全 文 ：第７卷第２期
２００９年３月
生 物 加 工 过 程
ＣｈｉｎｅｓｅＪｏｕｒｎａｌｏｆＢｉｏｐｒｏｃｅｓｓＥｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ
Ｖｏｌ．７Ｎｏ．２
Ｍａｒ．２００９
收稿日期：２００８－０８－１３
作者简介：任文霞（１９８３—），女，河南通许人，硕士研究生，研究方向：营养与食品卫生；李建科（联系人），教授，Ｅｍａｉｌ：ｊｉａｎｋｅｌ＠ｓｎｎｕ．ｅｄｕ．ｃｎ
逆相蒸发法制备茶多酚脂质体及质量评价
任文霞，李建科
（陕西师范大学 食品工程与营养科学学院，西安 ７１００６２）
摘 要：采用逆相蒸发法制备茶多酚脂质体并进行质量评价。通过二次回归旋转组合设计优化茶多酚脂质体制备
工艺及配方，对其形态、结构、粒径分布等性质进行考察。研究结果表明，最佳配方为 ｍ（大豆卵磷脂）∶
ｍ（胆固醇）＝３∶１、茶多酚质量浓度为７ｍｇ／ｍＬ、Ｖ（有机相）∶Ｖ（水相）＝４∶１、磷酸盐缓冲液浓度１５ｍｍｏＬ／Ｌ，此条件
下包封率为５０３７％；所制备的茶多酚脂质体形态呈圆球形或椭球形，为大单室脂质体，有效粒径为１６５３ｎｍ，Ｚｅｔａ
电位为－６９３ｍＶ。逆相蒸发法制备茶多酚脂质体方法简单可行，所制备的脂质体具有一定缓释性。
关键词：脂质体；逆相蒸发；茶多酚
中图分类号：Ｑ９４６．８ 文献标志码：Ａ 文章编号：１６７２－３６７８（２００９）０２－００６８－０６
Ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎａｎｄｑｕａｌｉｔｙｅｖａｌｕａｔｉｏｎｏｆｔｅａｐｏｌｙｐｈｅｎｏｌｌｉｐｏｓｏｍｅｓｂｙ
ｒｅｖｅｒｓｅｐｈａｓｅｅｖａｐｏｒａｔｉｏｎ
ＲＥＮＷｅｎｘｉａ，ＬＩＪｉａｎｋｅ
（ＣｏｌｅｇｅｏｆＦｏｏｄＥｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇａｎｄＮｕｔｒｉｔｉｏｎａｌＳｃｉｅｎｃｅ，ＳｈａａｎｘｉＮｏｒｍａｌＵｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｘｉ′ａｎ７１００６２）
Ａｂｓｔｒａｃｔ：Ｔｅａｐｏｌｙｐｈｅｎｏｌｌｉｐｏｓｏｍｅｓｗｅｒｅｐｒｅｐａｒｅｄｂｙｒｅｖｅｒｓｅｐｈａｓｅｅｖａｐｏｒａｔｉｏｎ．Ｔｈｅｑｕａｄｒａｔｉｃｒｏｔａｔｉｏｎ
ｒｅｇｒｅｓｓｉｏｎｏｒｔｈｏｇｏｎａｌｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎｗａｓｄｅｓｉｇｎｅｄｔｏｏｐｔｉｍｉｚｅｔｈｅｔｅｃｈｎｉｑｕｅｐａｒａｍｅｔｅｒｓ，ａｎｄｔｈｅｉｎｄｉｃｅｓｉｎ
ｃｌｕｄｉｎｇｔｈｅｃｈａｒａｃｔｅｒ，ｓｔｒｕｃｔｕｒｅａｎｄｐａｒｔｉｃｌｅｄｉｓｔｒｉｂｕｔｉｏｎｏｆｔｅａｐｏｌｙｐｈｅｎｏｌｓｌｉｐｏｓｏｍｅｓｗｅｒｅｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｅｄ．
Ｔｈｅｏｐｔｉｍａｌｃｏｎｄｉｔｉｏｎｓｗｅｒｅａｓｆｏｌｏｗｓ：ｒａｔｉｏｏｆｓｏｙｂｅａｎｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐｉｄｓｔｏｃｈｏｌｅｓｔｅｒｏｌｗａｓ３∶１（ｍ／ｍ），ｔｈｅ
ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎｏｆｔｅａｐｏｌｙｐｈｅｎｏｌｓｗａｓ７ｍｇ／ｍＬ，ｔｈｅｒａｔｉｏｏｆｏｉｌｐｈａｓｅｔｏａｑｕｅｏｕｓｐｈａｓｅｗａｓ４∶１（Ｖ／Ｖ），ｔｈｅ
ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎｏｆｐｈｏｓｐｈａｔｅｂｕｆｅｒｓａｌｉｎｅｗａｓ１５ｍｍｏｌ／Ｌ．Ｔｈｅｅｎｃａｐｓｕｌａｔｉｏｎｅｆｉｃｉｅｎｃｙｗａｓｕｐｔｏ
５０３７％．Ｔｈｅｓｈａｐｅｏｆｔｈｅｌｉｐｓｏｍｅｓｗａｓｓｐｈｅｒｉｃａｌｏｒｅｌｉｐｓｏｉｄａｌａｎｄｔｈｅｓｔｒｕｃｔｕｒｅｏｆｔｈｅｌｉｐｓｏｍｅｓｗａｓ
ｌａｒｇｅｕｎｉｌａｍｅｌａｒｖｅｓｉｃｌｅｓ．Ｔｈｅｅｆｅｃｔｉｖｅｄｉａｍｅｔｅｒｗａｓ１６５３ｎｍ，ａｎｄｔｈｅｚｅｔａｐｏｔｅｎｔｉａｌｗａｓ－６９３ｍＶ．
Ｔｈｅｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎｏｆｒｅｖｅｒｓｅｐｈａｓｅｅｖａｐｏｒａｔｉｏｎｗａｓｓｉｍｐｌｅａｎｄｆｅａｓｉｂｌｅ．Ｔｈｅｐｒｅｐａｒｅｄｌｉｐｓｏｍｅｓｈａｄｒｅｌｅａ
ｓｉｎｇｆｕｎｃｔｉｏｎｏｆｔｅａｐｏｌｙｐｈｅｎｏｌｓ．
Ｋｅｙｗｏｒｄｓ：ｌｉｐｏｓｏｍｅ；ｒｅｖｅｒｓｅｐｈａｓｅｅｖａｐｏｒａｔｉｏｎ；ｔｅａｐｏｌｙｐｈｅｎｏｌ
茶多酚（ｔｅａｐｏｌｙｐｈｅｎｏｌ，ＴＰ），是茶叶中所含的
一类多羟基酚类化合物的总称，大多属缩合单宁，
因其大部分溶解于水，所以又称为水溶性单宁，是
茶叶的主要有效成分，占茶叶干质量的 ２０％ ～
３０％［１］。茶多酚具有清除自由基、抗衰老、抗肿瘤、
抗辐射、降血脂、降血压等药理功能，还有消炎利
尿、解酒等功效［２］。但茶多酚脂溶性较差，生物利
用度低，易被氧化，从而限制了它在医药和食品等
行业中应用［３］。脂质体作为药物载体，是一种相对
较新的微胶囊化技术，具有有效防止被包裹药物氧
化、提高稳定性、提高生物利用度、使被包裹药物具
有靶向性、天然无毒、生物可降解、无免疫抑制作用
等优点［４－５］。本试验利用脂质体将茶多酚进行包
覆，采用逆相蒸发法制备茶多酚脂质体，通过二次
回归旋转组合设计优化茶多酚脂质体制备工艺及
配方，并对其进行质量评价，为开发茶多酚新剂型、
扩大其在保健食品行业的应用提供一定的理论与
试验依据。
１ 材料与方法
１１ 试验材料
茶多酚（纯度为９５％），西安沃尔森生物技术有
限公司；大豆卵磷脂（ｓｏｙｂｅａｎｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐｉｄｓ，ＳＰＣ），
北京双璇微生物培养基制品厂；胆固醇（ｃｈｏｌｅｓｔｅｒｏｌ，
ＣＨ），西安舟鼎国生物技术有限公司。三氯甲烷、
Ｎａ２ＨＰＯ４、ＮａＨ２ＰＯ４、磷钨酸及其他试剂均为国产分
析纯。
１２ 主要仪器
ＫＱ３２００Ｂ型超声波清洗器，昆山市超声仪器有
限公司；ＴＵ １８１０型紫外可见分光光度计，北京普析
通用仪器有限责任公司；ＭｏｔｉｃＢＡ３００型光学显微镜，
北京麦克奥迪显微镜公司；Ｈ ６００型透射式电子显
微镜，日本日立公司；ＢＩ ９０Ｐｌｕｓ型激光粒度仪，美国
布鲁克海文仪器公司；ＺｅｔａｓｉｚｅｒＮａｎｏＺＳ型Ｚｅｔａ电位
仪，英国马尔文仪器有限公司；ＤＦ １０１Ｓ型集热式恒
温加热磁力搅拌器，巩义市英峪予华仪器厂。
１３ 试验方法
１３１ 标准曲线的建立
配制质量浓度为３００μｇ／ｍＬ的水溶液作为标准
贮备液。精密移取贮备液０１２５、０２５、０５、１、１５、
２、２５和３ｍＬ，用蒸馏水定容至２５ｍＬ即得标准应用
液。以蒸馏水为空白对照，在２７４ｎｍ处用紫外可见
分光光度计测定吸光值 Ａ（ｙ）。以茶多酚质量浓度
为横坐标，吸光值为纵坐标，建立标准曲线。茶多
酚在质量浓度为１５～３６μｇ／ｍＬ范围内与吸光值
有良好的线性关系，线性方程为：ｙ＝００２３４ｘ＋
０００１１，Ｒ２＝０９９９９。
１３２ 茶多酚脂质体的制备［６－７］
精密称取一定量的卵磷脂和胆固醇于梨形瓶
中，加入氯仿使其溶解，再加入磷酸盐缓冲茶多酚
溶液，超声３～５ｍｉｎ得乳浊液，３０℃旋转至干成膜，
加入００１ｍｏｌ／ＬｐＨ６５的磷酸盐缓冲溶液（ＰＢＳ）
４０ｍＬ，继续旋转使膜溶解并充分水合，过０８μｍ滤
膜，即得茶多酚脂质体。同时以不加入茶多酚，其
他操作同上做空白脂质体。
１３３ 茶多酚脂质体包封率的测定方法
精密吸取等量茶多酚脂质体和空白脂质体于
离心管中，１５０００ｒ／ｍｉｎ离心３０ｍｉｎ，取上清液；定
容至２５ｍＬ，以离心后的空白脂质体作为对照，于
２７４ｎｍ处测定其吸光值，代入回归方程，得未包入
脂质体中药物量（ρ游离）。精密吸取等量茶多酚脂质
体和空白脂质体于试管中，分别加适量无水乙醇破
乳，漩涡３ｍｉｎ，移至离心管中，然后以１５０００ｒ／ｍｉｎ
离心３０ｍｉｎ，取上清液，定容至２５ｍＬ，以离心后的空
白脂质体作为对照，于２７４ｎｍ处测定其吸光值，代
入回归方程，得总药物量（ρ总）。包封率计算为
包封率（％）＝（ρ总 －ρ游离）／ρ总 ×１００％
１３４ 试验设计
茶多酚脂质体制备配方采用二次回归旋转组
合设计方法［８］，试验因子水平及编码见表１，其中，
Ｘ１为ＳＰＣ与ＣＨ的质量比、Ｘ２为茶多酚质量浓度、Ｘ３
为有机相与水相的体积比、Ｘ４为磷酸缓冲液的浓度。
表１ 试验因素及水平编码
Ｔａｂｌｅ１ Ｆａｃｔｏｒｓａｎｄｌｅｖｅｌｓｏｆｔｈｅｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔ
水平
因素
Ｘ１
ｍ（ＳＰＣ）∶
ｍ（ＣＨ）
Ｘ２
ρ（茶多酚）／
（ｍｇ·ｍＬ－１）
Ｘ３
Ｖ（有机相）∶
Ｖ（水相）
Ｘ４
ｃ（ＰＢＳ）／
（ｍｍｏＬ·Ｌ－１）
－２ １∶１ １ ２∶１ ５
－１ ２∶１ ３ ３∶１ １０
０ ３∶１ ５ ４∶１ １５
１ ４∶１ ７ ５∶１ ２０
２ ５∶１ ９ ６∶１ ２５
１３５ 光学显微镜下观察实验
取适量茶多酚脂质体于光学显微镜油镜下观
察并拍照。
１３６ 透射电子显微镜下观察实验
采用负染法。取１滴茶多酚脂质体滴于放在滤
纸上的铜网上，晾干，再将铜网置于蜡板上，用２％
的磷钨酸染色３～５ｍｉｎ，用滤纸小片从铜网边缘吸
干多余染液，晾干，用透射电子显微镜观察并拍照。
观察其粒径大小和形态。
１３７ 茶多酚脂质体粒度测定
用激光粒度仪测定茶多酚脂质体粒度分布。
９６ 第２期 任文霞等：逆相蒸发法制备茶多酚脂质体及质量评价
１３８ 茶多酚脂质体Ｚｅｔａ电位的测定
用Ｚｅｔａ电位仪测定茶多酚脂质体电位，以确定
荷电性质。
１３９ 茶多酚脂质体外释放度研究［９－１０］
精密移取质量浓度均为６６５μｇ／ｍＬ的茶多酚溶
液和茶多酚脂质体混悬液６ｍＬ，加入已处理好的透
析袋中，悬置于装有 ｐＨ为 ６５的等渗 ＰＢＳ的
１５０ｍＬ烧杯中，在３７℃水浴中磁力搅拌，分别于
０５、１、２、３、４、６、８、１２、２４ｈ取５ｍＬ透析外液（同时
补充等量新鲜 ＰＢＳ），定容至１０ｍＬ，以蒸馏水作为
对照，于２７４ｎｍ处测定其吸光值。将吸光值代入标
准曲线，计算释放的茶多酚总量，根据下式计算各
时间点的累积释放量（Ｑｎ）。
Ｑｎ ＝ρｎＶ０＋∑ρｉＶｉ
式中：ρｎ为各时间点的实际药物质量浓度，μｇ／ｍＬ；
Ｖ０为溶出介质的总体积，ｍＬ；ρｉ为ｉ时刻各取样点实
测药物质量浓度，μｇ／ｍＬ；Ｖｉ为每次取样体积，ｍＬ。
累积释放百分率（％）＝Ｑｎ／ρｔＶ０
式中ρｔ为总药物质量浓度，μｇ／ｍＬ。
１３１０ 茶多酚脂质体稳定性的测定
脂质体的稳定性是另一个重要的评价指标，它
在一定程度上决定了脂质体存放和使用期限。在
４℃条件下将试样放置０、５、１０、１５、２０、２５和３０ｄ，
测包封率（Ｙ）的变化。
２ 结果与讨论
２１ 逆相蒸发法制备茶多酚脂质体配方的优化
在预试验的基础上，选用四因素的二次回归旋
转组合设计表进行试验，优化逆相蒸发法制备茶多
酚脂质体的配方，结果见表 ２。并运用 ＤＰＳｖ３０１
分析软件对表２中的试验结果进行统计分析。
２１１ 四元二次回归方程的建立与检验
据表２结果，计算各项回归系数，以这些回归系
数建立茶多酚脂质体包封率（Ｙ）与 ＳＰＣ与 ＣＨ的质
量比（Ｘ１）、茶多酚质量浓度（Ｘ２）、有机相与水相的
体积比（Ｘ３）、磷酸缓冲液的浓度（Ｘ４）四因素的数学
回归模型：
Ｙ＝４９８７０００－１９９１２５Ｘ１＋２５７４５８Ｘ２＋１８３２０８Ｘ３－
１０３７９２Ｘ４－２７４６５６Ｘ
２
１－２０７７８１Ｘ
２
２－２３３５３１Ｘ
２
３－
２４１２８１Ｘ２４ ＋０９４４３７Ｘ１Ｘ２ ＋４１６３１３Ｘ１Ｘ３ ＋
０８５８１２Ｘ１Ｘ４＋１６９８１３Ｘ２Ｘ３－０３０９３７Ｘ２Ｘ４＋
０２３４３８Ｘ３Ｘ４
表２ 试验设计与结果
Ｔａｂｌｅ２ Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔｄｅｓｉｇｎａｎｄｒｅｓｕｌｔｓ
试验号 Ｘ１ Ｘ２ Ｘ３ Ｘ４ Ｙ／％
１ １ １ １ １ ４７０５
２ １ １ １ －１ ４８９８
３ １ １ －１ １ ３２１９
４ １ １ －１ －１ ３５１７
５ １ －１ １ １ ３７３５
６ １ －１ １ －１ ４１０７
７ １ －１ －１ １ ３０２９
８ １ －１ －１ －１ ３１０８
９ －１ １ １ １ ４３２１
１０ －１ １ １ －１ ４９０８
１１ －１ １ －１ １ ４３４９
１２ －１ １ －１ －１ ５１４７
１３ －１ －１ １ １ ３８６９
１４ －１ －１ １ －１ ４１５８
１５ －１ －１ －１ １ ４６０４
１６ －１ －１ －１ －１ ５２４５
１７ －２ ０ ０ ０ ３２０７
１８ ２ ０ ０ ０ ３９５９
１９ ０ －２ ０ ０ ３１０８
２０ ０ ２ ０ ０ ４５９３
２１ ０ ０ －２ ０ ３２６９
２２ ０ ０ ２ ０ ４２２６
２３ ０ ０ ０ －２ ３５２５
２４ ０ ０ ０ ２ ３９０８
２５ ０ ０ ０ ０ ４７７０
２６ ０ ０ ０ ０ ４６１８
２７ ０ ０ ０ ０ ５１７２
２８ ０ ０ ０ ０ ５４５３
２９ ０ ０ ０ ０ ４５８７
３０ ０ ０ ０ ０ ４８０１
３１ ０ ０ ０ ０ ５４３６
３２ ０ ０ ０ ０ ４５５９
３３ ０ ０ ０ ０ ４６８４
３４ ０ ０ ０ ０ ５３１２
３５ ０ ０ ０ ０ ４９９５
３６ ０ ０ ０ ０ ５４５７
由方差分析可知，回归方程的失拟性检验 Ｆ１＝
２８１５，其值小于２９４（Ｆ００５（１０，１１）），表现为不显
著，可以认为所选用的二次回归模型是适当的；回
归方程的显著性检验 Ｆ２＝４２７４，其值大于 ３４９
０７ 生 物 加 工 过 程 第７卷
（Ｆ００１（１４，２１）），表现为极显著，说明模型的预测值
与实际值吻合非常好，模型成立。对回归系数显著
性检验，在 α＝０１０显著水平剔除不显著项，得到
优化后的方程为
Ｙ＝４９８７０００－１９９１２５Ｘ１ ＋２５７４５８Ｘ２ ＋
１８３２０８Ｘ３－２７４６５６Ｘ
２
１－２０７７８１Ｘ
２
２－
２３３５３１Ｘ２３－２４１２８１Ｘ
２
４＋４１６３１３Ｘ１Ｘ３
２１２ 脂质体配方的优化
经ＤＰＳ软件对试验最优工艺参数的统计分析
结果可知，逆向蒸发法制备茶多酚脂质体最佳处方
为：ＳＰＣ与 ＣＨ质量比 ３∶１、茶多酚质量浓度
７ｍｇ／ｍＬ、有机相与水相体积比为４∶１、磷酸缓冲液
的浓度为１５ｍｍｏｌ／Ｌ。在该配方下，数学回归模型预
测的包封率为５０３７％。在上述配方下，经过试验
验证，茶多酚脂质体的包封率为５１４２％ ，此数值与
理论值较接近，这进一步验证了数学回归模型的合
适性。脂质体的制备方法有逆相蒸发法、薄膜法、
复乳法、注入法［１１］等。其中，逆相蒸发法可包裹较
大的水容积，适合包裹水溶性药物、大分子生物活
性物质等［７］。茶多酚为水溶性，故采用逆相蒸发法
来制备，达到了预期试验结果。
２２ 茶多酚脂质体形态、结构观察结果
光学显微镜下观察结果（图１），由图１可知，茶
多酚脂质体轮廓清晰，呈球形或椭球形。
图１ ＴＰ脂质体光学显微镜下图片（１０×１００）
Ｆｉｇ．１ ＬｉｇｈｔｍｉｃｒｏｓｃｏｐｅｐｉｃｔｕｒｅｏｆＴＰｌｉｐｏｓｏｍｅｓ（１０×１００）
透射电子显微镜下观察结果如图２所示。由图
２可见，茶多酚脂质体结构为大单层，这与文献［７］
所报道的逆相蒸发法制备脂质体可得到大单层脂
质体的结论相符，达到了预期结果。
２３ 茶多酚脂质体粒径分布结果
用激光粒度仪测试茶多酚脂质体的粒径分布，
结果如图３所示。由图３可知，脂质体的粒径呈正
态分布，有效粒径为１６５３ｎｍ，多分散系数为
０２６０，粒径分布均匀。
图２ ＴＰ脂质体透射电镜下图片（×１００００）
Ｆｉｇ．２ ＴＥＭ ｐｉｃｔｕｒｅｏｆＴＰｌｉｐｏｓｏｍｅｓ（×１００００）
图３ ＴＰ脂质体粒径分布
Ｆｉｇ．３ ＰａｒｔｉｃｌｅｓｉｚｅｄｉｓｔｒｉｂｕｔｉｏｎｏｆＴＰｌｉｐｏｓｏｍｅｓ
图４ ＴＰ脂质体Ｚｅｔａ电位
Ｆｉｇ．４ ＺｅｔａｐｏｔｅｎｔｉａｌｏｆＴＰｌｉｐｏｓｏｍｅｓ
２４ 茶多酚脂质体Ｚｅｔａ电位测定结果
用Ｚｅｔａ电位仪测试茶多酚脂质体电位，结果如
图４所示。由图４可知，脂质体电位为 －６９３ｍＶ。
据文献［１２］报道，荷电荷的脂质体能够减少相互间
的聚集和融合，增加稳定性，Ｚｅｔａ电位是衡量电荷多
少的一个重要指标，当Ｚｅｔａ电位大于６０ｍＶ（或小于
１７ 第２期 任文霞等：逆相蒸发法制备茶多酚脂质体及质量评价
－６０ｍＶ），荷电粒子相当稳定；Ｚｅｔａ电位在 ３０～
６０ｍＶ（或 －３０～ －６０ｍＶ）时，荷电粒子比较稳
定；当Ｚｅｔａ电位小于３０ｍＶ（或大于 －３０ｍＶ）时，荷
电粒子不稳定，容易聚集。本试验制备的茶多酚脂
质体电位为－６９３ｍＶ，表明该脂质体表面荷负电，
且相当稳定。
２５ 茶多酚脂质体的体外释放度
茶多酚及茶多酚脂质体体外释放曲线如图５所
示。由图５可知，单纯茶多酚溶液释放较快，８ｈ之
内累积释放度达到９９５８％；而脂质体中茶多酚释
放较缓慢，在２４ｈ时才达到９８０６％，这说明茶多酚
脂质体对茶多酚有良好的缓释效果，从而延长了茶
多酚作用时间。
图５ ＴＰ及ＴＰ脂质体体外释放曲线
Ｆｉｇ．５ ＴｈｅｒｅｌｅａｓｅｃｕｒｖｅｏｆＴＰａｎｄＴＰｌｉｐｏｓｏｍｅｓｉｎｖｉｔｒｏ
２６ 茶多酚脂质体稳定性测定结果
茶多酚脂质体包封率随时间的变化结果如图６
所示。由图６可知，茶多酚脂质体包封率随时间延
长有所下降，下降了３６９％，说明脂质体中的茶多
酚在贮存过程中有一定程度的渗漏。冷冻干燥法
是提高脂质体在贮存期稳定性行之有效的方法，且
适合包裹水溶性药物的脂质体［１３］。采用冷冻干燥
法提高脂质体贮存期稳定性尚需进一步研究。
图６ ＴＰ脂质体包封率随时间变化曲线
Ｆｉｇ．６ ＴｈｅｅｎｃａｐｓｕｌａｔｉｏｎｅｆｉｃｉｅｎｃｙｃｈａｎｇｅｏｆＴＰ
ｌｉｐｏｓｏｍｅｓｗｉｔｈｔｉｍｅ
３ 结 论
１）获得了逆相蒸发法制备茶多酚脂质体配方
优化数学回归模型：
Ｙ＝４９８７０００－１９９１２５Ｘ１ ＋２５７４５８Ｘ２ ＋
１８３２０８Ｘ３－２７４６５６Ｘ
２
１－２０７７８１Ｘ
２
２－
２３３５３１Ｘ２３－２４１２８１Ｘ
２
４＋４１６３１３Ｘ１Ｘ３
采用此模型在本试验范围内能较准确地预测
茶多酚脂质体的包封率。
２）提出了逆相蒸发法制备茶多酚脂质体的最
佳配方：ＳＰＣ与ＣＨ质量比 ３∶１、茶多酚质量浓度为
７ｍｇ／ｍＬ、有机相与水相体积比为４∶１、磷酸缓冲液
的浓度为１５ｍｍｏｌ／Ｌ。在该配方下，数学回归模型
预测的包封率为５０３７％。逆相蒸发法制备茶多酚
脂质体操作简便可行。
３）制备的茶多酚脂质体形态呈圆球形或椭球
形，为大单室脂质体，有效粒径为１６５３ｎｍ，多分散
系 数 为 ０２６０，粒 径 分 布 均 匀；Ｚｅｔａ电 位 为
－６９３ｍＶ，脂质体相当稳定。
４）体外缓释性能研究表明，茶多酚溶液释放较
快，８ｈ内累积释放度达到９９５８％，而茶多酚脂质体
释放较缓慢，在２４ｈ时才达到９８０６％，说明茶多酚
脂质体有良好的缓释效果。
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５６４５６８．
最新专利文摘
ＣＮ１０１３３６９５８ 苦参中提取的生物碱在治疗支原体、衣原体和真菌引起的疾病中的药物用途
本发明公开了苦参中提取的生物碱在治疗支原体、衣原体和真菌引起的疾病中的药物用途。所述的苦
参中提取的生物碱是指苦参碱、氧化苦参碱、槐果碱、氧化槐果碱、槐定碱或苦参总碱，其中的苦参总碱中总
生物碱质量分数为７００％～９９０％，苦参碱和氧化苦参碱的质量分数为４５０％～９００％。苦参中提取的生
物碱作为活性成分制备的药物对支原体、衣原体和真菌均有良好的抑制作用，可用于治疗由支原体、衣原体
和真菌感染引起的各类疾病。
ＣＮ１０１３３８２１１ 一种生物液体燃油的制备方法
本发明涉及化工领域，具体涉及一种生物液体燃油的制备方法。该制备方法，它包括下列步骤：在高温
低压下，将生物油脂脱水，至质量分数低于２％；在６０～８０℃下加入质量分数０２５％ ～０３％的环乙胺、１％
柴油和１％化工油，混合稀释；在２００～４００℃下，加入质量分数３％的分子筛、质量分数２％～２５％的甲醇或
乙醇，裂解醇化；加入助剂，混合，过滤即生成产品。本发明提供的方法工艺简单，大大降低醇用量，工艺过
程中废液产生极少。本发明提供的方法所生产出的生物液体燃油具有十六烷值高、抗爆性好、动力大；含氧
量高、燃烧充分，油耗省；运动机件润滑性好；凝点低，低温发动和启动性好；和柴油混合性好；含硫低，有利
于环保。
ＣＮ１０１３４６４６０ 干燥微生物菌体的制造方法
本发明涉及开发在不降低微生物菌体的品质，而且不存在菌体微粉化问题的情况下，利用廉价的微生
物菌体经加热处理来制造干燥微生物菌体的方法。该制造方法的特征是，将微生物菌体在２００～４５０℃（产
品温度）下加热１～３０ｓ即可。
（朱宏阳）
３７ 第２期 任文霞等：逆相蒸发法制备茶多酚脂质体及质量评价