全 文 :·研究报告·
生物技术通报
BIOTECHNOLOGY BULLETIN 2015, 31(9):158-162
檀香(Santalum album Linn.)隶属于檀香科檀
香属,是一种半寄生小乔木,其用途广泛,经济价
值极高,是世界上最昂贵的木材之一。檀香集芳香、
药用、材用于一身,被誉为“绿色金子”、“香料之
王”[1]。目前,为满足我国国内的需求,并且经过
多年栽培推广,在广东、海南、四川、云南、广西、
福建及浙江等地引种栽培了一定规模的檀香[2-6]。
海南省在开展了“绿化宝岛”大行动后,檀香的人
工林种植面积明显增加[7]。然而 2013 年在对海南
省檀香病虫害调查结果中发现,檀香的主要病害有
炭疽病、苗木立枯病、煤污病、根腐病、白粉病等,
其中炭疽病是危害檀香幼树生长的主要病害,并且
在近年趋重发生。发病初期叶片会出现紫色或紫褐
色病斑,严重时导致檀香叶片大量提前落叶,对檀
香的健康生长造成严重影响,因此对檀香病害的研
究与防治具有重要意义。
收稿日期 : 2014-11-25
基金项目 :国家林业公益性行业科研专项(201304402)
作者简介 :田媛媛,女,硕士研究生,研究方向 :森林微生物 ;E-mail :yuanyuan3356@163.com
通讯作者 :周国英,女,教授,研究方向 :森林保护与应用微生物 ;E-mail :gyzhou2118@163.com
檀香炭疽病拮抗细菌的分离筛选及鉴定
田媛媛 周国英 左杰 刘倩丽 杨权
(中南林业科技大学 经济林培育与保护省部共建教育部重点实验室,长沙 410004)
摘 要 : 旨在从海南省国营澄迈林场的土壤中筛选出对檀香炭疽病具有较强生防效果的拮抗细菌。采集澄迈林场檀香不同
种植区中优良单株的根际土壤,通过稀释平板法从中分离出 71 株细菌,以檀香炭疽病原菌为靶标菌,通过平板对峙法初筛和发酵
液法复筛,获得一株具较强拮抗效果的细菌,编号为 TXJ2-6 ;抗菌谱测定表明,该拮抗菌株对降香黄檀炭疽病、油茶软腐病、油
茶叶枯病、油茶根腐病、油茶炭疽病 5 种病原真菌也具有明显拮抗效果 ;通过形态学观察、生理生化特性及 16S rDNA 序列分析,
鉴定该拮抗菌株为甲基营养型芽孢杆菌(Bacillus methylotrophicus)。
关键词 : 檀香 ;炭疽病 ;拮抗细菌 ;筛选 ;鉴定
DOI :10.13560/j.cnki.biotech.bull.1985.2015.09.022
Isolation,Screening and Identification of Bacteria Antagonistic to
Colletotrichum fructicola
Tian Yuanyuan Zhou Guoying Zuo Jie Liu Qianli Yang Quan
(Key Laboratory of Cultivation and Protection for Non-wood Forest Trees of Ministry of Education,Central South University of Forestry and
Technology,Changsha 410004)
Abstract: It is aimed to obtain a bacterial strain that has strongly antagonistic activity to Colletotrichum fructicola. Collecting rhizosphere
soil from different superior individual of Sandalwood in different parts of Chengmai Forest Farm in Hainan Province and using dilution culture
method, 71 strains of bacteria were isolated. Then using C. fructicola as the indicating bacterium, primary screening by flat confrontation and re-
screening by fermentation liquid, one strain of bacterium with promising antagonistic activity was obtained, numbered as TXJ2-6. Antibacterial
spectrum tests showed it had significantly antagonistic activities to 5 plant pathogens(Colletotrichum gloeosporioides, Agaricodochium
camellia, Fusarium proliferatum, Pestalotiopsis microspora, and Colletotrichum gloeosporioides). Based on the morphological, physiological and
biochemical characteristics and 16S rDNA phylogenetic analysis, strain TXJ2-6 was identified as Bacillus methylotrophicus.
Key words: Santalum album L. ;anthracnose ;antagonistic bacteria ;screening ;identification
2015,31(9) 159田媛媛等:檀香炭疽病拮抗细菌的分离筛选及鉴定
目前主要通过化学杀菌剂控制该病害,这种方
法容易导致病原菌抗药性,甚至会污染环境。生物
制剂具有无污染,无公害,无残留,不易形成抗性
等特点[8],也是当今国内外病害防控研究的热点。
应用拮抗微生物防治檀香炭疽病害在国内外尚未有
报道,本研究拟从檀香优良单株根际土壤中分离筛
选出有效控制檀香炭疽病的生防细菌,以期为檀香
炭疽病的生物防治提供参考。
1 材料与方法
1.1 材料
1.1.1 供试病原菌 檀香炭疽病的病原菌(Colletot-
richum fructicola),编号 SA-2,由本实验室分离鉴定
并保存。供试 5 种病原菌,即降香黄檀炭疽病、油
茶叶枯病菌、油茶软腐病菌、油茶根腐病和油茶炭
疽病,均由经济林培育与保护省部共建教育部重点
实验室提供。
1.1.2 土样来源 海南省国营澄迈林场,采集不同
种植区中檀香优良单株的根际土壤,编号封存于封
口袋中,带回实验室进行细菌的分离。
1.1.3 供试培养基 PDA 培养基[9](用于植物病原
真菌培养及菌株拮抗效果测定):马铃薯 200.0 g,
葡萄糖 20.0 g,琼脂 15.0-20.0 g,蒸馏水 1 000 mL ;
NA 培养基[10](用于拮抗细菌分离纯化培养):蛋白
胨 10.0 g,牛肉浸膏 5.0 g,琼脂 15.0-20.0 g,蒸馏
水 1 000 mL,pH7.2-7.4 ;NB 培养基[11](用于拮抗
细菌液体培养):蛋白胨 10.0 g,牛肉浸膏 5.0 g,蒸
馏水 1 000 mL,pH7.2-7.4。
1.2 方法
1.2.1 根际细菌的分离 称取檀香优良单株的新
鲜根际土样 10.0 g 放入装有 90 mL 无菌水并带有玻
璃珠的三角瓶中,摇床振荡 20 min,制成土壤悬液
(10-1)。从中取 1 mL 土壤悬液注入盛有 9 mL 无菌水
的试管中,吹吸 3 次,振荡混匀(10-2)。依此类推
制成 10-3、10-4、10-5、10-6 和 10-7 各种稀释度的土
壤溶液备用。
分别吸取上述不同稀释度的土壤溶液 0.1 mL 至
准备好的 NA 平板上,均匀涂布。细菌一般培养温
度为 35-37℃,故选择 35℃下进行恒温培养,48 h
后记录菌量,然后根据菌落形态、颜色、透明度、
边缘、干湿等特征,挑取性状不同的菌落,在 NA
平板上进行划线纯化、编号、培养,再 4℃保存备
用[12,13],共分离 3 个批次的生防细菌。分离出的细
菌于 28℃和 35℃下均可正常生长。
1.2.2 拮抗菌的筛选 采用平板对峙法[14]初筛,
在 PDA 平板中央接直径 6 mm 的供试病原菌菌块,
在距菌块 3 cm 处对角线接种土壤中已分离纯化的细
菌菌株,以只接种病原菌菌块为对照。每组设置 3
个重复,在 28℃恒温培养,5 d 后观测抑菌圈大小,
筛选出对檀香炭疽病菌有抑制作用的拮抗细菌。
采用发酵液法[15]复筛,将 6 种初筛选出的拮
抗菌株培养 2 d 后接种到 50 mL NA 培养液的三角
瓶(250 mL)中,30℃、160 r/min 摇床振荡培养 48
h。发酵液经 0.22 μm 细菌过滤器过滤得到发酵滤液,
将滤液与 PDA 培养基按 1∶19 混匀后倒平板,中央
接檀香炭疽病原菌,以蒸馏水代替滤液为对照。每
组设置 3 个重复,28℃恒温培养,5 d 后观测抑菌圈
大小。
1.2.3 拮抗细菌抗菌谱的测定 采用平板对峙法,
在离病原菌菌块中心 3 cm 处对角线接种 4 点待测
拮抗细菌,以中央接病原菌作对照 ;28℃恒温培养
6 d。每处理 3 次重复。测量病原菌菌落直径和抑菌
带宽度,计算拮抗菌对各供试病菌的抑菌率。
抑制率(%)=[(对照组菌落直径-处理组菌落
直径)/(对照组菌落直径-原菌饼直径)]×100%
1.2.4 拮抗菌株的鉴定
1.2.4.1 形态特征 拮抗细菌经无菌水稀释适当浓
度后,接种于 NA 培养基上,于 35℃恒温培养 2-3 d,
长出单菌落后,观察记录菌落形态[10]。同时,对菌
体进行革兰氏染色,显微镜下观察其菌体形态以及
大小。
1.2.4.2 生理生化特性测定 参照《常见细菌系统
鉴定手册》[16]和《伯杰细菌鉴定手册》[17]的方法,
进行拮抗细菌常规生理生化反应测定。
1.2.4.3 分子生物学鉴定 将培养 3 d 的拮抗菌株
接 种 到 40 mL NB 培 养 液 的 三 角 瓶(100 mL) 中,
于 35℃、160 r/min,恒温振荡培养 48 h 后制成菌
体悬浮液,离心收集菌体,采用常规 CTAB 法[18]
用 DNA 提 取 试 剂 盒( 北 京 天 根 生 化 科 技 有 限 公
司)提取病原菌基因组 DNA。采用细菌通用引物
生物技术通报 Biotechnology Bulletin 2015,Vol.31,No.9160
27F(5-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3) 和 1492R
(5-GGTTACCTTGTTACGACTT-3) 对 提 取 的 DNA
进行 PCR 扩增。
将扩增后的 DNA 产物送至上海生工生物有限公
司进行纯化测序。并且把测序结果与 GenBank 中的
序列进行 blast 比对。以 16S rDNA 相似序列,利用
MEGA5.0 软件的 Neighbor-Joining 法构建系统发育树。
2 结果
2.1 拮抗细菌的分离与筛选
从海南省国营澄迈林场檀香优良单株的根际土
壤中,3 个批次共分离得到 71 株细菌。以檀香炭疽
病原菌为指示菌,筛选出抑菌带宽度 D ≥ 6 mm 的
拮 抗 菌 6 株, 分 别 为 TXJ1-11、TXJ1-17、TXJ2-6、
TXJ2-23、TXJ3-14 和 TXJ3-17( 表 1)。 筛 选 出 的 6
株拮抗细菌经发酵液法复筛,得到 TXJ2-6 菌株的
抑菌效果最好,抑菌率为 76.9%(表 2)。 因此,将
TXJ2-6 作为檀香炭疽病的拮抗菌株进行后续实验。
在 PDA 平板对峙法中,接种 TXJ2-6 菌株后,
拮抗菌对檀香炭疽病菌 SA-2 具有明显的抑菌带,病
原菌菌丝生长受到较明显抑制,并且在病原菌菌落
的边缘与抑菌带接触部位的菌丝发生溶解,整个菌
落的生长受到明显抑制(图 1)。
表 1 拮抗细菌对檀香炭疽病菌的抑制作用
抑菌带宽度 D/mm 菌株编号
D<3 TXJ1-1、TXJ1-3、TXJ1-4、TXJ1-7、TXJ1-8、TXJ1-9、TXJ1-10、TXJ1-12、TXJ1-13、TXJ1-14、TXJ1-18、TXJ1-19、
TXJ1-20、TXJ1-21、TXJ1-22、TXJ1-23、TXJ2-2、TXJ2-3、TXJ2-4、TXJ2-5、TXJ2-7、TXJ2-8、TXJ2-9、TXJ2-10、TXJ2-
11、TXJ2-12、TXJ2-13、TXJ2-14、TXJ2-15、TXJ2-17、TXJ2-19、TXJ2-21、TXJ2-22、TXJ2-24、TXJ2-25、TXJ2-26、
TXJ3-1、TXJ3-2、TXJ3-4、TXJ3-5、TXJ3-6、TXJ3-7、TXJ3-8、TXJ3-10、TXJ3-11、TXJ3-13、TXJ3-15、TXJ3-16、TXJ3-
18、TXJ3-19、TXJ3-20、TXJ3-21
3≤D<6 TXJ1-2、TXJ1-5、TXJ1-6、TXJ1-15、TXJ1-16、TXJ2-1、TXJ2-16、TXJ2-18、TXJ2-20、TXJ3-3、TXJ3-9、TXJ3-12、
TXJ3-22
6≤D TXJ1-11、TXJ1-17、TXJ2-6、TXJ2-23、TXJ3-14、TXJ3-17
表 2 拮抗细菌发酵液对檀香炭疽病菌的抑制作用
菌株 菌落直径 / mm 抑制率 / %
TXJ1-11 25.9 71.2
TXJ1-17 28.6 68.2
TXJ2-6 20.8 76.9
TXJ2-23 35.3 60.8
TXJ3-14 31.4 65.1
TXJ3-17 29.7 67.0
A B
A :菌株 TXJ2-6 ;B :对照
图 1 菌株 TXJ2-6 对檀香炭疽病病原菌的拮抗作用
2.2 拮抗细菌抗菌谱实验结果
由表 3 可知,拮抗细菌 TXJ2-6 对 5 种病原真
菌,即降香黄檀炭疽病菌、油茶软腐病菌、油茶叶
枯病菌、油茶根腐病菌及油茶炭疽病菌均有抑菌作
用,其中对降香黄檀炭疽病菌、油茶软腐病菌和
油茶炭疽病菌的抑菌率分别达到 77.8%、75.6% 和
75.6%。因此,可初步说明 TXJ2-6 菌株对植物病原
真菌有一定的广谱性,具有生防应用前景。
表 3 拮抗细菌 TXJ2-6 对 5 种病原真菌的抑制作用
病原真菌 平均抑菌带 /mm 抑制率 / %
降香黄檀炭疽病菌 35.3 77.8
油茶软腐病菌 34.1 75.6
油茶叶枯病菌 30.8 68.9
油茶根腐病菌 2.54 55.6
油茶炭疽病菌 34.3 75.6
2.3 拮抗菌株的鉴定
2.3.1 形态特征 图 2 显示,菌株 TXJ2-6 在牛肉膏
蛋白胨培养基上呈乳白色菌落,圆形或近圆形,表
面湿润不透明,边缘波状,有褶皱。菌体呈杆状,
芽孢中生,孢囊不膨大,革兰氏染色呈阳性(图 2)。
2015,31(9) 161田媛媛等:檀香炭疽病拮抗细菌的分离筛选及鉴定
2.3.2 生理生化特征 通过对菌株 TXJ2-6 的部分
生理生化特性实验(表 4)结果并结合其形态特征,
对照《常见细菌系统鉴定手册》和《伯杰细菌鉴定
手册》,初步鉴定 TXJ2-6 菌株为芽孢杆菌属。
表 4 TXJ2-6 的生理生化特征
实验项目 结果 实验项目 结果
革兰氏染色 + 木糖 +
厌氧生长 - D-果糖 +
明胶液化 + 半乳糖 -
触酶试验 + 甘露醇 +
淀粉水解 + 脲酶 +
葡萄糖 + 甲基红反应 +
蔗糖 + V-P 测试 +
麦芽糖 + 木糖醇 -
阿拉伯糖 + pH5.7 +
注 :“+”表示反应为阳性,“-”表示反应为阴性
2.3.3 分子生物学鉴定 以 TXJ2-6 基因组 DNA 为
模板,用通用引物 27F 和 1492R 对 16S rDNA 序列
进行 PCR 扩增,将获得的扩增产物进行测序,得
到大小为 1 411 bp 的核苷酸序列。将该序列通过
BLAST 程序与 GenBank 中序列进行对比分析,结果
显示菌株 TXJ2-6 与其比对的芽孢杆菌属同源,相
似度高达 100%,采用 MEGA5.0 软件以 GenBank 中
16S rDNA 相似序列及其模式菌株 16S rDNA 序列构
建系统进化树。结果(图 3)表明,菌株 TXJ2-6 与
菌 株 SK13(GenBank 登 录 号 KC790303.1) 和 菌 株
PY1(GenBank 登录号 KC790265.1 )的亲缘关系最
近,且此两株菌均为甲基营养型芽孢杆菌菌综合菌
株的形态学特征、生理生化特征及分子生物学鉴
定,拮抗菌株可初步鉴定为甲基营养型芽孢杆菌
(Bacillus methylotrophicus)。
3 讨论
对海南省檀香的病害普查结果发现,炭疽病是
檀香苗木及其幼树生长的主要病害,目前此病害的
林间防治方法主要是化学防治,即在病害发生的早
期,交替使用多菌灵、甲基托布津、波尔多液等药剂。
但是,化学药剂的预防作用很好,治疗作用效果较
差。另外,芽孢杆菌具有较强的抗菌防病功能,已
成功作为生物农药用于植物病害的生物防治[18,19]。
目前关于檀香炭疽病及其防治尚无相关报道和系统
研究。本实验首次将甲基营养型芽孢杆菌用于该病
的生物防治,同时,该菌株拮抗作用具有一定的广
谱性,对油茶软腐病、油茶叶枯病、油茶根腐病、
油茶炭疽病和热带树种降香黄檀炭疽病均具较强拮
抗效果,尤其对降香黄檀炭疽病的抑菌效果显著,
抑菌率达 77.8%。由于降香黄檀常作为檀香长期寄
主二者通常混交,因此选择对二者都具有良好效果
的拮抗菌株更有意义。本研究所分离筛选到的甲基
营养型芽孢杆菌是在室内条件下对病原菌进行的拮
抗实验,但在田间的防效如何尚不得而知,另外对
檀香苗木生长有无促进作用,如何开发为生物农药
及其使用方法等还需进一步研究。
4 结论
本实验从海南省国营澄迈林场土壤中分离纯
化得到 71 株细菌,筛选出对檀香炭疽病拮抗效果
最好的一株,并且通过拮抗菌谱实验初步确定其
具广谱性,将该菌株命名为 TXJ2-6。综合形态学
观 察、 生 理 生 化 特 性 及 16S rDNA 序 列 分 析, 将
TXJ2-6 菌株鉴定为甲基营养型芽孢杆菌(Bacillus
methylotrophicus)。
24 h 24 h72 h
图 2 TXJ2-6 的形态特征
TXJ2-6
Bacillus methylotrophicusKC790265.1
Bacillus methylotrophicusKC790303.1
Bacillus tequilensisHQ223107.1
Bacillus tequilensisJF798378.1
Bacillus subtilisAJ276351
Bacillus licheniformisJN998744.1
Bacillus aeriusJX475117.1
Bacillus licheniformisFJ808719.1
Bacillus bacteriumEU596921.1
Bacillus aryabhattaiJX988388.1
Bacillus stratosphericusJX680104.1
Bacillus aryabhattaiEF114313.2
99
99
9999
83
98
97
100
86
0.005
图 3 菌株 TXJ2-6 的系统发育树
生物技术通报 Biotechnology Bulletin 2015,Vol.31,No.9162
参 考 文 献
[1] 周亮 , 黄自云 , 黄建平 . 热带芳香植物——檀香[J]. 园艺 ,
2014(4):73.
[2] 李应兰 . 檀香引种研究[M]. 北京 :科学出版社 , 2003 :146-
148.
[3] 马国华 , 何跃敏 , 张静峰 , 等 . 檀香幼苗半寄生性初步研究[J].
热带亚热带植物学报 , 2005, 13(3):233-288.
[4] 杨晓玲 . 珍惜而又娇贵的檀香树[J]. 云南林业 , 2005, 26(1):
21.
[5] 陈荣 , 张新华 , 马国华 . 檀香与不同豆科植物寄生关系的研
究[J]. 热带亚热带植物学报 , 2014, 22(1):53-60.
[6] 邓乐君 , 周伟平 , 刘少峰 , 等 . 湛江南药场引种檀香 rDNA ITS
序列系统发育分析[J]. 广东药学院学报 , 2014, 30(3):314-
318.
[7] 董文统 , 刘君昂 , 周国英 , 等 . 海南省乡土树种病虫害发生现
状[J]. 中南林业科技大学学报 , 2014, 34(6):56-60.
[8] 李凯 , 袁鹤 . 植物病害生物防治概述[J]. 山西农业科学 ,
2012, 40(7):807-810.
[9] 张瑾 , 张树武 , 徐秉良 , 等 . 长枝木霉抑菌普测定及抑菌作用
机理研究[J]. 中国生态农业学报 , 2014, 22(6):661-667.
[10] 方中达 . 植病研究方法[M]. 北京 :中国农业出版社 , 1998.
[11] 杨华 , 纪明山 , 李广旭 , 等 . 不同发酵条件对苹果轮纹病拮抗
细菌生长的影响[J]. 果树学报 , 2007, 24(6):799-802.
[12] 耿海峰 . 冬枣采后病害拮抗菌的筛选和鉴定[J]. 食品科学 ,
2010, 31(9):150-155.
[13] 张广志 , 杨合同 , 李纪顺 , 等 . 多功能芽孢杆菌的分离 , 筛选
及活性测定[J]. 江苏农业大学 , 2009(1):298-299.
[14] 朱宏建 , 欧阳小燕 , 周倩 , 等 . 一株辣椒尖孢炭疽病菌拮抗
菌株的分离鉴定与发酵条件优化[J]. 植物病理学报 , 2012,
(442):418-424.
[15] 路宗研 , 周国英 , 陈玉华 , 等 . 杉木炭疽病拮抗菌 HY32 的筛
选及其应用[J]. 生物技术通报 , 2013(3):181-185.
[16] 东秀珠 , 蔡妙英 . 常用细菌系统鉴定手册[M]. 北京 :科学
出版社 , 2001 :399-417.
[17] 布坎南 RE, 吉本斯 NE. 伯杰细菌鉴定手册[M]. 北京 :科学
出版社 , 1984.
[18] Hillis DM, Moritz CM, Mable BK. Molecular Systematics[M].
MasSachusetts :Sinauer Associates, 1990 :411-501.
[19] Oita S, Horita M, Yanagi SO. Purification properties of a new
chitinbinging antifungal CB21 from Bacillus licheniformis[J].
Bioscience, Biotechnology & Biochemistry, 1996, 60(3):481-
483.
(责任编辑 马鑫)