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Immobilization of lipase-producing cells of Candida valida T2 with polyurethane foams

聚氨酯泡沫固定产脂肪酶粗状假丝酵母(Candida valida T2)细胞的研究



全 文 :Nov.2008
·52·
生物加工过程
ChineseJournalofBioprocessEngineering
第6卷第6期
2008年11月
聚氨酯泡沫固定产脂肪酶粗状假丝酵母
(Candidavalida12)细胞的研究
欧阳军梅,段学辉,傅 奇,牛春铃
(南昌大学食品科学与技术国家重点实验室,南昌330031)
摘要:对聚氨酯泡沫固定产脂肪酶粗状假丝酵母(Candidavalida12)细胞的固定化条件进行了研究。实验结果
表明,聚氨酯泡沫颗粒经密度和粒径筛选,酸碱处理,以及固液比优化,载体固定细胞干质量比达到l571ms/g,细
胞脂肪酶的酶活为每克干细胞l415U。电镜图片显示粗状假丝酵母茵(Cand/dava//dal2)在载体孔隙内和脊壁上
缠绕充盈,生长良好,固定结构稳定。固定化细胞连续催化水解桐籽油5批次,细胞相对水解酶活保持率迭73%。
固定细胞的损失率为12.5%。固定化细胞颗粒显示出良好的操作稳定性和酶活保持率,为进一步的应用研究提供
了实验基础。
关键词:粗状假丝酵母;固定化细胞;脂肪酶;聚氨酯泡沫
中图分类号:TQ925+.6 文献标志码:A 文章编号:1672—3678(2008)06—0052—06
Immobilizationoflipase-producingcellsofCandidavalidaT2
withpolyurethanefoams
OUYANGJun-mei,DUANXue-hui,FUQi,NIUChun-ling
(StateK yLaboratoryofFoodScienceandTechnology,NanchangUniversity,Nanchang330031,China)
Abstract:Theimmobilizationcond tionsoflipase-producingcellsofCand/davalidaI"2withpolyurethane
foamwereinvestigated.Ther sultss owedthatthecelloadofpolyurethanefo mreached1 415ms/g
andthelipasea tivityof hedrycellachieved1 255U/gaftertheoptimizationof heconditionsonthe
carrierd nsity,theparticlesize,thepr treatmentprocedure,andtheratioofsolidcarriertofermentation
broth.Scanningelectricm roscopeshowedthemyceliumCand/davalida,12enlacedorfiHedintherib
andontheinnerwallofthecarriercavity.TheimmobilizedCand/daval/dar12cellsgrewwellandcolony
configurationw stable.Inacatalyzedhydrolysisoftungoilbytheimmobilizedcells,theenzymaticc-
tivityremained73%.andtheachratewas12.5%afterfiveepeatreactions.
Keywords:Candidaval T2;immobilizedcell;lipase;polyurethanefoam
生物柴油是典型的“绿色能源”,发展生物柴油
对推进能源替代,减轻石化能源压力,控制城市大
气污染具有重要意义。目前,生物柴油的生产方法
主要有化学法和生物酶法。由于商业化的脂肪酶
成本较高,许多研究者都致力于用固定化方法来降
低生产成本。固定化细胞是在固定化酶基础上发
收稿日期:2008-04-01
基金项目:江西省科技攻关资助项目(2004180103000)。
作者简介:欧阳军梅(1979一),女,江西九江人,硕士研究生,研究方向:食品生物技术。
联系人:段学辉,教授,E-mail:xhduan@IIUC.edu.crlo
万方数据
2008年11月欧阳写割每等:聚氨酯泡沫固定产暗肪酶魍愀酵压K饧砌渤m//dav2)细胞的研究·53·
展起来的新技术,比固定化酶工艺简单,可免除酶
的提取纯化,保持细胞活力,进行连续催化发酵,有
利于提高生产能力,降低成本,提高产物分离纯化
效率⋯,在一些应用领域显示出明显的优越性。
载体选择是固定化技术的关键,目前常用的载
体有聚氨酯泡沫(polyurethanefoam,PUF),多孔玻
璃、聚乙烯醇等。其中,PUF作为新型固定载体材
料显示出一定的优势心]。Ory等旧】比较了木块、多
孔玻璃和PUF固定化培养醋酸杆菌的效果,结果显
示PUF载体能在最短时间内固定更多的醋酸杆菌
细胞。另外,PUF作为固定化细胞载体在生物柴油
制备领域也得到了应用。Ban等H1将丙酮干燥过的
产脂肪酶的米根霉IF04697细胞固定在PUF颗粒
内,直接用来催化大豆油生产生物柴油。假丝酵母
(Candidasp.)是国内外研究较多的产脂肪酶菌种。
本文以PUF为载体,固定一株产脂肪酶的菌株Can—
didavalidaT2细胞,研究固定化条件对载体固定细
胞生物量及细胞产脂肪酶活性的影响,以及固定化
细胞重复使用的稳定性。
1材料与方法
1.1试验材料
1.1.1菌种
粗状假丝酵母(Candidavalida12):由本实验
室保藏。
1.1.2培养基
斜面培养基:麦芽汁培养基;
种子培养基(g/L):蔗糖20.0,蛋白胨5.0,
NaCI2.0,K2HP042.0,酵母浸膏5.0;
发酵培养基(g/L):橄榄油15.0,黄豆粉30.0,糊
精5.0,NH。N031 .0,Mgs04·7H201.0,l(2HP04
2.0,Tween800.50
上述培养基在121℃湿热灭菌25min,冷却后
备用口】。其中,发酵培养基中加入一定量的PUF后
灭菌。
1.2细胞固定化方法
以无菌操作将斜面菌种接种到60mL种子培养
基中,于30℃,120r/min下培养26h。然后按10%
的接种量接入到100mL加有PUF的发酵培养基
中,在30℃,160r/rain发酵48h,假丝酵母进入或
依附于PUF内壁生长,将固定细胞的载体与发酵液
过滤分离,生理盐水清洗3次,30℃风干,得到固定
化细胞,4℃保藏待用。
1.3 固定化载体处理及制备
市售聚氨酯泡沫,剪成小立方体,沸水煮30
min,去离子水清洗3次,烘箱烘干备用。
1.3.1聚氨酯泡沫预处理
将经过制粒、煮沸、烘干的聚氨酯泡沫按下述
方法处理,考察载体生物量的固定能力和固定化细
胞的酶活性。
1)直接使用。
2)酸处理:将聚氨酯泡沫浸在5%HCl溶液中
24h,去离子水洗至中性,烘干备用。
3)碱处理:将聚氨酯泡沫浸在5%NaOH溶液
中24h,去离子水洗至中性,烘干备用。
4)先酸处理,再用碱处理:将聚氨酯泡沫浸在
5%HCI溶液中24h,去离子水洗至中性,然后将其
浸入5%NaOH溶液中24h,洗至中性,烘干备用。
5)先碱处理,再用酸处理:将聚氨酯泡沫浸在
5%NaOH溶液中24h。去离子水洗至中性,然后将
其浸入5%HCI溶液中24h,洗至中性,烘干备用。
1.3.2载体颗粒的制备
将聚氨酯泡沫(密度为27kr/m3)分别制成边
长为10、8、6、4、2mm的立方体小块颗粒,各取0.2
g分别加入到装有100mL发酵培养基的摇瓶内,灭
菌,接种和发酵培养。
1.4分析方法
1.4.1细胞脂肪酶活力测定
NaOH滴定法测酶活【6J。
酶活力定义:40℃条件下,油脂水解反应15
rain,每分钟催化脂肪水解产生lo,mol脂肪酸的脂
肪酶量定义为一个脂肪酶单位(U)。
1.4.2载体固定的生物量测定
载体固定的生物量测定采用干质量法【7J。
1.4.3扫描电镜试样制备
根据文献[8]制备试样。
1.4.4水解率的测定一1
取水解物试样按酸值测定方法[1叫测定酸值,水
解率计算为:
V一仉
水解率=}—早×100%
oV一^P
式中:K、%分别为水解物样品在£时刻的酸值和初
始酸值;S¨A,分别为桐籽油的皂化值和初始酸值
(折算为相同的底物量)
万方数据
·54· 生物加工过程 第6卷第6期
2结果与讨论
2.1 载体因素对细胞固定化的影响
2.1.1聚氨酯泡沫预处理的作用
通常聚氨酯泡沫中会残留一些对微生物生长
有危害的化学成分,需进行预处理清除,同时适当
的处理可使聚氨酯泡沫基料中的一些化学基团活
化,或改变其表面的粗糙度,从而有利于菌体的生
长和固定旧J。将不同方式处理的聚氨酯泡沫(密度
为27kg/m3,边长为8mm的立方体小块颗粒)各
0.2gg另lJJD入到装有100IllL发酵培养基的摇瓶内,
灭菌,接种和发酵培养。
实验结果如图1、图2所示。
囊蒿400k舢避 } I j l i鼍}囵目 囝 囡 臼
l ooo
瑚{800

盏摹枷
嚣莹枷
篷200
O
l一直接使用;2一酸处理;3一碱处理;
4一先酸后碱处理;5一先碱后酸处理
图2酸碱处理对载体固定细胞生物量的影响
Fig.2EffectofPUFcarrierstreatedwithacid
01"basethimmobilizedcelbiomass
由图l、图2可知,载体处理方式不同,对聚氨
酯泡沫固定细胞生物量的影响不大,但对细胞产酶
的影响明显,说明单一的酸碱处理或煮沸处理无法
去除聚氨酯泡沫内部的一些成分,造成对细胞产酶
的影响,但是,酸碱处理的先后顺序对固定化细胞
产酶的影响无明显差异。先碱处理,再用酸处理的
方式每克载体固定细胞的干质量达到824mg,细胞
产酶酶活达到每克干细胞l022U。
2.1.2载体颗粒大小的影响
分离检测不同大小载体颗粒固定化细胞的干
质量和酶的活性,结果如图3所示。
900

400器
300*
2lI】000"逼波
O
图3载体尺寸对产酶及固定细胞生物■的影响
Fig.3EffectofPUFsizeonthelipaseproduction
andtheimmobilizedcellbiomass
由图3可知,当载体尺寸较小时,固定的细胞较
少。较小颗粒载体在摇瓶振荡培养环境中,载体内
部受到流动培养摹的冲击相对较大,细胞难以稳定
生长和固定;而载体尺寸偏大时,颗粒内部受到传
质限制,营养传递和供氧不畅,不利于菌体生长。
切片观察颗粒内部只有少量的菌丝体甚至无菌丝
体。载体为边长8mm的立方体小块时,颗粒固定
细胞干质量最大,达到每克载体固定细胞824mg,
固定化细胞酶活达到每克干细胞l022U。
2.1.3载体材料密度的影响
实验在相同的培养条件下比较了密度为9、27、
40ks/m3聚氨酯泡沫载体的细胞固定化效果。结果
如图4所示。
l 000
霎 soo
羹摹600
嚣黑400
篷200
0
9 27 40
载体密度/(ks·m4)
圈4载体密度对固定细胞生物量的影响
Fig.4EffectofPUFdensityon heimmobilizedcellbiomass
万方数据
2008年11月欧阳军悔等:聚氨酯泡沫固定产脂肪酶粗状暇丝酵母(Cand/dava//daT2)细胞的研究·55·
载体密度不同,孔隙率也会不同。由图4可知,
密度为9kg/m3的载体固定细胞量少,而切片镜检
显示载体内仅有少量的菌丝体,可能是由于载体密
度低,内部孑L隙空间较大,可供细胞吸附生长固定
的内部脊壁积小,影响细胞在载体内稳定生长和有
效固定。密度高的40kg/m3载体固定细胞量也少,
可能是载体孔隙小,假丝酵母结团生长的特性易堵
塞载体的外表面,影响了细胞的进人生长。密度为
27kg/m3的载体细胞固定量相对较好。
2.1.4载体加入量对菌体固定化效率的影响
分别加入一定质量(密度为27kg/m3)的聚氨酯
泡沫载体至100mL发酵培养基中培养,考察聚氨酯
泡沫对固定化细胞干质量及细胞酶活的影响。结果
如图5所示。载体质量为0.15g时,载体同定细胞量
及细胞产酶酶活最大,分别为1571ng/g和l415U,
说明适合的载体加入量才能得到较高的细胞固定化
效率。
1
1
1
己1


图5载体加入量对产酶及固定细胞生物量的影响
Fig.5EffectofPUFamounton helipaseproductionandthe
immobilizedcellbiomass
2.2培养细胞的分布和固定化细胞的稳定性检测
粗状假丝酵母固定发酵完毕后,将发酵液与载
体分离,载体用生理盐水洗涤,洗涤至洗脱细胞数
接近零(血球计数板计数)。离心收集洗脱的细胞,
105oC干燥恒质量。同时,发酵液离心,洗涤,收集
细胞,烘干,称质量。分析结果如图6、图7所示。
l 2 3 4 5 6 7 8
洗涤次数
6洗脱载体中固定不稳定的细胞
6 Eluteheinstableimmobilizedcells
图7细胞在聚氨酯泡沫载体内外的分布
Fig.7DesperationofcellsinoroutPUF
由图6可知,洗涤8次后,洗涤液中的细胞浓度接
近零。剩下的细胞稳定地固定在聚氨酯泡沫内。由图
7可知,聚氨酯泡沫的微孔结构为菌体提供了良好的生
长和固定微环境。固定发酵结束时载体中固定了大约
70.2%生物量,远大于发酵液的细胞生物量。
2.3载体内细胞生长固定方式的微观考察
为r了解粗状假丝酵母在聚氨酯泡沫载体内
的生长固定情况,采用电镜扫描细胞固定化颗粒,
扫描结果如图8所示。
图8聚氨酯泡沫固定粗状假丝酵母菌电镜扫描图
Fig.8SEMphotosofCand/dav //da他adheredtothePUFinnersurface
、咖霉酬霉导卜馊匠
∞∞伽∞∞∞册∞∞o咖枷伽瑚咖咖鲫伽瑚。
万方数据
· 56· 生物加工过程 第6卷第6期
从电镜扫描图8(a)、(b)看出,粗状假丝酵母
菌在载体孔隙内缠绕充盈,生长固定良好。游离块
状菌团的出现主要是由于细胞固定化颗粒在扫描
电镜制样干燥过程中,载体孔隙内固定化菌团因脱
水收缩断裂,部分脱落而形成,图8(c)、(d)显示,
菌体在载体内部的脊壁上生长依附牢固,固定结构
稳定。
2.4 固定化细胞酶催化稳定性考察
催化水解反应体系为:4mL桐籽油,8mL磷酸
缓冲液(pH7.0),固定化细胞1份,在振荡条件下
(120r/min),40℃水解48h为l批次。连续进行
5批水解反应,分别取样检测每批水解反应桐籽油
的水解率和固定化细胞保留干质量,考察固定化细
胞的稳定性和酶催化活性,并与游离细胞催化活性
相比较,结果如图9、表l所示。
70
60
冰50
旃40
鹱30
*20
lO
O
l 2 3 4 5
水解批次,lI
图9固定细胞的稳定性
Fig.9Stabilityoftheimmobilizedcells








图lO5批水解反应后固定化细胞电镜扫描图
Fig.10SEMphotosoftheimmobilizedcellsafter
fiverepeathydrolysisreactions
内脊壁上的细胞损失较大,但载体孔隙内固定细胞
保留良好,细胞损失较小。由图10(b)可以看出,反
应后载体内固定菌团的外表面覆盖着一层形似油
状物,这可能是反应过程中残留的未完全水解的少
量底物,在电镜制样过程中因干燥而形成的聚合物。
表1游离细胞与固定化细胞催化桐籽油水解 3 结 论
Table1 Therateoftungoilhydrolysiscatalyzed
byfreeandimmobilizedcells
细胞类型细胞下生物量/(mg·g“)桐籽油水解彩%
由图9可知,经过5批反应,固定细胞催化的桐
籽油水解率由58.2%降至42.5%,相对水解酶活保
持率为73.02%;载体固定细胞量由1571me/g降
至l374mg/g,固定细胞的损失率为12.5%。固定
化细胞颗粒显示出良好的细胞固定稳定性和酶活
保持率。
由表1可知,游离细胞催化桐籽油的水解率不
低于固定化细胞,但游离细胞不易重复使用。图10
为5批水解反应后的固定化颗粒电镜图。
由图10(a)可知,5批水解反应后,固定在载体
聚氨酯泡沫载体固定产脂肪酶粗状假丝酵母
细胞,其优化的固定条件为:聚氨酯泡沫尺寸
8mm×8mm×8mm,密度27ks/m3。经酸碱预处
理,载体与固定培养液的质量体积比为0.15:100
(g/mL),30℃,固定培养48h,有70.2%的细胞进
入聚氨酯泡沫中生长固定,载体固定细胞量达到
l 571ms/g,细胞的酶活达到每克干细胞l415U。
扫描电镜图片显示粗状假丝酵母细胞(Cand/datab
/daT2)在载体内部的空隙和脊壁上生长固定良好,
结构稳定。固定化细胞具有稳定催化油脂水解的
能力,连续5批次的桐籽油水解反应,固定化细胞的
相对水解酶活保持率达73%,细胞的损失率小于
13%。固定化细胞颗粒显示出良好的细胞固定稳定
性和酶活保持率。聚氨酯泡沫物化性能稳定,价格
低廉,易于处理回收,作为细胞酶固定化载体具有
应用研究的潜力。
∞∞∞卯加卯∞卯
6
5
5
4
4
3
3
2
万方数据
2008年11月欧阳军侮等:聚氨酯泡沫固定产脂肪酶粗状假丝酵母(Cand/da删如缸r12)细胞的研究-57·
参考文献:
[1]张云波,王跃军。洪义国。等.黄海黄杆菌YS-9412.130固定化
细胞产酶技术[J].海洋水产研究,2000,21(4):36-40。
刁l∞gYtmBo,WangY舯jan,HongYiguo,da1.StudiesOllenzyme
pmductionechnology0finmDbilizedcellfromE”如n伽YS-9412·
aso[j].MarineFisheriesResearch,2000,21(4):36-.40.
[2]梁兴超,卢英华,陈杰,等.聚氨酯泡沫半固定化培养盘基网柄
菌[J].生物加工过程,2007,5(2):52-56.
LiangXingehao,LuYinghU8。ChenJie,eta1.Immobilizedeulti-
vationfDictyosteliumdiscoideumwithpolyurethanefo m[J].
ChineseJournalofBioprocessEngineering,2007,5(2):52-56.
[3]Oryl d。RomeroLE,CantemD.Oprimizationofimm bilization
conditionsforvinegarproduction:siran,woodchipsandp myure-
thanefoam酗carrierBforAcetobactereti[J].Proce88Bi hemis.
try,2004,39:547-555.
[4]BanK。KaiedaM,MatsumotoT,ea1.矾olecellbiocatalystfor
biodieselfuelproductionut lizingRh/zopusoryzaecelJsimmobilized
withinbiomasssupportparticles[J].BieehemEngJ,2001,8(1):
3943.
[5]肖海群,段学辉,牛春铃.粗状假丝酵母(cand/dam//da1"2)生
产脂肪酶的发酵条件[J].食品与生物技术学报,2007,26
(4):62-66.
XiaoHalqun,DuanXuehui,NiuChunling.StudiesOnthefer-
mentationpr cessforlipaseproductionbyCandidamlidaT2[J].
JoumalofFoodScienceandBiotechnology。2007,26(4):62-66.
[6]郭勇.酶工程[M].北京:中国轻t业出版社,1994.
[7]沈萍.微生物学[M].北京:高等教育出版社,2000.
[8]沈萍。范秀容,李广武.微生物学实验[M].北京:高等教育出
版社,1999.
[9]郑毅,施巧琴.由扩展青霉(Pe"mc///iumexpan.Iurrt)PF868产生
脂肪酶催化油脂水解的研究[J].工业微生物,1999,29(1):
1%20.
ZhengYi,ShiO ∞qin.Hydrolysisofoilsandfatscatalyzedbyli—
pasefromPenicillium掣w咖PF868[J].IndustrialMicrobiolo-
舒,1999,29(1):17-20.
[10]黄伟坤.食品检验与分析[M].北京:中国轻工业出版
社,1989.
新型工业酶研究获863计划重点支持
为改变缺乏适合国情的鼋大核心生物技术的现状,构建新一代工业生物技术体系,力求在生物能源、生
物基化学品、生物材料等关键技术上取得突破,新一代工业生物技术列入科技部的863计划生物和医药技术
领域2008年度专题课题中,其中,工业酶技术将获得重点支持。
国家发改委预测数据显示,到2020年,生物医药占全球药品的比例将超过1/3,生物质能源占世界能源
消费的比例将达到5%左右,生物基材料将替代10%一20%的化学材料。继信息产业之后,生物产业将逐渐
成为未来全球经济社会发展的又一重要推动力。对于非粮燃料乙醇等新型生物能源,高效、转移的酶催化
技术是其实现产业化的关键环节。但目前我国生物技术还面临着生物材料化学品原料利用率不高、缺乏适
合国情的重大核心生物技术等挑战。开发新一代工业生物技术,构建新的生物产业路线图、生物质加工新
体系和新型生物催化剂体系,就要充分发挥生物催化和生物转化的高效性和高选择性。
(朱宏阳)
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