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Noncanonical function of retinoic acid inducible gene-I

维甲酸诱导基因I的新功能



全 文 :第25卷 第4期
2013年4月
生命科学
Chinese Bulletin of Life Sciences
Vol. 25, No. 4
Apr., 2013
文章编号:1004-0374(2013)04-0396-06
维甲酸诱导基因I的新功能
崔会会,邱春红,鲁秀敏*
(重庆理工大学药学与生物工程学院,重庆 400054)
摘 要:维甲酸诱导基因 I (retinoic acid inducible gene-I, RIG-I)最广为人知的生物学功能是抗病毒作用,其
抗病毒作用机理及信号通路受到广泛关注。最近研究表明,RIG-I不仅具有抗病毒功能,还参与炎症反应、
细胞增殖分化、吞噬或细胞凋亡、免疫调节等诸多生物学事件。对 RIG-I在抗病毒固有免疫及其他领域功
能的最新研究发现作一综述。
关键词:维甲酸诱导基因 I;抗病毒;炎症;细胞增殖
中图分类号:Q255;R392.1 文献标志码:A
Noncanonical function of retinoic acid inducible gene-I
CUI Hui-Hui, QIU Chun-Hong, LU Xiu-Min*
(College of Pharmacy and Biological Engineering, Chongqing University of Technology, Chongqing 400054, China)
Abstract: The antiviral role of retinoic acid inducible gene-I (RIG-I) has been well recognized, and most studies
focus on its activation mechanism and down-stream signaling pathway in antiviral response. Recently, accumulating
evidence suggests that RIG-I not only functions in antiviral systems but also participates in a series of biological
events, such as inflammation, cell proliferation, differentiation, apoptosis and even immunoregulation. Here we
review recent advances in antiviral study of RIG-I as well as its functions in other fields.
Key words: retinoic acid inducible gene-I (RIG-I); antiviral signaling; inflammation; cell proliferation
收稿日期:2012-10-19; 修回日期:2012-11-29
*通信作者:E-mail: luxm@cqut.edu.cn
维甲酸诱导基因 I (retinoic acid inducible gene-I,
RIG-I)是在用全反式维甲酸 (all-trans-retinoic acid,
ATRA)刺激急性早幼粒细胞白血病 (acute promy-
elocytic leukemia, APL)细胞系 NB4时发现的一个
表达上调的基因 [1]。RIG-I位于细胞质内,可识别
病毒双链 RNA的解旋酶,是抗病毒信号通路的胞
内主要受体蛋白,属于 RIG-I样受体 (RIG-I like
receptors, RLRs)家族成员。该家族除了含有 RIG-I
以外,还包括黑色素瘤分化相关基因 5 (melanoma
differentiation associated gene 5, MDA5) 和 LPG2
(laboratory of genetics and physiology 2),它们一起
构成了独立于 Toll样受体 (Toll-like receptors, TLRs)
外的细胞内抗体病毒信号系统 [2]。
继最初在 ATRA诱导的 APL细胞株 NB4中发
现 RIG-I基因之后,近来研究发现在多种细胞中,
不同细胞因子均可刺激 RIG-I发挥作用。例如,在
干扰素 β (interferon-β, IFN-β)处理的血管平滑肌细
胞、T24膀胱癌细胞、巨噬细胞 THP-1和内皮细
胞 [3]以及被白介素 β (interleukin-β, IL-1β)处理的齿
龈成纤维细胞中都能检测到 RIG-I的诱导表达。
RIG-I能通过干扰素调节基因 1 (interferon regulatory
factors 1, IRF1)顺式元件被 IFN-β反馈诱导 [4],提
示它自身可作为 ISG (IFN-stimulated gene, ISG)基
因参与机体免疫调节。李斯特细菌 (Listeria mono-
cytogene)感染后,可在体外巨噬细胞及体内肝脏细
胞、脾脏网组织细胞中检测到 RIG-I被诱导表达 [5]。
此外,在急性髓细胞性白血病 (acute myeloid leukemia,
AML)中,RIG-I负调控粒细胞的增殖分化 [6]。在
黑色素瘤细胞中,活化的 RIG-I激活免疫系统,介
导 I型干扰素的表达,进而抑制肿瘤增殖 [7-8]。以上
研究表明,不同“环境”中 RIG-I生物学功能具有
崔会会,等:维甲酸诱导基因-I的新功能第4期 397
多样性,体现其对外界刺激的敏感性,提示 RIG-I
在抗病毒信号通路发挥作用之外,可能参与炎症反
应、细胞增殖分化与凋亡、免疫调节等生物学过程。
目前,这些领域还没有关于 RIG-I功能的明确的系
统的报道。除了“感受”病毒入侵启动抗病毒先天
免疫之外,RIG-I本身作为一种功能蛋白参与各种
生物学事件。
1 RIG-I与抗病毒信号通路
1.1 RIG-I蛋白的结构
在固有免疫反应系统中,RIG-I作为细胞质内
的病原模式识别受体,对于识别病毒及清除病原
体具有重要意义。RIG-I蛋白 N-端包含两个串联的
胱天蛋白酶招募结构域 (caspase recruitment domain,
CARD),行使 RIG-I的激活功能 [9];中部是解旋
酶结构域,包含一个 ATP结合位点,该位点对于
RIG-I发挥功能是必需的;在 RIG-I的 C-端含有一
个抑制结构域 (repression domain),又称为调节结
构域 (regulatory domain, RD),该结构域发挥抑制功
能 [10]。科学家们通过磁共振和 X-射线衍射的方法
发现,RD的主要功能是结合 RNA,其中有一个锌
结合位点对于 RD和 RNA的结合非常关键 [10-11]。
对 RIG-I蛋白结构的研究有利于更好地发现和理解
其功能特点 [12] 。
1.2 RIG-I蛋白的抗病毒功能
RIG-I可以结合病毒复制过程中产生的双链
RNA (double stranded RNA, dsRNA),但不结合自身
细胞中的 RNA[1]。通过 RIG-I和多种 RNA的结合
实验表明,RIG-I还可以结合病毒复制过程中产生
的 5′- 三磷酸 RNA。哺乳动物细胞中的 5′- 三磷
酸 RNA有帽子结构保护或有核苷酸修饰,因此,
外源的病毒 RNA能很快被机体识别和清除 [13]。
RIG-I在成纤维细胞、巨噬细胞、常规树突细胞
(conventional dendritic cells, cDCs)中发挥抗病毒功
能。RLR家族成员主要感知 RNA病毒的感染,其
中 RIG-I主要负责感受副黏病毒 (paramyxoviruses)、
水泡口炎病毒 (vesicular stomatitis virus)和流感病
毒 (influenza virus);而 MDA5主要感受细小病毒
(picornaviruses)[14]。
1.3 RIG-I的抗病毒信号通路
对于 RIG-I信号通路的了解主要来自对其抗病
毒功能的研究 [15]。RIG-I含有胱天蛋白酶激活招募
区 (CARD),能识别细胞内病毒 RNA的受体蛋白。
当病毒感染细胞时,RIG-I 与 5′-三磷酸化单链 RNA
(ssRNA)或双链 RNA (dsRNA)结合,其构象发生改
变,转位到线粒体,并与线粒体上的抗病毒信号
通路的下游接头蛋白MAVS (mitochondrial antiviral
signaling protein)相互作用,从而激活 IRF3 (interferon
regulatory factor 3) 和 NF-κB (nuclear factor-κB) 介 导
的信号通路,诱导 I型干扰素和炎症因子的产生,
发挥机体固有免疫效应。
2005年,全球 4个独立的实验室共同发现了
RIG-I的下游接头分子MAVS [16-17]。MAVS蛋白 N-
端 CARD结构域和 RIG-I的 CARD结构域结合,
传递下游信号;而 C-端跨膜结构 (transmembrane
domain, TM)负责将 MAVS蛋白定位于线粒体上。
最近研究表明,MAVS在抗病毒信号传递过程中扮
演重要角色 [18]。MAVS结合其下游接头蛋白MITA
(mediator of IRF3 activation)后 [19-20],可以招募 TBK1
(TANK binding kinase 1)和 IKKε (IκB kinase ε),进
而磷酸化 IRF3和 IRF7。激活的 IRF3/7可以形成
二聚体,进入细胞核启动 I型干扰素的表达。另一
方面,RIG-I的下游接头分子MAVS可以结合 TRAF6
(tumor necrosis factor receptor-associated factor 6)、
FADD (Fas associated protein with death domain)和 RIP1
(receptor interacting protein 1),进而招募 IKKα、IKKβ
和 IKKγ,最终激活 NF-κB[17]。最近,科学家发现
一种新的 RIG-I结合蛋白 ZAPS (shorter form of zinc-
finger CCCCH-type antiviral protein 1),ZAPS可以结
合 RIG-I,提高 RIG-I的活性,其缺失导致抗病毒
通路失活 [21]。
2 RIG-I与炎症
2.1 RIG-I参与炎症反应
炎症是生物体对于刺激的一种防御反应,目的
是清除外来刺激或修复损伤的组织 [22]。机体受到有
害物质刺激后,血管内皮细胞的通透性增加,从而
使血清组分以及免疫细胞能够迅速聚集到炎症部
位:一方面控制炎症反应的程度;另一方面启动组
织修复过程 [23]。脂多糖 (lipopolysaccharides, LPS)
是革兰氏阴性菌外膜上的一类大分子物质,可以和
TLR4结合诱导急性炎症反应 [24]。在不同细胞中,
RIG-I可受到 TNF-α、IFN-γ、IL-1、LPS的诱导表达,
过表达RIG-I可以上调环氧化酶2 (cyclooxygenase-2,
COX-2)的表达,并激活其启动子区域 [25-27]。除了
IFN-γ,其他炎性因子也可以上调 RIG-I的表达。在
IFN-β的协助下,TNF-α可以在成纤维细胞样的滑
膜细胞 (fibroblast-like synoviocytes)中诱导 RIG-I的
生命科学 第25卷398
表达 [28]。此外,RIG-I可以调控 LPS诱导的下游炎
症因子 TNF-α,干涉 RIG-I可以有效抑制晚期 TNF-α
的诱导 [29]。这些都暗示着 RIG-I可能参与炎症信号
通路,并调节炎症反应。
RIG-I可能的炎症调节功能还体现在多种炎症
相关疾病中 RIG-I的表达显著升高。动脉硬化是一
种常见的炎症相关疾病,在动脉硬化斑块的内膜巨
噬细胞中,RIG-I的表达量明显上升,提示 RIG-I
参与了巨噬细胞的活化 [30]。Asdonk等 [31]发现,被
活化的 RIG-I导致内皮细胞功能紊乱,这可能是形
成动脉粥样硬化的重要途径。而在红斑狼疮肾炎
(lupus nephritis)患者中,其尿液沉淀物可以检测出
超出正常水平的 RIG-I含量 [32]。并且,RIG-I的表
达量在类风湿性关节炎病人的滑液组织中亦显著上
升,提示 RIG-I可能在关节炎的发生发展过程中发
挥重要作用 [33]。此外,RIG-I敲除小鼠表现出肠炎
症状,说明 RIG-I也有可能参与了 T细胞激活 [34]。
2.2 RIG-I在炎症反应中的作用机制
RIG-I可以通过激活 NF-κB来诱导一系列包括
IL-1β、IL-6、 IL-8、IL-28、IL-29和 RANTES (regulated
upon activation, normal T-cell expressed, and secreted)
在内的炎性因子和趋化因子 [35-36]。在巨噬细胞中,
LPS可以激活 TRIF (TIR domain containing adaptor
protein inducing IFN-β)通路,通过自分泌的 IFN-β
来诱导 RIG-I的产生。这些被诱导的 RIG-I又可以
激活 TNF-α的启动子,调节 LPS晚期诱导的 TNF-α,
从而在LPS诱导的炎症反应中发挥放大器的作用 [29]。
此外,衰老细胞可以分泌促炎因子 IL-6和趋化因子
IL-8[37]。最近研究发现,在细胞衰老过程中伴随
RIG-I表达上调,RIG-I通过下游接头蛋白 MAVS
激活转录因子 NF-κB和 AP-1,从而诱导细胞因子
的表达 [38]。在没有病毒感染条件下,RIG-I表达上
调只诱导炎性因子的产生而没有 IFN-β[38],这说明
RIG-I激活 NF-κB和 ISRE (IFN-stimulated response
elements)是通过不同机制实现的。
3 RIG-I与癌症
与正常癌旁组织相比,RIG-I在肿瘤细胞中的
含量通常较低 [4]。例如,在人前列腺癌细胞 DU-
145、乳腺癌细胞 T47D和神经胶质母细胞瘤 T98G
中,都能检测到 RIG-I启动子活性的明显低下。在
人乳腺癌细胞系MCF-7和宫颈癌细胞系 HeLa中,
RIG-I可以被 IFN-γ诱导,并且介导了 IFN-γ激活
的 ISG15 (interferon stimulated gene 15) 和 CXCL11
(chemokine (C-X-C motif) ligand 11)的表达 [25,39]。在
恶性肿瘤中,活化的 RIG-I介导 cDCs的成熟和持
续表达 [40],表明 RIG-I在癌症的发展过程中可能具
有免疫调节功能。一项在人乳腺癌细胞系 MDA-
MB-435的基因芯片实验表明,当细胞转染维甲酸
受体 β2 (retinoic acid receptor β2, RARβ2)后,RIG-I
的表达显著上调,说明 RIG-I可能具有抑制癌症
转移的功能 [41]。这些研究表明,RIG-I可能具有抑
癌基因潜力,参与多种癌症发生与发展过程。相反,
在某些外界刺激下,RIG-I又可以间接地诱发恶性
肿瘤的生成。Wornle等 [42]发现,RIG-I通过上调血
管内皮生长因子 (vascular endothelial growth factor,
VEGF)的表达,介导了病毒引起的恶性间皮瘤的
生成。
4 RIG-I与细胞增殖分化
在全反式维甲酸诱导白血病细胞分化的过程
中,可以发现 RIG-I表达上调;在没有维甲酸刺激
的生理条件下,髓样细胞分化过程中同样可以观察
到 RIG-I表达上调 [1,6]。RIG-I的缺失会导致不断进
行的骨髓增殖,RIG-I基因缺陷小鼠会发生髓系异
常增生性疾病 [6],这些都说明 RIG-I和粒细胞分化
有关。研究发现,RIG-I的缺失将会引起一种 IFN
保守序列结合蛋白的表达下调,这种蛋白被证实是
粒细胞分化的主要调节分子之一 [6]。Sun[43]报道,
RIG-I-/-小鼠存在免疫缺陷,骨髓脾脏中 B细胞发
育障碍,血清中检测不到 IgG3,提示 RIG-I在 B细
胞增殖分化及抗体类别转换方面发挥其重要作用。
最近有报道称,RIG-I参与到细胞增殖调节过程。
Jiang等 [44]发现,RIG-I不仅增强了干扰素信号通
路中 STAT1 (signal transducer and activator of transcription
1)蛋白的激活和 ISG基因的表达,而且对于抑制白
血病细胞系的生长有重要作用。RIG-I可以放大
STAT1对干扰素刺激基因的诱导作用,从而阻止白血
病细胞的增殖,并且这个抑制作用不依赖于MAVS。
5 RIG-I的其他功能
RIG-I可能参与细胞凋亡途径。在一种人工合
成的维甲酸——视黄酸 CD437诱导的黑色素瘤细
胞 A375中,采用 HCV非结构蛋白 NS3/4A切割
RIG-I信号通路后,CD437诱导的 NF-κB活性和
A375细胞凋亡都受到了影响 [45]。在肝癌细胞转染
poly (I:C)的凋亡模型中,也检测到 RIG-I、MDA5、
IFN-β以及 ISG15的上调,说明RIG-I在转染poly (I:C)
崔会会,等:维甲酸诱导基因-I的新功能第4期 399
诱导凋亡的模型中发挥功能,但内在机制不太清楚 [46]。
后来,Besch等 [47]报道,RIG-I诱导的黑素瘤细胞
凋亡需要Noxa (Latin for damage)蛋白、Apaf-1 (apoptotic
protease activating factor 1)和下游的 caspase-9,但不依
赖于 p53;而在非恶变细胞中,抗凋亡蛋白 Bcl-xL
可以抑制 RIG-I诱导的凋亡 。这些报道都说明
RIG-I参与细胞凋亡,其机制可能并不同于经典细
胞凋亡途径,需要进一步研究 [48]。
此外,RIG-I在抵抗细菌感染方面也有一定功
能。Kong等 [49]发现,RIG-I缺失小鼠更容易受到
大肠杆菌的感染。随后,他们在巨噬细胞中干涉
RIG-I,发现 LPS诱导的细胞吞噬作用大大被抑制,
这表明 RIG-I还具有促进细胞吞噬细菌的功能。
6 展望
RIG-I是在用全反式维甲酸刺激急性早幼粒细
胞白血病细胞系 NB4的“胁迫”环境中被发现的
[1]

我们暂称它为“压力”感应蛋白。RIG-I的表达受
到多种因素调控,同时又发挥多种生物学功能。双
链或者单链 RNA病毒入侵、LPS细菌感染均可上
调 RIG-I的表达。干扰素、肿瘤坏死因子、DNA损
伤同样能激活 RIG-I的表达。此外,在诸如动脉粥
样硬化、系统性红斑狼疮等疾病的发展过程中也同
样能观察到 RIG-I被诱导表达。以上这些现象表明,
RIG-I发挥多种生物学功能,但这些功能发挥的机
理还处于探索阶段。尽管在双链或者单链 RNA病
毒入侵机体时,RIG-I在抗病毒先天免疫中的作用
机制已被大多数人接受,但很难仅仅用抗病毒通路
解释 RIG-I参与的众多生物学事件。
近些年来,人们在 RIG-I抗病毒反应中的激活
机制及其下游的信号转导通路方面做了大量研究。
然而,与 RIG-I在抗病毒反应中的作用相比,人们
对其在其他领域的功能及作用机理还知之甚少,如
RIG-I基因定位于人 8号染色体短臂 1区 2带 (9p12),
该区为高频等位基因缺失区和抑癌基因富集区
[50]

尽管研究发现 RIG-I具有抑癌属性,但具体的相关
机理还不清楚。序列分析发现,RIG-I含有丝氨酸、
苏氨酸、酪氨酸等多个磷酸化位点,与其参与的
RIG-I去磷酸化激活抗病毒信号通路的调节方式相

[51]
。目前,已证实 LPS等细菌刺激可致 RIG-I
的丝氨酸 /苏氨酸磷酸化并使其激活
[33]
,提示其发
挥多样性的生理功能可受磷酸化调节,但确切的机
理和相关生理功能还不清楚。RIG-I含串联重复的
CARD结构域,CARD在凋亡和相关基因表达调控
等生理过程中介导分子间相互作用
[2]
,是否可以以
此为线索来揭示 RIG-I是如何参与抑癌和细胞凋
亡的?总之,对于 RIG-I抗病毒固有免疫已经有了
一个比较全面和深刻的认识,今后研究焦点逐渐转
到非经典作用。接下来的研究将深入探讨 RIG-I在
非病毒感染条件下是如何发挥效应及其具体的激活
机制。对 RIG-I在抗病毒以外领域发挥作用的探讨,
有助于更好地理解 RIG-I和许多疾病的关系。
[参 考 文 献]
[1] Liu TX, Zhang JW, Tao J, et al. Gene expression networks
underlying retinoic acid-induced differentiation of acute
promyelocytic leukemia cells. Blood, 2000, 96(4): 1496-
504
[2] Yoneyama M, Kikuchi M, Matsumoto K, et al. Shared and
unique functions of the DExD/H-box helicases RIG-I,
MDA5, and LGP2 in antiviral innate immunity. J
Immunol, 2005, 175(5): 2851-8
[3] Imaizumi T, Yagihashi N, Hatakeyama M, et al. Expression
of retinoic acid-inducible gene-I in vascular smooth
muscle cells stimulated with interferon-γ. Life Sci, 2004,
75(10): 1171-80
[4] Su ZZ, Sarkar D, Emdad L, et al. Central role of interferon
regulatory factor-1 (IRF-1) in controlling retinoic acid
inducible gene-I (RIG-I) expression. J Cell Physiol, 2007,
213(2): 502-10
[5] Imaizumi T, Sashinami H, Mori F, et al. Listeria
monocytogenes induces the expression of retinoic acid-
inducible gene-I. Microbiol Immunol, 2006, 50(10): 811-5
[6] Zhang ΝΝ, Shen SH, Jiang LJ, et al. RIG-I plays a critical
role in negatively regulating granulocytic proliferation. Proc
Natl Acad Sci USA, 2008, 105(30): 10553-8
[7] Poeck H, Besch R, Maihoefer C, et al. 5′-Triphosphate-
siRNA: turning gene silencing and Rig-I activation against
melanoma. Nat Med, 2008, 14(11): 1256-63
[8] Besch R, Poeck H, Hohenauer T, et al. Proapoptotic
signaling induced by RIG-I and MDA-5 results in type I
interferon-independent apoptosis in human melanoma
cells. J Clin Invest, 2009, 119(8): 2399-411
[9] Yoneyama M, Kikuchi M, Natsukawa T, et al. The RNA
helicase RIG-I has an essential function in double-
stranded RNA-induced innate antiviral responses. Nat
Immunol, 2004, 5(7): 730-7
[10] Kowalinski E, Lunardi T, McCarthy AA, et al. Structural
basis for the activation of innate immune pattern-recognition
receptor RIG-I by viral RNA. Cell, 2011, 147(2): 423-35
[11] Takahasi K, Yoneyama M, Nishihori T, et al. Nonself
RNA-sensing mechanism of RIG-I helicase and activation
of antiviral immune responses. Mol Cell, 2008, 29(4):
428-40
[12] Jiang F, Ramanathan A, Miller MT, et al. Structural basis
of RNA recognition and activation by innate immune
receptor RIG-I. Nature, 2011, 479(7373): 423-7
[13] Hornung V, Ellegast J, Kim S, et al. 5-Triphosphate RNA
生命科学 第25卷400
is the ligand for RIG-I. Science, 2006, 314(5801): 994-7
[14] Kato H, Sato S, Yoneyama M, et al. Cell type-specific
involvement of RIG-I in antiviral response. Immunity,
2005, 23(1): 19-28
[15] Loo YM, Gale M Jr. Immune signaling by RIG-I-like
receptors. Immunity, 2011, 34(5): 680-92
[16] Kawai T, Takahashi K, Sato S, et al. IPS-1, an adaptor
triggering RIG-I- and Mda5-mediated type I interferon
induction. Nat Immunol, 2005, 6(10): 981-8
[17] Seth RB, Sun L, Ea CK, et al. Identification and charac-
terization of MAVS, a mitochondrial antiviral signaling
protein that activates NF-κB and IRF 3. Cell, 2005,
122(5): 669-82
[18] Hou F, Sun L, Zheng H, et al. MAVS forms functional
prion-like aggregates to activate and propagate antiviral
innate immune response. Cell, 2011, 146(3): 448-61
[19] Ishikawa H, Barber GN. STING is an endoplasmic
reticulum adaptor that facilitates innate immune signalling.
Nature, 2008, 455(7213): 674-8
[20] Zhong B, Yang Y, Li S, et al. The adaptor protein MITA
links virus-sensing receptors to IRF3 transcription factor
activation. Immunity, 2008, 29(4): 538-50
[21] Hayakawa S, Shiratori S, Yamato H, et al. ZAPS is a
potent stimulator of signaling mediated by the RNA
helicase RIG-I during antiviral responses. Nat Immunol,
2011, 12(1): 37-44
[22] Medzhitov R. Origin and physiological roles of inflammation.
Nature, 2008, 454(7023): 428-35
[23] Takeuchi O, Akira S. Pattern recognition receptors and
inflammation. Cell, 2010, 140(6): 805-20
[24] Poltorak A, He X, Smirnova I, et al. Defective LPS
signaling in C3H/HeJ and C57BL/10ScCr mice: mutations
in Tlr4 gene. Science, 1998, 282(5396): 2085-8
[25] Cui XF, Imaizumi T, Yoshida H, et al. Retinoic acid-
inducible gene-I is induced by interferon-γ and regulates
the expression of interferon-γ stimulated gene 15 in MCF-
7 cells. Biochem Cell Biol, 2004, 82(3): 401-5
[26] Imaizumi T, Hatakeyama M, Yamashita K, et al.
Interferon-γ induces retinoic acid-inducible gene-I in
endothelial cells. Endothelium, 2004, 11(3-4): 169-73
[27] Hatakeyama M, Imaizumi T, Terasaki F, et al. Interferon-γ
upregulates retinoic acid-inducible gene-I in human
pericardial mesothelial cells. Acta Cardiol, 2007, 62(6):
553-7
[28] Imaizumi T, Matsumiya T, Yoshida H, et al. Tumor-necro-
sis factor-α induces retinoic acid-inducible gene-I in rheu-
matoid fibroblast-like synoviocytes. Immunol Lett, 2009,
122(1): 89-93
[29] Wang J, Wu S, Jin X, et al. Retinoic acid-inducible gene-I
mediates late phase induction of TNF-α by lipopolysaccharide.
J Immunol, 2008, 180(12): 8011-9
[30] Imaizumi T, Yagihashi N, Kubota K, et al. Expression of
retinoic acid-inducible gene-I (RIG-I) in macrophages:
possible involvement of RIG-I in atherosclerosis. J
Atheroscler Thromb, 2007, 14(2): 51-5
[31] Asdonk T, Motz I, Werner N, et al. Endothelial RIG-I
activation impairs endothelial function. Biochem Biophys
Res Commun, 2012, 420(1): 66-71
[32] Imaizumi T, Tanaka H, Tajima A, et al. Retinoic acid-
inducible gene-I (RIG-I) is induced by IFN-γ in human
mesangial cells in culture: possible involvement of RIG-I
in the inflammation in lupus nephritis. Lupus, 2010, 19(7):
830-6
[33] Imaizumi T, Arikawa T, Sato T, et al. Involvement of
retinoic acid-inducible gene-I in inflammation of rheumatoid
fibroblast-like synoviocytes. Clin Exp Immunol, 2008,
153(2): 240-4
[34] Wang Y, Zhang HX, Sun YP, et al. Rig-I−/− mice develop
colitis associated with down regulation of G α i2. Cell
Res, 2007, 17(10): 858-68
[35] Kubota K, Sakaki H, Imaizumi T, et al. Retinoic acid-
inducible gene-I is induced in gingival fibroblasts by
lipopolysaccharide or poly IC: possible roles in interleukin-
1β, -6 and -8 expression. Oral Microbiol Immunol, 2006,
21(6): 399-406
[36] Yoshida H, Imaizumi T, Lee SJ, et al. Retinoic acid-
inducible gene-I mediates RANTES/CCL5 expression in
U373MG human astrocytoma cells stimulated with
double-stranded RNA. Neurosci Res, 2007, 58(2): 199-
206
[37] Coppe JP, Patil CK, Rodier F, et al. Senescence-associated
secretory phenotypes reveal cell-nonautonomous functions
of oncogenic RAS and the p53 tumor suppressor. PLoS
Biol, 2008, 6(12): 2853-68
[38] Liu F, Wu S, Ren H, et al. Klotho suppresses RIG-I-
mediated senescence-associated inflammation. Nat Cell
Biol, 2011, 13(3): 254-62
[39] Yuzawa E, Imaizumi T, Matsumiya T, et al. Retinoic acid-
inducible gene-I is induced by interferon-γ and regulates
CXCL11 expression in HeLa cells. Life Sci, 2008, 82(11-
12): 670-5
[40] Okano S, Yonemitsu Y, Shirabe K, et al. Provision of
continuous maturation signaling to dendritic cells by RIG-
I-stimulating cytosolic RNA synthesis of Sendai Virus. J
Immunol, 2011, 186(3): 1828-39
[41] Wallden B, Emond M, Swift ME, et al. Antimetastatic
gene expression profiles mediated by retinoic acid receptor
β 2 in MDA-MB-435 breast cancer cells. BMC Cancer,
2005, 5: 140
[42] Wornle M, Sauter M, Kastenmuller K, et al. Role of viral
induced vascular endothelial growth factor (VEGF)
production in pleural effusion and malignant mesothelioma.
Cell Biol Int, 2009, 33(2): 180-6
[43] Sun YP. Generation of RIG-I gene knockout mice and its
function study [D]. Shanghai: Shanghai Second Medical
University, 2004
[44] Jiang LJ, Zhang NN, Ding F, et al. RA-inducible gene-I
induction augments STAT1 activation to inhibit leukemia
cell proliferation. Proc Natl Acad Sci USA, 2011, 108(5):
1897-902
[45] Pan M, Geng S, Xiao S, et al. Apoptosis induced by
synthetic retinoic acid CD437 on human melanoma A375
cells involves RIG-I pathway. Arch Dermatol Res, 2009,
301(1): 15-20
崔会会,等:维甲酸诱导基因-I的新功能第4期 401
[46] Peng S, Geng J, Sun R, et al. Polyinosinic-polycytidylic
acid liposome induces human hepatoma cells apoptosis
which correlates to the up-regulation of RIG-I like
receptors. Cancer Sci, 2009, 100(3): 529-36
[47] Besch R, Poeck H, Hohenauer T, et al. Proapoptotic
signaling induced by RIG-I and MDA-5 results in type I
interferon-independent apoptosis in human melanoma
cells. J Clin Invest, 2009, 119(8): 2399-411
[48] Chattopadhyay S, Yamashita M, Zhang Y, et al. The IRF-
3/Bax-mediated apoptotic pathway, activated by viral
cytoplasmic RNA and DNA, inhibits virus replication. J
Virol, 2011, 85(8): 3708-16
[49] Kong L, Sun L, Zhang H, et al. An essential role for RIG-I
in toll-like receptor-stimulated phagocytosis. Cell Host
Microbe, 2009, 6(2): 150-61
[50] Kutikin AG, Yuzhalin AE. C-type lectin receptors and
RIG-I-like receptors: new points on the oncogenomics
map. Cancer Manag Res, 2012, 4: 39-53
[51] Sun Z, Ren H, Liu Y, et al. Phosphorylation of RIG-I by
casein kinase II inhibits its antiviral response. J Virol,
2011, 85(2): 1036-47