全 文 ：　 收稿日期：２０１１－０４－２８　　　修回日期：２０１１－０５－２４
　＊通讯作者：刘　力，男，研究员，主要从事液相色谱和液质联用方法开发与研究．
第２８卷第３期
Ｖｏｌ．２８　Ｎｏ．３
分 析 科 学 学 报
ＪＯＵＲＮＡＬ　ＯＦ　ＡＮＡＬＹＴＩＣＡＬ　ＳＣＩＥＮＣＥ
２０１２年６月

Ｊｕｎ． ２０１２
文章编号：１００６－６１４４（２０１２）０３－０３１９－０４
柱前衍生高效液相色谱法分析新疆桃胶的多糖组成
丁成丽１，２，刘　力＊１，２，王　强３
（１．中国科学院新疆理化技术研究所，分析测试中心，新疆乌鲁木齐８３００１１；
２．中国科学院新疆理化技术研究所，新疆植物资源化学重点实验室，新疆乌鲁木齐８３００１１；
３．新疆大学理化测试中心，新疆乌鲁木齐８３００４６）
摘　要：采用超声波辅助提取，乙醇沉淀，三氯乙酸去蛋白的方法提取新疆８种桃胶中
的多糖，将所得多糖用三氯乙酸进行水解并用１－苯基－３－甲基－５吡咯啉酮进行衍生化处
理，采用反相高效液相色谱－紫外检测法研究桃胶多糖的单糖组成。结果表明，８种桃
胶多糖主要由阿拉伯糖、半乳糖和木糖组成，还含有少量的葡萄糖醛酸、鼠李糖及甘露
糖，不同品种的桃胶其多糖的单糖组成及含量存在一定差异。该方法简便，重现性良
好，适合进行桃胶多糖的成分分析研究。
关键词：桃胶；多糖；衍生化；单糖；高效液相色谱
中图分类号：Ｏ６５７．７＋２　　　文献标识码：Ａ
桃胶为桃树、李树、杏树等蔷薇科植物树皮分泌出来的黏性液体，经过风干或其它干燥方法而得到的
玻璃状透明物质，其主要成分为多糖［ｌ］。桃胶多糖具有降低糖尿病血糖水平，调节血脂紊乱，改善机体胰
岛素敏感性的功能［２］。而对多糖的单糖组成进行分析是研究其性质、结构及构效关系的一项重要的内容，
也是控制多糖质量标准和提供多糖基本信息的最重要环节［３］。多糖中单糖分析通常采用气相色谱法，但
容易出现色谱峰异构化分裂［４］。高效液相色谱法作为天然产物常用分离检测手段，因其具有简便高效等
显著优点而得到了广泛应用［５－６］。在进行糖类分析时，由于该类物质光活性较差，通常采用紫外或荧光试
剂对其进行衍生化处理，用以提高检测灵敏度［７］。１－苯基－３－甲基－５－吡咯啉酮（ＰＭＰ）作为还原性糖的常用
衍生化试剂之一，可在温和的条件下与还原性糖进行定量反应，且产物无立体异构现象，因而多用于多糖
化合物的单糖组成分析［８］。
本研究采用Ｃ１８烷基键合柱及紫外检测器，建立了树胶多糖的单糖组分的高效液相色谱（ＨＰＬＣ）分
析方法，并对桃、巴旦杏、杏、李等新疆主要桃胶资源的单糖组成进行分析，希望为新疆桃胶资源的进一步
开发利用提供参考。
１　实验方法
１．１　仪器与材料
Ａｇｌｉｅｎｔ　１１００型高效液相色谱仪，附 Ｇ１３１１Ａ四元梯度泵，Ｇ１３１３Ａ自动进样器，Ｇ１３１６Ａ柱温箱，
Ｇ１３１４Ａ紫外检测器（美国，Ａｇｌｉｅｎｔ公司）；Ｐｈｅｎｏｍｅｎｅｘ　Ｇｅｍｉｎｉ　１１０ＲＣｌ８色谱柱（２５０×４．６ｍｍ，５μｍ）。
Ｌ－鼠李糖（Ｒｈａ）、Ｌ－阿拉伯糖（Ａｒａ）、Ｄ－甘露糖（Ｍａｎ）、Ｄ－葡萄糖醛酸（Ｇｌｕ－ＵＡ）、Ｄ－葡萄糖（Ｇｌｕ）、Ｄ－
半乳糖（Ｇａｌ）、Ｄ－木糖（Ｘｙｌ）购自德国Ｄｒ．Ｅｈｒｅｎｓｔｏｒｆｅｒ公司；所用试剂均为分析纯。实验所用８种桃胶由
中国科学院新疆生态与地理研究所提供。
１．２　树胶多糖的提取与分离［９－１０］
将桃胶去杂，漂洗，冷冻干燥，粉碎后过８０目筛得桃胶原粉末。
９１３
第３期 丁成丽 等：柱前衍生高效液相色谱法分析新疆桃胶的多糖组成 第２８卷
１．２．１　超声波辅助提取　精确称取桃树胶原粉１ｇ，加２０ｍＬ　８５％乙醇超声５ｍｉｎ，重复两次，过滤，自然
挥发干燥。加１００ｍＬ自来水，９０℃搅拌提取４ｈ后，在超声频率２０ｋＨｚ、超声功率７０Ｗ 的条件下，超声
处理１０ｍｉｎ，重复两次。经离心并于６０℃真空浓缩得浓缩液。
１．２．２　三氯乙酸脱蛋白　将浓缩液用１０％三氯乙酸调节ｐＨ值至３，放置过夜，离心后取上清液得脱蛋白液。
１．２．３　醇沉干燥　加９５％乙醇于脱蛋白液中至含醇量为８５％，于室温下放置过夜，离心得桃胶多糖沉
淀，经真空干燥研磨得灰白色粉末状桃胶多糖。
１．３　树胶多糖的水解
称取桃胶多糖样品１０ｍｇ于安瓿中，加入４ｍｏｌ·Ｌ－１三氟乙酸溶液１ｍＬ，封管后于９０℃水解８ｈ，得
水解样品溶液。转移至ＥＰ管中离心，取上清液用０．３ｍｏｌ·Ｌ－１氢氧化钠溶液调ｐＨ至中性。
１．４　衍生化标记［１１］
取配制好的５ｍｍｏｌ·Ｌ－１单糖标准品及桃胶多糖水解液各１００μＬ于ＥＰ管中，依次加入０．５ｍｏｌ·Ｌ
－１
ＰＭＰ甲醇溶液１００μＬ，０．３ｍｏｌ·Ｌ
－１　ＮａＯＨ溶液１００μＬ，混匀后置于７０℃水浴中加热反应３０ｍｉｎ。冷
却后，再加入０．３ｍｏｌ·Ｌ－１　ＨＣｌ中和至酸性，用０．５ｍＬ氯仿萃取，离心，加水至５００μＬ混匀，待ＨＰＬＣ分析。
１．５　色谱条件
流动相：Ａ，５０ｍｍｏｌ·Ｌ－１磷酸盐缓冲溶液（ＫＨ２ＰＯ４－ＮａＯＨ，ｐＨ＝６．９）；Ｂ，乙腈；梯度模式：时间梯度
为０→１０→２５→４０ｍｉｎ，相应浓度梯度为１５％→１７．５％→２０％→２０％Ｂ；流速：１．０ｍＬ·ｍｉｎ－１；检测波长：
２５０ｎｍ；进样体积１０μＬ。
２　结果与讨论
２．１　桃胶多糖的提取与分离
采用超声波辅助提取、乙醇沉淀、三氯乙酸去蛋白方法对桃胶中多糖进行提取分离，所得桃胶多糖经
研磨粉碎后，状态为灰白色固体粉末，其得率见表１。
表１　多糖得率
Ｔａｂｌｅ　１　Ｙｉｅｌｄｓ　ｏｆ　ｐｌｏｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓ
Ｂｒｅｅｄ　 Ｙｉｅｌｄ（％） Ｂｒｅｅｄ　 Ｙｉｅｌｄ（％） Ｂｒｅｅｄ　 Ｙｉｅｌｄ（％） Ｂｒｅｅｄ　 Ｙｉｅｌｄ（％）
Ａｍｙｇｄａｌｕ
ｓｐｅｒｓｉｃａ　ｖａｒ ７４．３５
Ａｍｙｇｄａｌｕｓ
ｄａｖｉｄｉａｎａ ７６．１３
Ａｒｍｅｎｉａｃａ
ｖｕｌｇａｒｉｓ　Ｌａｍ ７５．６２
Ａｒｍｅｎｉａｃａ
ｖｕｌｇａｒｉｓ　Ｌａｍ ７２．５３
Ｐｒｕｎｕｓ
ｍｏｎｇｏｌｉｃａ ７１．４１
Ａｍｙｇｄａｌｕｓ
ｐｅｒｓｉｃａ　Ｌ ７１．３２
Ａｍｙｇｄａｌｕｓ
ｃｏｍｍｕｎｉｓ　Ｌ ７４．２６
Ｐｒｕｎｕｓ
ｓａｌｉｃｉｎａ　Ｌｉｎｄｌ ７３．４６
２．２　方法学考察
２．２．１　线性关系考察　分别配制０．４、１、２、４、５ｍｍｏｌ·Ｌ－１混合标准溶液，进行 ＨＰＬＣ分析，根据测定的
峰面积（Ｙ）对相应单糖的进样浓度（Ｘ）进行线性回归。７种单糖经衍生化后线性回归方程见表２，各标准
单糖在浓度为０．４～５ｍｍｏｌ·Ｌ－１的范围内呈良好线性关系。
表２　７种单糖的回归方程及线性范围
Ｔａｂｌｅ　２　Ｔｈｅ　ｒｅｓｕｌｔｓ　ｏｆ　ｒｅｇｒｅｓｓｉｏｎ　ｅｑｕａｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ　ｌｉｍｉｔｓ　ｆｏｒ　ｓｅｖｅｎ　ｍｏｎｏｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓ
Ｓｔａｎｄａｒｄ　ｓｕｂｓｔａｎｃｅ　 Ｒｅｇｒｅｓｓｉｏｎ　ｅｑｕａｔｉｏｎ　 Ｃｏｒｒｅｌａｔｉｏｎ　ｃｏｅｆｆｉｃｉｅｎｔ（Ｒ２） Ｌｉｎｅａｒ　ｒａｎｇｅ（ｍｍｏｌ·Ｌ－１）
Ｍａｎ　 Ｙ＝４．８５０５　Ｘ＋２４．９４３　 ０．９９９７　 ０．４～５
Ｒｈａ　 Ｙ＝３．７８０４　Ｘ＋２３．８４４　 ０．９９９８　 ０．４～５
Ｇｌｕ－ＵＡ　 Ｙ＝３．５３８２　Ｘ＋３．８１４８　 ０．９９９８　 ０．４～５
Ｇｌｕ　 Ｙ＝４．６８７４　Ｘ＋８．９４７１　 ０．９９９７　 ０．４～５
Ｇａｌ　 Ｙ＝５．９３３１　Ｘ＋２２．２６２　 ０．９９９８　 ０．４～５
Ｘｙｌ　 Ｙ＝１０．４２９　Ｘ＋６．２１２５　 ０．９９９９　 ０．４～５
Ａｒａ　 Ｙ＝８．２０５７　Ｘ＋１６．２５８　 ０．９９９９　 ０．４～５
２．２．２　精密度试验　取浓度为１ｍｍｏｌ·Ｌ－１的７种单糖混合衍生化产物，重复进样５次，分别测量峰面积
值，计算出各单糖的相对标准偏差（ＲＳＤ）分别为：甘露糖０．５９％，鼠李糖０．５６％，葡萄糖醛酸０．２８％，葡
萄糖０．６１％，半乳糖０．４４％，木糖０．６６％和阿拉伯糖０．３４％。结果表明本法精密度良好。
０２３
第３期 分 析 科 学 学 报 第２８卷
２．２．３　稳定性试验　取巴旦杏胶样品的衍生化产物溶液，分别在制备后０，２，４，８，１２，２４ｈ进样，分别测
量峰面积值，计算样品中各单糖含量的ＲＳＤ依次为：甘露糖０．６１％，鼠李糖０．８８％，葡萄糖醛酸０．９４％，
葡萄糖０．５８％，半乳糖０．５８％，木糖０．６０％和阿拉伯糖０．５７％。表明室温下供试品溶液在２４ｈ内稳定。
２．２．４　重复性试验　取巴旦杏胶样品５份，按样品的制备方法制备溶液，衍生化产物连续进样３次，测量
峰面积值，计算各单糖的 ＲＳＤ分别为：甘露糖１．４２％ ，鼠李糖２．５９％ ，葡萄糖醛酸２．０７％ ，葡萄糖
１．７４％ ，半乳糖１．２３％ ，木糖２．１８％和阿拉伯糖１．８１％。表明本法重复性良好。
２．２．５　回收率试验　精确称取已知含量的巴旦杏树胶多糖５份，分别精确加入各单糖标准溶液适量，按
样品的制备方法制备溶液。测量衍生化产物峰面积值，计算平均加样回收率分别为：甘露糖９９．７４％ ，鼠
李糖１０３．５５％ ，葡萄糖醛酸９９．１７％，葡萄糖９８．１２％ ，半乳糖１０３．１２％ ，木糖１０１．５０％和阿拉伯糖
１０３．３２％，相应的ＲＳＤ分别为２．０９％、１．００％、１．０８％、１．９８％、２．９４％、２．１７％和２．６６％ ，由结果可知回
收率较好。
２．３　样品分析
图１　单糖对照品ＰＭＰ衍生物的色谱图
Ｆｉｇ．１　Ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｍｓ　ｏｆ　１－ｐｈｅｎｙｌ－３－ｍｅｔｈｙｌ－５－ｐｙｒａｚｏｌｏｎｅ
（ＰＭＰ）ｄｅｒｉｖａｔｉｖｅｓ　ｏｆ　ｍｏｎｏｓａｃｃｈａｒｉｄｅ　ｓｔａｎｄａｒｄｓ
０．ＰＭＰ；１．Ｍａｎ；２．Ｒｈａ；３．Ｇｌｕ－ＵＡ；４．Ｇｌｕ；５．Ｇａｌ；６．Ｘｙｌ；
７．Ａｒａ．
２．３．１　色谱条件优化　为实现桃胶多糖各组成单糖
的高效分离，对桃胶多糖可能包含的阿拉伯糖、半乳
糖、鼠李糖、葡萄糖醛酸、木糖、甘露糖和葡萄糖等７种
标准单糖的ＰＭＰ衍生物的高效液相色谱分离条件进
行了优化。结果表明，磷酸盐缓冲溶液（ＫＨ２ＰＯ４－
ＮａＯＨ）的ｐＨ＝６．９，时间梯度为０→１０→２５→４０ｍｉｎ，
相应浓度梯度为１５％→１７．５％→２０％→２０％流动相Ｂ
的梯度洗脱模式为分离此７种单糖衍生物的较理想色
谱分离条件。如图１所示，色谱峰的各峰保留时间依
次为ＰＭＰ、甘露糖、鼠李糖、葡萄糖醛酸、葡萄糖、半乳
糖、木糖和阿拉伯糖。其中，ＰＭＰ衍生化试剂最先出
峰，不干扰单糖衍生物的分析。
２．３．２　单糖组成分析　采用标准曲线法计算得各种
桃胶多糖中各单糖的百分含量如表３。试样桃胶的多糖由阿拉伯糖、半乳糖、鼠李糖、葡萄糖醛酸、木糖、
甘露糖和葡萄糖７种单糖组成，其中以阿拉伯糖、半乳糖、木糖和葡萄糖醛酸为主。通过对不同桃胶多糖
的比对，发现山桃树胶多糖中的阿拉伯糖含量特别高，而桃杏树胶多糖的葡萄糖醛酸含量明显高于其桃胶多
糖。不同品种的桃胶其多糖的组成及含量存在差异，在开发桃胶多糖时应考虑其组成不同，给予合理利用。
表３　桃胶多糖中各单糖的百分含量
Ｔａｂｌｅ　３　Ｔｈｅ　ｍｏｎｏｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓ　ｃｏｎｔｅｎｔ　ｉｎ　ｇｕｍ　ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓ
Ｂｒｅｅｄ　 Ａｒａ（％） Ｇａｌ（％） Ｒｈａ（％） Ｇｌｕ－ＵＡ（％） Ｘｙｌ（％） Ｍａｎ（％） Ｇｌｕ（％）
Ａｍｙｇｄａｌｕｓ　ｐｅｒｓｉｃａ　ｖａｒ　 ４９．０８　 ３２．７２　 ２．３０　 ４．３１　 １０．６０　 ０．４９　 ０．３５
Ｐｒｕｎｕｓ　ｍｏｎｇｏｌｉｃａ　 ４５．７３　 ２１．４５　 ３．７０　 ５．７１　 １０．７３　 ０．３６　 ０．４７
Ａｍｙｇｄａｌｕｓ　ｄａｖｉｄｉａｎａ　 ４９．２６　 ２８．６７　 ２．４９　 ４．０９　 １１．９５　 ０．１９　 ０．２４
Ａｍｙｇｄａｌｕｓ　ｐｅｒｓｉｃａ　Ｌ　 ４９．０３　 ２４．６２　 １．５０　 ６．９３　 １０．７８　 ０．４８　 ０．２１
Ａｒｍｅｎｉａｃａ　ｖｕｌｇａｒｉｓ　Ｌａｍ　 ４５．１３　 ３４．８６　 ２．４４　 ６．１７　 ７．６６　 ０．８４　 ０．４０
Ａｍｙｇｄａｌｕｓ　ｃｏｍｍｕｎｉｓ　Ｌ　 ４２．０８　 ３４．８１　 １．４８　 ６．３４　 ８．５０　 ０．５１　 ０．４４
Ａｒｍｅｎｉａｃａ　ｖｕｌｇａｒｉｓ　Ｌａｍ　 ３７．０９　 ２５．８７　 ４．５０　 １１．５９　 ５．１７　 ０．６４　 ０．６１
Ｐｒｕｎｕｓ　ｓａｌｉｃｉｎａ　Ｌｉｎｄｌ　 ３９．２６　 ３４．８６　 ２．４８　 ７．５７　 １４．３８　 ０．６５　 ０．２８
３　结论
本研究采用超声波辅助提取，乙醇沉淀，三氯乙酸去蛋白的方法，从新疆８种主要桃胶资源中提取得
到灰白色固体粉末状桃胶多糖，得率均在７２％左右。其单糖组成主要为阿拉伯糖和半乳糖，此外还含有
少量的鼠李糖、葡萄糖醛酸、木糖、甘露糖和葡萄糖，不同树种的桃胶其多糖的单糖组成及含量存在一定差
异。采用高效液相色谱法测定桃胶多糖的单糖组成，方法简单灵敏，操作方便快速，有利于深入分析桃胶
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第３期 丁成丽 等：柱前衍生高效液相色谱法分析新疆桃胶的多糖组成 第２８卷
多糖样品，研究桃胶多糖性质，为合理开发和利用新疆桃胶资源提供科学依据。
参考文献：
［１］　ＺＨＡＮＧ　Ｗｅｉ－ｍｉｎｇ（张卫明），ＸＩＡＯ　Ｚｈｅｎｇ－ｃｈｕｎ（肖正春），ＳＨＩ　Ｊｉｎ－ｓｏｎｇ（史劲松）．Ｃｈｉｎｅｓｅ　Ｐｌａｎｔ　Ｇｕｍ　Ｒｅｓｏｕｒｃｅ　Ｄｅｖｅｌ－
ｏｐｍｅｎｔ　Ｓｔｕｄｙ　ａｎｄ　Ｕｓｅ（中国植物胶资源开发研究与利用）［Ｍ］．Ｎａｎｊｉｎｇ（南京）：Ｓｏｕｔｈｅａｓｔｅｒｎ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ　Ｐｒｅｓｓ（东南大
学出版社），２００８：１０７．
［２］　ＤＩＮＧ　Ｔｉｎｇ（丁　婷），ＷＡＮＧ　Ｆｅｉ（王　飞），ＷＥＩ　Ｌｉ－ｐｉｎｇ（韦莉萍），ＨＵＡＮＧ　Ｘｕｅ－ｓｏｎｇ（黄雪松）．Ｇｕｉｄｉｎｇ　Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ
ＴＣＭ（中医药导报）［Ｊ］，２０１０，１６（５）：８．
［３］　Ｃｈｒｉｓｔｉｎａ　Ｓｃｈａｄｅｌ，Ａｎｄｒｅａｓ　Ｂｌｏｃｈｌ，Ａｎｄｒｅａｓ　Ｒｉｃｈｔｅｒ，Ｇｕｎｔｅｒ　Ｈｏｃｈ．Ｐｌａｎｔ　Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ　ａｎｄ　Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ［Ｊ］，２０１０，４８：１．
［４］　ＷＡＮＧ　Ｗｅｎ－ｌｉｎ（王文岭）．Ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ　ｏｆ　Ｃｏｍｍｅｒｅｉａｌ　Ｐｅａｃｈ　Ｇｕｍ　ａｎｄ　Ｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓ　ｏｆ　Ｏｒｉｇｉｎａｌ　Ｐｅａｃｈ　Ｇｕｍ　ａｎｄ　Ｃｏｍ－
ｍｅｒｅｉａｌ　Ｐｅａｃｈ　Ｇｕｍ（商品桃胶的制备及其组成研究）［Ｄ］．Ｊｉｎａｎ（暨南）：Ｊｉｎａｎ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ（暨南大学），２００６．
［５］　ＬＶ　Ｙｏｕ，ＹＡＮＧ　Ｘｉｎｇｂｉｎ，ＺＨＡＯ　Ｙａｎ，ＲＵＡＮ　Ｙｕｎ，ＹＡＮＧ　Ｙｉｎｇ，ＷＡＮＧ　Ｚｈｅｚｈｉ．Ｆｏｏｄ　Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ［Ｊ］，２００９，１１２：７４２．
［６］　ＤＡＩ　Ｊｕｎ，ＷＵ　Ｙａｎ，ＣＨＥＮ　Ｓｈａｎｇｗｅｉ，ＺＨＵ　Ｓｏｎｇ，ＹＩＮ　Ｈｏｎｇｐｉｎｇ，ＷＡＮＧ　Ｍｉｎ，ＴＡＮＧ　Ｊｉａｎ．Ｃａｒｂｏｈｙｄｒａｔｅ　Ｐｏｌｙｍｅｒｓ
［Ｊ］，２０１０，８２：６２９．
［７］　ＷＡＮＧ　Ｙｉ－ｗｅｎｇ（王泽文），ＬＥＮ　Ｋａｉ－ｌｉａｎｇ（冷凯良），ＳＵＮ　Ｗｅｉ－ｈｏｎｇ（孙伟红），ＺＨＡＩ　Ｙｕ－ｘｉｕ（翟毓秀），ＸＩＮ　Ｌｉ－ｈｏｎｇ
（邢丽红），ＭＩＡＯ　Ｊｕｎ－ｋｕｉ（苗钧魁）．Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ａｎａｌｙｔｉｃａｌ　Ｓｃｉｅｎｃｅ（分析科学学报）［Ｊ］，２０１１，２７（１）：２６．
［８］　ＺＨＡＮＧ　Ｌｉｎｇｙｉ，ＸＵ　Ｊｉｎ，ＺＨＡＮＧ　Ｌｉｈｕａ，ＺＨＡＮＧ　Ｗｅｉｂｉｎｇ，ＺＨＡＮＧ　Ｙｕｋｕｉ．Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ　Ｂ［Ｊ］，２００３，７９３：１５９．
［９］　ＸＵ　Ｙａｎ（徐　燕），ＺＨＵ　Ｋｅ－ｘｕｅ（朱科学），ＱＩＡＮ　Ｈａｉ－ｆｅｎ（钱海峰），ＺＨＯＵ　Ｈｕｉ－ｍｉｎｇ（周惠明）．Ｓｃｉｅｎｃｅ　ａｎｄ　Ｔｅｃｈｎｏｌｏ－
ｇｙ　ｏｆ　Ｆｏｏｄ　Ｉｎｄｕｓｔｒｙ（食品工业科技）［Ｊ］，２００８，（１）：６６．
［１０］Ｂｒｕｍｍｅｒ　Ｙ，Ｃｕｉ　Ｗ，Ｗａｎｇ　Ｑ．Ｆｏｏｄ　Ｈｙｄｒｏｃｏｌｏｉｄｓ［Ｊ］，２００３，（１７）：２２９．
［１１］Ｙａｍａｍｏｔｏ　Ｆｕｍｉｋｏ　Ｍ，Ｒｏｋｕｓｈｉｋａ　Ｓｏｕｊｉ．Ａｎａｌｙｔｉｃａ　Ｃｈｉｍｉｃａ　Ａｃｔａ［Ｊ］，２００４，５０１：１４３．
Ａｎａｌｙｓｉｓ　ｏｆ　Ｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎ　ｏｆ　Ｇｕｍ　Ｓｈｉｒａｚ　Ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅ
Ｇｒｏｗｉｎｇ　ｉｎ　Ｘｉｎｊｉａｎｇ　ｂｙ　Ｐｒｅｃｏｌｕｍｎ　Ｄｅｒｉｖａｔｉｚａｔｉｏｎ
Ｈｉｇｈ　Ｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ　Ｌｉｑｕｉｄ　Ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ
ＤＩＮＧ　Ｃｈｅｎｇ－ｌｉ　１，２，ＬＩＵ　Ｌｉ＊１，２，ＷＡＮＧ　Ｑｉａｎｇ３
（１．Ｔｈｅ　Ｘｉｎｊｉａｎｇ　Ｔｅｃｈｎｉｃａｌ　Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ　ｏｆ　Ｐｈｙｓｉｃｓ　ａｎｄ　Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，ＣＡＳ，Ａｎａｌｙｓｉｓ　ａｎｄ
Ｔｅｓｔｉｎｇ　Ｃｅｎｔｅｒ，Ｕｒｕｍｑｉ　８３００１１；
２．Ｔｈｅ　Ｘｉｎｊｉａｎｇ　Ｔｅｃｈｎｉｃａｌ　Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ　ｏｆ　Ｐｈｙｓｉｃｓ　ａｎｄ　Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，ＣＡＳ，Ｐｌａｎｔ　Ｒｅｓｏｕｒｃｅｓ　Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ
ｏｆ　Ｋｅｙ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ　ｉｎ　Ｘｉｎｊｉａｎｇ，Ｕｒｕｍｑｉ　８３００１１；
３．Ｐｈｙｓｉｃｓ　ａｎｄ　Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ　Ｄｅｔｅｃｔ　Ｃｅｎｔｅｒ　ｏｆ　Ｘｉｎｊｉａｎｇ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｕｒｕｍｑｉ　８３００４６）
Ａｂｓｔｒａｃｔ：Ｇｕｍ　ｓｈｉｒａｚ　ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓ　ｗｅｒｅ　ｏｂｔａｉｎｅｄ　ｆｒｏｍ　ｅｉｇｈｔ　ｋｉｎｄｓ　ｏｆ　ｇｕｍ　ｓｈｉｒａｚ　ｂｙ　ｕｌｔｒａｓｏｎｉｃ
ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ，ｅｔｈａｎｏｌ　ｐｒｅｃｉｐｉｔａｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｐｒｏｔｅｉｎ　ｒｅｍｏｖｉｎｇ　ｗｉｔｈ　ｔｒｉｃｈｌｏｒｏａｃｅｔｉｃ　ａｃｉｄ．Ｔｈｅｎ　ｔｈｅ　ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓ
ｗｅｒｅ　ｈｙｄｒｏｌｙｚｅｄ　ｗｉｔｈ　ｔｒｉｃｈｌｏｒｏａｃｅｔｉｃ　ａｃｉｄ　ａｎｄ　ｔｈｅｎ　ｄｅｒｉｖｅｄ　ｗｉｔｈ　１－ｐｈｅｎｙｌ－３－ｍｅｔｈｙｌ－５－ｐｙｒａｚｏｌｏｎｅ．Ｔｈｅ
ｍｏｎｏｓａｃｃｈａｒｉｄｅ　ｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓ　ｏｆ　ｇｕｍ　ｓｈｉｒａｚ　ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓ　ｗｅｒｅ　ｄｅｔｅｒｍｉｎｅｄ　ｂｙ　ｒｅｖｅｒｓｅ　ｐｈａｓｅ　ｈｉｇｈ
ｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ　ｌｉｑｕｉｄ　ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ．Ｔｈｅ　ｒｅｓｕｌｔｓ　ｓｈｏｗｅｄ　ｔｈａｔ　ｅｉｇｈｔ　ｋｉｎｄｓ　ｏｆ　ｇｕｍ　ｓｈｉｒａｚ　ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓ
ｍａｉｎｌｙ　ｃｏｍｐｏｓｅｄ　ｏｆ　ａｒａｂｉｎｏｓｅ，ｇａｌａｃｔｏｓｅ　ａｎｄ　ｘｙｌｏｓｅ，ａｎｄ　ａｌｓｏ　ｃｏｎｔａｉｎｅｄ　ａ　ｓｍａｌ　ａｍｏｕｎｔ　ｏｆ　ｇｌｕｃｕｒｏｎｉｃ
ａｃｉｄ，ｒｈａｍｎｏｓｅ　ａｎｄ　ｍａｎｎｏｓｅ．Ｉｔ　ｗａｓ　ｆｏｕｎｄ　ｔｈａｔ　ｔｈｅ　ｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｃｏｎｔｅｎｔ　ｏｆ　ｍｏｎｏｓａｃｃｈａｒｉｄｅ　ｗｅｒｅ
ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｉｎ　ｅｉｇｈｔ　ｋｉｎｄｓ　ｏｆ　ｇｕｍ　ｓｈｉｒａｚ．Ｔｈｅ　ｍｅｔｈｏｄ　ｉｓ　ｓｉｍｐｌｅ，ｒｅｐｒｏｄｕｃｉｂｌｅ　ａｎｄ　ｓｕｉｔａｂｌｅ　ｆｏｒ　ｔｈｅ　ｇｕｍ　ｓｈｉｒａｚ
ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅ　ｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎ　ａｎａｌｙｓｉｓ．
Ｋｅｙｗｏｒｄｓ：Ｇｕｍ　ｓｈｉｒａｚ；Ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅ；Ｄｅｒｉｖａｔｉｚａｔｉｏｎ；Ｍｏｎｏｓａｃｃｈａｒｉｄｅ；Ｈｉｇｈ　ｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ　ｌｉｑｕｉｄ　ｃｈｒｏ－
ｍａｔｏｇｒａｐｈｙ
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