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第３０卷第６期
２０１１年１１月
食 品 与 生 物 技 术 学 报
Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｆｏｏｄ Ｓｃｉｅｎｃｅ ａｎｄ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ
Ｖｏｌ．３０ Ｎｏ．６
Ｎｏｖ． ２０１１
文章编号：１６７３－１６８９（２０１１）０６－０８５２－０５
收稿日期：２０１０－１０－０８
基金项目：山东省自然科学基金项目（２００９ＧＧ１０００７０１４）。
作者简介：张桂玲（１９７５－），女，黑龙江哈尔滨人，讲师，主要从事植物遗传育种研究。
Ｅｍａｉｌ：ｇｕｉｌｉｎｇｚｈａｎｇ２００３＠１２６．ｃｏｍ
大孔树脂吸附分离藿香蓟花蓝色素的研究
张桂玲， 谢宝东
（临沂大学 生命科学学院，山东 临沂２７６００５）
摘 要：采用大孔树脂对藿香蓟花蓝色素的提取液进行了吸附和洗脱试验，并确定藿香蓟花蓝色
素的分离最佳工艺条件。结果表明，Ｄ３０１树脂对藿香蓟花蓝色素的静态吸附率达到９０ｍｇ／ｇ，吸
附蓝色素的平衡时间较短且重复使用２０次后吸附性能依然稳定；上柱优化条件为流速为３ｍＬ／
ｍｉｎ，质量浓度为０．２ｍｇ／ｍＬ，温度为２０℃；柱层析饱和吸附后用１ｍｏｌ／Ｌ盐酸洗脱，洗脱率达到
９６．０８％。
关键词：藿香蓟；蓝色素；吸附分离；大孔树脂
中图分类号：ＴＳ ２０２．３ 文献标识码：Ａ
Ｔｈｅ Ｓｔｕｄｙ ｏｎ Ａｄｓｏｒｐｔｉｏｎ ａｎｄ Ｓｅｐａｒａｔｉｏｎ ｏｆ Ａｇｅｒａｔｕｍ
Ｃｏｎｙｚｏｉｄｅｓ Ｂｌｕｅ Ｐｉｇｍｅｎｔ ｂｙ Ｍａｃｒｏｐｏｒｏｕｓ Ｒｅｓｉｎ
ＺＨＡＮＧ Ｇｕｉ－ｌｉｎｇ， ＸＩＥ Ｂａｏ－ｄｏｎｇ
（Ｃｏｌｅｇｅ ｏｆ Ｌｉｆｅ Ｓｃｉｅｎｃｅ，Ｌｉｎｙｉ Ｕｉｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｌｉｎｙｉ ２７６００５，Ｃｈｉｎａ）
Ａｂｓｔｒａｃｔ：Ａｂｓｏｒｐｔｉｏｎ ｏｎ ｍａｃｒｏｐｏｒｏｕｓ ｒｅｓｉｎ ｗａｓ ｓｔｕｄｉｅｄ ａｓ ａ ｍｅｔｈｏｄ ｔｏ ｓｅｐａｒａｔｅ Ａｇｅｒａｔｕｍ
ｃｏｎｙｚｏｉｄｅｓ Ｆｌｏｗｅｒｓ ｂｌｕｅ ｐｉｇｍｅｎｔ ｉｎ ｔｈｉｓ ｍａｎｕｓｃｒｉｐｔ．Ｔｈｅ ｏｐｔｉｍｕｍ ｃｏｎｄｉｔｉｏｎｓ ｆｏｒ ａｂｓｏｒｐｔｉｏｎ ａｎｄ
ｄｅｓｏｒｐｔｉｏｎ ｏｆ Ａｇｅｒａｔｕｍ ｃｏｎｙｚｏｉｄｅｓ Ｆｌｏｗｅｒｓ ｂｌｕｅ ｐｉｇｍｅｎｔ ｗａｓ ｄｅｔｅｒｍｉｎｅｄ ａｎｄ ｌｉｓｔｅｄ ａｓ ｆｏｌｏｗｓ：
Ｄ３０１ｗｉｔｈ ｔｈｅ ｕｐｐｅｒ ａｄｓｏｒｐｔｉｏｎ ｒａｔｅ ａｔ ９０．０ｍｇ／ｇ，ｔｈｅ ｓｔａｂｉｌｉｔｙ ａｎｄ ｔｈｅ ｌｉｔｔｌｅ ｂａｌａｎｃｅ ｔｉｍｅ ｗａｓ
ｓｕｉｔａｂｌｅ ｆｏｒ ａｂｓｏｒｂｉｎｇ ａｎｄ ｓｅｐａｒａｔｉｎｇ Ａｇｅｒａｔｕｍ ｃｏｎｙｚｏｉｄｅｓ Ｆｌｏｗｅｒｓ ｂｌｕｅ ｐｉｇｍｅｎｔ．Ｔｈｅ ｏｐｔｉｍｕｍ
ｃｏｎｄｉｔｉｏｎ ｗａｓ ａｔ ｔｈｅ ｆｌｏｗ ｒａｔｅ ｏｆ ２．０ｍＬ／ｍｉｎ，ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ ｏｆ ０．２ｍｇ／ｍＬ ａｎｄ ｔｈｅ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ
ｏｆ ２０℃．Ｄ３０１ｗａｓ ｗａｓｈｅｄ ｗｉｔｈ ＨＣｌ ｏｆ ２．０ｍｏｌ／Ｌ，ａｎｄ ｔｈｅ ｗａｓｈｏｕｔ ｒａｔｅ ａｃｈｉｅｖｅｄ ａｔ ９６．０８％．
Ｋｅｙ ｗｏｒｄｓ：Ａｇｅｒａｔｕｍ ｃｏｎｙｚｏｉｄｅｓ，ｂｌｕｅ ｐｉｇｍｅｎｔ，ａｄｓｏｒｐｔｉｏｎ ａｎｄ ｓｅｐａｒａｔｉｏｎ，ｒｅｓｉｎ
天然色素来源于自然界，具有安全性高、色泽
自然鲜艳的特点，而且有些天然色素对人体的多种
疾病的治疗、预防和保健等具有重要的意义。因
此，天然色素替代化学合成色素势在必然［１－２］。目
前，对色素的研究大多集中在红、黄、黑等色素色提
取，而对蓝色素的提取及其稳定性研究的报道较
少，并且蓝色素提取材料主要集中在栀子［３］、蓝藻、
念珠藻、紫甘蓝和链霉菌方面［４］，提取材料的选择
余地较小，限制了中国天然蓝色素的产量。如何开
发提取天然蓝色素的材料来源，以及提取工艺的简
化是当前蓝色素开发的一个重要课题。
藿香蓟（Ａｇｅｒａｔｕｍ ｃｏｎｙｚｏｉｄｅｓ）为菊科藿香蓟
属多年生草本植物，原产西非、南美洲热带，我国已
引种栽培多年，主要用作花坛材料或盆栽观赏。藿
香蓟株高约３０～６０ｃｍ，植株基部多分枝，叶对生卵
形，头状花序呈圆球状，花期７～１１月，花色主要以
蓝色和白色为主，另外，还有紫色和粉色，色素成分
相当丰富，尤其蓝色素是良好的稀有天然色素资
源。藿香蓟的药理功能表现为治疗腹泻、解热、止
血、镇痛、神经疾病、传染病、哮喘、麻风病［５］；另外，
藿香蓟可以治疗风湿、失眠症等［６］。
藿香蓟花蓝色素的主要成分是花青苷，含有铁
镁离子，易溶于乙醇和水等极性溶剂中。大孔树脂
能除去粗提液中大量的糖类、蛋白质等成分，能使
色素成分富集而提高色素品质，另外采用大孔树脂
分离纯化色素工艺简单、再生方便、成本低廉。目
前，关于藿香蓟花蓝色素的分离和纯化还没有相关
报导。为此，本文采用大孔树脂对藿香蓟花蓝色素
进行分离研究，优化分离工艺条件，旨在为藿香蓟
蓝色素合理开发利用及安全生产提供科学依据。
１ 材料与方法
１．１ 材料、仪器与试剂
１．１．１ 材料 藿香蓟采自山东临沂苗圃
１．１．２ 仪器 ＵＶ－９１００型紫外可见光谱仪：北京
瑞利产品；ＲＥ５２－ＡＡ旋转蒸发器：上海亚荣生化试
剂厂生产；ＬＧＪ０．５真空冷冻干燥机：北京四环科学
仪器厂生产；５６７８恒流泵：上海精科实业有限公司
生产；ＬＲＨ－１５０－Ｚ振荡培养箱：广东医疗器械厂产
品。
１．１．３ 试剂 蒸馏水、甲醇、乙醚、无水乙醇、丙
酮、乙酸乙酯、１ｍｏｌ／Ｌ ＨＣｌ、１ｍｏｌ／Ｌ ＮａＯＨ；大孔树
脂：Ｄ１０１、Ｄ１１３、Ｄ３０１：天 津 农 药 总 厂 产 品；
ＨＰＤ１００、ＨＰＤ４００、ＨＰＤ６００、ＨＺ８０３、ＨＺ８１６：沧州
宝恩化工厂产品；ＡＢ－８树脂、Ｘ－５树脂：南开大学化
工厂产品。新树脂按常规方法活化，试验中所用试
剂均为化学纯。
１．２ 试验方法
１．２．１ 树脂提取藿香蓟花蓝色素工艺
藿 香 蓟 花
酸水（ｐＨ２
→
）
蓝 色 素 提 取 液
树脂吸附 水淋洗涤１ｍｏｌ／Ｌ ＨＣｌ
→
解吸
解 吸 液
减压浓缩
→
减压干燥
藿香蓟花蓝色素干品
注：提取液为酸化乙醇（体积分数９５％乙醇∶１ｍｏｌ／
Ｌ盐酸＝９０∶１０（Ｖ∶Ｖ））。
１．２．２ 藿香蓟花蓝色素溶液的制备方法 准确称
取本工艺纯化的色素样品，溶解于０．１ｍｏｌ／Ｌ ＨＣｌ
并定容，得到蓝色素溶液。
１．２．３ 藿香蓟花蓝色素吸收光谱 按照“１．２．２”
方法配制０．２ｍｇ／ｍＬ蓝色素溶液５０ｍＬ，吸取一定
量该溶液用 ＵＶ－９１００型紫外可见光谱仪在４００～
６１０ｎｍ内扫描得到该蓝色素的吸收光谱［７－９］。
１．２．４ 静态吸附筛选树脂试验 选用了１０种不
同的树脂各５．０ｇ，分别加入２．０ｍｇ／ｍＬ蓝色素溶
液２５０ｍＬ，恒温振荡６ｈ，分别测定吸附前后样品
的Ａ５９０，用回归方程计算吸附后浓度，计算静态吸附
量［１０］。
吸附量（ｍｇ／ｇ）＝（初始质量浓度－吸附后质量
浓度）／树脂重量×色素液体积
１．２．５ 树脂不同静态吸附时间试验 称取１４份
５．０ｇ活化“１．２．４”筛选出来的树脂置于烧杯中，分
别加０．２ｍｇ／ｍＬ蓝色素溶液１００ｍＬ，恒温搅拌，
吸附时间依次为０、１０、２０、３０、４０、５０、６０、７０、８０、９０、
１００、１２０、１４０、１６０ｍｉｎ，到规定时间测定吸附后蓝色
素的Ａ５９０，计算吸附率。吸附率＝１００×（Ａ０－Ａｅ）／
Ａ０，其中，Ａ０为色素溶液的初始吸光度，Ａｅ为溶液
平衡后色素溶液的吸光度［１１］。
１．２．６ 蓝色素上柱条件的研究 称取５．０ｇ活化
的“１．２．４”筛选出来的树脂上柱（５０ｍｍ×３０ｍｍ）。
上柱条件：体积流量（ｍＬ／ｍｉｎ）分别为２、３、４、５、６，
温度分别２０、３０、４０、５０℃，蓝色素质量浓度分别为
０．１、０．２、０．３、０．４、０．５ｍｇ／ｍＬ；测定各种条件下１
０００ｍＬ流出液的Ａ５９０，计算总吸光度值（总Ａ５９０＝
Ａ５９０×体积数）。
１．２．７ 洗脱剂对蓝色素的静态洗脱试验 取称８
份４ｇ已吸附藿香蓟花蓝色素的树脂，分别加入５
倍体积的洗脱剂蒸馏水、甲醇、乙醚、无水乙醇、丙
酮、乙酸乙酯、１ｍｏｌ／Ｌ ＨＣｌ、１ｍｏｌ／Ｌ ＮａＯＨ；振荡
洗脱时间４ｈ，过滤，测定各种洗脱液Ａ５９０，计算色
素洗脱率。洗脱率（％）＝总 Ａ５９０后／总 Ａ５９０前×
１００，式中总Ａ５９０前－树脂已吸附的藿香蓟花蓝色
素量。
１．２．８ 树脂的重复使用性能试验 称取５．０ｇ活
化的“１．２．４”筛选出来的树脂上柱。取０．２ｍｇ／ｍＬ
蓝色素溶液１００ｍＬ测定Ａ５９０，然后取该色素溶液
５０ｍＬ进行流动吸附，控制体积流量为３ｍＬ／ｍｉｎ，
重复吸附次数设定为２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、
２０，测其流出液吸光度，计算吸附率。
２ 结果与分析
２．１ 藿香蓟花蓝色素吸收光谱
从图１中可以看出藿香蓟花蓝色素最大吸收
３５８ 第６期 张桂林等：大孔树脂吸附分离藿香蓟花蓝色素的研究
峰在５９０ｎｍ处，说明此色素的花色素苷是飞燕草色
素，它是形成蓝色花的主要色素。
图１ 藿香蓟花蓝色素光谱曲线
Ｆｉｇ．１ Ａｂｓｏｒｐｔｉｖｅ ｓｐｅｃｔｒｏｇｒａｍ ｏｆ ｓｏｌｕｔｉｏｎ ｏｆ ｂｌｕｅ ｐｉｇｍｅｎｔ
２．２ 不同树脂对蓝色素吸附量的影响
参照党蕊叶［９］标准曲线制作方法：吸取蓝色素
溶液１、３、５、８、１０、１２和１４ｍＬ，用０．１ｍｏｌ／Ｌ ＨＣｌ
稀释至５０ｍＬ，测量溶液的吸光度值。蓝色素浓度
在一定范围内与吸光度Ａ呈一元线性关系，用最小
二次相乘法计算回归方程，来计算浓度。通过ＳＡＳ
软件分析线性方程为ｙ＝２．７４７ｘ＋０．０６７（ｙ代表溶
液的吸光度值，ｘ代表溶液浓度），相关系数为ｒ＝
０．９９２ ０。从表１经Ｆ测验（Ｆ０．０１（９，２０）＝３７．６５＊＊）、
多重比较中可以看出不同树脂对蓝色素的吸附量
有很大的影响，其中 Ｄ３０１ 树脂的吸附量最高
（９０．００ｍｇ／ｇ），显著高于其他９种树脂；ＡＢ－８与Ｘ－
５差异不显著（分别为８３．３５ｍｇ／ｇ和８２．９５ｍｇ／
ｇ），仅次于Ｄ３０１；ＨＰＤ６００的吸附量最低为６３．８０
ｍｇ／ｇ。前期试验发现Ｄ３０１树脂的解吸率与ＡＢ－８
与Ｘ－５相当，因而色素获得率最高，且Ｄ３０１树脂价
格较低，因而Ｄ３０１树脂是最佳的吸附剂。
表１ 不同树脂对蓝色素吸附
Ｔａｂ．１ Ａｄｓｏｒｐｔｉｏｎ ｂｌｕｅ ｐｉｇｍｅｎｔ ｗｉｔｈ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｒｅｓｉｎｓ
树脂
名称
Ａ５９０
（吸附前）
Ａ５９０
（吸附后）
吸附前质量浓度／
（ｍｇ／ｍＬ）
吸附后质量浓度／
（ｍｇ／ｍＬ）
树脂质量／
ｇ
色素溶液
体积／ｍＬ
吸附量／
（ｍｇ／ｇ）
Ｄ１０１ ５．５６１ １．３５９ ２ ０．４７０ ５ ２５０ ７６．５０ｃ
Ｄ１１３ ５．５６１ ２．０３４ ２ ０．７１６ ５ ２５０ ６４．２０ｆ
Ｄ３０１ ５．５６１ ０．６６７ ２ ０．２１８ ５ ２５０ ９０．００ａ
ＨＰＤ１００ ５．５６１ １．７５６ ２ ０．６１５ ５ ２５０ ６９．２５ｄｅ
ＨＰＤ４００ ５．５６１ １．６３７ ２ ０．５７２ ５ ２５０ ７１．４０ｄ
ＨＰＤ６００ ５．５６１ ２．０５７ ２ ０．７２４ ５ ２５０ ６３．８０ｆ
ＨＺ８０３ ５．５６１ ２．００８ ２ ０．７０７ ５ ２５０ ６４．６５ｅｆ
ＨＺ８１６ ５．５６１ ２．００６ ２ ０．７０６ ５ ２５０ ６４．７０ｅｆ
ＡＢ－８ ５．５６１ ０．９８１ ２ ０．３３３ ５ ２５０ ８３．３５ｂ
Ｘ－５ ５．５６１ １．００３ ２ ０．３４１ ５ ２５０ ８２．９５ｂ
２．３ 不同静态吸附时间对Ｄ３０１树脂吸附率的影
响
由图２可知，Ｄ３０１树脂静态吸附蓝色素的平衡
时间较短，约１２０ｍｉｎ即可达到平衡，平衡后吸附率
基本保持不变，因此可选用Ｄ３０１树脂分离栀子藿
香蓟花蓝色素。
２．４ 蓝色素上柱（Ｄ３０１树脂）条件的研究
表３表明，色素溶液浓度、溶液上柱流速、上柱
温度以及它们之间的互作均对Ｄ３０１树脂吸附性能
有影 响，经 Ｆ 测 验 均 达 到 极 显 著 水 平 （流 速
Ｆ０．０１（４，２００）＝２４ ２５８．８０＊＊；浓 度 Ｆ０．０１（４，２００）＝１２
５５８．２０＊＊；温度Ｆ０．０１（３，２００）＝１０ ８２２．２０＊＊；流速、浓
度、温度三者互作Ｆ０．０１（４８，２００）＝５５．８８＊＊）。三者中，
流速影响最大，其次是浓度，温度影响相对较小。
多重比较（见表４）结果表明树脂的吸附量随流
速增加而降低，如果流速过大，大量蓝色素还没来
图２ Ｄ３０１对藿香蓟花蓝色素的静态吸附时间与吸附
率的关系
Ｆｉｇ．２ Ｒｅｌａｔｉｏｎｓ ｂｅｔｗｅｅｎ ａｄｓｏｒｐｔｉｏｎ ｔｉｍｅ ｏｆ Ｄ３０１ｒｅｓｉｎ
ａｎｄ ａｄｓｏｒｐｔｉｏｎ ｒａｔｅ
得及被树脂吸附就提前漏掉，但流速过小，吸附时
间延长使得树脂再生困难，树脂寿命降低［１２－１３］，因
此流速应控制在适宜的范围内，我们选择体积流量
为３ｍＬ／ｍｉｎ。色素浓度是影响树脂吸附性能的重
４５８ 食 品 与 生 物 技 术 学 报 第３０卷
要因素之一，色素浓度过高则泄漏点提早，树脂吸
附总量减少，降低了吸附效果，如果色素浓度偏低，
则工作效率降低，树脂吸附杂质量增大，加大了色
素与杂质分离的难度［１４－１６］，色素质量浓度为０．２
ｍｇ／ｍＬ时，树脂对色素的吸附量最大。温度对树
脂吸附性能影响相对较小，３０℃效果最好，但由于
色素在高温下容易被氧化而褪色，所以本工艺选用
在常温下进行吸附。综合各种因素最佳组合为：体
积流量为３ｍＬ／ｍｉｎ，质量浓度为０．２ｍｇ／ｍＬ，温度
为２０℃。
表３ 色素溶液质量浓度、体积流量与上柱温度对Ｄ３０１树
脂吸附性能的影响
Ｔａｂ．３ Ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ ａｄｓｏｒｐｔｉｖｅ ｃａｐａｂｉｌｉｔｙ ｏｆ Ｄ３０１ｒｅｓｉｎ ｗｉｔｈ ｄｉｆ－
ｆｅｒｅｎｔ ｖｅｌｏｃｉｔｙ ｏｆ ｆｌｏｗ，ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ ａｎｄ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ
体积流量／
（ｍＬ／ｍｉｎ）
色素溶液质量浓度／（ｍｇ／ｍＬ）
０．１ ０．２ ０．３ ０．４ ０．５
２ 温度／（℃） ２０ ６３２ ７８１ ８２０ ５２８ ４１０
３０ ８７５ ９９８ ８３９ ５８２ ４３６
４０ ６２０ ７７１ ８２１ ５０８ ３９０
５０ ５２１ ６４５ ５３２ ４６７ ３００
３ 温度／（℃） ２０ ７５４ ８２８ ７１９ ６６０ ５０６
３０ ７７６ ８９５ ７３８ ６８４ ５３８
４０ ６５５ ７２８ ６１９ ５６２ ４０４
５０ ５５５ ６３１ ５２０ ４６０ ３０５
４ 温度／（℃） ２０ ５２５ ６１８ ５０７ ４６２ ３０６
３０ ６７０ ７４０ ６３１ ５８２ ４２７
４０ ５６５ ６３８ ５２９ ４８４ ３２６
５０ ４６０ ５３６ ４２９ ３８０ ２２６
５ 温度／（℃） ２０ ６１５ ６２６ ５７６ ５０４ ３８６
３０ ６３５ ７０８ ６３２ ５５２ ４０２
４０ ５８０ ５３０ ４７９ ４０２ ２８０
５０ ４５０ ４２８ ３７９ ３０２ １８６
６ 温度／（℃） ２０ ４０４ ３７６ ２７７ ２０５ ８９
３０ ４８０ ４２８ ３７９ ３０２ １８３
４０ １９６ ２７８ １７９ ９９ ６
５０ １００ １８０ ８１ ４ ２
表４ 色素溶液浓度、流速与上柱温度多重比较表
Ｔａｂ．４ Ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎ ｗｉｔｈ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｖｅｌｏｃｉｔｙ ｏｆ ｆｌｏｗ，ｃｏｎｃｅｎ－
ｔｒａｔｉｏｎ ａｎｄ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ
体积流量／
（ｍＬ／ｍｉｎ）
均值
质量浓度／
（ｍｇ／ｍＬ）
均值
温度／
℃
均值
３ ６２７ａＡ ０．２ ６１８ａＡ ３０ ６０３ａＡ
２ ６２４ｂＡ ０．１ ５５３ｂＢ ２０ ５２５ｂＢ
４ ５０２ｃＢ ０．３ ５３３ｃＣ ４０ ４６６ｃＣ
５ ４８２ｄＣ ０．４ ４３７ｄＤ ５０ ３６３ｄＤ
６ ２１２ｅＤ ０．５ ３０５ｅＥ
２．５ 洗脱剂对Ｄ３０１树脂饱和吸附后静态洗脱的
影响
洗脱剂对Ｄ３０１树脂吸附的藿香蓟花蓝色素洗
脱率影响很大（见图３）。其中１ｍｏｌ／Ｌ ＨＣｌ洗脱率
高达９６．０８％，极显著高于其他７种洗脱剂的洗脱
率，其次是１ｍｏｌ／Ｌ ＮａＯＨ，洗脱率３４．６５％，其他６
种洗脱剂洗脱效果很差，结果说明１ｍｏｌ／Ｌ ＨＣｌ对
Ｄ３０１树脂蓝色素洗脱效果最好。
图３ 不同洗脱剂对蓝色素洗脱率的影响
Ｆｉｇ．３ Ｅｌｕｔｉｏｎ ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ Ａｇｅｒａｔｕｍ ｃｏｎｙｚｏｉｄｅｓ ｂｌｕｅ ｐｉｇ－
ｍｅｎｔ ｗｉｔｈ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｅｌｕｅｎｔｓ
２．６ Ｄ３０１树脂的重复使用性能研究
Ｄ３０１树脂重复循环使用２０次后，流出液的吸
光度变化较小（见表５）。说明Ｄ３０１树脂重复使用
性能好，使用２０次后吸附率仅降低１．１３％，说明
Ｄ３０１树脂对藿香蓟花蓝色素的吸附较好。综上所
述，利用树脂法提取藿香蓟花蓝色素，用Ｄ３０１树脂
吸附色素吸附率高，解吸容易。
表５ Ｄ３０１树脂使用次数与吸附率的关系
Ｔａｂ．５ Ｒｅｌａｔｉｏｎｓ ｂｅｔｗｅｅｎ ｔｉｍｅｓ ｏｆ ｕｓｉｎｇ Ｄ３０１ｒｅｓｉｎ ａｎｄ ａｄ－
ｓｏｒｐｔｉｏｎ ｒａｔｅ
吸附次数 Ａ５９０（吸附前） Ａ５９０（吸附后） 吸附率／％
２ ０．６１６ ０．１５３ ７５．１６
４ ０．６１６ ０．０２８ ９５．４５
６ ０．６１６ ０．０２９ ９５．２９
８ ０．６１６ ０．０２７ ９５．６２
１０ ０．６１６ ０．０２５ ９５．９４
１２ ０．６１６ ０．０２６ ９５．７８
１４ ０．６１６ ０．０２８ ９５．４５
１６ ０．６１６ ０．０２２ ９６．４３
１８ ０．６１６ ０．０２１ ９６．５９
２０ ０．６１６ ０．１６０ ７４．０３
３ 结 语
Ｄ３０１交换树脂吸附量高，吸附蓝色素的平衡时
５５８ 第６期 张桂林等：大孔树脂吸附分离藿香蓟花蓝色素的研究
间较短，重复使用２０次后吸附性能依然稳定；藿香
蓟花蓝色素溶液流速、浓度及温度对Ｄ３０１交换树
脂吸附性能有影响，体积流量为３ｍＬ／ｍｉｎ、质量浓
度为０．２ｍｇ／ｍＬ、温度为２０℃进行吸附，效果最
佳；在进行洗脱试验时１ｍｏｌ／ＬＨＣｌ盐酸溶液作为
洗脱剂，洗脱率达到９６．０８％。Ｄ３０１大孔树脂是弱
碱性阴离子树脂，用这种树脂分离酸性生物活性物
质，理论上其洗脱在碱性条件下效果更好，但本试
验结果与之不同，本试验１ｍｏｌ／Ｌ ＨＣｌ洗脱率高于
１ｍｏｌ／Ｌ ＮａＯＨ的，这个结果与李佳春等（２００５）研
究的结果一致。
参考文献（Ｒｅｆｅｒｅｎｃｅｓ）：
［１］杨秀娟，赵晓燕，马越，等．花青素研究进展［Ｊ］．中国食品添加剂，２００５（４）：４０－４２．
ＹＡＮＧ Ｘｉｕ－ｊｕａｎ，ＺＨＡＯ Ｘｉａｏ－ｙａｎ，ＭＡ Ｙｕｅ，ｅｔ ａｌ．Ｔｈｅ ａｄｖａｎｃｅｍｅｎｔ ｏｆ ａｎｔｈｏｃｙａｎｉｎｓ［Ｊ］．Ｃｈｉｎａ Ｆｏｏｄ Ａｄｄｉｔｉｖｅｓ，２００５（４）：
４０－４２．（ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ）
［２］徐清 ，戴思兰．蓝色花卉分子育种［Ｊ］．分子植物育种，２００４，１（２）：９３－９９．
ＸＵ Ｑｉｎｇ－ｙｕ，ＤＡＩ Ｓｉ－ｌａｎ．Ｂｌｕｅ Ｆｌｏｗｅｒｓ’Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｒｅｅｄｉｎｇ［Ｊ］．Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｐｌａｎｔ Ｂｒｅｅｄｉｎｇ，２００４，１（２）：９３－９９．（ｉｎ Ｃｈｉ－
ｎｅｓｅ）
［３］李佳春，梁华正，吴志梅，李媛．大孔树脂分离纯化栀子蓝色素的研究［Ｊ］．食品科技，２００５，（７）：５０－５３．
ＬＩ Ｊｉａ－ｃｈｕｎ，ＬＩＡＮＧ Ｈｕａ－ｚｈｅｎｇ，ＷＵ Ｚｈｉ－ｍｅｉ，ＬＩ Ｙｕａｎ．Ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｏｎ ｏｎ ｉｓｏｌａｔｉｏｎ ａｎｄ ｐｕｒｉｆｙｉｎｇ ｏｆ ｇａｒｄｅｎｉａ ｂｌｕｅ ｐｉｇｍｅｎｔ
ｗｉｔｈ Ｄ３０１ｉｏｎ ｅｘｃｈａｎｇｅ ｒｅｓｉｎ［Ｊ］．Ｆｏｏｄ Ｓｃｉｅｎｃｅ ａｎｄ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，２００５，（７）：５０－５３．（ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ）
［４］冯亚非，温燕梅，李先文．藻蓝－富有营养保健功能的天然色素［Ｊ］．食品科技，２００７（６）：１７１－１７３．
ＦＥＮＧ Ｙａ－ｆｅｉ，ＷＥＮ Ｙａｎ－ｍｅｉ，ＬＩ Ｘｉａｎ－ｗｅｎ．Ｓｐｉｒｕｌｉｎａ ｂｌｕｅ－ｎａｔｕｒａｌ ｐｉｇｍｅｎｔ ｗｉｔｈ ｎｕｔｒｉｔｉｏｎ ａｎｄ ｈｅａｌｔｈ ｆｕｎｃｔｉｏｎ［Ｊ］．Ｆｏｏｄ
Ｓｃｉｅｎｃｅ ａｎｄ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，２００７（６）：１７１－１７３．（ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ）
［５］钟渊隽．菊科植物藿香蓟成分和生物效应研究［Ｄ］．杭州：浙江大学，２００６．
［６］Ｇｕｔｔｅｎｓｏｎ Ｎ．Ａｎｔｈｏｃｙａｎｉｎ ｂｉｏｓｙｎｔｈｅｔｉｃ ｇｅｎｅｓ ａｎｄ ｔｈｅｉｒ ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎ ｔｏ ｆｌｏｗｅｒ ｃｏｌｏｒ ｍｏｄｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｔｈｒｏｕｇｈ ｓｅｎｓｅ ｓｕｐｐｒｅｓｓｉｏｎ
［Ｊ］．Ｈｏｒｔ Ｓｃｉ，１９９５，３０：９６４－９６６．
［７］姜平平，吕晓玲，朱惠丽．花色苷类物质分离鉴定方法［Ｊ］．中国食品添加剂，２００３（４）：１０８－１１１．
ＪＩＡＮＧ Ｐｉｎｇ－ｐｉｎｇ，ＬＶ Ｘｉａｏ－ｌｉｎｇ，ＺＨＵ Ｈｕｉ－ｌｉ．Ｒｅｖｉｅｗ ｏｆ ｉｓｏｌａｔｉｏｎ ａｎｄ ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｍｅｔｈｏｄｓ ｏｆ ａｎｔｈｏｃｙａｎｉｎｓ［Ｊ］．Ｃｈｉｎａ
Ｆｏｏｄ Ａｄｄｉｔｉｖｅｓ，２００３（４）：１０８－１１１．（ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ）
［８］张廉奉，赵丽风．紫色甘蓝天然色素的提取及其性质研究［Ｊ］．南阳师范学院学报，２００５，４（３）：５１－５３．
ＺＨＡＮＧ Ｌｉａｎ－ｆｅｎｇ，ＺＨＡＯ Ｌｉ－ｆｅｎｇ．Ｓｔｕｄｙ ｏｎ ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ ｏｆ ａ ｋｉｎｄ ｏｆ ｎａｔｕｒａｌ ｐｉｇｍｅｎｔ ｐｕｒｐｌｅ ｗｉｌｄ ｃａｂｂａｇｅ［Ｊ］．Ｊｏｕｒｏａｌ ｏｆ
Ｎａｎｙａｎｇ Ｔｅａｃｈｅｒｓ’Ｃｏｌｅｇｅ，２００５，４（３）：５１－５３．（ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ）
［９］党蕊叶，权清转．大孔吸附树脂纯化矮牵牛花红色素［Ｊ］．西北农业学报，２００５，１４（３）：１４５－１４７．
ＤＡＮＧ Ｒｕｉ－ｙｅ，ＱＵＡＮ Ｑｉｎｇ－ｚｈｕａｎ．Ａｄｓｏｒｂｉｎｇ ａｎｄ ｓｅｐａｒａｔｉｎｇ ｐｅｔｕｎｉａ ｒｅｄ ｐｉｇｍｅｎｔ ｂｙ ｒｅｓｉｎ［Ｊ］．Ａｃｔａ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｅ Ｂｏｒｅａｌｉ－
ｏｃｃｉｄｅｎｔａｉｌｓ Ｓｉｎｉｃａ，２００５，１４（３）：１４５－１４７．（ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ）
［１０］赵彦杰．蓝靛果紫红色素的提取及其理化性质研究［Ｊ］．食品科学，２００６，１０（２７）：２７６－２７８．
ＺＨＡＯ Ｙａｎ－ｊｉｅ．Ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ ａｎｄ Ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓｔｉｃ ｏｆ Ｐｕｒｐｌｉｓｈ Ｒｅｄ Ｐｉｇｍｅｎｔ ｆｒｏｍ Ｌｏｎｉｃｅｒａ ｃａｅｒｕｌｅａ［Ｊ］．Ｆｏｏｄ Ｓｃｉｅｎｃｅ，２００６，１０
（２７）：２７６－２７８．（ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ）
［１１］姚增玉，赵忠，史清华，等．山杏种皮黑色素提取工艺研究［Ｊ］．西北农林科技大学学报，２００７，３５（５）：１２０－１２６．
ＹＡＯ Ｚｅｎｇ－ｙｕ，ＺＨＡＯ Ｚｈｏｎｇ，ＳＨＩ Ｑｉｎｇ－ｈｕａ，ｅｔ ａｌ．Ｉｓｏｌａｔｉｏｎ ｏｆ ｍｅｌａｎｉｎ ｆｒｏｍ ｔｅｓｔａｅ ｏｆ Ｐｒｕｎｕｓ ａｍｅｎｉａｅａ Ｌｉｎｎ［Ｊ］．Ｊｏｕｒｎａｌ
ｏｆ Ｎｏｒｔｈｗｅｓｔ Ａ ＆Ｆ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ（Ｎａｔ．Ｓｃｉ．Ｅｄ．），２００７，３５（５）：１２０－１２６．（ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ）
［１２］唐克华，于华忠，熊玉双．二乔木兰花红色素的微波辅助提取工艺与特性［Ｊ］．食品科学，２００６，２７（１０）：３９１－３９４．
ＴＡＮＧ Ｋｅ－ｈｕａ，ＹＵ Ｈｕａ－ｚｈｏｎｇ，ＸＩＯＮＧ Ｙｕ－ｓｈｕａｎｇ．Ｓｔｕｄｙ ｏｎ ｔｈｅ ｍｉｃｒｏｗａｖｅ－ａｓｓｉｓｔｅｄ ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ ｏｆ ｒｅｄ ｐｉｇｍｅｎｔｓ ｆｒｏｍ
ｍａｇｎｏｌｉａ ｓｏｕｌａｎｇｅａｎａ ｆｌｏｗｅｒ ａｎｄ ｉｔｓ ｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓ［Ｊ］．Ｆｏｏｄ Ｓｃｉｅｎｃｅ，２００６，２７（１０）：３９１－３９４．（ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ）
［１３］ＪＥＥ－ＥＵＮ ＰＡＲＫ．ｅｔ ａｌ．Ｉｓｏｌａｔｉｏｎ ａｎｄ ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ ｏｆ ｗａｔｅｒ－ｓｏｌｕｂｌｅ ｉｎｔｅｒｍｅｄｉａｔｅｓ ｏｆ ｂｌｕｅ ｐｉｇｍｅｎｔｓ ｔｒａｎｓｆｏｒｍｅｄ ｆｒｏｍ
ｇｅｎｉｐｏｓｉｄｅ ｏｆ ｇａｒｄｅｎｉａ ｊａｓｍｉｎｏｉｄｅｓ［Ｊ］．Ｊ Ａｇｒｉｃ Ｆｏｏｄ Ｃｈｅｍ，２００２，５０：６５１１－６５１４．
［１４］王光全，孟庆杰，郭尚敬，等．紫叶稠李叶中总黄铜含量的研究［Ｊ］．食品科学，２００６，２７（１０）：３３５－３３７．
ＷＡＮＧ Ｇｕａｎｇ－ｑｕａｎ，ＭＥＮＧ Ｑｉｎｇ－ｊｉｅ，ＧＵＯ Ｓｈａｎｇ－ｊｉｎｇ，ｅｔ ａｌ．Ｓｔｕｄｙ ｏｎ ｔｈｅ ｔｏｔａｌ ｆｌａｖｏｎｏｉｄｓ ｃｏｎｔｅｎｔ ｉｎ ｌｅａｖｅｓ ｏｆ ｐｒｕｎｕｓ
ｖｉｒｇｉａｎａ［Ｊ］．Ｆｏｏｄ Ｓｃｉｅｎｃｅ，２００６，２７（１０）：３３５－３３７．（ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ）
［１５］郭立佳，陶文沂，徐锋，等．ＨＺ８１８树脂在紫杉醇初分离工艺中的应用［Ｊ］．食品与生物技术学报，２００６，２５（５）：４０－４３．
ＧＵＯ Ｌｉ－ｊｉａ，ＴＡＯ Ｗｅｎ－ｙｉ，ＸＵ Ｆｅｎｇ，ｅｔ ａｌ．Ｔｈｅａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ ＨＺ８１８ｍａｃｒｏｒｅｔｉｃｕｌａｒ ｒｅｓｉｎ ｉｎ ｐｒｅｔｒｅａｔｍｅｎｔ ｏｆ ｔａｘｏｌ ｐｒｅｐａｒａ－
ｔｉｏｎ［Ｊ］．Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｆｏｏｄ Ｓｃｉｅｎｃｅ ａｎｄ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，２００６，２５（５）：４０－４３．（ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ）
６５８ 食 品 与 生 物 技 术 学 报 第３０卷