全 文 :生命科学
Chinese Bulletin of Life Sciences
第21卷 第4期
2009年6月
Vol. 21, No. 4
Aug., 2009
文章编号 :1004-0374(2009)04-0560-06
收稿日期:2009-03-30;修回日期:2009-05-12
基金项目:“973”项目(2009CB521900)
*通讯作者:E-mail: anjing77@gmail.com
Let-7 家族对细胞“干性”的调控
王斯瑶1,安 靓2*
(1 南方医科大学基础医学院基础医学系,广州 510515;2 南方医科大学肿瘤研究所,广州 510515)
摘 要:Let-7 是目前研究最为广泛的microRNA 家族之一。通过转录后调控机制,let-7 可以特异性结
合到信使 RNA(mRNA)上,从而降解靶基因 mRNA 或抑制其翻译。研究表明,let-7 家族在干细胞与肿
瘤干细胞中参与多种调控机制,在维持干细胞特性(stemness),即高增殖、低分化和自我更新能力的
过程中起到重要调控作用。本文将从干细胞与肿瘤干细胞两个方面,综述 let-7 与细胞“干性”间存
在的联系和调控机制。
关键词:let-7;microRNA;干细胞;肿瘤干细胞
中图分类号:Q813; R730.21 文献标识码:A
Regulating function of let-7 family on cell stemness
WANG Si-yao1, AN Jing2*
(1 Basic Medicine, School of Basic Medical Science, Southern Medical University, Guangzhou 510515, China;
2 Cancer Institute of Southern Medical University, Guangzhou 510515, China)
Abstract: Originally discovery indicates a class of miRNA, let-7, which binds to target messenger RNAs (mRNA)
through a post-transcription regulation and induces either translation repression or mRNA degradation, plays
a regulatory role in the stem cells /cancer stem cells self renewal, development, differentiation, metastasis and
apoptosis. Based on these findings about let-7’s function and its regulatory processes, this review will
summarizes these processes and the potential role in the stem cell and cancer stem cell. A more complete
understand of its function on stemness will thus find new solution to the research, the diagnose and therapy of
human cancer.
Key words: let-7; microRNA; stem cell; cancer stem cells
MicroRNA(miRNA)是一类长度为19- 25个核
苷酸的非编码小分子 RNA,根据 2009 年 3 月更新
的数据显示,已有9 539个成熟的miRNA 在灵长类、
啮齿类、鸟类、鱼类、蠕虫、蝇科以及植物和病
毒中被发现[1](Release 13 http://microrna.sanger.ac.uk/
sequences/)。其中至少三分之一的miRNA在物种间
高度保守,具有组织特异性和发育时序性。miRNA
基因在动物基因组中约占 1% 的比例,却可能参与
调控至少30% 相关基因的表达[2]。
Lethal-7(Let-7)家族就是microRNA中研究最为
深入的家族之一,2000年首次在线虫中被鉴定,参
与发育时序性调节[3]。随后研究表明,let-7通过转
录后水平调控,干扰靶基因的表达,从而参与调控
细胞发育、分化、凋亡、肿瘤的发生及恶变等多
种生理及病理过程。
1 Let-7家族的生物合成
Let-7 的生物合成过程在miRNA 中研究较为深
入。let-7编码基因首先经RNA聚合酶Ⅱ转录出两种
具有茎环结构、5端加帽、3端加多聚腺苷酸尾的
初级转录物pri-let-7 miRNA,分别长1731 nt和890 nt,
pri-let-7 miRNA的5端具有剪切引导序列,对于成
熟let-7的产生具有重要意义[4]。两种pri- miRNA通
561第4期 王斯瑶,等:L e t - 7 家族对细胞“干性”的调控
过与核糖核酸酶Drosha(RNase-III,Drosha)和RNA配
体PASHA,即DGCR8(DiGeorge syndrome critical
region 8)结合,切割pri-let-7 miRNA上的茎环结
构,释放出65nt的precursor let-7 miRNA(pre-let-7
miRNA)[5]。之后,pre-let-7 miRNA 通过与核膜上
的RanGTP 依赖转运体exportin-5结合,离开细胞
核,在胞浆与核糖核酸酶Dicer酶结合,释放出22nt
的成熟 let -7 分子,以某种未知的形式参与形成
miRNA诱导的沉默复合体(miRNA-induced silencing
complex,miRISC),在复合体中通过完全或不完
全的形式结合靶 mRNA 的 3UTR,降解靶 mRNA 或
抑制其翻译过程[6]。研究显示,mRNA 的 5UTR 可
能也同时存在 miRNA 的结合位点[7]。
2 Let-7家族的分类和命名
大多数miRNA的5端都存在一段长度为2—8nt
的保守序列,称为“种子序列”(seed sequence) [2,8,9]。
根据种子序列的异同,miRNA 可被划分为不同的家
族,而let-7家族就是其中之一,其家族成员的5
端都具有一段高度保守的种子序列“TGAG GTA”。
在不同的物种中let-7家族成员的数目也是不同的,
如在秀丽隐杆线虫中存在9 个成员,而果蝇中仅有
1个成员,在斑马鱼中则有11 个成员 (表1)。
Let-7 家族成员的编码基因广泛存在于线虫、
斑马鱼和高级脊椎动物的基因组中。其中一部分高
度相关的miRNA 基因常成簇排列,形成基因簇,而
来自同一基因簇的miRNAs 具有较高同源性。对于
高度同源的let-7家族成员会在let-7后加一个字母以
示区分,例如let-7的基因簇2(cluster2)就是由let-
7a、let-7d和let-7f基因组成的。另外,来自染色
体不同位置的pre-let-7 miRNA可以产生相同的成熟
let-7序列,通过在名称后加阿拉伯数字来区分 [9]。
例如,在人类基因组中存在13个pre-let-7 miRNA,
产生10个成熟的let-7家族成员,是由于其中有3
个不同的pre-let-7 miRNAs经剪切产生相同的成熟序
列let-7a。在这种情况下,可将let-7a再分为let-7a-
1、let-7a-2和let-7a-3以示其转录本的不同。另外,
2个来自染色体不同位置的pre-let-7 miRNAs产生的
相同序列let-7f,也分为let-7f-1和let-7f-2[9] 。
3 Let-7家族对干细胞的调控作用
干细胞是一类具有自我更新能力和多向分化潜
表1 不同物种中的let-7家族成员[ 9]
let-7家族 序列 线虫 果蝇 斑马鱼 人类 小鼠
let-7a T G A G G T A G T A G G T T G T A T A G T T 1 1 6 3 2
mir-48 T G A G G T A G G C T C A G T A G A T G C G A 1 - - - -
mir-84 T G A G G T A G T A T G T A A T A T T G T A 1 - - - -
mir-241 T G A G G T A G G T G C G A G A A A T G A 1 - - - -
mir-265 T G A G G G A G G A A G G G T G G T A T 1 - - - -
mir-793 T G A G G T A T C T T A G T T A G A C A G A 1 - - - -
mir-794 T G A G G T A T T C A T C G T T G T C A C T 1 - - - -
mir-795 T G A G G T A G A T T G A T C A G C G A G C T T 1 - - - -
mir1821 T G A G G T C T T A T A G T T A G G T A G 1 - - - -
let-7b T G A G G T A G T A G G T T G T G T G G T T - - 1 1 1
let-7c T G A G G T A G T A G G T T G T A T G G T T - - 2 1 2
let-7d A G A G G T A G T A G G T T G C A T A G T - - 2 1 1
let-7e T G A G G T A G T A G G T T G T T T A G T T - - 1 1 1
let-7f T G A G G T A G T A G A T T G T A T A G T T - - 1 2 2
let-7g T G A G G T A G T A G T T T G T A T A G T - - 2 1 1
let-7h T G A G G T A G T A A G T T G T G T T G T T - - 1 - -
let-7i T G A G G T A G T A G T T T G T G C T G T - - 1 1 1
let-7j T G A G G T A G T T G T T T G T A C A G T - - 1 1 -
let-7k T G A G G T A G T A G A T T G A A T A G T - - - 1 -
mir-98 T G A G G T A G T A A G T T G T A T T G T T - - - - 1
mir-202 A G A G G T A T A G G G C A T G G G A A - - 1 1 2
注:不同的pre-let-7 miRNAs可产生相同的成熟序列,如人类的成熟let-7a是由3个不同的pre-let-7 miRNA产生,因此
let-7a 包括let-7a-1、let-7a-2 和 let-7a-3 以示区分。序列中加粗字体表示“种子序列”,“-”表示不存在该成员。
562 生命科学 第21卷
能的细胞。在生物体内存在一系列维持干细胞自我
更新、增殖和分化潜能的调节因子,包括 Oct 4、
Sox2、Nanog 和 c-myc 等。当生物体发育进入终
末阶段时,正常的干细胞会利用一套完善的反馈系
统,限制细胞“干性”以确保机体进入分化末期。
在这个过程中,一部分基因会“沉默”,而另一
部分基因则开始表达,使细胞在发育的不同阶段具
备特异性的表型。在线虫中,维持这种发育时序性
的基因,称为“异时性基因(heterochronic gene)”[10],
如lin-4和lin-14[11,12]等 。而“异时性基因”精确
地调控了干细胞的发育时序,使细胞只有在正确的
时候才能表达“干性”。至今,已有大量的 miRNA
被证实参与了生物体时序性调节的过程,而let-7家
族就是其中重要的一员。
3.1 Let-7对干细胞发育时序性的调控 在let-7的研
究较为深入的物种秀丽隐杆线虫(Caenorhabditis
elegans)中,共存在9个let-7家族成员,分别是let-7、
mir-48、mir-84、mir-241、mir-265、mir-793、
mir-794、mir-795和mir-1821[10, 13],其中let-7、mir-48、
mir-84和mir-241参与了线虫发育的时序性调节[14]。
Reinhart等[3]的研究表明,let-7是一个异时性基因,
在线虫中,let-7 的靶基因可分为两类:一类是转
录因子;另一类是细胞信号分子。let-7 的突变可
导致具有不同分化时期特异性的表达被省略或重
复。实验利用线虫体内一种干细胞——接缝细胞
(seam cell)在分化的不同阶段所呈现的不同表型来推
测let-7 与干细胞发育的关系[3]。在线虫的幼虫时
期,接缝细胞呈不对称样分裂,而此时成熟的let-7
表达量低;然而,当线虫进入幼虫至成虫的转化时
期(larval-to-adult transition, L/A transition),let-7则
呈高表达,促使细胞融合成多核体,并分泌一种表
皮翼素(alae),标志着细胞进入终末分化阶段。实
验还证明,如果上调let-7 的表达,线虫在幼虫期
会表现出早熟的现象;相反,当下调let-7 的表达
时,在线虫的成虫时期会反复表达幼虫期的表型,
即细胞失去终末分化能力,并且不断重复细胞周
期,持续分裂。
Let-7在线虫发育的L3/L4期开始表达,在时序
性调节中的作用机制主要是作用在异时性基因lin-41
和lin-28的3 UTR,抑制了LIN-41和LIN-28蛋白
的表达,解除了对LIN-29 蛋白的表达抑制,使线
虫从 L4 期向成体期完成终末分化。
Letter 等[15]研究发现,人类身高与HMGA2 基
因的SNP(rs1042725)存在强关联性。而rs1042725
位于HMGA2 的 3UTR,是let-7 的下游干扰靶点,
在胚胎发育早期,let-7低表达,胚胎干细胞具有强
大的增殖潜能。而当let-7的表达随年龄上调时,人
类的增高能力即被限制。这项研究对于探索干细胞
标记物及延长干细胞功也能具有重要参考价值。
3.2 Let-7对干细胞增殖的调控 Johnson等[16]注意
到在人类肺组织中上调let-7的浓度可使处于G0/G1期
的细胞显著增加,由此推出,let-7对细胞增殖的调
控机制在于阻断细胞周期中的G1/S期,从而抑制细
胞增殖。
研究人员在HepG2和A549细胞系中上调let-7
表达,利用基因芯片检测细胞系中基因表达谱的改
变,分析得出共有629个细胞增殖相关基因表达升
高或降低(表2)。根据表达谱的改变,揭示了let-7
对细胞周期的抑制作用。let-7 结合到这些基因的
3UTR,从而干扰靶蛋白的表达。研究显示,let-7
通过直接或间接下调 CDK6、CDC25A 和 CCN D 等
细胞周期调节基因和致癌基因 RAS、HMGA 2 的表
达,参与了细胞增殖的多条通路,并且作为一个关
键的调控因子参与细胞周期的调控。
增殖潜能是正常干细胞和肿瘤干细胞共同具有
的重要特征。let-7随分化的上调,使细胞的增殖能
力逐渐下降,这也证明了let-7表达的时序性在干细
胞增殖和分化中的作用。
3.3 Let-7家族对干细胞时序性调节的机制 关于
let-7产生时序性调节的机制与let-7的成熟受到转录
后调控有关。在小鼠的胚胎干细胞(embryonic stem,
ES cells)和畸胎瘤细胞(embryocarcinoma,EC cells)
中发现,let-7的初级转录本(pri-let-7 miRNA)持续高
表达[17, 18],而与之相应的成熟let-7却呈低表达,直
到细胞进入终末分化失去“干性”时,成熟的let-7
才逐渐升高。很明显,这种时序性现象的发生,是
由于某种物质在发育早期阻止了pri-let-7 miRNA向
成熟的转化。随后发现,这种物质是一种 Drosha
酶抑制因子,也就是胚胎干细胞特异性蛋白LIN-28
和 LIN-28B。这种因子能特异性结合在pri-let-7
miRNA上的茎环结构,在转录后水平对let-7进行调
控,抑制pri-let-7 miRNA继续发育成熟[19]。
LIN-28与成熟let-7的表达呈负相关,即在细
胞早期发育阶段let-7低表达时,LIN-28的表达高,
而随分化的进行,let-7 表达升高,LIN-28 表达则
逐渐降低。LIN-28对let-7的抑制作用也就解释了为
563第4期 王斯瑶,等:L e t - 7 家族对细胞“干性”的调控
什么let-7在细胞的终末分化期才出现。有趣的是,
有些报道指出lin-28的序列上也存在着let-7的干扰靶
点,这说明let-7与lin-28或许还存在相互抑制的作
用关系[20]。
综上所述,在干细胞的发育和增殖过程中,
let-7发挥着至关重要的作用。通过转录后调控,let-7
可以在细胞发育终末期诱导细胞有序的进入终末分
化和减少细胞增殖,并且建立有效的反馈机制,与
LIN-28 共同维持干细胞功能的平衡状态。由此推
断,如果let-7 突变或异常表达,细胞将重新表现
“干性”,而这种“干性”,有时会产生正面影
响,如损伤的修复、组织的再生、血液的自我更
新;有时又会造成严重的负面影响,比如肿瘤的发
生。
4 Let-7对肿瘤干细胞的监控作用
肿瘤干细胞学说是指肿瘤组织中存在极少量干
细胞样癌细胞亚群,它具有无限增殖的潜能,在启
动肿瘤形成和生长中起着决定性的作用。肿瘤干细
胞可能来源于干细胞,两者都具备强大的增殖能力
和自我更新能力,但也存在一些差异:干细胞的自
我更新有反馈机制调节,而在肿瘤干细胞中,这一
调节机制则不明显;肿瘤干细胞没有分化为成熟细
胞的能力,其分化程序异常,这也是与正常干细胞
本质上的不同;肿瘤细胞具有转移倾向,存在异常
的上皮细胞-间充质转化现象(epithelial- mesenchymal
transition,EMT)。
肿瘤的形成一直被认为与编码基因的表达异常
密切相关。近年来不断发现miRNA在肿瘤的形成、恶
变及凋亡中起到重要作用,例如miR-15、miR-16、
miR-143、miR145 和 let-7 等在肿瘤组织中表达下
调,而miR-21、miR-221、miR-222 等则在肿瘤中
表达上调。从Let-7 家族成员对干细胞分化与增殖
的调控中可以看出,let-7的突变可以导致细胞终末
分化的缺失和细胞增殖的失控,而这种突变也在非
小细胞肺癌的组织中被检测到[21] ,证实了let-7可
能参与了肿瘤发生发展的调控。在随后的研究中发
现,人类基因组中存在13个let-7的同源序列,分
成8 个基因簇。这些基因簇位于或接近基因组中肿
瘤相关的脆性位点,而这些脆性位点与肺癌、乳腺
癌和人类子宫颈癌等肿瘤密切相关。在恶性肿瘤中
至少存在有4簇位点的缺失,进而可以推断出let-7
在人类肿瘤中发挥了一定的抑癌作用[22]。
对于let-7对肿瘤干细胞的更深的研究,在于探
索let-7监控肿瘤干细胞的机制上。从相关文献中发
现, let-7在生物体中的突变直接导致了某些肿瘤干
细胞特有的致癌基因表达异常,这些致癌基因可以
启动多条通路,不同的通路分别影响了分化、凋
亡、增殖和 EMT 等不同的生命活动,继而肿瘤发
生。
4.1 Let-7家族与RAS的调控 RAS基因在多种人类
肿瘤中都存在突变,编码产物为小 G 蛋白,参与
小G 蛋白介导的信号转导通路,对于维持肿瘤干细
胞自我更新及转移能力具有关键作用,并且在正常
干细胞发育中也参与了调控。Johnson 等[23]发现,
在线虫中let-60/Ras基因在表皮干细胞的发育中受到
了let-7家族成员mir-84的调控。在人类基因组中也
存在多个let-60/Ras 的同源序列,分别为K-RAS、
N-RAS和H-RAS致癌基因,并且都存在3UTR的let-7
表2 Let-7过表达对细胞增殖相关基因表达的影响[16]
基因名 表达产物 功能
表达下调的基因
CDC25A Cell division cycle 25A 参与G1/S 期转化
CCN A2 Cyclin A2 参与 G 1/S、G 2/ M 期转化
CDC 34 Cell division defective 34 可降解 C D K 抑制因子C D K N 1 B
C D K 6 C D K 6 参与G1/S 期转化
AURKA/AURKB Aurora A/Aurora B G 2/ M 期及多种肿瘤中高表达
H M G A 2 Chromatin protein 参与肿瘤细胞的增殖与转移
N-RAS Ras GTPase 信号分子,在多种肿瘤中存在突变
表达上调的基因
MXI1 MAX-interacting protein1 对抗致癌基因M Y C 的转录因子
CD K N 2 B CDK inhibitor 2B 与 C D K 4、C D K 6 相互作用抑制细胞增殖
C C N G 2 Cyclin G2 在甲状腺癌中表达降低的细胞周期蛋白
564 生命科学 第21卷
互补位点,预测let-7可以通过结合到互补位点来抑
制这些致癌基因的表达。在肺癌[24]、乳腺癌[25]、结
肠癌[26]、卵巢癌[27]等多种癌症中,都证实了let-7的
突变直接造成了 RAS 家族的高表达以及肿瘤的恶
化。
在 RA S/ M E K 通路中,RA S 蛋白还通过下调
E- 钙黏蛋白及EMT相关转录因子的表达诱导了EMT
的发生,而EMT是肿瘤恶化及转移的关键过程[28] 。
由此推断,在某些let-7 突变的恶性肿瘤中,通过
提高let-7的表达理论上就可以直接阻断RAS/MEK通
路而抑制EMT 的发生,但相关结论还有待进一步验
证。
4.2 Let-7/Myc基因对肿瘤干细胞凋亡与增殖的调控
如前文所述,在let-7参与的转录后调控通路中,
LIN-28和LIN-28B特异性结合在pri-let-7 miRNA或
前体let-7的茎环结构上抑制了成熟let-7的产生。并
且,LIN2 8 与 OCT 4、NANO G 和 SOX 2 共同作用
可使成纤维细胞转化为诱导型多能干细胞(induced
pluripotent stem cell, iPS),而在这一过程中参与调
控的蛋白不只有LIN-28,它也可以被另一种蛋白取
代参与调控,即是 Myc 蛋白[29]。Myc 蛋白与细胞
核内蛋白 MAX 结合成 Myc-MAX 异源二聚体转录因
子,在转录水平对let-7 的表达进行调控,Myc 蛋
白可以结合到let-7a-1、let-7f-1、let-7d基因簇的启
动子或pri-let-7g miRNA而抑制成熟let-7的表达。在
伯基特淋巴瘤中[29],过表达let-7a可以使Myc蛋白
表达降低 75%,定量 PCR 检测 My c m R N A 降低
70%,与Myc的3UTR中存在let-7的互补位点有关。
与LIN-28 蛋白在干细胞发育中发挥的作用相
似,Myc 蛋白的表达可提高肿瘤干细胞的增殖能力
及诱导凋亡,虽然“诱导凋亡”与传统的理解,
即“肿瘤干细胞凋亡能力降低”,是相互违背的,
但实际上,在肿瘤发生过程中的多个阶段,肿瘤细
胞可以对凋亡机制产生耐受,形成不仅具有高增殖
能力还抵抗凋亡的细胞群[30]。这个过程,对于肿瘤
的形成及恶化具有关键作用,也是未来治疗中的重
要靶点之一。
Boyerins等[31]研究发现致癌基因IMP1是另一个
let-7 的主要靶标,在A549 细胞中,IMP1 mRNA
的3UTR上存在let-7的互补位点,这些位点在哺乳
动物中高度保守,而IMP1 的作用是稳定MYC 蛋白
的功能。因此认为,let-7可以通过直接或间接的方
式有效地抑制MYC蛋白的表达,使MYC和 let-7 形
成了相互抑制的关系。
4.3 Let-7/HMGA2诱导肿瘤细胞产生“干性” 就
在发现let-7与致癌基因Ras和Myc的联系同时,Park
等[32]在卵巢癌细胞中发现了另一个let-7的靶标,高
度迁移性蛋白家族A2(high mobility group A2,
HMGA2),这种致癌基因在胚胎时期和肿瘤的形成
早期表达,因此被认为与肿瘤的形成和发展相关。
H M G A 2 的表达可以促使组织去分化( d e -
differentiation)使组织恢复胚胎时期的干性,而过表
达let-7 则可以沉默HMGA2 在肿瘤中的表达,并且
使 HMGA2 mRNA 降解[33 ]。HMGA2 基因序列上存
在多个let-7的作用靶点,在let-7突变的恶性肿瘤
中,H M G A 2 的表达都出现升高,并且可以辅助
RAS/MEK 通路,上调转录因子 SNAIL,诱导 EMT
的发生[28]。
HMGA2是 cyclin A的活化剂[34],let-7通过直
接结合到HMGA2 基因的3UTR,可间接抑制cyclin
A的表达。而近期的研究显示cyclin A可以抑制细
胞凋亡机制,指出let-7 可通过对HMGA2 的干扰作
用,间接作用在肿瘤干细胞的凋亡通路。
5 展望
以往的研究显示,let-7的正常表达可以特异且
有效地发挥反馈机制,抑制细胞的“干性”,使
机体细胞维持增殖与凋亡、分化与成熟的动态平
衡。而let-7 的表达异常,会失去对正常细胞的监
控作用,使细胞增殖活性增强,引起异常去分化、
EMT 等病理过程,并通过多种途径参与肿瘤相关信
号转导网络的调控,对其起到关键的调控作用。
由于let-7可以针对特异性靶基因参与肿瘤的发
生、增殖、凋亡和EMT等过程的调控,使let-7 被
认为是一个理想的抑癌基因而受到了广泛关注。近
年来,利用人工合成的miRNA 上调在某些肿瘤中缺
失的抑癌miRNA,在体外实验中取得了令人振奋的
结果[35, 36]。但是,目前对于let-7家族miRNA的研
究尚处于起步阶段,对于miRNA 治疗在体内的应用
仍然存在很多阻碍,例如将合成的miRNA 转入肿瘤
细胞的有效方法和靶向治疗手段都并不清楚,并且
在许多研究中,部分致癌基因可以对let-7在一段时
期后产生耐受现象,使miRNA 治疗的副作用引起了
很大的关注,实现let-7进入临床应用的目标还依赖
于对let-7 等 miRNA 作用机制的更深一步探索。
[参 考 文 献]
[1] Griffiths-Jones S, Saini H K, Van Dongen S, et al. miRBase:
tools for microRNA genomics. Nucleic Acids Res, 2008, 36:
565第4期 王斯瑶,等:L e t - 7 家族对细胞“干性”的调控
D154-8
[2] Schmittgen TD. Regulation of microRNA processing in
development, differentiation and cancer. J Cell Mol Med,
2008, 12(5B): 1811-9
[3] Reinhart BJ, Slack FJ, Basson M, et al. The 21-nucleotide
let-7 RNA regulates developmental timing in Caenorhabditis
elegans. Nature, 2000, 403(6772): 901-6
[4] Bracht J, Hunter S, Eachus R, et al. Trans-splicing and
polyadenylation of let-7 microRNA primary transcripts.
RNA, 2004, 10(10): 1586-94
[5] Lee Y, Ahn C, Han JJ, et al. The nuclear RNase III Drosha
initiates microRNA processing. Nature, 2003, 425(6956):
415-9
[6] Denli AM, Tops BB, Plasterk RH, et al. Processing of pri-
mary microRNAs by the microprocessor complex. Nature,
2004, 432(7014): 231-5
[7] Lytle JR, Yario TA, Steitz JA. Target mRNAs are repressed
as efficiently by microRNA-binding sites in the 5 UTR as
in the 3 UTR. Proc Natl Acad Sci USA, 2007, 104(23): 9667-
72
[8] Nilsen TW. Mechanisms of microRNA-mediated gene regu-
lation in animal cells. Trends Genet, 2007, 23(5): 243-9
[9] Roush S, Slack FJ. The let-7 family of microRNAs. Trends
Cell Biol, 2008, 18(10): 505-16
[10] Lim LP, Lau NC, Weinstein EG, et al. The microRNAs of
Caenorhabditis elegans. Genes Dev, 2003, 17(8): 991-1008
[11] 季菊玲, 张锦生. microRNA与肿瘤. 中华病理学杂志,
2006, 35(10): 628-30
[12] 秦一雨,全志伟,李济宇. 微小RNA生物功能的研究进展.
实用医学杂志, 2007, (23): 3794-6
[13] Moss EG. Heterochronic genes and the nature of develop-
mental time. Curr Biol, 2007, 17(11): R425-34
[14] Abbott AL, Alvarez-Saavedra E, Miska EA, et al. The let-7
microRNA family members mir-48, mir-84, and mir-241
function together to regulate developmental timing in
Caenorhabditis elegans. Dev Cell, 2006, 10(2): 271
[15] Lettre G, Jackson AU, Gieger C, et al. Identification of ten
loci associated with height highlights new biological path-
ways in human growth. Nat Genet, 2008, 40(5): 584-91
[16] Johnson CD, Esquela-Kerscher A, Stefani G, et al. The let-7
microRNA represses cell proliferation pathways in human
cells. Cancer Res, 2007, 67(16): 7713-22
[17] Wulczyn FG, Smirnova L, Rybak A, et al. Post-transcrip-
tional regulation of the let-7 microRNA during neural cell
specification. FASEB J, 2007, 21(2): 415-26
[18] Thomson JM, Newman M, Parker JS, et al. Extensive post-
transcriptional regulation of microRNAs and its implica-
tions for cancer. Genes Dev, 2006, 20(16): 2202-7
[19] Newman MA, Thomson JM, Hammond SM. Lin-28 inter-
action with the Let-7 precursor loop mediates regulated
microRNA processing. RNA, 2008, 14(8): 1539-49
[20] Piskounova E, Viswanathan SR, Janas M, et al. Determi-
nants of microRNA processing inhibition by the develop-
mentally regulated RNA-binding protein Lin28. J Biol Chem,
2008, 283(31): 21310-4
[21] Esquela-Kerscher A, Trang P, Wiggins JF, et al. The let-7
microRNA reduces tumor growth in mouse models of lung
cancer. Cell Cycle, 2008, 7(6): 759-64
[22] Lynam-Lennon N, Maher SG, Reynolds JV. The roles of
microRNA in cancer and apoptosis. Biol Rev, 2009, 84(1):
55-71
[23] Johnson SM, Grosshans H, Shingara J, et al. RAS is regulated
by the let-7 microRNA family. Cell, 2005, 120(5): 635-47
[24] Kumar MS, Erkeland SJ, Pester RE, et al. Suppression of
non-small cell lung tumor development by the let-7 microRNA
family. Proc Natl Acad Sci USA, 2008, 105(10): 3903-8
[25] Yu FY, Yao HR, Zhu PC, et al. let-7 regulates self renewal and
tumorigenicity of breast cancer cells. Cell, 2007, 131(6):
1109-23
[26] Akao Y, Nakagawa Y, Naoe T. let-7 microRNA functions as
a potential growth suppressor in human colon cancer cells.
Biol Pharm Bull, 2006, 29(5): 903-6
[27] Bearfoot JL, Choong DY, Gorringe KL, et al. Genetic analy-
sis of cancer-implicated microRNA in ovarian cancer. Clin
Cancer Res, 2008, 14(22): 7246-50
[28] Watanabe S, Ueda Y, Akaboshi S, et al. HMGA2 maintains
oncogenic RAS-induced epithelial-mesenchymal transition
in human pancreatic cancer cells. Am Pathol, 2009, 174(3):
854-68
[29] Sampson VB, Rong NH, Han J, et al. MicroRNA let-7a
down-regulates MYC and reverts MYC-induced growth in
Burkitt lymphoma cells. Cancer Res, 2007, 67(20): 9762-70
[30] Wang Y, Lee C. MicroRNA and cancer - focus on apoptosis.
J Cell Mol Med, 2009, 13(1): 12-23
[31] Boyerinas B, Park SM, Shomron N, et al. Identification of
let-7-regulated oncofetal genes. Cancer Res, 2008, 68(8):
2587-91
[32] Park SM, Shell S, Radjabi AR, et al. Let-7 prevents early
cancer progression by suppressing expression of the embry-
onic gene HMGA2. Cell Cycle, 2007, 6(21): 2585-90
[33] Lee YS, Dutta A. The tumor suppressor microRNA let-7
represses the HMGA2 oncogene. Genes Dev, 2007, 21(9):
1025-30
[34] Tessari MA, Gostissa M, Altamura S, et al. Transcriptional
activation of the cyclin A gene by the architectural transcrip-
tion factor HMGA2. Mol Cell Biol, 2003, 23(24): 9104-16
[35] Wightman B, Ha I, Ruvkun G. Posttranscriptional regula-
tion of the heterochronic gene lin-14 by lin-4 mediates
temporal pattern-for-mation in C.elegans. Cell, 1993, 75(5):
855-62
[36] Meister G, Landthaler M, Dorsett Y, et al. Sequence-spe-
cific inhibition of microRNA- and siRNA-induced RNA
silencing. RNA, 2004, 10(3): 544-50