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生物技术通报
BIOTECHNOLOGY BULLETIN 2010 年第 6 期
利用重组大肠杆菌生产人生长激素发酵工艺的研究
朱振洪 葛立军 刘文洪
(浙江中医药大学生物工程学院,杭州 310053)
摘 要: 在摇瓶培养和发酵罐培养条件下,研究了 E coli /BL21(DE3)/pET30a(+)-hGH工程菌的不同发酵工艺条件。
确立了该工程菌的最优化工艺参数:M9-2 培养基,37℃、pH值为 6 8 - 7 4、诱导起始菌体密度为 OD600达 3 0 - 4 0,IPTG浓度
为 1 mmol /L,诱导时溶氧控制为 50%以上,补料为 10%甘油、5%Yeast extract和 5% Tryptone。该工艺条件经过连续三批发酵,
证实稳定可行,目的蛋白在胞间质呈可溶性表达,表达量占菌体总蛋白的 20%以上。
关键词: 大肠杆菌 人生长激素 发酵
Fermentation Conditions for Recombinant
Human Growth Hormone Production in E coli
Zhu Zhenhong Ge Lijun Liu Wenhong
(Bio-engineering College,Zhejiang Chinese Medicine University,Hangzhou 310053)
Abstract: The optimum culture conditions of the bacterial strain of recombinant growth hormone(E. coli /BL21(DE3)/pET32a
(+)-hGH)were determined. The optimum expression conditions were found to be at 37℃ temperature,pH range 6 8 - 7 4,in-
duced beginning OD600 3 0 - 4 0,IPTG concentration kept 1 mmol /L,the dissolved oxygen concentration maintained at over 50%,and
feeding medium 10% glycerol + 5% Yeast extract + 5% Tryptone. The conditions were confirmed by continuous three fed-batch fermen-
tation,Soluble rhGH can be expressed stably and estimated at 20% of the total bacterial protein.
Key words: E. coli Human growth hormone Fermentation
收稿日期:2010-02-01
作者简介:朱振洪,男,硕士,助理研究员,研究方向:基因工程药物开发;E-mail:zhenhongzhu@ yahoo. com. cn
人生长激素(hGH)是由脑下垂体分泌的一种
非糖基化蛋白质,由 191 个氨基酸组成,分子量为
22 kD。它具有广泛的生理调节作用,能促进骨、软
骨组织分裂、增殖和骨化,从而使身高增加还促进代
谢作用,临床上主要用于治疗侏儒症,近年来研究
发现人生长激素还可治疗烧伤、创伤、骨折和骨质疏
等多种疾病[1]。
最初生长激素是从牛和猪脑垂体中提取出来
的,治疗效果不佳,并且有发热、过敏等副作用。化
学合成的方法效率较低,没有实用价值,因此,采用
基因工程方法大规模生产人生长激素是满足临床大
量需求的重要手段。目前人生长激素已分别在大
肠杆菌、酵母及哺乳动物细胞中获得成功表达。
虽然真核表达系统中 rhGH 的活性高,但产量低、
生产成本高,无法满足临床的大量需求。大肠杆
菌由于生长周期短、表达量高、成本经济而成为目
前 rhGH生产的主要表达系统[2,3]。本研究主要运
用大肠杆菌 pET30a(+)表达载体,菌种为 BL21
(DE3) ,对人生长激素进行胞间质可溶性表达,并
通过大量试验优化工程菌的培养条件,以期实现
工程菌的稳定培养和高水平表达,为 rhGH 的大规
模生产提供了条件。
1 材料与方法
1 1 材料
1 1 1 工程菌 表达重组人生长激素的工程菌
pET30a(+)-hGH /BL21(DE3)由本实验室构建,
- 70℃甘油冻存。
1 1 2 试剂及仪器 酵母抽提物、胰蛋白胨均购自
英国 OXOID公司;IPTG 购自 Sigma 公司;其它试剂
为国产分析。发酵设备采用美国 NBS BioFlo-110 发
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酵罐。图像分析系统采用 Pharmacia的 Image master
VDS系统。
1 1 3 培养基 种子液培养基为 LB 培养基,使用
前加入 50 μg /mL 的卡那霉素(kan)。发酵培养基
为改良 M9 培养基(配方均参照《分子克隆》)[4]。
1 2 培养方法
1 2 1 种子培养 挑取单克隆,接种到 LB 种子液
中(含 50 μg /mL的卡那霉素) ,37℃培养 17 - 20 h。
1 2 2 摇瓶大规模培养 采用 250 mL 三角瓶,每
瓶盛发酵培养液 25 mL,接种比例为 1 ∶ 60,37℃
200 r /min摇床振荡培养。
1 2 3 发酵罐培养 采用 NBS BioFlo-110 发酵
罐,总体积为 7 L,装液量为 5 L。按 10%接种,发
酵参数设置为起始 DO2:大于 40%;起始转速:200
r /min;通气量:10 - 20 L /min;连动转速:200 - 800
r /min。
1 3 分析方法
1 3 1 细胞密度测定 取菌液 0 5 mL,用无菌水
稀释后在 600 nm 处测定吸光度。
1 3 2 菌体总蛋白测定 Lowry 法测定菌体总蛋
白含量。
1 3 3 重组 hGH表达水平的测定 表达产物采用
SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳分析(SDS-PAGE) ,浓缩
胶和分离胶的浓度分别为 5%和 12%,并用 Pharma-
cia公司的 Image Master 凝胶成像系统(VDS)进行
拍照及扫描各泳道条带密度,计算重组蛋白条带密
度占整个泳道百分比[5]。
2 结果与分析
2 1 最佳发酵培养基的筛选
M9 盐基础培养基[4]配方(1 L) :NH4Cl 0 5 g ,
Na2HPO4 3 0 g ,KH2PO4 1 5 g,NaCl 0 25 g,121℃
灭菌后加入 0 1 mol /L CaCl2 1 mL /L、1 mol /L Mg-
SO4 2 mL /L。
表 1 不同M9 改良培养基的主要添加成分
培养基编号 A B C D
培养基名称 M9-1 M9-2 M9-3 M9-4
主要添加成分
0 1%
葡萄糖
0 5%
葡萄糖
1 0%
葡萄糖
2 0%
葡萄糖
表 1 所列的各个培养基中添加成分主要用
已灭菌的 20% (W /V)葡萄糖调整到所需浓度。
首选从平板上挑取单菌落,接种到 LB 种子液中,
37℃培养 18 h;再按 1 ∶ 60 的比例二级接种于 25
mL 培养基的 100 mL 三角烧瓶中,培养 2 h 左
右,加IPTG 至终浓度为 1 mmol /L 诱导目的蛋白
表达,共诱导 4 h。分别取诱导前和诱导后样品
进行 SDS-PAGE 电泳,扫描分析目的蛋白表达
水平。
从图 1 中可以看出,葡萄糖初始浓度为 0 5%
(W /V)时表达量最高,而当葡萄糖初始浓度为
2 0%(W /V)时 hGH表达大大降低,暗示外源基因
的表达可能受葡萄糖代谢物的抑制,故此在发酵过
程中应控制培养液中葡萄糖浓度。故选择改良
M9-2作为后续试验的培养基。
图 1 培养基对表达的影响
2 2 培养基初始 pH值对工程菌的表达影响
用稀盐酸或氨水调节不同摇瓶中的 pH 值,pH
分别为 6 0、6 2、6 4、6 6、6 8、7 0、7 2、7 4。37℃,
培养 3 h后再加 IPTG至终浓度为 1 mmol /L开始诱
导,共诱导 4 h,结果如图 2。诱导后样品经检测
SDS-PAGE检测并扫描蛋白含量。从电泳图谱及扫
描结果(图 3)可看出,控制诱导期的 pH 对表达影
响较大,当 pH 低于 6 6 时,rhGH 表达水平很低
(5%以下) ,而随着 pH 的升高,目的蛋白表达量得
到明显提高,pH 为 7 2 时表达水平达到最高
(22%)。所以本工程菌的发酵 pH 值应选择在
pH6 8 - 7 4 的范围内。
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2010 年第 6 期 朱振洪等:利用重组大肠杆菌生产人生长激素发酵工艺的研究
图 2 不同 pH对表达的影响
图 3 不同 pH条件下蛋白表达的电泳图
2 3 IPTG浓度对工程菌表达的影响
本试验研究 IPTG浓度对表达的影响,分别加入
IPTG至相应的终浓度(浓度范围 0 1 - 1 2 mmol /L,
每隔 0 1 mmol /L 取点)并开始诱导,共诱导 4 h。
结果如图 4 所示,低浓度的 IPTG 对于 rhGH 表达
图 4 发酵过程中 IPTG浓度对表达的影响
量有较大影响,而当 IPTG浓度大于 1 1 mmol /L时,
表达水平相应会受到抑制,综合来看 IPTG 浓度控
制在 0 9 - 1 1 mmol /L 较好,有利于重组人生长激
素的表达。
2 4 诱导起始 OD600的选择
诱导起始 OD 决定了诱导最佳时机,本试验选
取不同的起始 OD600,分别为 0 5 - 5 0,每隔 0 5 取
一个点,加 IPTG至终浓度为 1 mmol /L开始诱导,共
诱导 4 h收获样品,结果如图 5 所示。从图 5 可以
看出,OD600为 3 - 4 的表达水平最好。说明过早诱
导不仅菌体少表达水平也低,而过迟的诱导则导致
整个发酵时间的延长,能耗增加,同时表达水平也会
有一定的下降。因此考虑诱导起始 OD600为 3 0 -
4 0 为宜。
图 5 不同起始诱导 OD600对表达的影响
2 5 摇瓶补料研究
在上述优化后的培养条件下,为了考察流加营
养物质是否有利于重组大肠杆菌对外源蛋白的表
达,进行了摇瓶不同补料添加的研究。本试验选取
不同浓度葡萄糖、甘油与 Yeast extract和 Tryptone配
合,作为发酵过程中的碳源和氮源的补料,共设计了
4 种补料的搭配(表 2)。
表 2 发酵过程中的补料成分
分类 补料的成分
补料 1 10%甘油 + 5%Yeast extract + 5% Tryptone
补料 2 10%葡萄糖 + 5% Yeast extract + 5% Tryptone
补料 3 30%甘油 + 15% Yeast extract + 15% Tryptone
补料 4 30%葡萄糖 + 15%Yeast extract + 15% Tryptone
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从图 6 可以看出,4 种补料对表达水平的影响
不同,其中补料 1 对表达水平影响相对比较稳定,而
补料 2、3 和 4 对表达有一定的抑制作用。可能是由
于葡萄糖在供能的时候又会产生大量的乙酸,当乙
酸积累到一定的程度时将影响工程菌的生长和表
达。据文献报道甘油是基因工程菌较好的碳源,不
会导致副产物乙酸的积累,而本试验发现高浓度的
甘油同样也会使 rhGH 表达水平显著下降。通过 4
种不同补料的比较发现采用 10%甘油 + 5% Yeast
extract + 5% Tryptone的补料配方较佳。
图 6 不同补料成分对表达水平的影响
2 6 发酵参数优化整合
根据摇瓶试验及发酵罐试验结果进行参数优
化、整合,确定了发酵的基本参数:采用 M9-2 培养
基,接种比例 1∶ 10,温度 37℃,pH为 6 8 - 7 4,培养
阶段 DO2大于 40%,初始转速为 200 r /min,通气量:
10 - 20 L /min,连动转速:200 - 800 r /min,待 OD600
达到 3 0 - 4 0 时开始诱导。诱导阶段加入 IPTG浓
度为 1 mmol /L,DO2大于 50%,待 pH 上升(碳源耗
尽)后以合适转度流加碳源(10%的甘油)及氮源
(5% Yeast extract + 5% Tryptone)补料维持 pH 在
6 8 - 7 2,诱导 3 h 结束。一共进行了 3 次重复试
验,电泳结果如图 7。从图 7 可以看出,3 批发酵结
果稳定,rhGH 的平均表达量为菌体总蛋白的 21%,
并且不会形成包涵体,而是分泌至胞间质以可溶形
式表达。
3 讨论
研究表明,对于重组大肠杆菌的发酵不存在普
适的发酵条件,这是由于其质粒、宿主菌、表达产物
的性质等特殊性决定的。传统的利用大肠杆菌生产
1 - 3.三批发酵试验表达产物;4.蛋白质分子量标准
图 7 三批发酵试验表达 rhGH电泳图
人生长激素方法有两种,一是将其分泌至胞外上清
中,虽然纯化方便,但表达量低(10%左右) ,且容易
引起产物的降解;二是在胞内高效表达,表达量可达
40%以上,但易形成包涵体,需要进行变复性等操
作,纯化工艺烦琐,活性蛋白得率低。近年来利用周
质腔分泌表达是大肠杆菌表达系统新的发展方向,
其主要特点是:蛋白质以可溶形式表达,具有较高的
生物活性;周质腔中蛋白水解酶相对较少,提高了重
组蛋白的稳定性;消除了被分泌蛋白对细胞本身的
毒性作用;表达的蛋白易于后续的分离纯化[6,7]。
本研究应用 pET30a(+ )表达载体和 BL21
(DE3)宿主菌,成功地将 rhGH 分泌至胞间质进行
可溶性表达,由于周质腔分泌表达的产物具有可溶
性和生物活性,所以该种表达方式是选择慢速持续
的表达策略,如中等强度启动子、合适的诱导剂浓
度、丰富的培养基等,避免包涵体的形成。
基于以上原因,本研究通过试验研究,确定了
rhGH在 M9-2 培养基中发酵的参数,即诱导剂的浓
度为 1 mmol /L、pH 值控制在 6 8 - 7 4、诱导起始
OD600为 3 0 - 4 0,诱导时间为 3 - 4 h,并通过试验
发现发酵过程中采用 10%甘油 + 5% Yeast extract +
5% Tryptone作为碳、氮源补料较好,上述工艺条件
通过多批发酵重复性试验,证实稳定可行,表达产
物能以胞间质可溶性表达,表达水平达 20%以上,
为 rhGH的大规模生产及后续分离纯化工作提供
参考。
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参 考 文 献
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