全 文 ：入侵牛膝菊属植物的研究进展
汤东生 董玉梅 陶 波 傅 杨
(云南农业大学 云南昆明 650201)
基金项目:国家“973”项目(2011CB100400)
收稿日期:2012 － 01 － 04
Advances of research on invasive plant of Galinsoga spp． ． Tang Dongsheng，Dong Yumei，Tao Bo，Fu Yang
(Yunnan Agricultural University，Kunming 650201，China)
Abstract Galinsoga parviflora and G． ciliata are two serious invasive weeds in southwest China． The paper re-
viewed the origin，distribution，characteristics of biology，ecology，hazard，control，functions of the two Galin-
soga spp． It was pointed out the main present problems and study directions of Galinsoga spp． in future．
Key words G． parviflora;G． ciliata;origin;ecological characteristics
摘要 入侵牛膝菊属植物牛膝菊和粗毛牛膝菊为我国西南地区旱地危害严重的入侵杂草。本文对牛
膝菊和粗毛牛膝菊的起源分布、生物学与生态学特征、危害与防治和用途进行了综述。并指出牛膝菊属植
物研究中存在的问题和今后研究的主要方向。
关键词 牛膝菊;粗毛牛膝菊;起源;生态学特征
中图分类号 S451
牛膝菊属(Galinsoga spp．)为菊科一年生草本
植物，起源于美洲，其中只有 2 个种成为杂草，对农
业生态系统造成危害，一个是牛膝菊(G． parviflora
Gav．) ，另外一个是粗毛牛膝菊(G． quadriradiata
Ruiz ＆ Pavon 或 G． ciliata (Raf．)Blake)［1］。两者
的主要区别在于前者茎枝被疏散的贴伏短柔毛，而
后者被稠密的长柔毛。这 2 个种在中国均有分
布［2］。牛膝菊(G． parviflora)又名辣子草，向阳花
等，分布于云南、四川和贵州等西南地区，适生环境
较广。粗毛牛膝菊(G． ciliata) ，据中国植物志记
载，仅见于庐山，生于路旁［2］。2002 年，杨碄和董
晓东报道粗毛牛膝菊(G． ciliata)在云南也有分布，
主要分布于大理苍山，海拔 2000 ～ 2200m 的区
域［3］。2008 年，粗毛牛膝菊(G． ciliata)在辽宁首次
报道［4］，国内其他地区也有报道［5 － 8］。实际上，粗
毛牛膝菊(G． ciliata)在云南分布范围很广，传入云
南时间已经很久，具体年份不详。之前由于无人报
道，郭怡卿等将其命名为云南的新纪录种［9］。笔者
的观察同郭怡卿，粗毛牛膝菊(G． ciliata)在云南广
泛分布于玉米、大豆、烟草、蔬菜等多种旱地作物田
中，常与牛膝菊(G． parviflora)混合发生。
牛膝菊(G． parviflora)和粗毛牛膝菊(G． cilia-
ta)在云南全省乃至西南地区旱田发生量大，对夏
季旱地作物危害严重，目前国内尚未对这 2 种入侵
植物进行系统的研究。为此，综述国内外入侵杂草
牛膝菊属(Galinsoga spp．)植物的研究进展，将为
深入开展牛膝菊属(Galinsoga spp．)植物的入侵机
制、发生危害和防治规律提供一定的参考价值。
1 分布与起源
牛膝菊属(Galinsoga spp．)是一种双子叶菊科
植物，起源于美洲的热带地区，核心分布于中美洲
的山区［10］，从 20 世纪 20 年代报道其在欧洲开始出
现，后面又有在美国南部和印度东北部危害的报
道，我国具体传入时间不是很确切。牛膝菊(G．
parviflora)现已遍布全球大部分温带和亚热带地
区。广泛存在于撂荒地或农田之中，成为一种重要
的农业入侵杂草。
牛膝菊(G． parviflora)为 16 条染色体的同源二
倍体，粗毛牛膝菊(G． ciliata)为异源二倍体，染色
体 32 条。粗毛牛膝菊在形态特征，气孔和花粉粒
的大小上的差异表明粗毛牛膝菊(G． ciliata)并不
是起源于牛膝菊(G． parviflora)［11，12］。
2 生物学和生态学特性
牛膝菊(G． parviflora) ，一年生草本，高 10 ～ 80
cm。茎单一或于下部分枝，分枝斜伸，被贴伏状短
柔毛，嫩茎更密，并混有少量腺毛，于花期，茎中、下
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2012 年第 4 期 植物检疫 PLANT QUARANTINE Vol． 26 No． 4
部毛渐稀疏。叶对生，具柄，叶柄长 1 ～ 2 cm，于茎
顶柄渐短至近于无柄，被贴伏状短柔毛;叶片卵形、
卵状披针形至披针形，长 1． 5 ～ 5． 5 cm，宽 2 ～ 3． 5
cm，边缘具钝锯齿或疏锯齿，齿尖具胼胝体，叶片两
面被贴伏状短柔毛，于叶脉处较密。粗毛牛膝菊
(G． ciliata)基本特征同牛膝菊(G． parviflora) ，只
是茎枝及花序以下，被稠密的长柔毛;叶边缘有粗
锯齿或犬齿［2］。
2． 1 种子的多样性
牛膝菊(G． parviflora)和粗毛牛膝菊(G． cilia-
ta)种子相似程度很高，通常情况下肉眼较难区分。
在同样环境上生长的粗毛牛膝菊(G． ciliata)瘦果
比牛膝菊(G． parviflora)的种子要短和宽。观察发
现，牛膝菊(G． parviflora)和粗毛牛膝菊(G． ciliata)
幼苗子叶的纤毛丰富，但粗毛牛膝菊(G． ciliata)幼
苗子叶边缘纤毛要少一些［13］。
许多菊科种子均存在多型性，牛膝菊(G． parv-
iflora)和粗毛牛膝菊(G． ciliata)存在 2 种类型的种
子，一种是有冠毛的碟形瘦果(边花果) ，另一种是
无冠毛的线形瘦果(心花果)。心花果在土壤中保
持活力的时间一般比边花果要长［14］。粗毛牛膝菊
(G． ciliata)的边花果具有休眠的特性，而心花果却
保持 60%的发芽率。贮藏 1 个月后，种子休眠被打
破。休眠破除以后，边花果的发芽率更高［15］。进
一步研究发现，边花果和心花果的生长发育、生物
产量及产生后代能力上均有差异，心花果形成的植
株其生长发育速度和繁殖力要低于边花果形成的
植株［16］。
除了种子的多型性外，有研究表明粗毛牛膝菊
(G． ciliata)种子还存在生态型的分化。粗毛牛膝
菊(G． ciliata)在美国马萨诸塞州在较短的时间内
形成了 2 种生态小种，一种是夏季生长在庭院的户
外型，另外一个小种是周年生长在温室内的户内
型。形态学的观察发现，户外型植株比户内型的高
大且种子量大。户内型小种的苗在遮荫情况下比
户外型的苗要健壮一些。户内型种子在短日照下
形成的种子萌发率比长日照下形成的种子发芽要
低。户外型植物产生的种子在任何温度下均比户
内型种子发芽率要高，但最佳萌发温度均为 24℃。
24 /18℃的交替温度对 2 种种子的萌发的促进作用
最强。24 /10℃的交替温度强烈地抑制了户内型种
子的萌发，但对户外型种子的萌发抑制作用不大。
2 种生态型群体的萌发条件差异使其更适应各自
的生态环境。粗毛牛膝菊(G． ciliata)2 种生态型
的出现估计少于 100 年，大量的形态学和生理学差
异表明这个物种进化得非常快［17］。
2． 2 种子的生物学
粗毛牛膝菊(G． ciliata)种子萌发温度范围在
10 ～ 33℃，最适温度 24℃。光照处理有利于粗毛牛
膝菊(G． ciliata)种子的萌发［18］。粗毛牛膝菊(G．
ciliata)种子也具有初生休眠(primary dormancy)的
特性，休眠期从 10 ～ 100 d不等，取决于种子成熟的
时间。研究表明，昼夜温度为 30 /20℃时，1． 1 × 104
lux的光强每天照射 16h，种子的萌发率最高［19］。
2． 3 植株的生物学和生态学
牛膝菊属(Galinsoga spp．)植物种子的繁殖力
依赖于植株个体的大小，单个植株在低密度时产生
的种子量大;密度过大，植株结籽量逐渐降低直至
不结实［20］。在低光强下，粗毛牛膝菊(G． ciliata)
比牛膝菊(G． parviflora)具有更高的叶面积指数
(leaf area ratio)［21］。牛膝菊(G． parviflora)对低温
比对干旱的耐受能力要强［22］。粗毛牛膝菊(G． cil-
iata)具有不同的生态型，在形态和生理特性上都有
差异，一般生长在贫瘠生境中的生态型比富营养生
态型的竞争能力要强［17］。2 种植物的开花表现为
日中性。在种子萌发后的 6 ～ 8 周，牛膝菊(G． par-
viflora)在主茎 7 个节、粗毛牛膝菊(G． ciliata)在 6
个节时进入始花期［19］。
Rai和 TRipathi研究了播种方式、种群密度、土
壤湿度和质地对牛膝菊(G． parviflora)和粗毛牛膝
菊(G． ciliata)种子萌发的影响［23］。结果发现，在
撒播种时，随播种密度和土壤湿度的增加，2 种种
子的萌发率下降。穴播和提高土壤含砂量均增强
种子萌发。相对于穴播，撒播降低种子的死亡率。
植株的繁殖力与种植密度和湿度胁迫强度成反比，
但粗毛牛膝菊(G． ciliata)的耐受力更强一些。盆
栽试验表明，在低密度下，牛膝菊属(Galinsoga
spp．)种子产量和干物质量随群体密度的增加而增
加，但密度过高时种子产量受到抑制。在低湿度水
平下花朵数量、种子和干物质量均有增加，表明湿
度对 2 种杂草群体生产力具有重要调节作用。增
加土壤含砂量将显著增加牛膝菊(G． parviflora)的
种子产量，而粗毛牛膝菊(G． ciliata)增加不显著。
在自然情况下粗毛牛膝菊(G． ciliata)与牛膝菊
(G． parviflora)常共生在一起，环境条件对二者之
间竞争能力可能存在影响。研究表明，在高氮肥施
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用量的情况下，2 种杂草的死亡率与密度相关。粗
毛牛膝菊(G． ciliata)与牛膝菊(G． parviflora)混播
比其单播个体的死亡率要高;而牛膝菊(G． parvi-
flora)却刚好相反［20］。
3 危害
入侵牛膝菊属(Galinsoga spp．)植物通常危害
小麦、玉米、棉花、烟草等作物，庭园和非耕地也有
分布，特别是牛膝菊(G． parviflora)和粗毛牛膝菊
(G． ciliata)是印度东北部山区的作物田和次生演
替区域的常见杂草［10］。牛膝菊(G． parviflora)喜潮
湿、日照长，光照强度高的环境。这种植物最重要
的特征是，种子没有休眠或休眠程度低，生长迅速，
开花早，同一生长季节可发生多代，种子量大，适生
环境广泛。在适应的环境条件下，牛膝菊(G． parv-
iflora)营养生长迅速，使其成为农田中的一种恶性
杂草。这些特征使牛膝菊(G． parviflora)很易扩
散，并建立大的杂草种群，以至于很难防治。牛膝
菊(G． parviflora)会与作物，尤其是与灌溉的矮杆
作物竞争营养和生态位，甚至影响作物收成。牛膝
菊(G． parviflora)对大豆和花生也具有一定的化感
作用，影响种子的萌发和胚根的伸长［24］。并且牛
膝菊的化感作用地上部分比地下部分要强［25］，但
其化感能力却受低温环境的影响［26］。
4 防治
由于入侵牛膝菊属(Galinsoga spp．)植物越来
越成为一种作物田和蔬菜地的恶性杂草，寻找有效
的防治途径非常必要。目前，牛膝菊属(Galinsoga
spp．)杂草的防治主要有以下几种方法。
4． 1 农业和生态防治
研究表明前期种植覆盖作物如荞麦、黑芥菜、
黄芥菜和燕麦防治粗毛牛膝菊(G． ciliata) ，可使其
生物量和种子产量减少 90%以上［27］。用小麦秆、
碎木屑等覆盖能显著降低牛膝菊(G． parviflora)的
出苗率［28］。
4． 2 生物防治
胶孢炭疽菌(Colletotrichum gloeosporioides)可
作为致病因子使牛膝菊(G． parviflora)和粗毛牛膝
菊(G． ciliata)发病［29］。2005 年，在印度发现南方
根结线虫(Meloidogyne incognita)寄生牛膝菊(G．
parviflora)的现象［30］。在中美洲的马里兰和危地马
拉的牛膝菊属(Galinsoga spp．)植物上发现了 122
种昆虫和 1 种螨。这些害虫一部分是植食性昆虫，
一部分是传媒昆虫。其中危害最严重的是大叶蝉
科(Cicadellidae)和蚜科(Aphididae)昆虫，另外一
种钻茎的象鼻虫在危地马拉对牛膝菊(G． parviflo-
ra)植物破坏最重［31］。
4． 3 化学防治
在辣椒移栽后和开花前，1． 7 ～ 2． 2kg /hm2 草
甘膦的施用量可有效防治未出土的粗毛牛膝菊(G．
ciliata)［32］。用 2，4 － D处理牛膝菊(G． parviflora)
和粗毛牛膝菊(G． ciliata) ，发现粗毛牛膝菊(G．
ciliata)比牛膝菊(G． parviflora)更敏感。在苗期和
高光强下施药，植株的死亡率更高;在花期施药影
响结实率［21］。也有用乙草胺防治牛膝菊(G． parvi-
flora)的报道［33］。
5 用途
入侵牛膝菊属(Galinsoga spp．)植物可食用和医
用，在我国西南地区广泛用作饲料、野生蔬菜和草
药［2］。利用气相色谱(GC)和气质联用仪(GC/MS)
从牛膝菊(G． parviflora)上分离出 88种挥发物，主要
成份为(z)－3 － hexen －1 － ol(21． 7%) ，beta － caryo-
phyllene (12． 4%)和 6 － demethoxy － ageratochrome
(14%)。这些挥发物对革兰氏阳性菌金黄色酿脓葡
萄球菌(Straphylococcus aureus)和蜡样芽胞杆菌(Ba-
cillus cereus)具有强烈的抑菌作用［34］。
6 展望
近年来，随着人类对环境的破坏越来越重，在
我国西南地区，牛膝菊(G． parviflora)和粗毛牛膝
菊(G． ciliata)引起的危害有逐年加重的趋势，旱地
农田中原有杂草种类数量越来越少，而牛膝菊(G．
parviflora)和粗毛牛膝菊(G． ciliata)因占绝对优势
而成为农田中的主要杂草种。如上所述，尽管过去
各国学者对其做了一定程度的研究，这些研究成果
对于指导我国的牛膝菊属(Galinsoga spp．)杂草的
防治具有一定的借鉴意义，然而相对牛膝菊属(Ga-
linsoga spp．)杂草在农业生态系统中的危害程度来
讲，过去的研究成果还远不足以指导生产。因此，
笔者认为以下几个方面有必要进行深入研究。
6． 1 牛膝菊属植物的生态适应性
据笔者观察，牛膝菊属(Galinsoga spp．)杂草
在云南许多地区周年可生长繁殖，其分布于各种生
态区域。在许多情况下，牛膝菊(G． parviflora)和
粗毛膝菊(G． ciliata)常相伴而生，在云南中北部地
区，大多数情况是以粗毛膝菊(G． ciliata)为绝对的
优势种，而在南部地区，二者的比例相当，或牛膝菊
(G． parviflora)的比例更高一些。牛膝菊属(Galin-
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soga spp．)植物对环境条件的适应性问题，目前尚
未有研究，因此，需进一步明确牛膝菊属(Galinsoga
spp．)植物对各种环境条件的反应特征及 2 个种群
生长发育对环境刺激的差异问题。另外牛膝菊属
(Galinsoga spp．)杂草在大部分夏季旱地作物均能
危害，各种作物的栽培方法和管理方式均有差异，
杂草是如何适应这些生产措施，如何逃避作物的干
扰作用需深入研究。牛膝菊属(Galinsoga spp．)杂
草为何可以形成优势种群，农田中的原来杂草种群
密度为何逐渐减少，这对于解释牛膝菊属(Galin-
soga spp．)杂草的入侵机制具有重要的意义。
6． 2 有效防治方法的建立
寻找有效的抑制牛膝菊属(Galinsoga spp．)杂
草种子萌发的途径，幼苗生长和形成有效籽实的综
合防治策略与方法。
参考文献
［1］ Kabuce N，Priede N． NOBANIS – Invasive alien species fact
sheet– Galinsoga quadriradiata［EB /OL］． 2010［2012 － 01 －
01］． http:/ /www． nobanis． org / files / factsheets /galinsoga _
quadriradiata． pdf．
［2］ 中国科学院中国植物志编辑委员会． 中国植物志(第七十五
卷)．北京:科学出版社，1979．
［3］ 杨碄，董晓东．云南植物新记录． 大理学院学报，2002，1(4) :
51 － 57．
［4］ 齐淑艳，徐文铎． 外来入侵植物粗毛牛膝菊在辽宁地区的新
发现．辽宁林业科技，2008(4) :20 － 21．
［5］ 李康，郑宝江．外来入侵植物牛膝菊的入侵性研究．山西大同
大学学报:自然科学版，2010，26(2) :69 － 71．
［6］ 董红云，李亚，汪庆，等． 外来入侵植物牛膝菊和野茼蒿水浸
提液化感作物的生物测定． 植物资源与环境学报，2010，19
(2) :48 － 53．
［7］ 齐淑艳，郭晓华，赵明． CO2 与 O3 浓度升高对入侵植物牛膝
菊叶片形态特征的影响． 东北师大学报:自然科学版，2009
(2) :149 － 153．
［8］ 郭振清，赵永光，张风娟，等． 入侵植物牛膝菊对白菜、萝卜、
生菜、油菜种子和幼苗的化感作用．河北科技师范学院学报，
2008，22(3) :13 － 16．
［9］ 郭怡卿，赵国晶，陈勇，等．云南外来杂草及其危害现状．西南
农业学报，2010，23(4) :1352 － 1354．
［10］ Damalas C A． Distribution，biology，and agricultural importance
of Galinsoga parviflora (Asteraceae)． Weed biology and man-
agement，2008，3(8) :147 － 173．
［11］ Haskell G，Marks G E． Chromosome Ecology of British Galinsoga
Species． New Phytologist，1952，51(3) :382 － 387．
［12］ Gopinathan M C，Babu C R． Cytogenetics of Galinsoga parviflora
Cav． and G． ciliata (Raf．)Blake，and their natural hybrides
(Asteraceae)． New Phytologist，1982，91(3) :531 － 539．
［13］ Braden D A，Cialone J C． Characterization of tow Galinsoga R．
＆ P． species from New Jersey by achene length /width ratio and
the presence of marginal cotyledonary hairs． Bulletin of the Tor-
rey Botanial Club，1971，89(1) :50 － 52．
［14］ Espinosa － García F J，Vázquez － Bravo R，Martínez － Ramos M．
Survival，germinability and fungal colonization of dimorphic a-
chenes of the annual weed Galinsoga parviflora buried in the
soil． Weed Research，2003，43(4) :269 － 275．
［15］ Kucewicz M，Wardzynska A，Zrobek － Sokolnik A． The effect of
achene hetromorphism on germination in the shaggy soldier (Ga-
linsoga ciliata (Rafin)s． f． Blake． ACTA Agrobotanica，2011，
64(1) :35 － 44．
［16］ Kucewicz M，Gojlo E，Kowalska A． The effect of achene hetermor-
phism on progeny traits in the shaggy soldier (Galinsoga ciliata
(Rafin)s． f． Blake)． ACTA Agrobotanica，2010，63(2):51 －56．
［17］ Shontz N N，Shontz J P． Competition for nutrients between ecotypes
of Galinsoga ciliata． Journal of Ecology，1972，60(1):89 －92．
［18］ Jursik M，Soukup J，Venclova V，et al． Seed dormancy and ger-
mination of shaggy soldier (Galinsoga ciliata) and common
lambsquarter (Chenopodium album)． Plant，Soil and Environ-
ment，2003，49(11) :511 － 518．
［19］ Ivany J A，Sweet R D． Germination，growth，development and
control of Galinsoga． Weed Science，1973，21(1) :41 － 45．
［20］ Dostatny D． Effect of density on individual size and fertility in
two species of weeds:Galinsoga ciliata Blake and Galinsoga par-
viflora Cav． Polish Journal of Ecology，1999，47(3) :353 － 357．
［21］ Rai J P N，Tripathi R S． Population regulation of Galinsoga cili-
ata (Raf．)Blake and G． parviflora Cav．:Effect of 2，4 － D ap-
plication at different growth stages and light regimes． Weed Re-
search，1986，26(1) :59 － 68．
［22］ 范雪涛，马丹炜，向莎，等． 不同逆境条件下辣子草抗氧化酶
系统的变化．应用与环境生物学报，2008，14(5) :616 － 619．
［23］ Rai J P N，Tripathi R S． Population regulation of Galinsoga cili-
ata and G． parviflora． Effect of sowing pattern，population den-
sity and soil moisture and texture． Weed Science，1983，23(3) :
151 － 163．
［24］ Singh R，Hazarika U K． Allelopathic effects of Galinsoga parvi-
flora Car． and Bidens pilosa L． on germination and seedling
growth of soybean and groundnut． Allelopathy Journal，1996，3
(1) :89 － 92．
［25］ 范雪涛，马丹炜，于树华，等．辣子草对 3 种农作物的化感作
用．环境科学与技术，2007，30(10) :7 － 8．
［26］ 马丹炜，范雪涛，葛方兰，等．低温胁迫对辣子草水浸提液化感
作用的影响．热带亚热带植物学报，2008，16(6) :526 －530．
［27］ Kumar V，Brainard D C，Bellinder R R． Effects of spring －
sown cover crops on establishment and growth of hairy Galinsoga
(Galinsoga ciliata) and Four Vegetable Crops． HortScience，
2009，44(3) :730 － 736．
［28］ Jodaugiene D，R P，Urboniene M，et al． Effect of organic mulches
on Galinsoga spp． emergence． Vagos，2008，79:49 － 55．
［29］ Gasich E L． Possibility to use fungal pathogens against weeds
Galinsoga parviflora and G． ciliata． Mikologiya I Fitopatologiya，
—45—
2012 年第 4 期 植物检疫 PLANT QUARANTINE Vol． 26 No． 4
1997，31(6) :47 － 51．
［30］ Thakur N S A G． Gallant soldier，Galinsoga parviflora L．，a new
host of root － knot nematode (Meloidogyne incognita)from Me-
ghalaya． Indian Journal of Nematology，2005，35(2) :220．
［31］ Batra S W T． Insects Associated with Weeds of the Northeastern
United States:Quickweeds，Galinsoga ciliata and G． parviflora
(Compositae)． Environmental Entomology，1979，8(6):1078 －1082．
［32］ Majek B A，Johnston S A． Diethatyl for Hairy Galinsoga (Gali-
nsoga ciliata)control in peppers (Capsicum annuum)Integrat-
ed with cultural practices for Phytophthora Blight Control． Weed
Science，1986，34(4) :569 － 571．
［33］ 何永福，陆得清，叶照春，等． 50%乙草胺对旱地杂草辣子草
防除效果研究．植物保护，2007，33(4) :132 － 134．
［34］ Pino J A，Gaviria M，Quevedo － Vega J，et al． Essential oil of Ga-
linsoga parviflora leaves from Colombia． Natural Product Commu-
nication，2010，5(11) :1831 － 1832．
林木害虫监测技术的研究进展
殷玉生1 张 帆1 安榆林2 张 灿3 李艳华4
(1．江阴出入境检验检疫局 江苏江阴 214431;2．江苏出入境检验检疫局;3．军事医学科学院;4．无锡出入境检验检疫局)
基金项目:质检公益性行业科研专项(201110038)
收稿日期:2012 － 03 － 22，2012 － 05 － 24 修回
Research on monitoring technique of forest pest． Yin Yusheng1，Zhang Fan1，An Yulin2，Zhang Can3，Li Yan-
hua4(1． Jiangyin Entry － Exit Inspection and Quarantine Bureau，Jiangyin 214431，China;2． Jiangsu Entry － Exit
Inspection and Quarantine Bureau;3． Academy of Military Medical Sciences;4． Wuxi Entry-Exit Inspection and
Quarantine Bureau)
Abstract With international trade frequently，Increased risk of exotic forest pests were introduced into China． It
is particularly urgent to evaluate proliferation tendency and speed of exotic forest pest and establish an effective ex-
otic forest pest monitoring system． This article reviewed the research progress on the domestic and abroad monito-
ring technique of exotic domestic forest pests in recent years combined with the research achievements of our
group，and gave some advice on establishment of exotic forest pest monitoring system suited to China．
Key words exotic forest pest;attractant;monitoring technique
摘要 随着国际间贸易的频繁，外来林木害虫传入我国的风险加大，评估外来林木害虫扩散趋势和速
度，建立有效的外来林木害虫监测系统显得尤为迫切。本文结合本课题组有关林木害虫诱集已取得的成
果，综述了近年来国内外对外来林木害虫诱集监测技术的研究进展，并就建立适合我国的外来林木害虫监
测体系提出建议。
关键词 外来林木害虫;引诱剂;监测技术
中图分类号 S41;S763
我国林业资源丰富，但生物灾害对林业的可持
续发展已经造成了巨大影响和损失，随着当前林业
的快速发展和对外交流的频繁，生物灾害显示出进
一步加剧的现象。目前我国可引起森林灾害的生
物种类超过 8 000 种，其中，有害昆虫超过 5 000
种，尤其是外来有害生物的传入，更是对我国森林
经济造成了巨大损失。例如，20 世纪红脂大小蠹
(Dendroctonus valens)随木材贸易传入我国，1999 年
在山西暴发成灾，造成数万公顷的油松死亡［1］。目
前该虫已扩散到河南、河北、陕西、甘肃 4 省，对我
国生态系统安全构成严重威胁［2］。
随着我国经济的发展和对外贸易的日益扩大，
我国开始重视危险性有害生物的监测，监测措施是
为使农林生产、生态环境等免受有害生物侵入危害
而采取的预防性安全保障措施，也是林木检疫的重
要措施。林木害虫的诱集技术是监测体系的重要
组成部分，对林木害虫进行诱集，不仅可以有效降
低害虫种群密度，预测未来害虫发生趋势进而采取
有效的控制和防治措施，同时对生态系统和其他有
益物种所造成的影响较小，增强了森林生态系统内
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2012 年第 4 期 植物检疫 PLANT QUARANTINE Vol． 26 No． 4