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不同染色技术和双色荧光原位杂交技术对宽翅菘蓝(Isatis violascens Bunge)的细胞遗传学分析



全 文 :现代生物医学进展 www.shengwuyixue.com Progress inModern Biomedicine Vol.11 NO.3 FEB.2011
不同染色技术和双色荧光原位杂交技术对宽翅菘蓝
(Isatis violascens Bunge)的细胞遗传学分析
戚大石 1 汤佳立 2
(1徐州医学院 江苏徐州 221121;2中国药科大学生命科学与技术学院 江苏南京 210009)
摘要:为了解十字花科菘蓝属植物宽翅菘蓝(宽翅菘蓝,Isatis violascens Bunge)的染色体结构,本文利用 45S rDNA和 5S rDNA双
色荧光原位杂交、银染技术和 CMA3对宽翅菘蓝进行分子细胞遗传学研究。45S rDNA和 5S rDNA荧光原位杂交结果显示宽翅
菘蓝染色体上有 1对 45S rDNA信号和 1对 5S rDNA信号;银染结果显示其中期染色体有 1对银染点;CMA3染色结果发现宽
翅菘蓝中期染色体存在 1对 CMA3信号。
关键词:宽翅菘蓝;银染;45S rDNA;双色荧光原位杂交;CMA3染色
中图分类号:Q343,Q943 文献标识码:A 文章编号:1673-6273(2011)03-485-04
Cytogenetic Analysis of Isatis Violascens Bunge by Different Staining
Techniques and D-Fluorescent in Situ Hybridization
QI Da-Shi1, TANG Jia-Li2
(1 Xuzhou Medical college, Xuzhou, 221116, China;
2 School of Life Science and Technology, China Pharmaceutical University, Nanjing 210009, China)
ABSTRACT: Objective In order to understand the chromosome structure of I. violascens Bunge, 45S rDNA and 5S rDNA dual-flu-
orescence in situ hybridization (45S rDNA and 5S rDNA D-FISH), silver staining and CAM3 staining were used to study the chromo-
somes of I. violascens Bunge. In the silver stained metaphase chromosomes of I. violascens Bunge, there were two positive regions; fluo-
rochrome Chromomycin A3 (CMA) staining showed two positive regions; D-FISH with 45S rDNA and 5S rDNA probes revealed one
18S-5.8S-26S rDNA loci and one 5S rDNA loci with different intensity.
Key words: Isatis violascens Bunge; Silver staining; 45S rDNA; D-fluorescence in situ hybridization; CMA3 staining
Chinese Library Classification(CLC): Q343, Q943 Document code: A
Article ID: 1673-6273(2011)03-485-04
作者简介:戚大石(1982-),男,硕士,助教,研究方向:细胞遗传学。
Tel:15351677826;E-mail:qidashi@yahoo.com.cn
(收稿日期:2010-10-18 接受日期:2010-11-15)
菘蓝属(Isatis L),属于十字花科(Brassicaceae),有 30多个
种,含多种旱生植物,在热带,亚热带以及温带地区广为栽培。
目前在我国有 6种和 1个亚种[1],主要分布在新疆、内蒙古、陕
西、甘肃、河北、山东、江苏、浙江、安徽、贵州等地,新疆的物种
最丰富,其中有些物种是非常重要的药用植物及经济作物。
目前国内外对于菘蓝属植物的研究主要集中在几种药用
植物的生药学、胚胎学、化学成份、栽培技术、组织培养、提取物
的再利用等方面,而对于菘蓝属植物染色体的基础研究比较薄
弱,目前仅有对于菘蓝属中菘蓝核型的报道。因此,对于菘蓝属
植物的染色体研究是非常有必要的。但大多数植物染色体鉴定
是非常困难的,因为染色体形态之间的差异甚小,如果染色体
的臂长、着丝点位置、异染色质等很难被确定时,就会严重阻碍
对于植物染色体的研究[2]。幸运的是,分子细胞遗传技术,包括
各种显带技术和原位杂交技术,才使得我们可以更好的了解植
物染色体,从而进一步推动对植物研究进展。通过各种染色体
显带技术可以识别人类及大多数动植物的染色体,再加以利用
原位杂交技术,根据不同的带型、不同探针的位置,进而得到更
多有关染色体组的信息,从而有利于更好的研究物种染色体组
的结构和功能[3]。Thomas K. Wolfgruber等通过染色质纤维原位
杂交技术来研究玉米着丝点的结构和进化[4]。
本研究首次首次采用 Ag-NOR、CMA3染色和 rDNA双色
荧光原位杂交等技术(rDNA-DFISH)综合研究宽翅菘蓝染色
体,为宽翅菘蓝品种的遗传改良提供细胞及分子遗传学基础。
1 材料和方法
1.1 材料
1.1.1 供试材料 供试材料栽培种宽翅菘蓝(Isatis violascens
Bunge)购于新疆。
1.1.2 供试质粒探针 45S rDNA 和 5S rDNA 探针由美国 Ne-
braska大学的 Arumuganathan教授提供。45S rDNA片段长度
为 9.1 kb,包括非转录的间隔区和 18S、5.8S和 25S亚单位,以
pUC18为其克隆载体,酶切位点为 Kpn I;长度为 450 bp的 5S
rDNA片段,为 pUC18为克隆载体,BamH I为其酶切位点。
1.2 方法
1.2.1 植物染色体制备技术 参照汤佳立[5]的方法并略加修改制
备宽翅菘蓝染色体。步骤为:剪取生长旺盛的根尖(1- 2mm),
25℃,α-溴萘饱和溶液处理 2.5 h,用 0.075 mol/L KCl前低渗
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DOI:10.13241/j.cnki.pmb.2011.03.003
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处理 30 min,乙醇:冰醋酸(3:1)固定,双蒸水充分清洗根尖,
2%纤维素酶和 2%果胶酶 1:1混合,29℃酶解 5-6 h,用双蒸水
后低渗 30 min,火焰干燥制片,-20℃贮存备用。
1.2.2 植物 Ag-NOR染色技术 参照 Hellmer的快速银染法并
略作修改对宽翅菘蓝中期染色体和间期核进行染色,制片放在
空气干燥 5h 的,在 25 ℃下,用 0.2 mol/L HCl 处理 10~15
min,空气干燥 3 h,滴加 70% AgNO3水溶液,50~60℃染色过
夜,然后镜检照相。
1.2.3 植物 CAM3染色技术 参照 Arun Kumar Sharma等并略
作修改。先用含 10mmol/L MgCl2的McIlvaine缓冲液(pH6.9~
7.0) 浸泡 10~15min, 然后用 含 有 10mmol/L MgCl2 和
0.12mg/mL CMA的 McIlvaine缓冲液染色 25~30min,然后镜
检照相。
1.2.3 质粒 DNA的提取和探针标记技术 参照萨姆布鲁克丁等
(1992)采用 碱裂解法 并略作修改提取质粒的。按照 Singh
M等 [6] 的方法通过切刻平移法用 Biotin-11-dUTP和 Digoxi-
genin-11-dUTP分别标记 5S rDNA和 45S rDNA探针。标记反
应混和物(50μL)中含 5 μL dNTP (dATP,dGTP和 dCTP等量
混合),10×Buffer 5 μL,所需标记探针 DNA 5 μL,Biotin-11
-dUTP 0.6 μL 或者 Digoxigenin-11-dUTP 0.6 μL,Enzyme 5μL
(含 polymerase Ⅰ、Dnase Ⅰ), 加 ddH2O至终体积 50 μL,15℃
反应 3 h,2μL 0.5 mol/L EDTA终止反应。
1.2.4 原位杂交和信号检测 参照汤佳立[5]方法并略作修改进行
原位杂交。在 60℃,对染色体制片干燥 1 h,后用 RNaseA 37℃
处理 2 h,接着用 70%甲酰胺 70℃处理 3.5 min,分别在 -20℃
70%、95%、100% 乙醇中各脱水 5 min,放置于室温下约 20
min,直到染色体制片完全干燥。按照 50%甲酰胺、8%硫酸葡聚
糖、10% 20×SSC、0.1 % SDS、2 μg ssDNA配置杂交液,放置
在沸水中变性 10 min,迅速放于冰上 5 min。将 50μL杂交液加
到染色体制片,90℃,共变性 10 min,37℃保湿皿孵育 18~24 h。
用 streptavidin-Cy3 和地高辛检测杂交信号。用 DAPI
(3μg/mL)复染染色体。在 LEICA DMRA2荧光显微镜下观察
制片拍照,Photoshop软件进行图片处理。
2 结果与分析
2.1宽翅菘蓝间期核和中期染色体的银染
图 1A-B显示了宽翅菘蓝间期核以及中期染色体的银染
的结果。由图 1可见,在宽翅菘蓝间期核中,有 1-2个 Ag-NORs
区域,而且 Ag-NORs区域的大小相近似;在中期染色体中,可
以看到 1对 Ag-NORs区域。
2.2 宽翅菘蓝间期核和中期染色体的 CAM3的染色
图 1C-D显示了宽翅菘蓝间期核和中期染色体的 CAM3
的染色结果。由图 1可见,宽翅菘蓝间期核中 CAM3信号区域
有 1-2个,区域的大小相近似;在中期染色体中,可以看到 1对
CAM3信号。
2.3 45S rDNA和 5S rDNA在宽翅菘蓝间期核和中期染色体定

图 1 E-F显示了在宽翅菘蓝间期核和中期染色体上 45S
rDNA和 5S rDNA序列的双色荧光原位杂交结果;染色体通
过 DAPI复染为蓝色;45S rDNA杂交信号为绿色;5S rDNA
的杂交信号为红色。通过对宽翅菘蓝的 50个中期和前期分裂
相的杂交结果进行分析表明,宽翅菘蓝 14条染色体上显示有
1对 45S rDNA信号,位于 1号染色体短臂的端部和随体上,几
乎覆盖整个短臂,并且信号较强,在基因组内,我们同样发现了
1对 5S rDNA,位于 2号染色体的着丝粒处,信号强。
3 讨论
通过荧光显带技术,我们可以更好的研究宽翅菘蓝染色
体。CAM3是对 GC富含区进行着色,结合的序列为存在于
DNA小沟中的 5 - dGpC - 3序列,大于 4 bp。通过 CAM3的染
色,GC富含区显示出明亮的荧光条带,相反,AT富含区就表现
为较浅的条带[16]。在对宽翅菘蓝进行 CAM3染色,发现有 2个
明亮的区域,这意味着 GC富含区主要集中在 1号染色体的短
臂以及其随体上,而在其他染色体上分布均匀。在其它物种中,
还出现其他类型的 CAM染色条带,如在远志,CAM条带存在
于在次缢痕处[7]。
图 1 宽翅菘蓝银染、CAM3染色、45S rDNA和 5S rDNA双色荧光原位
杂交结果蓝色为 DAPI复染的染色体,红色为 5S rDNA杂交信号,绿
色为 45S rDNA杂交信号。A:间期核银染结果;B:显示 1对银染点;
C:间期核 CAM3染色结果;D显示 1对 CAM3染点;E:45S rDNA和 5S
rDNA双色荧光原位杂交核结果:F:45S rDNA和 5S rDNA双色荧光
原位杂交中期染色体图。
Figure 1 Silver (A, B), CMA3 (C, D) and Localization of 45S rRNA and
5S rDNA gene loci on some phases of cell cycle of I. violascens Bunge by
D-FISH (E, F)
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核仁组织区代表着染色体所在的区域,有大量的 rDNA基
因(5.8S, 18S and 28S rDNA)。
在细胞间期,核仁的大小与 rDNA基因活性有关系,并且
通常可以通过硝酸银染色来观察其所在位置,换句话说,即表
达的 rDNA基因可以被定位,看做为染色体所在区域[8]。为了检
测 GC富含区是否与核仁组织区存存在关系,通常通过检验硝
酸银染色结果,以 45S rDNA为探针的原位杂交结果,以及
CAM3染色结果加以判断。目前,已经有许多通过 CMA3,银染
以及 45S rDNA 的定位来确定核仁组织区的报道,Saranya
Srisuwan[8]等人在对甘薯属巴西牵牛,三浅裂野牵牛等多种植
物进行的银染、CMA3以及 45SrDNA的定位,精准的确定了核
仁组织区的数量和位置。本实验发现宽翅菘蓝间期核中
Ag-NORs和 CAM3区域各有 1-2个;在中期染色体中,可以看
到 1对 Ag-NORs信号和 1对 CAM3信号,说明在宽翅菘蓝基
因组中具有转录活性的核仁组织区有 1~2个。
45S rDNA和 5S rDNA组成了高等植物 rDNA。45S rDNA
又是由 5. 8 S rRNA、18 S rRNA、28 S (25 S) rRNA 组成,而
18S、5.8S和 28S又是通过 ITS-1、ITS-2 将其分隔开。研究表
明,45S rDNA通常被定位在核仁组织区 [9],而 5S rDNA在物
种基因组上的位置变化很大 [10]。通过以 45S和 5S rDNA为探
针,在多个物种进行荧光原位杂交以及物种间 ITS序列差异,
不仅可以用以讨论 rDNA的起源进化,而且可以有效地反映
种、属间的分化程度,物种染色体精细结构分析,从而为染色体
的识别和在分子水平上研究基因组的进化提供线索。研究结果
表明,宽翅菘蓝中有 1个 45S rDNA位点,位于 1号染色体短
臂的端部和随体上,几乎覆盖整个短臂,1对 5S rDNA信号,位
于 2号染色体的着丝粒处。通过 45S和 5S rDNA位点的定位,
有利于我们更好识别宽翅菘蓝染色体,对宽翅菘蓝的进化研究
提供有用的信息。
在对宽翅菘蓝进行原位杂交时,我们发现 rDNA杂交信号
大小和强弱在染色体不同位点上表现出差异。在对栎属的研究
中,同源位点间信号大小和强度也表现出一定的差异[11],汤佳
立等还发现在徐薯 18基因组中,还发现了一个 45S rDNA信
号无法稳定出现的现象[7]。造成位点拷贝数目改变的原因可能
是由于染色体重排,不等交换,由转座子引起的隐蔽 rDNA拷
贝数的扩增有关系。Mantovani[12]等认为 45S rDNA分布在染色
体端部的特点也可能是 45S rDNA数目改变的原因之一,因为
位于染色体端部位置的 DNA更容易发生交换。虽然,我们无法
通过原位杂交来直接给出基因的实际拷贝数,但是可以通过杂
交信号的大小以及强度间接估评基因拷贝数的多少,所以
FISH被认为是一种半定量分析技术[3]。
在对宽翅菘蓝的间期细胞核银染、CMA3染色以及原位杂
交时,我们发现在不同间期细胞核出现 1-2个信号,这可能与
细胞核处于不同的分裂时期有关,如在 G1期,是 DNA复制的
早期,染色体并没有开始复制,由于同源染色体的位置,可能会
出现 1-2个信号,细胞分裂的 S期和 G2期,染色体已近复制甚
至复制完成,此时由于染色单体的存在,就有可能会出现 2个
信号,同时也有可能是由于 rDNA合成量的变化造成的。
有关宽翅菘蓝染色体的研究还处于起步阶段,更多的工作
需要开展,通过传统的细胞遗传学研究方法与染色体荧光原位
杂交等研究方法相结合,可以更好的为我们区分和鉴别宽翅菘
蓝不同种及品种,为研究宽翅菘蓝种及品种间亲缘关系及新品
种选育等奠定基础。随着相关研究成果的不断积累,必将为规
范宽翅菘蓝染色体核型提供帮助,同时也为宽翅菘蓝的研究提
供细胞和分子遗传学基础,对其新品种的培育有重要的意义。
参考文献(References)
[1] 李国强,庄重,刘庆华,等.资源植物菘蓝属引种栽培及利用的现状
与前景[J].植物学通报, 1996,13(3):37-39
Li Guo-qiang, Zhuang Zhong, Liu Qing-hua, et al. Actuality and fore-
ground of resource plant Isatis L cultivate and utilize [J]. Bulletin of
Botany, 1996,13(3):37-39
[2] 中华人民共和国卫生部药典委员会.中华人民共和国药典 [S].广
州:广东科技出版社,1995(Ⅰ):171
P.R.C. Ministry of Public Health pharmacopoeia committee. Pharma-
copoeia of Peoples Republic of China [S]. Guangzhou: Guangdong
Science Press,1995(Ⅰ):171
[3] 李宗芸,栗茂腾,黄荣桂,伍晓明,宋运淳.基因组原位杂交辨别芸
薹属异源四倍体 AA、BB、CC基因组研究 [J].中国油料作物学报,
2002,24(1):10-14
Li Zong-yun, Shu Mao-teng, Huang Rong-gui, Wu Xiao-ming, Song
Yun-chun. Genomic in situ hybridization (GISH) discriminates the A,
B and C genomes in Brassica allotetraploid species [J]. Chinese Jour-
nal of Oil Crop Sciences, 2002,24(1):10-14
[4] Hellmer A. Replication banding studies in two cyprinid fishes. chro-
mosoma, 1991,100:524-531
[5] Nakamura R, Kitamura S, Inoue M, Ohmido N and Fukui K. Karyo-
type analysis of Nicotiana kawakamii Y. Ohashi using DAPI banding
and rDNA FISH[J]. Theor Appl Genet. 2001,102, 810~814
[6] Chaowen She, Jingyu Liu, Ying Diao, Zhongli Hu, Yunchun Song. The
distribution of repetitive DNAs along chromosomes in plants revealed
by self-genomic in situ hybridization . J Genet Genomics, 2007,34
(5):437-448
[7] Zong-Yun Li, Rui Qin, Wei-Wei Jin, Zhi-Yong Xiong, Yun-Chun
Song. FISH analysis of pachytene chromosome and DNA fiber of
telomere sequence in Rice (Oryza sativa L. indica ). Acta Genetica
Sinica, 2005,32(8):832-836
[8] Stebbins GL.Chromosomal evolution in higher plants [M]. London:
Edward Amold, 1971,85-104
[9] Li MX, Chen RY. A suggestion on the standardization of Karyotype
analysis in plants[J]. J Wuhan Bot Res, 1985,3:297-302
[10] 刘丽莎,张西玲.菘蓝的染色体核型分析 [J].甘肃中医学院学报,
1991,8(1)
Liu Li-sha, Zhang Xi-ling. Isatis L chromosome karyotype analysis[J].
Journal of Gansu College of Traditional Chinese Medicine, 1991,8(1)
[11] 肖成汉,赵建伟,何凤仙. 3种十字花科植物的核型研究[J].武汉植
物学研究,1995.13(3):283-286
487· ·
现代生物医学进展 www.shengwuyixue.com Progress inModern Biomedicine Vol.11 NO.3 FEB.2011
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[16] Kovacic N, Grcevic D, Katavic V, et. al. Fas receptor is required for
estrogen deficiency-induced bone loss in mice. [J]. Lab Invest, 2010,
90(3):402-13
[17] Krishnan V, Bryant HU, Macdougald OA. Regulation of bone mass
by Wnt signaling. [J]. Clin Invest, 2006, 116(5):1202-9
[18] Songtao S, Takayoshi Y, Kentaro A. Is aspirin treatment an appropri-
ate intervention to osteoporosis [J]. Fut Rheumatol, 2008, 3 (6):
499-502
[19] Bode-B觟ger SM, Martens LJ, T覿ger M, et al. Aspirin reduces en-
dothelial cell senescence [J]. Biochem Biophys Res Commun,
2005,334(4):1226-32
[20] Chae YM, Heo SH, Kim JY, et al. HUpregulation of smpd3 via
BMP2 stimulation and Runx2.M, Cho JY [J]. BMB Rep, 2009, 42(2):
86-90
[21] Fonseca JE. Rebalancing bone turnover in favour of formation with
strontium ranelate: implications for bone strength. [J]. Rheumatology
(Oxford), 2008,47,4: 17-19
Xiao Cheng-han, Zhao Jian-wei, He Feng-xian. Nuclear type research
of 3 kinds crucifer[J]. Journal of Wuhan Botanical Research, 1995.13
(3):283-286
[12] Saranya Srisuwan, Darasinh Sihachakr, Sonja Siljak-Yakovlev The
origin and evolution of sweet potato (Ipomoea batatas Lam.) and its
wild relatives through the cytogenetic approaches Plant [J]. Science
171,2006, 424-433
[13] 白文林,马力. Ag-NORs多态性及其在动物遗传育种研究中的应
用[J].西南民族学院学报·自然科学版, 2000,26(3)
Bai Wen-lin, Ma Li. Ag-NORs Polymorphism and Its Applications in
Studies of Animal Genetics and Breeding [J]. Journal of Southwest
University for Nationalities(Natrual Science Edition), 2000,26(3)
[14] 徐延浩,杨飞,程有林,马璐,王建波,李立家. 45S rDNA和 5S rDNA
在南瓜、丝瓜和冬瓜染色体上的比较定位 [J].遗传,2007,29(5):
614-620
Xu Yan-hao, Yang Fei, Cheng You-lin, Ma Lu, Wang Jian-bo, Li
Li-jia. Comparative analysis of rDNA distribution in metaphase chro-
mosomes of Cucurbitaceae species[J]. Hereditas, 2007,29(5): 614-620
[15] Liu Bo, Chen Cheng-Bin, Li Xiu-Lan, Qi Li-Wang, Han Su-Ying.
Karyotype analysis and physical mapping of 45S rDNA in eight
species of Sphora, Robinia and Amorpha[J]. Acta Botanica Yunnanica,
2005, 27(3):261-268
[16] 徐川梅,别同德,王春梅,周波,陈佩度. 45S rDNA在小麦及其近
缘物种染色体上的分布[J].遗传,2007,29(9):1126-1130
Xu Chuan-mei, Bie Tong-de, Wang Chun-mei, Zhou Bo, Chen
Pei-du. Distribution of 45S rDNA sequence on chromosomes of
Triticum aestivum and its relative species [J]. Hereditas,2007,29(9):
1126-1130
[17] Hutchinson J, Miller TE. The nucleolus organizers of tetraploid and
hexaploid wheats revealed by in situ hybridization [J]. Theor Appl
Genet, 1982, 61: 285-288
[18] Liu Z L, Zhang D, Hong D Y, Wang XR. Chromosomal localization
of 5S and 18S-5.8S-25S ribosomal DNA sites in five Asian Pines
using fluorescence in situ hybridization [J]. Theor A ppl Genet,
2003,106 (2):198-204
488· ·