有利于其不定芽的增殖。但是否添加丙氨
58第12期 田小霞,等:长角豆组织培养繁育技术研究
酸或亮氨酸对不定芽增殖生长更有效等,尚有待进
一步试验研究。
陶延珍等[23]对箭杆杨试管苗生根培养的研究
结果表明,在一定范围内,试管苗的生根率与培养基
中的生长素含量呈正相关;生长素含量过量时,则会
形成大量的愈伤组织团块而导致输导组织不畅,影
响苗木的生长和移栽的成活率。本试验发现,长角
豆生根培养基中添加不同质量浓度的IBA时,其生
根率先随着IBA质量浓度的增加呈增加趋势,在其
质量浓度为0.4mg/L时生根效果最好,但超过0.4
mg/L后,其生根率下降,且根系粗短不正常,地上
部分枯黄,这可能是根部的分化与生长抑制了地上
部分的分化与生长所致。
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