全 文 :生物技术通报
BIOTECHNOLOGY BULLETIN·研究报告· 2008年第 6期
收稿日期:2008-05-27
基金项目:北京航空航天大学首届大学生科研训练计划基金(4010100)
作者简介:张宇(1984-),硕士研究生,研究方向:基因工程及生物制药
通讯作者:郑权,男,助理研究员,主要从事生物技术药物开发;Tel:010-82339872,E-mail:zhengquan@buaa.edu.cn
人纤溶酶原 kringle 5(以下简称 hPK-5)是一种抗血管形成从而治疗血管增生性疾病的新方法。就实体
肿瘤而言,如果没有血管生成,原发性肿瘤的生长不会超过 1~2mm3。 因此,如能抑制肿瘤周围新生血管的
生成,则可有效阻断瘤体的血供和营养,进而抑制肿瘤的增殖与转移,即为“肿瘤饿死疗法” [1]。 目前已发现
一些能够有效抑制新生血管进而抑制肿瘤生长的蛋白质,如血管抑制素(angiostatin)、内皮抑素(endostatin)
和 hPK-5 等,而 hPK-5 是其中活性最强的一个 [2,3]。 因此,hPK-5 在治疗实体肿瘤方面是一种极有前景的新
型药物,现各国大力开展其生产工艺和临床前研究 [4]。
用 PCR 方法扩增获得 hPK-5 基因 [5],与原核表达载体 pET-22b(+)重组,转化大肠杆菌 BL21(DE3),表
达了分泌性 hPK-5 蛋白,最后通过 Western Blot 鉴定其具有免疫学活性。
1 材料
1.1 质粒、菌种和目的基因
表达载体 pET-22b(+)和大肠杆菌 BL21(DE3)为美国 Novagen 公司产品,人纤溶酶原 kringle 5 基因由
人纤溶酶原 kringle 5在大肠杆菌中克隆和分泌表达
张宇 1 张名姝 2 李雅雯 1 郑权 1
(1北京航空航天大学生物与医学工程学院,北京 100083;2中国科学院生物物理研究所,北京 100101)
摘 要: 构建能够表达分泌性的人纤溶酶原kringle 5(简称hPK-5)的大肠杆菌工程菌。用PCR方法扩增获得
hPK-5基因,构建原核表达载体pET-22b(+)/hPK-5,转化大肠杆菌BL21(DE3),经IPTG诱导表达并鉴定其免疫学活性。
成功表达14kD的重组hPK-5,且约占菌体分泌性蛋白20%以上,经Western Blot分析表明其具有hPK-5的免疫抗原活
性。人纤溶酶原kringle 5在大肠杆菌中BL21(DE3)获得可分泌表达。
关键词: 人纤溶酶原Kringle5 大肠杆菌 克隆 分泌性表达
Cloning and Secretary Expression of Human Plasminogen
Kringle 5 in E.coli
Zhang Yu1 Zhang Mingshu2 Li Yawen1 Zheng Quan1
(1School of Biological Science and Medical Engineering,Beihang University,Beijing 100083;2Institute of Biophysics,Chinese
Academy of Sciences,Beijing 100101)
Abstract: The aim is to establish an engineeringE.coli strain which could produce secretory human plasminogen
kringle 5(hPK-5). hPK-5 gene was amplified by PCR and the prokaryotic expression vector pET22b(+)/hPK-5 was
constructed. Recombinant hPK-5 protein was expressed by inducingE.coli BL21(DE3)and the immunological activity of
which was identified by western blot. The recombinant hPK-5 about 14kD was expressed successfully in soluble form,
consisting of 20% of the secretary bacterial proteins by SDS-PAGE. Immunological analysis indicated that the protein
could react with antibodies against hPK-5. Thus,it proved that human plasminogen kringle 5 can be expressed by
engineeringE.coli strain BL21(DE3).
Key words: Human plasminogen kringle 5E.coli Clo e Secretary expression
2008年第 6期
本实验室保存。
1.2 工具酶和试剂
限制性内切酶 XhoⅠ ,SalⅠ ,Vent DNA 聚合酶 ,T4 DNA 连接酶 , 蛋白质 Marker P7708 均购于 New
England Biolabs 公司(NEB);核酸 Marker DL 2000 购于宝生物工程(大连)公司(TaKaRa);100bp DNA ladder
购于 TOYOBO 公司 ;His-Tag Antibody 购于 Novagen 公司 ;Anti-Mouse IgG 购于 Proteintech 公司 ;SuperECL
Plus 超敏发光液购自北京普利莱基因技术公司。
2 方法
2.1 构建 hPK-5 蛋白表达载体
根据目的基因的两端序列,设计 hPK-5 的 N 端引物:5′-GTTACGGTCGACGACGTCGAAACGCCGTCG-3′;
hPK-5 的 C 端引物:5′-CGATTCCTCGAGCGCGCATTGAGGCACGTCAC-3′; 划线部分表示限制性内切酶 Xho
Ⅰ,SalⅠ位点,上述引物由北京奥科生物技术公司合成(AuGCT)。 PCR 扩增 hPK-5 蛋白基因后,用内切酶
SalⅠ/XhoⅠ切割目的基因和 pET-22b(+),最后用 T4 DNA 连接酶连接目的基因和质粒载体。
2.2 工程菌株的筛选和鉴定
连接产物转化大肠杆菌 BL21(DE3),涂于含氨苄青霉素(Amp,100mg/L)的 LB 平板,过夜培养。挑取白
色单菌落,PCR 法快速检测质粒中插入片段的长度。 同时,将该质粒送北京奥科生物技术公司测序。
2.3 hPK-5 蛋白的分泌性表达与鉴定
从含有 pET-22b(+)/hPK-5 表达载体的工程菌 BL21(DE3)的 LB 培养基上挑取单菌落接种于含 Amp
(100mg/L)的 LB 培养基 3ml 中,37℃以 220r /min 振荡过夜;按 1:100 转接到 50ml LB 培养基,37℃下培养,
当 OD600 值在 0.3~0.4 之间时 ,在菌液中加入 IPTG(至终浓度为 1.0mmol/L),继续培养 6h 后 ,离心收集菌
体。 按文献[6]进行 15%的 SDS-PAGE 电泳。 电泳样品取部分按文献[7]进行 western blotting 检测。
3 结果
3.1 重组表达质粒 pET-22b(+)/hPK-5 的构建
PCR 扩增后获得分子量 270 bp 的目的基因 kringle 5,结果如图 1。
3.2 工程菌株的筛选和鉴定
以 pET-22b(+)空载体为阴性对照,挑取多个克隆的表达质粒为模板进行 PCR(图 2),1~3 的转化子均
为阳性克隆,插入的外源 hPK-5 基因的长度正确。 同时经基因测序证明,其核苷酸序列正确。
图 1 目的基因 kringle 5 扩增产物电泳结果 图 2 PCR 鉴定转化子结果图
E:pET-22b(+)空载体;M:100bp DNA ladder;1~3:转化子1:kringle 5 扩增后产物;M:Marker DL2000
3.3 hPK-5 的表达与鉴定
用 IPTG 诱导表达重组蛋白,其蛋白质分子量约 14kD,重组 hPK-5 约占菌体上清蛋白 20%以上,结果
1 000bp
2 000bp
张宇等:人纤溶酶原 kringle 5在大肠杆菌中克隆和分泌表达 133
生物技术通报 Biotechnology Bulletin 2008年第 6期
见图 3。
3.4 表达产物的免疫学鉴定分析
如图 4 诱导菌体上清样品在分子量为 14kD 处有明显的免疫杂交带,而作为阴性对照的未诱导样品在
此位置则无条带出现。 上述结果表明,hPK-5 在大肠杆菌中成功表达,并具有免疫学活性。
图 4 hPK-5 样品的 western-blot 结果
M:蛋白质标准 P7708v;1:诱导后菌体蛋白上清液 ;
2:未诱导菌体蛋白上清液
图 3 诱导表达蛋白的电泳结果
M:蛋白质标准 P7708v;1:诱导后菌体蛋白上清液 ;
2:未诱导菌体蛋白上清液
4 讨论
在肿瘤等血管生成依赖性疾病治疗性药物中,目前研究较多的是内皮抑素和血管抑素,它们在多种实
体肿瘤的治疗中具有高效、低毒及无耐药性等优势。 hPK-5 因子是该类因子中抑制活性最强,毒副作用最低
的一种,如何获得高活性的 kringle 5 蛋白成为当前研究的热点之一,并引起各国研究者的广泛关注 [1,2,8]。
采用大肠杆菌胞内表达 kringle 5,易形成无活性的包涵体,表达产物经体外变性/复性处理后,虽可获
得部分正确折叠的 kringle 5,但其产量不稳定,回收率低 [9~11]。 其原因可能是 K5 由一个完整的 kringle 环状
结构和末端氨基酸序列组成,形成 kringle 5 的环状结构含有 3 对二硫键(Cys461-Cys540,Cys482-Cys523 和 Cys511-
Cys535)[2]。 在大肠杆菌周质内的氧化环境下,巯基易于形成正确的二硫键结构,继之折叠成活性功能的蛋白 [12]。
采用分泌型表达载体 pET-22b(+),氨基端的信号肽将 kringle 5 分泌到大肠杆菌的周质中,可直接获
得分泌性和正确折叠的活性蛋白,避免了包涵体的形成和变性 /复性的后处理,也使 hPK-5 具有较高的生
物学活性。同时,其羧基端有一个 6×His 组氨酸标签,可通过镍离子树脂亲和层析纯化,简化了该蛋白的分离
纯化工艺。 因此,该技术体系可简便地获得高活性的 hPK-5,为该蛋白的进一步应用研究奠定了实验基础。
参考文献
1 Cao Y,Chen A,An SS,et al. J Biol Chem,1997,272(36):22924~22928.
2 Li H,Dhannhal M,Volk R,et al. Biochem Biophys Res Comm,1999,258(3):668~673.
3 Malinowski DP,Sadler JE,Davie EW. Biochemistry,1984,23(18):4243~4250.
4 Yufei Zhou,Quan Zheng,Jin Gao,et al. Biotechnology Letters,2005,27:167~171.
5 Forsgren N,Reden B,Israelssen M,et al. FEBS Lett,1987,213(2):245~260.
6 萨姆布鲁克J,弗里奇EF,曼尼阿蒂斯T.分子克隆实验指南(第2版).北京:科学出版社,1999,681~683.
7 卢圣栋.现代分子生物学实验技术(第2版). 北京:中国协和医科大学出版社,1999,400~404.
8 Zhang D,Kaufman PL,Gao G,et a1. Diabetologia,2001,44(6):757~765.
9 陈浩,陈于红,张菁,等. 南京大学学报(自然科学),2001,37(2):218~222.
10 边六交,党红艳,杨晓燕. 高校化学工程学报,2006,20(5):775~780.
11 陈显久,张悦红,于保锋,等. 中国生物制品学杂志,2005,18(1):5~8.
12 张友鸿,杨克恭,陈松森. 生命的化学,2001,21(6):470~472.
134