全 文 ：收稿日期:2016-03-01 接受日期:2016-05-05
基金项目:国家科技计划(2011FU125X07) ;黑龙江省教育厅项目
(12541600) ;
* 通讯作者 E-mail:zlp77@ 163． com
天然产物研究与开发 Nat Prod Ｒes Dev 2016，28:1289-1295
文章编号:1001-6880(2016)8-1289-07
AB-8 树脂对蓝靛果花色苷的吸附性能研究
李良玉1，2，宋大巍3，刁静静1，贾鹏禹1，张丽萍1，3*
1黑龙江八一农垦大学国家杂粮工程技术研究中心，大庆 163319;
2东北林业大学林学院，哈尔滨 150040;3 黑龙江八一农垦大学食品学院，大庆 163319
摘 要:以 AB-8 树脂分离蓝靛果花色苷的吸附性能为研究内容，具体研究了 AB-8 树脂的吸附等温线、吸附热
力学性质和动态吸附参数。结果表明，在静态吸附实验条件下，AB-8 树脂对蓝靛果花色苷的吸附是放热过程，
吸附能力较强，吸附参数能用 Freundlich方程较好拟合，相关系数大于 0． 98;动态吸附研究表明，AB-8 树脂纯化
蓝靛果花色苷的最佳上样浓度为 280 ± 5 mg /mL、洗脱流速 2． 5 mL /min，通过对乙醇梯度洗脱浓度进行液质分
析，确定了各洗脱液中的花色苷种类，为模拟移动床色谱纯化蓝靛果花色苷奠定了理论基础。
关键词:AB-8 树脂;蓝靛果;花色苷;吸附热力学;吸附等温线
中图分类号:S713 文献标识码:A DOI:10． 16333 / j． 1001-6880． 2016． 8． 021
Adsorption Characteristics of AB-8 Ｒesin for
Anthocyanins from Lonicera edulis Turcz
LI Liang-yu1，2，SONG Da-wei3，DIAO Jing-jing1，JIA Peng-yu1，ZHANG Li-ping1，3*
1 Heilongjiang Bayi Agricultural University，National Coarse Cereals Engineering Ｒesearch Center，Daqing 163319，China;
2College of Forestry，Northeast Forestry University，Harbin 150040，China;
3 The Food Science of Heilongjiang Bayi Agricultural Universitiy，Daqing 163319，China
Abstract:In this study，the adsorption properties of AB-8 resin for anthocyanins from Lonicera edulis Turcz were investi-
gated． The adsorption isotherm，thermodynamic properties and dynamic parameters of AB-8 resin were analyzed． The re-
sults indicated that under experimental conditions of static adsorption，the adsorption of AB-8 resin for anthocyanins from
L． edulis was an exothermic process，and the adsorption capacity was strong，the adsorption parameters fit Freundlich e-
quation well with correlation coefficient greater than 0． 98． The results of dynamic adsorption showed that the optimal
feed concentration was 280 ± 20 mg /mL，elution speed was 2． 5 mL /min． The eluting liquid of anthocyanin varieties were
analyzed and identified using LC-MS． The results of this study provided a theoretical foundation for the purification an-
thocyanins from L． edulis using simulated moving bed chromatography．
Key words:AB-8 resin;Lonicera edulis Turcz;anthocyanins;adsorption thermodynamics;adsorption isotherm
蓝靛果又称山茄子、羊奶子等，为忍冬科、忍冬
属落叶灌木，主要分布在长白山、大小兴安岭以及内
蒙古、华北、西北和四川等山区［1］，具有抗肿瘤、抗
氧化、抗疲劳、调节免疫、保护视力、降血脂、抗炎以
及促进肝损伤修复等多种生物活性［2］，经研究发现
其主要功能物质为花色苷类物质。花色苷是花青素
与糖以糖苷键结合形成的一类化合物，具有抗氧化、
清除自由基、降血脂、抗变异及抗肿瘤等多种生理活
性［3］。目前，我国对蓝靛果花色苷纯化工艺研究较
多，多采用制备色谱的纯化方法，制备色谱纯化的花
色苷纯度低、收率低、溶剂消耗大，间歇式生产不能
实现产业化生产。模拟移动床色谱是一种先进的分
离手段，可以实现自动化、连续化的生产，其纯化的
花色苷纯度高、收率高、溶剂消耗小，适宜进行产业
化生产。目前，模拟移动床色谱在我国已经应用 20
年左右，但大多用于糖醇生产上，在天然产物活性成
分的提纯方面很少涉及，在蓝靛果花色苷的纯化方
面未见报道。为实现模拟移动床色谱纯化蓝靛果花
色苷的产业化生产，首先要了解蓝靛果花色苷纯化
的分离基础理论。在此背景下，本文研究 AB-8 树
脂对蓝靛果花色苷的吸附等温线、吸附热力学性质
和动态吸附等吸附性能参数，分析不同洗脱溶剂对
花色苷成分的影响，为模拟移动床色谱纯化蓝靛果
花色苷奠定了理论基础。
1 材料与设备
AB-8 树脂由天津南开大学树脂有限公司提供;
蓝靛果市购;制备色谱系统(10 × 1200 mm 带夹层)
国家杂粮工程技术研究中心制造;AＲ2140 分析天
平(精确至 0． 0001 g) ，奥豪斯中国;Pharo300 紫外
可见光分光光度计，默克密理博;恒温摇床 HZQ-
QX，哈尔滨东联电子技术开发有限公司;液质联用
仪 HPLC 1100 SEＲIES，美国 Agilent。
2 实验方法
2． 1 AB-8 树脂的预处理
先用 95%乙醇浸泡 AB-8 树脂 24 h，后用去离
子水溶液冲洗，洗至无醇味备用。
2． 2 AB-8 树脂对蓝靛果花色苷的静态吸附动力学
研究
准确称取处理好的 AB-8 树脂(滤纸吸干表面
水分)10． 000 g，加入提取的已知浓度蓝靛果花色苷
溶液 100． 00 mL，前 1 h 每 20 min 测定 1 次，1 h 后
每 1 h一次测定吸附液中花色苷含量，直至吸附平
衡。
2． 3 AB-8 树脂分离蓝靛果花色苷的静态吸附等温
线
称取处理好的 AB-8 树脂各 10． 000 g 共 12 份
分别置于具塞三角瓶中(平均分为 3 组) ，向每组瓶
中依次加入 40、60、80、10 g /L四种不同浓度蓝靛果
花色苷溶液 100． 00 mL，盖塞后分别将 3 组样品置
于恒温摇床中在 25、30、35 ℃条件下振荡吸附 4 h，
过滤后测定滤液中花色苷的含量，计算吸附量并绘
制静态吸附等温线;并用经验吸附方程 Freundlich
模型对实验数据进行拟和分析。
lnQe = 1 /n lnCe + lnKf
式中 Qe、Ce 分别为平衡吸附量(mg /g resin)与
平衡浓度(mg /mL) ，Kf 为平衡吸附常数，n 为特征
常数。
2． 4 AB-8 树脂分离蓝靛果花色苷的吸附热力学性
质研究
分别根据 Clausius-Clapeyron 方程、Garcia-Del-
gado公式、Gibbs-Helmholz方程计算△H、△G 和△S
并对结果进行分析［4］。
2． 4． 1 AB-8 树脂吸附焓变△H的计算
焓是状态函数，通过计算△H 的大小可以推知
吸附是吸热过程还是放热过程。△H 可根据 Clau-
sius-Clapeyron(克劳修斯-克拉贝龙)方程进行计算:
lnCe =△H/ＲT + K
Ce 是吸附量为 Qe 时的平衡浓度，T 为热力学
温度(K) ，Ｒ 为理想气体常数(8． 314 J /mol·K) ，
△H为等量吸附焓(kJ /mol) ，K为常数。
2． 4． 2 AB-8 树脂吸附自由能△G的计算
△G的计算可按 Garcia-Delgado 等［5］提出的方
程并结合适用于本吸附体系的弗伦德利希(Freun-
dlich)吸附等温方程式所导出的相关参数进行:
△G = -nＲT
式中:n 为 Freundlich 方程指数，T 为热力学温
度(K) ，Ｒ为理想气体常数(8． 314 J /mol·K)。
2． 4． 3 AB-8 树脂吸附熵变△S的计算
△S按 Gibbs-Helmholtz(吉布斯-亥姆霍兹)方
程计算。
△S =(△H-△G)/T
2． 5 分离条件对蓝靛果花色苷纯度的影响
2． 5． 1 上样浓度对 AB-8 树脂纯化蓝靛果花色苷
效果的影响
用去离子水将装有 AB-8 树脂的制备色谱柱冲
洗干净，饱和进料，流速 2． 0 mL /min，柱温 25 ℃，以
80% 乙醇为解吸剂，上样浓度分别在 117． 34、
146. 28、195． 93、277． 42、373． 73 mg /mL 五个水平进
行试验。合并洗脱液浓缩冷冻干燥，称重并计算经
纯化后花色苷的纯度和收率，研究上样浓度对 AB-8
树脂纯化蓝靛果花色苷效果的影响。
2． 5． 2 洗脱速度对 AB-8 树脂纯化蓝靛果花色苷
效果的影响
用去离子水将装有 AB-8 树脂的制备色谱柱冲
洗干净，饱和进料，上样浓度为 195． 93 mg /mL，柱温
25 ℃，以 80%乙醇为解吸剂，洗脱流速分别为 1． 0、
1． 5、2、2． 5、3． 0 mL /min 五个水平进行试验。合并
洗脱液浓缩冷冻干燥，称重并计算经纯化后花色苷
的纯度和收率，研究洗脱流速对 AB-8 树脂纯化蓝
靛果花色苷效果的影响。
2． 5． 3 不同浓度乙醇洗脱液中蓝靛果花色苷的组
成成分分析
用去离子水将装有 AB-8 树脂的制备色谱柱冲
洗干净，流速 2． 0 mL /min，柱温 25 ℃，饱和吸附后
用去离子水进行冲洗，去除杂质，冲洗流速 2． 0 mL /
0921 天然产物研究与开发 Vol. 28
min，冲洗 2 ～ 3 倍柱体积。然后依次用 40%、60%、
80%、100%乙醇进行梯度洗脱，洗脱流速 2． 0 mL /
min，分别洗脱 2 ～ 3 倍柱体积收集洗脱液进行液质
检测，分析蓝靛果花色苷的组成。
2． 6 检测方法
2． 6． 1 蓝靛果花色苷的测定方法
取两份花色苷溶液，按照 1∶ 15 的比例，分别用
pH 1． 0 的氯化钾缓冲液或 pH 4． 5 的乙酸钠缓冲液
稀释;以蒸馏水为空白，分别测定两组稀释液在 515
nm和 700 nm波长处的吸光度。以矢车菊素-3-葡萄糖
苷(C3G)为标准，花色苷的含量按下式计算［6］。
花色苷含量(mg /mL)= ΔA × Mw × DF ×
103 /ε × 1
式中:ΔA-吸光度的差值，ΔA = (A510nm-
A700nm)pH1． 0-(A510nm-A700nm)pH 4． 5;Mw-
C3G 的分子量 449． 2 g /mol;DF-稀释倍数;ε =
26900 矢车菊素-3-葡萄糖苷的摩尔消光系数;比色
皿光程(1 cm)。
2． 6． 2 液质测定方法
液相色谱条件:色谱柱 Kromasil-C18(250 × 4
mm，5 μm) ;流动相 A:2． 0%甲酸溶液，流动相 B:
含 2%甲酸的 54%(v /v)乙腈溶液;洗脱程序:0 ～ 1
min:10% B，1 ～ 17 min:10% ～ 25% B;流速:1． 0
mL /min，进样量 30 μL，柱温度 30 ℃，检测波长 525
nm。
质谱条件:电喷雾电离源，正离子模式监测，电
喷雾压力 35 psi，干燥气流量为 10 L /min，干燥气温
度 325 ℃，m/z 设置范围 100 ～ 1000［7］。
3 结果与分析
3． 1 AB-8 树脂对花色苷类物质的静态吸附动力学
特性
AB-8 树脂对花色苷类物质的静态吸附动力学
100
90
80
70
60
50
40
30
20
10
00 20% 40% 60 120%180%240%300
时间
Time(min)
图 1 AB-8 树脂吸附蓝靛果花色苷的静态吸附规律
Fig. 1 Static adsorption characteristic of AB-8 for anthocya-
nins from L． edulis
特性，见图 1。
活性物质在树脂上的吸附行为一般可分为 4 个
连续的步骤:溶液中进行外扩散、树脂表面的液膜中
进行液膜扩散、树脂内部孔径中进行颗粒扩散以及
在树脂上进行吸附和解吸。由图 1 可见，树脂在最
初 1 h内的吸附量增长均很快，在吸附进行的前 1 h
内，蓝靛果花色苷在树脂上的吸附量增长较快，前 1
h可视为快速吸附阶段，但其吸附速率明显低于吸
附进行的最初阶段且逐渐减慢，当吸附时间介于 1
～ 3 h 之间时，吸附量变化很小;超过 3 h 后吸附量
基本不再随时间变化，吸附解析体系达到平衡。
3． 2 静态吸附等温线分析
AB-8 树脂分离蓝靛果花色苷的静态吸附等温
线见图 2。
25
20
15
10
5
10% 15% 20% 25% 30% 35% 40
Ce
(mg/L)
Qc
(m
g/
g)
25%℃ 30%℃ 35%℃
图 2 AB-8 树脂对蓝靛果花色苷的吸附等温线
Fig. 2 Adsorption isotherm of AB-8 resin for anthocyanins
from L． edulis
由图 2 可以看出，在相同的平衡浓度下，随着温
度的升高吸附量下降，表明 AB-8 树脂对蓝靛果花
色苷的吸附是一个放热过程。
2.5% 2.7% 2.9% 3.1% 3.3% 3.5% 3.7
lnce
In
Qe
25%℃ 30%℃ 35%℃3.02.8
2.6
2.4
2.2
2.0
图 3 lnQe与 lnCe的线性关系图
Fig. 3 Linear relationship between lnQe and lnCe
由表 1 看到，回归方程相关系数均大于 0． 98，
表明可以应用 Freundlich 方程对相关数据进行拟
和，结果是可靠的。AB-8 树脂对蓝靛果花色苷吸附
中的 Kf 较小，说明其吸附能力较弱，但是可以看出
Kf具有随着温度的升高而下降的趋势，说明升温更
不利于树脂对蓝靛果花色苷的吸附，在不同温度下，
n均大于 1 表明在所研究范围内 AB-8 树脂对蓝靛
果花色苷的吸附能力较强。
1921Vol. 28 李良玉等:AB-8 树脂对蓝靛果花色苷的吸附性能研究
表 1 Freundlich 拟合方程及参数
Table 1 Fitted Freundlich equations and parameters
T /K Fitted equation lnKf n Ｒ2
298 lnQe = 0． 9287 lnCe + 0． 0643 0． 0643 1． 077 0． 9809
303 lnQe = 0． 8459 lnCe + 0． 1984 0． 1984 1． 182 0． 9979
308 lnQe = 0． 9729 lnCe-0． 3258 -0． 3258 1． 028 0． 9993
3． 3 AB-8 树脂对蓝靛果花色苷的吸附热力学性质
分析
根据图 3 中不同温度下的吸附等温线做不同吸
附量时的吸附等量线(lnCe-1 /T 关系图) ，结果见图
4，并根据 1． 2． 3． 1 所述公式计算焓变△H、1． 2． 3． 2
所述公式计算自由能△G、1． 2． 3． 3 所述公式计算熵
变△S，结果见表 2 所示。
3． 3． 1 焓变△H
由表 2 数据可以看出，△H ＞0，表明 AB-8 树脂
对蓝靛果花色苷的吸附过程为吸热反应，从热力学
3.24%3.26%3.28%3.30%3.32%3.34%3.36
1000/T(1/k)
In
ce
3.2
3.0
2.8
2.6
2.4
195.93 146.28 117.34
图 4 lnCe与 1 /T的线性关系图
Fig. 4 Linear relationship between lnCe and 1 /T
表 2 AB-8 树脂对蓝靛果花色苷的吸附热力学参数
Table 2 The thermodynamics parameters of AB-8 resin for anthocyanins from L． edulis
C0(g /L) △H (kJ /mol)
△G (kJ /mol) △S (J /mol·K)
298K 303K 308K 298K 303K 308K
195． 93 -19． 25 -2． 67 -2． 98 -2． 63 -55． 63 -53． 7 -53． 96
146． 28 -11． 12 -2． 67 -2． 98 -2． 63 -28． 36 -26． 86 -27． 56
117． 34 -5． 05 -2． 67 -2． 98 -2． 63 -7． 98 -6． 83 -7． 88
角度反映了提高温度有利于花色苷的吸附，同时吸
附焓随着吸附量的增加逐渐降低，这可能与已吸附
分子偶极矩的存在以及 AB-8 树脂吸附中心的能量
不同有关。从本质上讲，树脂的吸附是一个放热过
程，但由于 AB-8 树脂要吸附花色苷就必须先解吸
很多结构远比自己小的分子，因此导致吸附过程所
放出的热量小于解吸过程所需要的热，从而使整个
过程表现为吸热［8］。从数值上来看，随着浓度的增
加△H逐渐变小，说明低浓度有利于树脂的吸附，而
且吸附焓(1 ～ 3 kJ /mol)远小于氢键的键能范围(10
～ 40 kJ /mol)之内，因此可以判断 AB-8 树脂对蓝靛
果花色苷的吸附不是通过氢键作用进行的，可能是
通过范德华力进行的。
3． 3． 2 自由能△G
由表 2 结果可知各个温度下的吸附自由能变都
为负值，说明吸附过程是自发进行的不可逆过程，而
且随着温度的升高，△G的绝对值越大、吸附过程的
自发趋势也越大。从数值上来看，随着温度的升高
△G的绝对值越大，这与 AB-8 树脂吸附花色苷为吸
热的结论吻合。
3． 3． 3 熵变△S
由表 2 结果可知△S ＜ 0，说明吸附过程固相 /液
相界面上分子运动更为混乱，可能原因是吸附花色
苷的同时又有大量紧密有序排列的水分子被解吸下
来，从而造成体系整体混乱导致熵增［9］。从表中数据
可以看出，浓度对△S的影响显著大于温度对△S的影
响，这体现了树脂吸附位点分布可能具有不均匀性。
3． 4 分离条件蓝靛果花色苷纯度的影响
3． 4． 1 上样浓度对 AB-8 树脂纯化蓝靛果花色苷
效果的影响
上样浓度对 AB-8 树脂纯化蓝靛果花色苷效果
的影响试验结果，见图 5。
由图 5 可看出，上样浓度对 AB-8 树脂纯化蓝靛
果花色苷的效果影响显著，在浓度较低时(117． 34
～ 277． 42 mg /mL)蓝靛果花色苷的纯度与收率相差
不大，当浓度大于 277． 42 mg /mL 后蓝靛果花色苷
的纯度与收率急剧下降。这可能是由于浓度过高蓝
靛果花色苷分子与树脂接触不充分，导致吸附能力
2921 天然产物研究与开发 Vol. 28
23
22
21
20
75
70
65
117.34%146.28%195.93%277.42%373.73
浓度
Feed%concentration(mg/mL)
纯
度
Pu
rif
ic
at
io
n(
%
)
收
率
Yi
el
d(
%
)
收率 Yield
纯度 Purification
图 5 上样浓度对蓝靛果花色苷纯度的影响
Fig. 5 Effect of feed concentration on purification of antho-
cyanins from L． edulis
下降，最终影响 AB-8 树脂纯化蓝靛果花色苷的效
果。综合考虑纯化效率与纯化效果，确定最佳的上
样浓度为 280 ± 5 mg /mL。
3． 4． 2 洗脱速度对 AB-8 树脂纯化蓝靛果花色苷
效果的影响
洗脱流速对 AB-8 树脂纯化蓝靛果花色苷效果
的影响试验结果，见图 6。
由图 6 可看出，洗脱流速对 AB-8 树脂纯化蓝靛
果花色苷的效果影响显著，在洗脱流速较低时(1． 0
～ 2． 5 mL /min)蓝靛果花色苷的纯度与收率相差不
大，当洗脱流速大于 2． 5 mL /min后蓝靛果花色苷的
纯度与收率急剧下降。这可能是由于洗脱流速过快
蓝靛果花色苷分子与树脂接触不充分，未完全吸附
导致吸附效果下降，最终影响 AB-8 树脂纯化蓝靛
24
23
22
21
75
70
65
1.0% 1.5% 2.0% 2.5% 3.0% 3.5
流速
Elution%speed(mL/min)
纯
度
Pu
rif
ic
at
io
n(
%
)
收
率
Yi
el
d(
%
)
纯度 Purification
收率 Yield
图 6 洗脱流速对蓝靛果花色苷纯度的影响
Fig. 6 Effect of elution speed on purification of anthocyanins
from L． edulis
果花色苷的效果。综合考虑纯化效率与纯化效果，
确定最佳的洗脱流速为 2． 5 mL /min。
3． 4． 3 洗脱液浓度对蓝靛果花色苷纯度及组成的
影响
洗脱液浓度对蓝靛果花色苷纯度及组成的影响
结果，见表 3 ～ 6。
由表 3 ～ 6 可以看出，蓝靛果花色苷中花色苷的
主要成分大约有 8 种，其分子量分别为 433． 11、
449． 11、463． 12、595． 17、609． 18、611． 16、625． 16、
773． 2［10-12］。结合文献［7，10-12］确定 8 种花色苷分别
为天竺葵素-3-葡萄糖苷 C21 H20 O10、矢车菊素-3-葡
萄糖苷 C21H20O10、芍药素-3-葡萄糖苷 C22H22O11、矢
车菊素-3-芸香苷 C27H30O15、芍药素-3-芸香糖苷 C28
H33O15、矢车菊素-3，5-二葡萄糖苷 C21H21O11、矢车
表 3 40%乙醇洗脱液的液质检测分析结果
Table 3 Ｒesults of HPLC analysis for 40% ethanol eluent
序号
No．
分子式
Molecular formula
［M + H］+ m/z
检测值
Detection value
理论值
Theoretical value
偏差
Error (ppm)
1 C33H40O21 773． 2138 773． 2140 -0． 26
2 C21H21O11 611． 1611 611． 1615 -0． 65
表 4 60%乙醇洗脱液的液质检测分析结果
Table 4 Ｒesults of HPLC analysis for 60% ethanol eluent
序号
No．
分子式
Molecular formula
［M + H］+ m/z
检测值
Detection value
理论值
Theoretical value
偏差
Error (ppm)
1 C21H21O11 611． 1611 611． 1615 -0． 65
2 C21H20O10 449． 1078 449． 1084 -1． 34
3 C27H30O15 595． 1669 595． 1663 + 1． 01
4 C21H20O10 433． 1141 433． 1135 + 1． 39
5 C31H28O14 625． 1553 625． 1557 -0． 64
6 C28H33O15 609． 1826 609． 1822 + 0． 66
3921Vol. 28 李良玉等:AB-8 树脂对蓝靛果花色苷的吸附性能研究
表 5 80%乙醇洗脱液的液质检测分析结果
Table 5 Ｒesults of HPLC analysis for 80% ethanol eluent
序号
No．
分子式
Molecular formula
［M + H］+ m /z
检测值
Detection value
理论值
Theoretical value
偏差
Error (ppm)
1 C21H21O11 611． 1611 611． 1615 -0． 65
2 C22H22O11 463． 1235 463． 1242 -1． 51
3 C21H20O10 449． 1078 449． 1084 -1． 34
表 6 100%乙醇洗脱液的液质检测分析结果
Table 6 Ｒesults of HPLC analysis for 100% ethanol eluent
序号
No．
分子式
Molecular formula
［M + H］+ m /z
检测值
Detection value
理论值
Theoretical value
偏差
Error (ppm)
1 C21H21O11 611． 1611 611． 1615 -0． 65
2 C22H22O11 463． 1235 463． 1242 -1． 51
菊素-3(阿魏酰)-葡萄糖苷 C31 H28 O14、矢车菊素-3-
槐糖-5-葡萄糖苷 C33H41O21。同时可以看出，40%乙
醇浓度洗脱时矢车菊素-3-槐糖-5-葡萄糖苷被洗脱
出来;当乙醇浓度达到 60%后，天竺葵素-3-葡萄糖
苷、矢车菊素-3-葡萄糖苷、矢车菊素-3-芸香苷、芍药
素-3-芸香糖苷、矢车菊素-3(阿魏酰)-葡萄糖苷被洗
脱出来;当乙醇浓度达到 80%后，芍药素-3-葡萄糖
苷才能够被洗脱出来;这可能于各种花色苷的极性
有关，极性强的物质可被强极性的 40% ～ 60%乙醇
洗脱下来，弱极性的物质可被极性相对较弱的 80%
乙醇洗脱下来。在 40%、60%、80%、100%三种洗
脱液中均含有矢车菊素-3，5-二葡萄糖苷，这可能是
由于矢车菊素-3，5-二葡萄糖苷结合的情况比较复
杂，极性范围较广，洗脱不集中。而蓝靛果花色苷的
主要成分矢车菊素-3-葡萄糖苷主要集中在 60% ～
80%乙醇洗脱之间，为模拟移动床色谱纯化蓝靛果
花色苷奠定了理论基础。
4 讨论与结论
通过对 AB-8 树脂的吸附等温线、吸附热力学
性质和动态吸附参数的研究，结果表明:静态吸附研
究表明，AB-8 树脂对蓝靛果花色苷的吸附是吸热过
程，吸附过程中△H ＞ 0，△G ＜ 0，△S ＞ 0，吸附能力
较弱，吸附参数能用 Freundlich 方程较好拟合，相关
系数均大于 0． 95;动态吸附研究表明，AB-8 树脂纯
化蓝靛果花色苷的最佳上样浓度为 277． 42 mg /mL、
洗脱流速 2． 5 mL /min，经过液质分析 40%乙醇洗脱
的主要物质为矢车菊素-3，5-二葡萄糖苷、矢车菊素-
3-槐糖-5-葡萄糖苷;60%乙醇洗脱的主要物质为天
竺葵素-3-葡萄糖苷、矢车菊素-3-葡萄糖苷、矢车菊
素-3-芸香苷、芍药素-3-芸香糖苷、矢车菊素-3，5-二
葡萄糖苷、矢车菊素-3(阿魏酰)-葡萄糖苷;80%乙
醇洗脱的主要物质为矢车菊素-3-葡萄糖苷、矢车菊
素-3，5-二葡萄糖苷、芍药素-3-葡萄糖苷;100%乙醇
洗脱的主要物质为矢车菊素-3，5-二葡萄糖苷、芍药
素-3-葡萄糖苷，通过研究发现蓝靛果花色苷的主要
成分矢车菊素-3-葡萄糖苷主要集中在 60% ～ 80%
乙醇洗脱之间，为模拟移动床色谱纯化蓝靛果花色
苷奠定了理论基础。
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