免费文献传递   相关文献

珍珠梅黄酮纳米粒诱导人肝癌HepG-2细胞凋亡的实验研究



全 文 :收稿日期:2014-07-16; 修订日期:2014-10-13
基金项目:国家自然科学基金(No. 81260655)
作者简介:刘延祥(1970-),男(汉族),吉林延吉人,延边大学附属医院副
主任技师,硕士学位,主要从事肿瘤分子生物学工程研究工作.
* 通讯作者简介:张学武(1973-),男(汉族),吉林大安人,延边大学医学
院教授,博士研究生导师,主要从事肿瘤分子生物学研究工作.
珍珠梅黄酮纳米粒诱导
人肝癌 HepG - 2 细胞凋亡的实验研究
刘延祥1,肖 斌2,张学武2*
(1.延边大学附属医院,吉林 延吉 133000; 2.延边大学医学院,吉林 延吉 133000)
摘要:目的 探讨珍珠梅黄酮纳米粒对人肝癌 HepG - 2 细胞凋亡的影响。方法 采用 MTT 法观察不同时间(24,48,72
h)、不同浓度(50,100,200 μmol /L)的珍珠梅黄酮纳米粒对人肝癌细胞(HepG - 2,Hep3B,PLC /PRF /5)及人正常肝细胞
(Chang Liver)的增殖抑制作用;利用光学、荧光和透射电子显微镜观察 HepG - 2 细胞凋亡,并应用流式细胞术检测细胞
凋亡情况。结果 MTT法检测细胞增殖抑制结果显示:不同浓度的珍珠梅黄酮纳米粒对人肝癌细胞(HepG - 2,Hep3B,
PLC /PRF /5)及人正常肝细胞(Chang Liver)均有不同程度的抑制作用,对人肝癌 HepG - 2 细胞抑制最明显;形态学检测
结果显示:珠梅黄酮纳米粒干预 HepG - 2 细胞 48 h后,细胞出现明显的凋亡;流式细胞术检测阴性对照组、5 - Fu阳性对
照组及不同浓度珍珠梅黄酮纳米粒干预组(50 ,100 μmol /L)凋亡率分别为为 4. 9%,89. 6%,50. 0%,86. 2%。结论 珠梅
黄酮纳米粒可以抑制人肝癌 HepG - 2 生长并诱导其凋亡。
关键词:珍珠梅; 黄酮; 纳米粒; 细胞凋亡
DOI标识:doi:10. 3969 / j. issn. 1008-0805. 2015. 03. 012
中图分类号:R962 文献标识码:A 文章编号:1008-0805(2015)03-0547-03
长白山珍珠梅 Sorbaria sorbifolia属蔷薇科植物,有活血化瘀、
消肿止痛等药理作用[1],被《抗癌中药大辞典》收录为长白山抗
癌药。经研究发现[2 ~ 4],珍珠梅抗癌的主要成分为 5,2',4'- 三
羟基 - 6,7,5'- 三甲氧基黄酮,其对小鼠 S180 肉瘤有明显抑制
作用,并可抑制肿瘤细胞血管生成。为了更好的促进其在体内的
吸收性能,有学者[5]以生物体内可降解材料硬脂酸为载体,采用
乳化 -低温固化法制备生物体易降解吸收的珍珠梅黄酮可生物
降解纳米粒(5,2 ',4 ' - trihydroxy - 6,7,5 ' - trimethoxyflavone
nanoparticles,以下简称 TTF1 - NP)。本研究观察 TTF1 - NP对人
肝癌 HepG - 2 细胞凋亡的影响,为进一步研究珍珠梅的药理作
用提供实验依据。
1 材料与仪器
1. 1 细胞株 人肝癌 HepG - 2,Hep3B,PLC /PRF /5 细胞购于南
京凯基生物技术公司;人正常肝细胞 Chang Liver 来自本室冻存。
1. 2 药品 TTF1 - NP由延边大学药学院关丽萍教授惠赠。
1. 3 试剂 DMEM培养基购自美国 gibco公司;MTT粉购自美国
sigma公司;PBS 粉购自 Biotopped 公司(130326);小牛血清购自
美国 gibco 公司;0. 25 % Trypsin - EDTA 购自美国 gibco 公司
(25200 - 072);青链霉素购自美国 gibco公司(15140 - 122);DM-
SO购自美国 AMRESCO(1442C0050);5 -氟尿嘧啶购自于西安
海欣制药有限公司。
1. 4 仪器 倒置显微镜,日本 OLYMPUS 公司产品;RT - 2100 型
酶标仪,美国 RAYTO 公司产品;XD - 101CO2 培养箱,美国
SANYO公司产品;超净工作台,中国 ZHJH 公司(C1109C);低温
冰箱,日本 SANYO公司产品;1500 电热鼓风干燥箱,中国上海圣
欣公司产品。
2 方法
2. 1 细胞培养 人肝癌细胞(HepG - 2,Hep3B,PLC /PRF /5)、人
正常肝细胞(Chang Liver)分别用含有 10 % 小牛血和 1 × 105 U /
L的 DMEM培养基常规培养,培养条件为 37 ℃,5 % CO2 的培养
箱中全湿培养,取对数期细胞准备下一步实验。
2. 2 MTT法检测 TTF1 - NP 对多种细胞的增殖抑制作用 取对
数生长期的 HepG - 2,Hep3B,PLC /PRF /5 和 Chang Liver细胞,分
别以细胞密度为 6 × 103 /孔接种于 96 孔板,培养 24 h 后,分为
TTF1 - NP实验组(50,100,200 μmol /L)以及阴性对照组(DMEM
常规培养)和 5 - Fu阳性对照组(10 μmol /L)分别培养 24,48,72
h后,每孔内加入浓度为 5 mg /ml的 MTT溶液 20 μl,培养 4 h,弃
去孔内溶液,每孔内加入 180 μl 的二甲基亚砜(DMSO),避光移
至酶标仪内,充分震荡 10 min 后,测定 570 nm 处各孔内吸光度
OD值。细胞生长抑制率(%) =(1 - 样本平均 A 值 /阴性对照
组平均 A值)× 100 %。
2. 3 细胞凋亡的形态学检测
2. 3. 1 光学显微镜检测(HE 染色)取对数生长期 HepG - 2 细
胞,细胞密度为 1 × 105 /孔,每孔内 2 ml铺于 6 孔板爬片上,常规
培养 24 h后,分 TTF1 - NP实验组(50,100 μmol /L)、阴性对照组
(DMEM常规培养)和 5 - Fu阳性对照组(10 μmol /L),培养 48 h
后弃去液体,4 % 多聚甲醛固定 20 min,苏木素染色 3 min,伊红
染色 1 min,酒精梯度脱水,二甲苯内浸泡 15 min,取片,晾干,中
性树胶封片。
2. 3. 2 透射电镜检测 取对数生长期 HepG - 2 细胞,细胞密度
为 1 × 105 /孔每孔内 2 ml铺于 6 孔板爬片上,常规培养 24 h 后,
分 100 μmol /L TTF1 - NP实验组和阴性对照组(DMEM)培养 48
h后弃去液体,3 % 戊二醛固定,1 % 锇酸固定,逐级酒精脱水,
氧化丙烯浸透,树脂包埋,超薄切片机切片,在透射电镜下观察,
拍片记录。
2. 3. 3 荧光显微镜检测(Hochest染色)取对数生长期 HepG - 2
细胞,铺于 6 孔板爬片内,每孔内 2 ml细胞悬液,细胞密度为 1 ×
105 /孔,常规培养 24 h后,分 TTF1 - NP实验组(50,100 μmol /L)
以及阴性对照组和阳性对照组培养 48 h 后弃去液体,4 % 多聚
·745·
LISHIZHEN MEDICINE AND MATERIA MEDICA RESEARCH 2015 VOL. 26 NO. 3 时珍国医国药 2015 年第 26 卷第 3 期
甲醛固定 20 min,Hochest染色 10 min,避光,荧光显微镜检测。
2. 3. 4 流式细胞术检测 取对数生长期 HepG - 2 细胞,收集到
15 ml离心管内。冰 PBS清洗,1 000 r /min 离心 5 min,冰 PBS制
成细胞悬液(细胞计数,保证每个样本数大约 1 × 106 个)。1 000
r /min离心 5 min,弃去液体,用 200 μl 结合缓冲液重悬细胞,避
光孵育 20 min;加入 AnnexinV 10 μl,避光静止 10 min;离心 1 000
r /min,5 min,弃去液体,重新加入结合缓冲液重悬细胞,每个样
本加入 5 μl PI 避光孵育。上机检测。
2. 4 数据分析及处理 实验数据均以 珋x ± s 表示,结果采用 SPSS
16. 0 软件分析,数据进行单因素方差分析 (One way ANOVA)和
t检验。
3 结果
3. 1 TTF1 - NP对多种细胞的增殖影响 MTT 检测结果显示,珍
珠梅黄酮纳米粒实验组(50,100,200 μmol /L)以及阴性对照组
(DMEM常规培养)和 5 - Fu阳性对照组(10 μmol /L),分别培养
24 ,48,72 h 后,HepG - 2,Hep3B,PLC /PRF /5 和 Chang Liver 细
胞生长均受到不同程度的抑制,且呈一定的浓度和时间依赖关
系。其中,珍珠梅黄酮纳米粒对人肝癌 HepG - 2 细胞抑制最为
明显(图 1 A),Hep3B,PLC /PRF /5 其次(图 1 B,C),对 Chang
Liver细胞抑制不显著(图 1 D)。以下实验选取人肝癌 HepG - 2
细胞为实验对象。
与阴性对照组比较,* P < 0. 05,**P < 0. 01
A.人肝癌 HepG - 2 细胞;B.人肝癌 Hep3B细胞;
C.人肝癌 PLC /PRF /5 细胞;D.人正常肝 Chang Liver细胞
图 1 TTF1 - NP对细胞增殖抑制的影响
3. 2 形态学检测结果
3. 2. 1 光学显微镜检测结果 阴性对照组 HepG - 2 细胞呈梭形
或多角形,细胞胞浆丰富,细胞延展性较好,细胞核规则,细胞形
态正常(图 2 A);5 - Fu 组细胞变圆,变小,细胞深染,核聚缩明
显(图 2 B);50 μmol /L TTF1 - NP组细胞数略有减少,细胞之间
连接疏松(图 2 C);100 μmol /L 珍珠梅黄酮纳米粒组细胞核浓
缩,染色质边聚,细胞形态改变(图 2 D)。
A.阴性对照组;B. 5 - Fu 组;
C. 50 μmol /L TTF1 - NP组;D. 100 μmol /L TTF1 - NP组
图 2 TTF1 - NP诱导 HepG - 2 细胞凋亡的 HE染色检测结果(400 ×)
3. 2. 2 荧光显微镜观察 阴性对照组细胞染色均匀,呈微弱均匀
蓝色荧光(图 3 A);5 - Fu组细胞核内可见颗粒块状明亮蓝色荧
光(图 3 B);50 μmol /L TTF1 - NP组细胞可见数量稍有减少,有
小部分细胞核内可见明亮蓝染(图 3 C);100 μmol /L TTF1 - NP
组细胞减少明显,呈明亮蓝色荧光(图 3 D)。
3. 2. 3 透射电镜检测结果 对照组细胞形态结构正常,胞浆丰
富,细胞器结构正常(图 4 A),珍珠梅黄酮纳米粒实验组细胞细
胞固缩,细胞器碎裂、胞质空泡化(图 4 B)。
3. 3 流式细胞术检测结果 对照组细胞存活率为 91. 34 %,凋亡
率为 4. 92 %。5 - Fu阳性对照组细胞及珍珠梅黄酮纳米粒干预
组(50,100 μmol /L)的存活率均下降,凋亡率上升。凋亡率依次
为:89. 6%、50. 0%和 86. 2%,与阴性对照组相比显著升高。
·845·
时珍国医国药 2015 年第 26 卷第 3 期 LISHIZHEN MEDICINE AND MATERIA MEDICA RESEARCH 2015 VOL. 26 NO. 3
A.阴性对照组;B. 5 - Fu 组;
C. 50 μmol /L TTF1 - NP组;D. 100 μmol /L TTF1 - NP组
图 3 TTF1 - NP诱导 HepG - 2 细胞凋亡的
Hochest染色检测结果(400 ×)
A. 阴性对照组;B. 100 μmol /L TTF1 - NP组
图 4 TTF1 - NP诱导 HepG - 2 细胞凋亡的
透射电镜检测结果(6 000 ×)
A. 阴性对照组;B. 5 - Fu 组;
C. 50 μmol /L TTF1 - NP组;D. 100 μmol /L TTF1 - NP组
图 5 TTF1 - NP诱导 HepG - 2 细胞凋亡的流式细胞术检测结果
4 讨论
细胞凋亡是指为维持内环境稳定,由基因控制的细胞自主的
有序的死亡[6],它涉及一系列基因的激活、表达以及调控等作
用[7]。细胞形态学特征改变是其发生凋亡的最直观有力的证
据,主要形态学变化变现为:凋亡细胞体积收缩、变圆,染色质浓
缩、边缘化,细胞膜内陷形成多个细胞凋亡小体等[8]。
本研究首先通过不同浓度(50,100,200 μmol /L)的 TTF1 -
NP分别干预人肝癌 HepG - 2,Hep3B,PLC /PRF /5 及人正常
Chang Liver肝细胞 24 h,48 h 和 72 h,发现珍珠梅黄酮纳米粒对
HepG - 2,Hep3B,PLC /PRF /5 均有不同程度的抑制作用,且呈一
定的时间、浓度依赖性,对人肝癌 HepG - 2 细胞的抑制作用最显
著,因此以下研究均以人肝癌 HepG - 2 细胞为主要研究对象,对
正常 Chang Liver肝细胞作用不明显。结果显示,阴性对照组细
胞形态结构正常,细胞呈菱形或多角形,细胞间连接紧密,延展性
较好,细胞核结构正常;5 - Fu组细胞变化显著,细胞变小,固缩,
胞核边移浓缩,染色质出现明显的新月形改变,部分贴壁细胞
皱缩,变圆,脱落,Hochest 染色见明亮荧光;50 μmol /L 珍珠梅黄
酮纳米粒干预 48 h 细胞未见明显变化;100 μmol /L 珍珠梅黄酮
纳米粒组有较明显改变,细胞数减少,细胞收缩、变小,胞核边移,
出现凋亡现象,Hochest 染色见明亮白色荧光。通过 HE,Hochest
染色及透射电镜检测结果表明:TTF1 - NP 可诱导人肝癌 HepG
-2 细胞凋亡。流式细胞术检测显示,阴性对照组仅有少量细胞
凋亡(4. 92%),5 - Fu组凋亡率为 89. 58%,不同浓度 TTF1 - NP
(50 ,100 μmol /L)凋亡率分别为 50. 0%,86. 2%,说明 TTF1 - NP
可诱导人肝癌 HepG - 2 细胞凋亡,本研究为珍珠梅黄酮纳米粒
的抗肿瘤作用的深入研究提供了一些参考数据。
参考文献:
[1] 张学武,金元哲. 珍珠梅提取物抗炎、镇痛、耐缺氧及抗疲劳作用
的研究[J]. 陕西中医,2004,25(11):1043.
[2] 张学武,尤 昕,孙 权,等. 长白山珍珠梅化学成分的研究[J].
天津药学,2003,15(5):1.
[3] 张学武,张玉梅,关丽萍,等. 珍珠梅提取物中活性成分的分离及
体内抑瘤作用的研究[J]. 中药材,2004,27(1):36.
[4] Liu C,Cui LM,Li XW,et al. Inhibition of tumor angiogenesis by TTF1
from extract of herbal medicine[J]. World J Gastroenterol,2011,17
(44) :4875.
[5] 李 妍,崔逢德,张学武. 珍珠梅黄酮固体脂质纳米粒的制备工艺
[J]. 时珍国医国药,2012,23(10):2549.
[6] Li YY,Hu JQ,Huang H,et al. Effect of Jinlong capsule on prolifera-
tion and apoptosis of human pancreatic cancer cells BxPC - 3[J]. J
Tradit Chin Med,2013,33(2) :205.
[7] Ouyang L,Shi Z,Zhao S,et al. Programmed cell death pathway in
cancer :a review of apoptosis,autophagy and programmed necrosis
[J]. Cell Prolif,2012,45(6) :487.
[8] 高 枫,符兆英. 细胞凋亡检测方法及其研究进展[J]. 陕西医学
杂志,2013,42(8):1082.
·945·
LISHIZHEN MEDICINE AND MATERIA MEDICA RESEARCH 2015 VOL. 26 NO. 3 时珍国医国药 2015 年第 26 卷第 3 期