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重组人胰激肽原酶在大肠杆菌中的表达



全 文 :·研究报告·
生物技术通报
BIOTECHNOLOGY BULLETIN 2011 年第 11 期
重组人胰激肽原酶在大肠杆菌中的表达
侯乐锋 陈劲春 卢嘉宝
(北京化工大学生命科学与技术学院,北京 100029)
摘 要: 根据人胰激肽原酶的氨基酸序列,采用大肠杆菌偏爱密码子,设计合成目的基因片段约 750 bp。将设计得到的
片段连接到 pET-22b(+)表达载体中并测序,将重组质粒转化到大肠杆菌 Rosetta中进行诱导表达。将 IPTG诱导表达的菌体
进行 SDS-PAGE电泳,在相对分子质量 24 kD处可明显观察到高表达带,主要以包涵体形式存在,质量分数可达 21. 6%,进一
步测得蛋白活性为 2. 27 nmol /s。利用 MALDI串联飞行时间质谱(MALDI-TOF-MS /MS)鉴定蛋白,蛋白得分 106,大于可信得
分 83(P < 0. 05) ,确定了蛋白一级结构的正确性。
关键词: 大肠杆菌 人胰激肽原酶 表达
Expression of Human Pancreatic Kininogenase in Escherichia coli
Hou Lefeng Chen Jinchun Lu Jiabao
(College of Life Science and Technology,Beijing University of Chemical Technology,Beijing 100029)
Abstract: In this research project,based on the amino acid sequence of human pancreatic kininogenase,a 750 bp DNA was de-
signed and synthesized according to preferred codons in E. coli. Then the fragment was subcloned into the pET-22b(+)vector and con-
firmed by sequencing. E. coli cell with this constructed plasmid was induced with IPTG for target protein expression. Lysate of bacteria
was detected by SDS-PAGE and a distinct band could be seen at 24 kD compared with control. The results showed that the gene was ex-
pressed successfully with a content of 21. 6% and the activity of 2. 27 nmol /s. The proposed primary structure of the expressed protein
was verified by MALDI-TOF-MS /MS. The identification score for the protein was 106,which was greater than 83 (P < 0. 05) ,and sig-
nificant.
Key words: Escherichia coli Human pancreatic kininogenase Expression
收稿日期:2011-03-01
作者简介:侯乐峰,男,硕士,研究方向:分子生物学;E-mail:houlefeng0401@ 163. com
通讯作者:陈劲春,博士,教授,博士生导师,研究方向:药物技术和纳米生物技术;E-mail:jingchunchen@ hotmail. com
激肽原酶(kininogenase)是人体激肽体系的重
要成员,在体内起着重要生理作用[1],并与多种疾
病的发生密切相关[2],同时作为癌症生物效应标记
物,也引起人们极大的关注[3]。目前,猪胰激肽原
酶的药物在临床上应用得比较广泛,在防治有关微
循环障碍病方面已经取得了较好的疗效[4 - 6]。但是
从猪胰脏中提取猪胰激肽原酶效果并非很理想,因
此基因重组表达方面的工作由此展开。袁新清[7]
用毕赤酵母表达重组人胰激肽原酶,由于存在糖基
化效应,活性不高。杜珙等[8]用 pET-20b(+)表达
系统表达重组胰激肽原酶,融合蛋白产量不高,占菌
体总蛋白 10%左右,且未能进一步鉴定其结构的正
确性。目前,国内外均没有对重组人胰激肽原酶进
行大规模工业化生产的报道,在其活性和产量方面
需要克服的困难还有很多。大肠杆菌表达系统作为
目前应用最为广泛的蛋白质表达系统具有较多的优
点:能够在短时间内表达蛋白,所需成本较低等。但
同时存在产物活性较低的缺点,因此还需要进一步
地探索研究。
本研究根据大肠杆菌偏爱的密码子设计人胰激
肽原酶基因,并于前端添加了肠激酶的位点,用
pET-22b(+)表达系统诱导表达目的蛋白,并验证
粗蛋白的活性。经过 SDS-PAGE 初步鉴定,再由
MALDI串联飞行时间质谱分析结构,确定其结构的
正确性。
2011 年第 11 期 侯乐锋等:重组人胰激肽原酶在大肠杆菌中的表达
1 材料与方法
1. 1 材料
大肠杆菌 DH5α,Rosetta 为实验室保存;pET-
22b(+ )由实验室构建并保存。限制性内切酶
EcoRⅠ,HindⅢ,pfu 高保真酶购自 TaKaRa 公司。
引物由上海 Invitrogen 公司设计合成。其他化学试
剂均为进口或者国产分析纯。
DYY25 型稳压稳流电泳仪,北京六一仪器厂;
TC-3000 基本型基因扩增仪,英国 Techne;GL-20G-
Ⅱ型冷冻离心机,上海安亭科学仪器厂;JY9823D超
声波细胞破碎仪,宁波新芝科器研究所。
1. 2 方法
1. 2. 1 引物设计及合成 由 NCBI 数据库检索人胰
激肽原酶的序列,设计合成目的基因,并于前端加入
肠激酶位点 D4K,便于蛋白分离纯化时将融合蛋白切
下。在目的基因 5和 3端添加限制性内切酶 Eco RⅠ
和 HindⅢ,两端加上保护碱基。设计上下游引物用
于扩增目的基因,上游引物:5-GATTCGGAATTC
GGATGAT-3,下游引物:5-GATTGCAAGCTTCGAGGT-
TAGG-3(下划线为酶切位点)。
1. 2. 2 目的片段的 PCR扩增 设计 20 μL 反应体
系,利用 PCR扩增目的基因。94℃预变性 5 min 后
加入 pfu 酶 0. 2 μL,扩增程序:94℃ 1 min,36℃ 1
min,72℃ 1 min,25 个循环;72℃10 min;4℃保存。
反应结束后用 1. 5%的琼脂糖凝胶电泳鉴定,
检验扩增片段大小正确性,并用琼脂糖凝胶回收试
剂盒回收纯化目的片段。
1. 2. 3 目的片段与载体的连接 设计 50 μL 反应
体系,将连有目的基因的 pGEM-T 载体与 pET-22b
(+)空载体同时进行双酶切,37℃酶切 2 h,反应结
束后用 1. 5%的琼脂糖凝胶电泳鉴定,并用琼脂糖
凝胶回收试剂盒回收目的基因片段及载体片段。
将回收的目的基因片段和载体片段用 T4连接
酶进行连接,设计 10 μL 反应体系:目的基因片段
4 μL;pET-22b(+)载体片段 1 μL;10 × T4 DNA 连
接酶 buffer 1 μL;T4DNA连接酶 1 μL;ddH2O 3 μL ;
16℃连接过夜。连接产物转入 CaCl2法制备的感受
态大肠杆菌 Rosetta中,涂在含有氨苄青霉素的平板
上,筛选阳性克隆,PCR 及电泳鉴定,能够扩增出目
的片段的即为阳性克隆。
1. 2. 4 蛋白表达 挑取在平板上生长成熟的阳性
克隆接种于 LB 培养基中,37℃200 r /min 震荡培养
12 h 至对数生长期,按 1%的接种量转接到 2 × YT
培养基中继续培养 3. 5 h,加入 IPTG 至终浓度
0. 5 mmol /L,诱导 6 h后停止发酵。
1. 2. 5 融合蛋白在 E. coli 中分布 对发酵菌液进
行发酵液上清、总细胞蛋白、细胞周质、细胞质可溶、
细胞质不溶等各组分进行小规模分析。发酵液离
心,沉淀为总细胞蛋白,上清通过 TCA沉淀获得培养
基成分;沉淀重溶于溶液Ⅰ(30 mmol /L Tris-HCl,20%
蔗糖,加入 EDTA 至终浓度 1 mmol /L,pH8. 0)中,冰
上磁力搅拌 10 min,4℃冷冻离心去上清,加入溶液Ⅱ(5
mmol /L MgSO4),冰上轻搅 10 min,此时周质蛋白释放
到缓冲液中,4℃冷冻离心,上清通过 TCA 沉淀获得
细胞周质部分;上一步沉淀用溶液Ⅲ(100 mmol /L
Tris-HCl,10 mmol /L EDTA,pH8. 0)洗涤,超声破碎,
4℃冷冻离心,上清通过 TCA 沉淀获得细胞质可溶
部分;剩余沉淀用溶液Ⅳ(100 mmol /L Tris-HCl,
2 mol /L 尿素,pH8. 0)洗涤,4℃冷冻离心,去上清,
重复 2 次,再用去离子水洗 1 次,冷冻离心去上清,
获得细胞质不溶部分。
对上述步骤收集的各组分通过 SDS-PAGE 凝
胶电泳,分析各组分中目的蛋白条带位置及大致
浓度。
1. 2. 6 目的蛋白的质谱鉴定 将目的蛋白条带切
下,寄由上海复旦大学生物医学研究院蛋白质组研
究中心,用 MALDI串联飞行时间质谱(MALDI-TOF-
MS /MS)鉴定蛋白一级结构。利用 MASCOT 数据库
检索分析,比对氨基酸序列,验证其正确性。
1. 2. 7 目的蛋白的活性测定 诱导结束后,6 000 r /min
离心 20 min,收集菌体。加入溶液Ⅲ重悬,超声波破
碎,4℃冷冻离心去上清;加入溶液Ⅳ重悬,4℃冷冻
离心重复两次,水洗一次,离心得包涵体。将包涵体
按1∶ 10(W/V)的比例加入溶液Ⅴ(7 mol /L 盐酸胍,
100 mmol /L Tris-HCl,10 mmol /L DTT,pH8. 0),缓慢搅
拌溶解,4℃离心 30 min,取上清;将上清按照 1∶ 20(V/
V)的稀释比例脉冲式缓慢加入溶液Ⅵ(100 mmol /L
Tris-HCl,1 mol /L 尿素,0. 2 mmol /L GSSG,2 mmol /L
GSH,1 mmol /L CaCl2,pH8. 0)中,4℃复性 16 h。4℃离
心取上清备用。
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生物技术通报 Biotechnology Bulletin 2011 年第 11 期
胰激肽原酶对某些人工合成底物,如 Nα-苯甲
酰-L-精氨酸乙酯(BAEE)能起酯解作用。酶促反应
前后,在 283 nm吸光度下的增值 ΔA 与激肽原酶的
浓度在一定范围内呈线性关系。参照文献[9]的方
法测定胰激肽原酶的效价。
2 结果
2. 1 目的片段 PCR扩增
目的片段大小约 750 bp,进行 PCR 扩增,结束
后进行琼脂糖凝胶电泳,结果(图 1)显示,经过 PCR
扩增的目的基因在 700 bp与 800 bp之间,位置与目
的基因 750 bp大小吻合。
M. DNA Marker;1 - 3.目的基因条带
图 1 人胰激肽原酶基因 PCR扩增电泳图谱
2. 2 酶切及质粒的构建
目的基因大小 750 bp,pET-22b(+)空载体大
小 5 493 bp,对两者同时用 EcoRⅠ和 Hind Ⅲ进行双
酶切,使其露出粘性末端,连接后构建成的载体大小
约在 6 200 bp左右。通过琼脂糖凝胶电泳检测(图
2) ,目的基因已经成功插入载体。由图 2 可知,为
pET-22b(+)空载体线性化结果,位置在 5 000 bp
M. DNA Marker;1. pET-22b(+)空载体双酶切;2. 目的
基因双酶切;3.人胰激肽原酶基因重组表达载体
图 2 人胰激肽原酶基因重组载体琼脂糖凝胶电泳图
靠上,与预期结果吻合。泳道 2 为目的基因酶切结
果,大小在 700 bp和 800 bp中间,与 750 bp 大小一
致。泳道 3 为构建完成的重组表达载体,位置在空
质粒载体上方位置,证明构建载体成功。
2. 3 重组质粒的测序
将酶切鉴定为阳性的重组质粒,由上海英骏公
司进行 Sanger双脱氧终止法测序,结果正确。
2. 4 融合蛋白在 E. coli中分布
对细胞的各组成成分进行 SDS-PAGE 电泳,结
果(图 3)显示,在加诱导剂和不加诱导剂的情况下,
条带变化明显,在靠近 26 kD的下方位置附近,诱导
的菌出现了目标蛋白,而且分子量大小与设计时吻
合。周质中蛋白含量很少,且无目标蛋白出现;细胞
质可溶部分中有部分组分蛋白,但无目标蛋白;发酵
液上清有少量目标蛋白;而包涵体里含有大量目标
蛋白,可初步判断目标蛋白大量以包涵体的形式存
在。经凝胶成像软件 BandScan5. 0 扫描分析,得出
目标蛋白占总蛋白的含量为 21. 6%,经过超声波破
碎和包涵体洗涤后得到纯度为 52%的目标蛋白粗
品,含量如表 1 所示。
M.蛋白质Marker;1.未诱导全菌;2.诱导 10 h后全菌;3.总
细胞蛋白;4.发酵液上清;5.细胞周质;6.细胞质可溶;7.包
涵体
图 3 目标蛋白 SDS-PAGE电泳图
表 1 目标蛋白在大肠杆菌细胞各组分中的含量
组分 组分蛋白a(%) 目标蛋白b(%)目标蛋白c(%)
发酵液 100 21. 6 21. 6
发酵液上清 30 5 1. 5
细胞周质 2 0 0
细胞质可溶 28 0 0
包涵体 40 52 20
a.组分蛋白占总蛋白的质量分数;b.目标蛋白占组分蛋白的质量
分数;c.目标蛋白占总蛋白的质量分数
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2. 5 质谱分析
用 MALDI 串联飞行时间质谱(MALDI-TOF-
MS /MS)分析蛋白的一级结构,并以 MASCOT 数据
库检索比对分析序列,经过分析和运算,有 3 个片段
被检出,结果得分 106 大于可信得分 83 分,进一步
验证了表达蛋白的正确性。表 2 为质谱的检测结
果,全部蛋白理论序列为图 4 所示。
2. 6 目的蛋白的活性测定
利用 BAEE法测定人胰激肽原酶活性。测得未
纯化的人胰激肽原酶粗品,1 mL活性为 2. 27 nmol / s。
IVGGWE CEQHSQPWQA ALYHFSTFQC GGILVHRQWV LTAAHCISDN YQLWLGRHNL
FDDENTAQFV HVSESFPHPG FNMSLLENHT RQADEDYSHD LMLLRLTEPA DTITDAVKVV
ELPTQEPEVG STCLASGWGS IEPENFSFPDDLQCVDLKIL PNDECEKAHV QKVTDFMLCVGH
LEGGKDTC VGDSGGPLMC DGVLQGVTSW GYVPCGTPNK PSVAVRVLSY VKWIEDTIAE NS
图 4 蛋白质理论序列
表 2 蛋白质质谱鉴定结果
序号 检测位置 检出肽段
1 969. 53 M. SLLENHTR. Q
2 1705. 78 R. QADEDYSHDLMLLR. L
3 2374. 15 R. QWVLTAAHCISDNYQLWLGR. H
3 讨论
试验中采用大肠杆菌表达重组人胰激肽原酶,
获得了较高表达量的重组蛋白,但是活性仍然不十
分理想。由于蛋白主要以包涵体形式存在,蛋白复
性长期以来一直是因扰人们的难题,就目前已掌握
的包涵体的分离纯化技术来讲,还没有一套较理想
的工艺方法能使蛋白质同时获得较高的得率和活
性。因此为了获得较多高活性的重组蛋白,在蛋白
复性方面还需要做大量的研究。
4 结论
本研究根据大肠杆菌的偏爱密码子设计合成了
人胰激肽原酶的基因序列,利用 pET-22b(+)载体
表达系统在大肠杆菌 Rosetta 中表达了人胰激肽原
酶,并且产量较前人有进一步的提高,约达 21. 6%,
粗品活性达每毫升 2. 27 nmol / s。通过 SDS-PAGE
电泳和 MALDI串联飞行时间质谱分析,验证了产物
大小和结构的正确性。
参 考 文 献
[1]Fernando SC,Najar FZ,Guo X,et al. Porcine kallikrein gene family:
genomic structure,mapping,and differential expression analysis. Ge-
nomics,2007,89(3) :429-438.
[2]Blaber SI,Yoon H,Scarisbrick IA,et al. The autolytic regulation of
human kallikrein-related peptidase 6. Biochemistry,2007,46(17) :
5209-5217.
[3]Paliouras M,Borgono C,Diamandis EP. Human tissue kallikrein:The
cancer biomarkers family. Caner Letters,2007,249:61-79.
[4]Yousef GM,Diamandis EP. The new human tissue kallikrein gene
family:structure,function and association to disease. Endocr Rev,
2001,22(2) :184-204.
[5]Sharma JN. Role of tissue kallikrein-kininogen-kinin pathways in the
cardiovascular system. Archives of Medical Reseach,2006,37(3) :
299-306.
[6]Mahabeer R,Bhoola KD. Kallikrein and kinin receptor genes. Phar-
macol Ther,2000,88(1) :77-89.
[7]袁新清,陈劲春.人胰激肽原酶在毕赤酵母中的分泌表达.北京
化工大学学报,2004,31(6) :33-35.
[8]杜珙,李体远,石之林,等. 人胰激肽原酶的表达. 中药学杂志,
2003,6(38) :465-467.
[9]何兆雄,唐永业,张天民,等.动物生化制药基础[M].北京:中国
商业出版社,1985:289-292.
(责任编辑 李楠)
941