全 文 :
摇 摇 摇 摇 摇 生 态 学 报
摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 (SHENGTAI XUEBAO)
摇 摇 第 33 卷 第 14 期摇 摇 2013 年 7 月摇 (半月刊)
目摇 摇 次
前沿理论与学科综述
石鸡属鸟类研究现状 宋摇 森,刘迺发 (4215)………………………………………………………………………
个体与基础生态
不同降水及氮添加对浙江古田山 4 种树木幼苗光合生理生态特征与生物量的影响
闫摇 慧,吴摇 茜,丁摇 佳,等 (4226)
……………………………
……………………………………………………………………………
低温胁迫时间对 4 种幼苗生理生化及光合特性的影响 邵怡若,许建新,薛摇 立,等 (4237)……………………
不同施氮处理玉米根茬在土壤中矿化分解特性 蔡摇 苗,董燕婕,李佰军,等 (4248)……………………………
不同生育期花生渗透调节物质含量和抗氧化酶活性对土壤水分的响应
张智猛,宋文武,丁摇 红,等 (4257)
…………………………………………
……………………………………………………………………………
天山中部天山云杉林土壤种子库年际变化 李华东,潘存德,王摇 兵,等 (4266)…………………………………
不同作物两苗同穴互作育苗的生理生态效应 李伶俐,郭红霞,黄耿华,等 (4278)………………………………
镁、锰、活性炭和石灰及其交互作用对小麦镉吸收的影响 周相玉,冯文强,秦鱼生,等 (4289)…………………
CO2 浓度升高对毛竹器官矿质离子吸收、运输和分配的影响 庄明浩,陈双林,李迎春,等 (4297)……………
pH值和 Fe、Cd处理对水稻根际及根表 Fe、Cd吸附行为的影响 刘丹青,陈摇 雪,杨亚洲,等 (4306)…………
弱光胁迫对不同耐荫型玉米果穗发育及内源激素含量的影响 周卫霞,李潮海,刘天学,等 (4315)……………
玉米花生间作对玉米光合特性及产量形成的影响 焦念元,宁堂原,杨萌珂,等 (4324)…………………………
不同林龄胡杨克隆繁殖根系分布特征及其构型 黄晶晶,井家林,曹德昌,等 (4331)……………………………
植被年际变化对蒸散发影响的模拟研究 陈摇 浩,曾晓东 (4343)…………………………………………………
蝇蛹金小蜂的交配行为及雄蜂交配次数对雌蜂繁殖的影响 孙摇 芳,陈中正,段毕升,等 (4354)………………
西藏飞蝗虫粪粗提物的成分分析及其活性测定 王海建,李彝利,李摇 庆,等 (4361)……………………………
不同水稻品种对稻纵卷叶螟生长发育、存活、生殖及飞行能力的影响 李摇 霞,徐秀秀,韩兰芝,等 (4370)……
种群、群落和生态系统
基于 mtCOII基因对山东省越冬代亚洲玉米螟不同种群的遗传结构分析
李丽莉,于摇 毅,国摇 栋,等 (4377)
………………………………………
……………………………………………………………………………
太湖湿地昆虫群落结构及多样性 韩争伟,马摇 玲,曹传旺,等 (4387)……………………………………………
西江下游浮游植物群落周年变化模式 王摇 超,赖子尼,李新辉,等 (4398)………………………………………
环境和扩散对草地群落构建的影响 王摇 丹,王孝安,郭摇 华,等 (4409)…………………………………………
黄土高原不同侵蚀类型区生物结皮中蓝藻的多样性 杨丽娜,赵允格,明摇 姣,等 (4416)………………………
景观、区域和全球生态
基于景观安全格局的建设用地管制分区 王思易,欧名豪 (4425)…………………………………………………
黑河中游湿地景观破碎化过程及其驱动力分析 赵锐锋,姜朋辉,赵海莉,等 (4436)……………………………
2000—2010 年青海湖流域草地退化状况时空分析 骆成凤,许长军,游浩妍,等 (4450)………………………
基于“源冶“汇冶景观指数的定西关川河流域土壤水蚀研究 李海防,卫摇 伟,陈摇 瑾,等 (4460)………………
农业景观格局与麦蚜密度对其初寄生蜂与重寄生蜂种群及寄生率的影响 关晓庆,刘军和,赵紫华 (4468)…
CO2 浓度和降水协同作用对短花针茅生长的影响 石耀辉,周广胜,蒋延玲,等 (4478)…………………………
资源与产业生态
城市土地利用的生态服务功效评价方法———以常州市为例 阳文锐,李摇 锋,王如松,等 (4486)………………
城市居民食物磷素消费变化及其环境负荷———以厦门市为例 王慧娜,赵小锋,唐立娜,等 (4495)……………
研究简报
间套作种植提升农田生态系统服务功能 苏本营,陈圣宾,李永庚,等 (4505)……………………………………
矿区生态产业评价指标体系 王广成,王欢欢,谭玲玲 (4515)……………………………………………………
期刊基本参数:CN 11鄄2031 / Q*1981*m*16*308*zh*P* ¥ 90郾 00*1510*32*
室室室室室室室室室室室室室室
2013鄄07
封面图说: 古田山常绿阔叶林景观———亚热带常绿阔叶林是我国独特的植被类型,生物多样性仅次于热带雨林。 古田山地处
中亚热带东部,浙、赣、皖三省交界处,由于其特殊复杂的地理环境位置,分布着典型的中亚热带常绿阔叶林,是生物
繁衍栖息的理想场所,生物多样性十分突出。 中国科学院在这里建立了古田山森林生物多样性与气候变化研究站,
主要定位于研究和探索中国亚热带森林植物群落物种共存机制,阐释生物多样性对森林生态系统功能的影响,以及
监测气候变化对于亚热带森林及其碳库和碳通量的影响。
彩图及图说提供: 陈建伟教授摇 北京林业大学摇 E鄄mail: cites. chenjw@ 163. com
第 33 卷第 14 期
2013 年 7 月
生 态 学 报
ACTA ECOLOGICA SINICA
Vol. 33,No. 14
Jul. ,2013
http: / / www. ecologica. cn
基金项目:国家科技支撑计划项目(2009BADA8B03,2012BAD11B01);现代农业产业技术体系建设专项资金项目(CARS鄄14);山东省现代农业产
业技术体系创新团队岗位专家(花生);青岛市科技支撑计划项目(11鄄2鄄3鄄38鄄nsh)
收稿日期:2012鄄04鄄10; 摇 摇 修订日期:2012鄄10鄄23
*通讯作者 Corresponding author. E鄄mail: liangxiangd@ 163. com
DOI: 10. 5846 / stxb201204100499
张智猛,宋文武,丁红,慈敦伟,康涛,宁堂原,戴良香.不同生育期花生渗透调节物质含量和抗氧化酶活性对土壤水分的响应.生态学报,2013,33
(14):4257鄄4265.
Zhang Z M,Song W W,Ding H,Ci D W,Kang T,Ning T Y,Dai L X. The responses of leaf osmoregulation substance and protective enzyme activity of
different peanut cultivars to non鄄sufficient irrigation. Acta Ecologica Sinica,2013,33(14):4257鄄4265.
不同生育期花生渗透调节物质含量和
抗氧化酶活性对土壤水分的响应
张智猛1,宋文武1,丁摇 红1,慈敦伟1,康摇 涛1,2,宁堂原3,戴良香1,*
(1. 山东省花生研究所, 青岛摇 266100;2. 新疆农业大学农学院, 乌鲁木齐摇 830052;
3. 山东农业大学农业部作物水分生理与抗旱种质改良重点实验室,泰安摇 271018)
摘要:通过防雨棚池栽试验,以不同花生品种为试材,研究了不同生育时期非充分灌溉对花生品种各生育期叶片膜脂过氧化、渗
透调节物质含量和抗氧化酶活性的影响。 结果表明,苗期和花针期灌水,叶片抗氧化酶活性、渗透调节物质和丙二醛(MDA)含
量均有不同程度的降低。 随生育期推进和土壤水分降低,其活性升高,但升幅因品种、抗氧化酶和渗透调节物质类型有异,两品
种叶片超氧化物歧化酶(SOD)、过氧化氢酶(CAT)、可溶性糖(SS)、可溶性蛋白质(Pr)、游离氨基酸(AA)和脯氨酸(Pro)含量
均以对水分最为敏感的花针期升幅较大,且花育 27 号的 SOD、CAT、Pr和 AA的升幅大于花育 20 号;结荚期灌水后,各抗氧化酶
和渗透调节物质未表现降低。 两品种全生育期灌水处理与苗期灌水处理间的抗氧化酶活性、渗透调节物质和 MDA含量差异均
不显著。 水分胁迫初期,抗氧化酶活性升高,但随胁迫时间延长其活性明显降低;而渗透调节物质和 MDA含量显著高于各生育
期灌水处理。 POD活性变化对灌水处理响应较弱,SOD和 CAT是花生适应土壤水逆境的主要保护酶。 灌水处理对花生叶片抗
氧化及渗透调节能力表现为花针期>结荚期>苗期,各渗透物质调节能力依次表现为脯氨酸、可溶性蛋白质>可溶性糖>游离氨
基酸。
关键词:花生;非充分灌溉;保护酶活性;MDA;渗透调节物质
The responses of leaf osmoregulation substance and protective enzyme activity of
different peanut cultivars to non鄄sufficient irrigation
ZHANG Zhimeng1,SONG Wenwu1,DING Hong1,CI Dunwei1,KANG Tao1,2,NING Tangyuan,DAI Liangxiang1,*
1 Peanut Research Institute of Shandong province,Qingdao, Shandong 266100, China
2 College of Agronomy, Xinjiang Agricultural University, Urumqi,Xinjiang 830052, China
3 Key Laboratory of Crop Water physiology and Drought鄄tolerance Germplasm Improvement of Ministry of Agriculture, Shandong Agricultural University,
Taian, Shandong 271018, China
Abstract: Used a pool culture under rainproof, the effect of non鄄sufficient irrigation in different growth stages on leaf
membrane lipid peroxidation, osmoregulation substances content and the protective enzyme activity of different peanut
varieties were studied. The aim was to reveal the response mechanism of different peanut varieties to non鄄sufficient irrigation
in different growth stages. The result showed that leaf protective enzyme activities, osmoregulation substances and
malondialdehyde content reduced in different degrees after irrigation in seedling and flowering鄄pegging stages. Their
activities increased with the growth of peanut and the reduction of soil moisture, but the increasing ranges were different
http: / / www. ecologica. cn
because of peanut varieties, and kinds of protective enzymes or osmoregulation substances. The increasing range of leaf
SOD, CAT, the content of soluble sugars, soluble proteins, free amino acids and proline of two varieties were larger in
flowering鄄pegging stage, which is the most sensitive stage to water stress, than other stages. And the increasing range of leaf
SOD, CAT, soluble proteins, and free amino acids content of Huayu 27 were larger than those of Huayu20. The protective
enzymes activity and osmoregulation substances content were not reduced after irrigation in pod setting stage. The activity of
protective enzymes and the osmoregulation substances content and MDA had no significantly difference between two varieties
with irrigation in the whole growth stage and seedling stage. The activity of protective enzymes and the osmoregulation
substances content and MDA in water stress under whole growth stage were increased significantly compared with irrigation
treatment. The changing ranges of Huayu 27 were larger than those of Huayu22. The activity of POD was weakly affected by
irrigation stage. SOD and CAT were the mostly protective enzymes of peanut to adapt to soil water stress.
Key Words: peanut ( Arachis hypogaea Linn. ); non鄄sufficient irrigation; protective enzyme activity; MDA; osmotic
adjustment matter
水分条件是植物生长的重要环境因子之一,也是各种胁迫环境中最常见、最普遍的逆境因子之一,植物对
土壤水分胁迫的响应包含着极其复杂的生理生化变化,形成了酶促和非酶促两大类保护系统以清除活性氧,
减轻或避免活性氧对细胞造成的伤害,这些抗氧化酶系的表达量和渗透调节物质的积累量受遗传性制
约[1鄄6],并与植物对逆境胁迫的抗性密切相关,最终体现为植物对水分胁迫的适应或产生抗性[6鄄7]。 同时,渗
透调节物质含量和膜脂过氧化代谢对水分胁迫的响应较为复杂,不仅与作物类型、基因型、胁迫程度及持续时
间、不同生育期等密切相关,而且与酶的类型有关[8鄄12]。
我国花生的集中产区主要分布于干旱半干旱地区的古河道故道、丘陵坡地等地,属于典型的旱区雨养农
业。 花生虽是较耐旱耐瘠的经济和油料作物,也是发展旱作农业、充分开发利用旱薄地资源的理想作物,但生
育期内降雨量偏少、雨水集中或季节性干旱,仍成为限制花生产量与质量提高的主要因子,因此,选育节水抗
旱花生品种及其优化配套的栽培管理措施是实现花生高效用水、减少因水分环境剧变带来的损失经济而有效
的途径,并已成为农业中重要的研究课题。 传统农业认为丰水高产,相同栽培条件下,在花生需水量以上的灌
溉条件下,经济产量和生物产量随着灌水量的增加而下降,随着灌水次数的增加而提高,多余灌溉反而减产,
降低水分利用效率[13]。 已有研究表明,适度水分亏缺使作物产生适应性调节反应,做出最优化选择,可提高
作物根冠比、保护酶活性、渗透调节物质含量,水分利用效率明显提高,但不同作物类型、品种和生育时期忍受
水分亏缺的程度不同[10,13鄄14]。 只要采用适宜的栽培技术,适当减少灌溉次数和灌水量,并不影响产量,却能显
著提高水分利用效率[15]。 对作物在干旱逆境下适应能力及其反应的研究,应该充分重视干湿交替和旱后复
水条件下,作物生长和生理功能的恢复能力[16]。 关于水分胁迫对植物类型、品种、生育阶段等的保护酶系统、
渗透调节及膜脂过氧化的影响的研究认为[8鄄9,11鄄12],水分胁迫前期或轻中度胁迫下,SOD、POD、CAT 活性、
MDA含量升高,抗氧化酶活性增加,活性氧造成的伤害得以缓解[17鄄18];抗旱性强的品种在逆境条件下保护酶
活性能维持在一个较高的水平和较低的 MDA 含量及变幅,有利于清除自由基以降低膜脂过氧化水平,减轻
膜伤害程度[12,19鄄20]。 膜质过氧化是花生干旱伤害的重要原因,而较高的 CAT 活性则降低这一伤害的程度从
而使叶片维持较高的光合速率[21鄄22]。 但有关不同生育时期灌水对花生抗氧化酶系统、渗透调节及膜脂过氧
化影响的研究鲜见报道。 本试验以不同花生品种为材料在不同生育时期进行灌水,探讨不同生育期浇水对不
同花生品种叶片抗氧化酶活性、渗透调节物质含量和膜脂过氧化作用的影响,为不同基因型花生抗旱适应性
机理、选择优良耐旱种源以及建立节水高效的非充分灌溉与调亏灌溉综合技术模式提供理论依据。
1摇 材料方法
1. 1摇 试验设计
试验在山东省花生研究所试验站进行,采用防雨棚池栽试验。 以小粒型花生品种花育 20 号(百仁重
8524 摇 生摇 态摇 学摇 报摇 摇 摇 33 卷摇
http: / / www. ecologica. cn
67郾 9 g)和花育 27 号(百仁重 68. 9 g)为研究对象。 土壤基础肥力为有机质 8. 70 g / kg、水解氮 83. 29 mg / kg、
速效磷 59. 56 mg / kg和速效钾 73. 55 mg / kg,pH值 6. 79,土壤田间持水量 24. 90% 。
栽培池面积 12 m2,每池种植 8 行,行距 40 cm,穴距 20 cm,每穴 2 粒,重复 3 次。 设置全生育期干旱
(W0,植株中午有 50%出现萎蔫时进行灌水,灌水量控制在 0—20cm 土层土壤相对含水量 40%—50% ,使其
全生育期均处于中度干旱胁迫条件)、全生育期浇水(W1,苗期、花针期和结荚期均灌水,每次灌水量控制在
0—20cm土层土壤相对含水量 75%—80% ,使其全生育期土壤相对含水量均保持 60%—70% )、苗期浇水
(W2)、花针期浇水(W3)、结荚期浇水(W4)5 个水分处理,W2、W3、W4 各生育期浇水处理的灌水量控制以
0—20cm土层土壤含水量为依据,各浇水处理的灌水量均控制在 0—20cm 土层土壤相对含水量 75%—80% ,
其余生育期控制 0—20cm土层土壤相对含水量为 45%—55% 。 播前底墒水浇水量均为 1200 m3 / hm2,土壤含
水量采用烘干法测定。
播种前基施氮磷钾三元复合肥(15鄄 15鄄 15)600 kg / hm2,管理措施同高产田。 5 月 6 日播种,9 月 24 日
收获。
自出苗开始,观察植株生长发育状况,分别于苗期(出苗后 30d)、花针期(出苗后 60d)、结荚期(出苗后
90d)、饱果期(出苗后 110d)和成熟期(出苗后 125d)采集各处理植株样品,采集时间在浇水结束后 24 h 的
9:00—11:00 进行。 每小区分别采取有代表性的植株 3 穴共 6 株,用蒸馏水洗净并吸干,迅速放入冰盒中带
回室内;采取叶片样品部位为主茎和分枝上倒数第 3—4片展开复叶;于-40益低温冰箱内保存,备测定相关
生理生化指标。
所有数据处理及统计分析采用 Excel和 SPSS统计软件进行分析整理。
1. 2摇 测定项目及方法
酶液的提取: 称取 0. 5 g左右鲜样剪碎,加 0. 05 mol / L、pH7. 8 的磷酸缓冲液(内含 1%的 PVP)5. 0 mL
及少量石英砂,于冰浴中研磨提取,15 000伊g,4益下离心 15 min,上清液定容至 10 mL,上清液为酶提取液,用
于 SOD、POD、CAT活性、MDA及可溶性蛋白质含量的测定。
SOD、CAT和 POD活性测定:以反应抑制氮蓝四唑(NBT)光氧化还原 50%的酶量为一个酶活力单位测定
SOD,用 unit / mg鲜重表示[23];采用高锰酸钾滴定法[23]测定 CAT,以 30益下每克鲜重样品每分钟内分解 H2O2
的毫克数为酶活力单位(滋mol H2O2 g
-1鲜重 min-1);采用愈创木酚法测定 POD,以 驻OD470 g
-1鲜重 min-1 表示
酶活力单位[23]。
参考李合生的方法[24]测定丙二醛(MDA)含量;采用考马斯亮蓝染色法测定,并用牛血清白蛋白作标准
曲线[24]测定可溶性蛋白质含量;采用茚三酮法[24]测定游离氨基酸和脯氨酸含量;采用蒽酮法[23]测定可溶性
糖含量。
2摇 结果分析
2. 1摇 叶片保护酶系统
图 1 看出,两品种生育前期叶片 SOD活性变化因苗期灌水与否而不同,苗期不灌水(干旱)使叶片 SOD
活性显著高于苗期灌水处理,且灌水后其活性显著降低。 苗期和花针期灌水使两品种 SOD活性均显著降低,
而结荚期灌水未出现降低。 两品种 W0 处理与其他处理间差异均不显著,但均以 W3 处理活性较高。 花育 20
号 W1 处理显著低于其他处理,对水分反应强烈,而花育 27 号各灌水处理间差异不显著,SOD 活性对适应土
壤水分逆境响应强烈。 同一生育时期花育 27 号 SOD活性高于花育 20 号。
不同灌水时期不影响叶片 POD活性的变化趋势,随生育进程推进,两品种均呈“双峰曲线冶型变化,峰谷
均出现在结荚期,峰值时两品种各处理间差异显著。 生育前期两品种 W2、W3 处理活性较高;后期则以 W0
和 W4 处理活性较高。 两品种各处理 POD 活性均无明显变化,全生育期内,花育 20 号活性高于花育 27 号
(图 1)。
两品种全生育期叶片 CAT活性变化趋势不受灌水时期的影响,均呈“抛物线型冶,但峰值因灌水时期不同
9524摇 14 期 摇 摇 摇 张智猛摇 等:不同生育期花生渗透调节物质含量和抗氧化酶活性对土壤水分的响应 摇
http: / / www. ecologica. cn
而异,花育 20 号 W3 和 W4 处理峰值滞后到饱果期,W1、W2 分别出现在花针期和结荚期,而 W0 一直表现降
低趋势,花育 27 号各处理均出现在结荚期;花育 20 号各处理间差异显著。 苗期和花针期灌水使 CAT活性降
低,而结荚期灌水未出现降低。 全生育期灌水处理的 CAT 活性显著低于其他处理,且生育后期两品种均以
W3 处理活性最高。 花育 20 号的 W0 处理显著低于其他处理,对水分反应强烈,而花育 27 号各处理间差异不
显著(图 1)。
图 1摇 不同水分处理对花生叶片抗氧化酶活性的影响
Fig. 1摇 Changes of protective enzyme activities in peanut leaves under non鄄sufficient irrigation in different growth stages
2. 2摇 渗透调节物质含量
图 2 表明,叶片中可溶性糖含量的变化趋势不受灌水时期的影响,均随生育时期推进呈渐升的变化态势,
且处理间差异不显著。 两品种 W3 处理叶片可溶性糖含量在生育前期较高,生育后期 W0 处理显著高于其他
处理。 两品种 W1 处理均较低,灌水后使叶片中可溶性糖含量降低,长期干旱胁迫使其含量陡增,生育后期可
溶性糖含量对土壤水分的响应强于前期。
不同生育时期灌水对花生叶片可溶性蛋白质含量变化趋势无影响,均呈渐升趋势,因灌水时期不同升幅
不同。 全生育期内,花育 20 号升幅高于花育 27 号,其 W0、W1、W3 处理的升幅分别为 10. 57% 、82. 8% 、
59郾 66%和 5. 87% 、54. 74% 、52. 12% 。 两品种W1 处理显著低于其他处理,W3 处理高于其他处理。 灌水后或
随干旱加剧叶片可溶性蛋白质含量降低,但干旱初期其含量防御性升高(图 2)。
0624 摇 生摇 态摇 学摇 报摇 摇 摇 33 卷摇
http: / / www. ecologica. cn
图 2摇 不同水分处理对叶片渗透调节物质含量变化的影响
Fig. 2摇 Changes of the content of osmotic adjustment solutes in peanut leaves under non鄄sufficient irrigation in different growth stage
不同生育时期灌水对花生叶片游离氨基酸含量的变化趋势无影响,均呈“抛物线冶型,其峰值均出现在饱
果期。 苗期灌水使两品种叶片游离氨基酸含量显著降低;W0 处理下,两品种叶片游离氨基酸含量显著升高,
开花下针期灌水使其含量先降后升,花育 27 号升幅较大,花育 20 号和花育 27 号的升幅分别为 10. 47% 、
37郾 68% 。 开花下针期灌水对叶片游离氨基酸含量的影响作用较大,尤以花育 27 号明显(图 2)。
生育期灌水处理对叶片脯氨酸含量的变化趋势亦无影响。 W1 处理脯氨酸含量较低,W0、W2、W3 处理较
高。 苗期和花针期浇水使其含量略有降低,但随后的土壤水分胁迫又使其升高;结荚期浇水脯氨酸含量变化
不大。 两品种 W0 处理的叶片脯氨酸含量显著高于其他处理,可见,两品种脯氨酸含量对土壤水分胁迫的响
1624摇 14 期 摇 摇 摇 张智猛摇 等:不同生育期花生渗透调节物质含量和抗氧化酶活性对土壤水分的响应 摇
http: / / www. ecologica. cn
应能力较强(图 2)。
花生渗透调节物质类型对水分胁迫的响应因品种的不同而不同,花育 20 号和花育 27 号可溶性蛋白质、
游离氨基酸和脯氨酸含量变化对土壤水分含量的变化响应较强烈,但可溶性糖含量在生育前期作用较弱。 可
见渗透调节类型对水分胁迫调节作用的差异。 两品种渗透调节物质对浇水处理表现出一致的调节能力,其调
节能力表现为脯氨酸、可溶性蛋白质>可溶性糖>游离氨基酸。
2. 3摇 膜脂过氧化作用
图 3 表明,灌水时期不影响花生叶片膜脂过氧化程度的变化趋势,但灌水时期影响脂质受伤害程度。 W1
处理下 MDA含量显著低于其他处理,W0 处理显著升高,灌水后叶片 MDA含量降低。 全生育期内花育 20 号
MDA含量高于花育 27 号。
图 3摇 不同水分处理对丙二醛含量变化
Fig. 3摇 Changes in MDA content of peanut leaves under non-sufficient irrigation in different growth stage
3摇 讨论
细胞中 SOD、POD、CAT活性和 MDA含量变化与作物的抗旱性强弱有关,且作物对逆境胁迫的敏感性因
类型、品种、生育期不同而有很大差异。 抗旱性强的品种在逆境条件下保护酶活性能维持在较高的水平,有利
于清除自由基以降低膜脂过氧化水平,减轻膜伤害程度[25鄄28]。 本试验结果表明,花生叶片保护酶活性的变化
受土壤水分状况的影响,土壤水分适宜叶片保护酶活性明显低于轻度干旱胁迫处理且无剧烈升高或降低,干
旱胁迫使叶片 SOD、POD、CAT等保护酶活性明显升高,随胁迫历时延长,不同品种、不同酶类型的表现不同,
两品种 SOD和 CAT活性的变化对水分胁迫的响应强于 POD。
研究表明,渗透胁迫后各种渗透调节物质含量增加的幅度依次是脯氨酸>可溶性糖>游离氨基酸,小麦和
水稻叶片渗透调节能力则是可溶性糖>游离氨基酸>脯氨酸[30鄄31]。 抗旱性不同的玉米自交系幼苗渗透调节能
力有差异,旱 21 和齐 319 以可溶性糖和脯氨酸为主要的渗透调节因子,黄早四则以脯氨酸为主要的渗透调节
物质[32];花生抗旱性相关性次序为丙二醛>过氧化氢酶、可溶性蛋白质含量[21鄄22]。 本试验结果表明,对水分
最为敏感的开花下针期灌水渗透调节物质上升幅度最大,其渗透调节能力依次为脯氨酸、可溶性蛋白质>可
溶性糖>游离氨基酸,花育 27 号渗透调节能力较大。 反映了花生不同生育时期对水分胁迫渗透调节能力的差
异和渗透调节物质相对贡献率的差异,表明花生通过渗透调节适应干旱的生理机制。
花生生长前期耐旱性很强,苗期干旱对产量影响不显著,而且苗期适当干旱对单株有效花数、结实数、饱
果数有明显增加,苗期适当控制土壤水分有利于植株健壮生长和产量提高[16,22]。 可见,花生生长前期虽有一
定的耐旱性,但长期干旱会严重影响其地上部生长发育。 开花下针期干旱,使花期延长,下针结果期延迟
11—13d,荚果发育速率降低至 11. 5—12. 6 mg / d,苗期降低 25. 9%—32. 4% ,最终导致产量降低[33],这与本
试验结果一致。
土壤水分状况影响花生光合作用、保护酶系统和渗透调节能力。 研究表明,苗期灌水量不能低于 60—
80mm,否则会导致叶片光合速率下降,MDA含量增加;若苗期适当干旱(灌水 60—80mm),可增加叶片 SOD、
2624 摇 生摇 态摇 学摇 报摇 摇 摇 33 卷摇
http: / / www. ecologica. cn
POD、CAT的活性,提高叶片可溶性蛋白质含量;充分灌水后,叶中 SOD、POD、CAT 活性和 Pr、MDA 含量显著
降低,而光合速率显著升高[33]。 早熟花生苗期 0—10cm 或 0—30cm 土层含水量分别不低于 14. 5% 、23. 5%
时,其生长发育与水分利用率都较高[34鄄35]。 本试验条件下,除脯氨酸和 MDA 外,苗期灌水仅影响生育前期花
生抗氧化酶和渗透调节系统,对生育后期无影响,且苗期灌水与全生育期灌水处理间无显著差异。 因此,花生
生长前期耐旱性很强,苗期适当控制土壤水分有利于花生植株健壮生长和产量提高,是花生节水栽培技术的
一项重要措施。
花针期是花生营养生长与生殖生长均进入旺盛阶段,对水分较为敏感,此期受到水分胁迫,复水后尽管根
冠生长均有恢复,但很难超过正常生长状况。 想通过轻微水分胁迫再复水以促进生长来提高水分利用率,也
要避开花针期;否则造成的后果是日后难以弥补的[34鄄36]。 本试验结果表明,花针期灌水可明显提高抗氧化酶
活性和渗透调节能力物质含量的升幅,降低 MDA含量。 不同生育期渗透调节能力大小的顺序为:花针期>结
荚期>苗期,可见花针期是花生对水分反应的敏感期,也是花生需水的临界期,此期土壤水分状况对花生叶片
保护酶活性影响较大,进而影响花生叶片的光合作用以及物质合成与运输。 水分亏缺时必须通过灌水来调节
体内代谢的平衡,达到高产高效。
结荚期是花生生理发育的旺盛期,是籽仁充实饱满关键时期,也是需水和耗水量较大时期。 试验结果表
明,此期灌水并不造成叶片保护酶、渗透调节物质含量的降低和 MDA含量的升高,反而略有上升或降低。 但
此期水分不足,光合产物积累降低,产量损失严重,一般能减产 80%左右。 此期不能耐受水分胁迫,如此期遇
旱,应尽力进行灌溉,生产上不应忽视。
References:
[ 1 ]摇 Shan L. Development trend of dryland farming technologies. Scientia Agricultura Sinica,2002, 35(7):848鄄855.
[ 2 ] 摇 Shan L, Zhang S Q. Water saving agriculture and its biological basis. Research of soil and Water Conservation,1999, (6): 3鄄6.
[ 3 ] 摇 Li X, Yan X F,Yu T. Effects of water stress on protective enzyme activities and lipid peroxidation in Phellodendron amurense seedlings. Chinese
Journal of Applied Ecology, 2005,16(1):2353鄄2358.
[ 4 ] 摇 Wang J, Li D Q. The Accumulation of Plant Osmoticum and Activated Oxygen Metabolism under Stress. Chinese Bulletin of Botany,2001,18(4):
459鄄465.
[ 5 ] 摇 Chaves M M, Oliveira M M. Mechanisms underlying plant resilience to water deficits:prospects for water鄄saving agriculture. Journal of Experimental
Botany, 2005, 55,2365鄄2384.
[ 6 ] 摇 Chen S F, Shu Q Y. Biological Mechanism of and Genetic Engineering for Drought Stress Tolerance in Plants. Chinese Bulletin of Botany,1999,16
(5):555鄄560.
[ 7 ] 摇 Tang Z C. Proline accumulation in plants under stress conditions and its possible significance. Plant physiology communications, 1984,(1):
15鄄21.
[ 8 ] 摇 Boyer I S. Plant productivity and environment. Science, 1982, 218:443鄄448.
[ 9 ] 摇 Guo W D, Shen X, Li J R,Zheng X Q. Molecular Mechanism of Plant Drought Tolerance. Acta Universitatis Agriculturalis Boreali鄄Occidentalis,
1999,27(4): 102鄄106.
[10] 摇 Jiang H F, Ren X P. The effect on SOD activity and protein content in groundnut leaves by drought stress. Acta Agronomica Sinica, 2004, 30(2):
169鄄174.
[11] 摇 Liu Z Q, Zhang S C. Plant Physiology on Stress Resistance. Beijing: China Agriculture Press, 1994.
[12] 摇 Zhang L X,Li S X. Effects of Nitrogen, Potassium and Glycinebetaine on the Lipid Peroxidation and Protective Enzyme Activities in Water鄄Stressed
Summer Maize. Acta Agronomica Sinica, 2007,33(3):482鄄490.
[13] 摇 Su P X,Chen H S. Changes in Yield under Different Irrigating Schemes and Photosynthetic Characte鄄ristics of Peanut in Oasis. Acta Agronomica
Sinica,2005, 31(12):1660鄄1664.
[14] 摇 Zhang Q D,Lui H Q,Zhang J H, Li J M. Effects of Limited Irrigation on Some Photosynthetic Functions of Flag Leaves in Winter Wheat. Acta
Agronomica Sinica,2000, 26(6):869鄄873.
[15] 摇 Shan L,Deng X P,Su P,Zhang S Q,Huang Z B,Zhang Z B. Exploitation of crop drought resistance and water鄄saving potentials—adaptability of the
crops to the low and variablewater conditions. Review of China Agricultural Science and Technology, 2000, 2(2): 66鄄70.
3624摇 14 期 摇 摇 摇 张智猛摇 等:不同生育期花生渗透调节物质含量和抗氧化酶活性对土壤水分的响应 摇
http: / / www. ecologica. cn
[16]摇 Giayetto O, Cerioni G A, Am侏n M S. Water Use, Growth and Pod Yield of Two Peanut Cultiva under Different Interrow Spacings. Journal of Peanut
Science, 2005,34(2):5鄄13.
[17] 摇 Li G M,Tang L S,Shang Z Q,Chi S M. Effect of Osmotic Stress on Protective Enzyme Systems in Maize Seedlings and Their Relationship to Drought
Resistance. Journal of Agricultural University of Hebei, 1994,17(2):1鄄5.
[18] 摇 Zhu H S,Huang P S. Water Stress in Soil and Activated Oxygen Metabolism in Rice. Journal of Nanjing Agricultural University, 1994, 17(2):
7鄄11.
[19] 摇 Deng S X,Zeng M,Xiong W,Luo G J,Zhang G Y,Lui P. Effects of Drought Stress on the Antioxidative Enzyme System in Citrus Leaves. Journal of
Southwest University(Natural Science Edition),2011,31(2):61鄄64.
[20] 摇 Wu Q,Zhang X M. Effects of Moisture Conditions on the Gas Exchange of Haloxylon ammodendron. Arid Zone Research, 2005,22(1):79鄄84.
[21] 摇 Xue H Q,Sun L Z. Effect of Water Stress om Physiological Character in Different Drought Resistant Peanut Varietie. Agricultural Research in the
Arid Areas, 1997,15(4):82鄄85.
[22] 摇 Xue H Q,Sun L Z,Gan X M. Study on Comprehensive Assessment and Mechanism of Drought Resistance in Peanut Cultivers. Agricultural
Research in the Arid Areas, 1999,17(1):83鄄87.
[23] 摇 Li H S. Experimental Principles and Techniques of Plant Physiology and Biological Chemistry. Beijing: Higher Education Press, 2000:164鄄179.
[24] 摇 Zhang X Z,Chen F Y, Wang Y F. Plant Physiological Experimental Technology. Shengyang: Liaoning Scienceand Technology Press,1994.
[25] 摇 Chen S F, Shu Q Y. Biological Mechanism of and Genetic Engineering for Drought Stress Tolerance in Plants. Chinese Bulletin of Botany,1999,16
(5):555鄄560.
[26] 摇 Chen S Y. Membrane鄄lipid Peroxidation and Plant Stress. Chinese Bulletin of Botany,1989,6(4):211鄄217.
[27] 摇 Cabuslay G S,Ito O,Alejar A A. Physiological evaluation of responses of rice to water deficit. Plant Science, 2002,163: 815鄄827.
[28] 摇 Celikkol Akcay U, Ercan O, Kavas M, Yildiz L, Yilmaz C, Oktem H A, Yucel M. Drought鄄induced oxidative damage and antioxidant responses in
peanut (Arachis hypogaea L. ) seedlings. Plant Growth Regulation,2010,61(1): 21鄄28.
[29] 摇 Wang W, Li D Q,Li C X,Zou Q. Effects of Water Stress on Osmotic Adjustment of Leaves and Roots of Maize with Different Drought Resistance.
Acta Agriculturae Boreall sinica, 2000,15(S1):8鄄15.
[30] 摇 Li C X, Wang W, Li D Q. Effects of long鄄term water stress on osmotic adjustment and osmolytes in wheat roots and leaves. Acta Botanica Boreali鄄
occidentalia Sinica,2001,21(5):924鄄930.
[31] 摇 Cai K Z, Wu X Z, Luo S M. Effects of water stress on osmolytes at different growth stages in rice leaves and roots. Journal of Ecology (Chinese
Version),2008,32(2):491鄄500.
[32] 摇 Pei R Q, Shi Y S, Lui P Q, Song Y C, Wang T Y, Li Y. Effect of Drought Stress on Osmotic Adjustment in Different Maize Inbred Lines at
Seedling Stage. Journal of Plant Genetic Resources, 2010,11(1):40鄄45.
[33] 摇 Yan M L, Li X D, Lin Y J, Wang L L,Zhou L Y. Effects of drought during seedling stage on physiological traits, yield and quality of different
peanut cultivars. Acta Agronomica Sinica,2007, 33(1): 113鄄119.
[34] 摇 Yao J P,Luo Y N,Yang X D. A primary study on the critical moisture of early and middle peanut varieties during different growth periods. Chinese
Journal of Oil Crop Sciences, 1984,(3): 36鄄43.
[35] 摇 Yao J P,Yang X D. The studies on suitable water in summer peanut. Peanut Sci Technol, 1986,15 (2): 31鄄32.
[36] 摇 Yao C M,Yang P L,Hao Z Y, Wang Q H. Dynamic analysis on root / shoot development of peanut under different water regimes. Journal of China
agriculture university, 1999,4(4):40鄄44.
参考文献:
[ 1 ]摇 山仑.旱地农业技术发展趋势.中国农业科学,2002, 35(7): 848鄄855.
[ 2 ] 摇 山仑,张岁岐.节水农业及其生物学基础.水土保持研究,1999,(6): 3鄄6.
[ 3 ] 摇 李霞,阎秀峰,于涛.水分胁迫对黄檗幼苗保护酶活性及脂质过氧化作用的影响.应用生态学报,2005,16(12):2353鄄2358.
[ 4 ] 摇 王娟,李德全.逆境条件下植物体内渗透调节物质的积累与活性氧代谢.植物学通报,2001, 18(4):459鄄465.
[ 6 ] 摇 陈善福,舒庆尧.植物耐干旱胁迫的生物学机理及其基因工程研究进展.植物学通报,1999,16(5):555鄄560.
[ 7 ] 摇 汤章城.逆境条件下植物脯氨酸的积累及其可能的意义.植物生理学通讯,1984,(1):15鄄21.
[ 9 ] 摇 郭卫东,沈向,李嘉瑞,郑学勤. 植物抗旱分子生理.西北农业大学学报,1999,27(4):102鄄106.
[10] 摇 姜慧芳,任小平.干旱胁迫对花生叶片 SOD活性和蛋白质的影响.作物学报,2004, 30(2): 169鄄174.
[11] 摇 刘祖琪,张石诚.植物生理抗性学.北京: 中国农业出版社,1994.
[12] 摇 张立新,李生秀.氮、钾、甜菜碱对水分胁迫下夏玉米叶片膜脂过氧化和保护酶活性的影响.作物学报,2007,33(3):482鄄490.
[13] 摇 苏培玺,陈怀顺.荒漠绿洲区花生在不同灌溉条件下的产量变化及光合生理特性.作物学报,2005,31(12):1660鄄1664.
4624 摇 生摇 态摇 学摇 报摇 摇 摇 33 卷摇
http: / / www. ecologica. cn
[14]摇 张其德, 刘合芹,张建华,李建民.限水灌溉对冬小麦旗叶某些光合特性的影响.作物学报,2000,26(6):869鄄873.
[15] 摇 山仑,邓西平,苏佩,张岁岐,黄占斌,张正斌.挖掘作物抗旱节水潜力———作物对多变低水环境的适应与调节.中国农业科技导报,2000,2
(2): 66鄄70.
[17] 摇 李广敏,唐连顺,商振清,池书敏.渗透胁迫对玉米幼苗保护酶系统的影响及其与抗旱性的关系.河北农业大学学报,1994,17(2):1鄄5.
[18] 摇 朱杭申,黄丕生.土壤水分胁迫与水稻活性氧代谢.南京农业大学学报,1994,17(2):7鄄11.
[19] 摇 邓胜兴,曾明,熊伟,罗光杰,张广越,刘平.干旱胁迫对柑橘叶片保护酶系统的影响.西南大学学报(自然科学版),2009,31(2):61鄄64.
[20] 摇 吴琦,张希明.水分条件对梭梭气体交换特性的影响.干旱区研究,2005,22(1):79鄄84.
[21] 摇 薛慧勤,孙兰珍.水分胁迫对不同抗旱性花生品种生理特性的影响. 干旱地区农业研究,1997,15(4): 82鄄85.
[22] 摇 薛慧勤,孙兰珍,甘信民.花生品种抗旱性综合评价及其抗旱机理的数量分析.干旱地区农业研究,1999,17(1):83鄄85.
[23] 摇 李合生.植物生理生化实验原理和技术.北京:高等教育出版社,2000:164鄄179.
[24] 摇 张宪政,陈凤玉,王荣富.植物生理分析技术.沈阳:辽宁科学技术出版社,1994.
[25] 摇 陈善福,舒庆尧.植物耐干旱胁迫的生物学机理及其基因工程研究进展.植物学通报,1999,16(5):555鄄560.
[26] 摇 陈少裕.植物膜脂过氧化与逆境.植物学通报,1989,6(4):211鄄217.
[29] 摇 王玮,李德全,李春香,邹琦.水分胁迫对抗旱性不同的玉米品种根、叶渗透调节能力及渗透调节物 质的影响. 华北农学报,2000,15(增
刊):8鄄15.
[30] 摇 李春香,王玮,李德全.长期水分胁迫对小麦生育中后期根叶渗透调节能力、渗透调节物质的影响.西北植物学报,2001,21(5):924鄄930.
[31] 摇 蔡昆争,吴学祝,骆世明.不同生育期水分胁迫对水稻根叶渗透调节物质变化的影响.植物生态学报,2008, 32(2):491鄄500.
[32] 摇 裴二芹,石云素,刘丕庆, 宋燕春, 王天宇, 黎裕. 干旱胁迫对不同玉米自交系苗期渗透调节的影响. 植物遗传资源学报,2010,11(1):
40鄄45.
[33] 摇 严美玲,李向东,林英杰,王丽丽,周录英. 苗期干旱胁迫对不同抗旱花生品种生理特性、产量和品质的影响. 作物学报,2007,33(1):
113鄄119.
[34] 摇 姚君平,罗瑶年,杨新道. 早、中熟花生不同生育阶段临界水分研究初报.中国油料,1984,(3): 36鄄43.
[35] 摇 姚君平,杨新道.夏花生适宜水分研究. 花生科技,1986,15 (2): 31鄄32.
[36] 摇 姚春梅,杨培岭,郝仲勇,王泉海.不同水分条件下沙地花生的根冠发育动态分析.中国农业大学学报,1999,4(4):40鄄44.
5624摇 14 期 摇 摇 摇 张智猛摇 等:不同生育期花生渗透调节物质含量和抗氧化酶活性对土壤水分的响应 摇
ACTA ECOLOGICA SINICA Vol. 33,No. 14 Jul. ,2013(Semimonthly)
CONTENTS
Frontiers and Comprehensive Review
A review of the researches on Alectoris partridge SONG Sen, LIU Naifa (4215)………………………………………………………
Autecology & Fundamentals
Effects of precipitation and nitrogen addition on photosynthetically eco鄄physiological characteristics and biomass of four tree seed鄄
lings in Gutian Mountain, Zhejiang Province, China YAN Hui, WU Qian, DING Jia, et al (4226)……………………………
Effects of low temperature stress on physiological鄄biochemical indexes and photosynthetic characteristics of seedlings of four plant
species SHAO Yiruo, XU Jianxin, XUE Li, et al (4237)…………………………………………………………………………
Decomposition characteristics of maize roots derived from different nitrogen fertilization fields under laboratory soil incubation
conditions CAI Miao,DONG Yanjie,LI Baijun,et al (4248)………………………………………………………………………
The responses of leaf osmoregulation substance and protective enzyme activity of different peanut cultivars to non鄄sufficient irriga鄄
tion ZHANG Zhimeng,SONG Wenwu,DING Hong,et al (4257)…………………………………………………………………
Interannual variation of soil seed bank in Picea schrenkiana forest in the central part of the Tianshan Mountains
LI Huadong, PAN Cunde, WANG Bing,et al (4266)
……………………
………………………………………………………………………………
Physiological & ecological effects of companion鄄planted grow seedlings of two crops in the same hole
LI Lingli, GUO Hongxia, HUANG Genghua, et al (4278)
…………………………………
…………………………………………………………………………
Effects of magnesium, manganese, activated carbon and lime and their interactions on cadmium uptake by wheat
ZHOU Xiangyu, FENG Wenqiang, QIN Yusheng, et al (4289)
……………………
……………………………………………………………………
Effects of increased concentrations of gas CO2 on mineral ion uptake, transportation and distribution in Phyllostachys edulis
ZHUANG Minghao, CHEN Shuanglin, LI Yingchun, et al (4297)
…………
…………………………………………………………………
Effects of pH, Fe and Cd concentrations on the Fe and Cd adsorption in the rhizosphere and on the root surfaces of rice
LIU Danqing, CHEN Xue, YANG Yazhou, et al (4306)
……………
…………………………………………………………………………
Effects of low鄄light stress on maize ear development and endogenous hormones content of two maize hybrids (Zea mays L. ) with
different shade鄄tolerance ZHOU Weixia, LI Chaohai, LIU Tianxue, et al (4315)…………………………………………………
Effects of maize椰peanut intercropping on photosynthetic characters and yield forming of intercropped maize
JIAO Nianyuan, NING Tangyuan, YANG Mengke,et al (4324)
…………………………
……………………………………………………………………
Cloning root system distribution and architecture of different forest age Populus euphratica in Ejina Oasis
HUANG Jingjing, JING Jialin, CAO Dechang, et al (4331)
……………………………
………………………………………………………………………
Impact of vegetation interannual variability on evapotranspiration CHEN Hao, ZENG Xiaodong (4343)………………………………
Mating behavior of Pachycrepoideus vindemmiae and the effects of male mating times on the production of females
SUN Fang, CHEN Zhongzheng, DUAN Bisheng, et al (4354)
……………………
……………………………………………………………………
Component analysis and bioactivity determination of fecal extract of Locusta migratoria tibetensis (Chen)
WANG Haijian, LI Yili, LI Qing, et al (4361)
……………………………
……………………………………………………………………………………
Effects of different rice varieties on larval development, survival, adult reproduction, and flight capacity of Cnaphalocrocis
medinalis (Guen佴e) LI Xia, XU Xiuxiu, HAN Lanzhi, et al (4370)……………………………………………………………
Population, Community and Ecosystem
Genetic structure of the overwintering Asian corn borer,Ostrinia furnacalis(Guen佴e)collections in Shandong of China based on
mtCOII gene sequences LI Lili,YU Yi,GUO Dong,TAO Yunli,et al (4377)……………………………………………………
The structure and diversity of insect community in Taihu Wetland HAN Zhengwei, MA Ling, CAO Chuanwang, et al (4387)………
Annual variation pattern of phytoplankton community at the downstream of Xijiang River
WANG Chao, LAI Zini, LI Xinhui, et al (4398)
………………………………………………
…………………………………………………………………………………
Effect of species dispersal and environmental factors on species assemblages in grassland communities
WANG Dan, WANG Xiao忆an, GUO Hua, et al (4409)
………………………………
……………………………………………………………………………
Cyanobacteria diversity in biological soil crusts from different erosion regions on the Loess Plateau: a preliminary result
YANG Lina, ZHAO Yunge, MING Jiao, et al (4416)
……………
………………………………………………………………………………
Landscape, Regional and Global Ecology
Zoning for regulating of construction land based on landscape security pattern WANG Siyi,OU Minghao (4425)………………………
Fragmentation process of wetlands landscape in the middle reaches of the Heihe River and its driving forces analysis
ZHAO Ruifeng, JIANG Penghui, ZHAO Haili, et al (4436)
………………
………………………………………………………………………
Analysis on grassland degradation in Qinghai Lake Basin during 2000—2010
LUO Chengfeng,XU Changjun,YOU Haoyan,et al (4450)
…………………………………………………………
…………………………………………………………………………
Research on soil erosion based on Location-weighted landscape undex(LWLI) in Guanchuanhe River basin, Dingxi, Gansu
Province LI Haifang,WEI Wei, CHEN Jin, et al (4460)…………………………………………………………………………
Effects of host density on parasitoids and hyper-parasitoids of cereal aphids in different agricultural landscapes
GUAN Xiaoqing, LIU Junhe, ZHAO Zihua (4468)
………………………
…………………………………………………………………………………
Effects of interactive CO2 concentration and precipitation on growth characteristics of Stipa breviflora
SHI Yaohui, ZHOU Guangsheng, JIANG Yanling, et al (4478)
…………………………………
……………………………………………………………………
Resource and Industrial Ecology
Eco-service efficiency assessment method of urban land use: a case study of Changzhou City, China
YANG Wenrui, LI Feng, WANG Rusong, et al (4486)
…………………………………
……………………………………………………………………………
Changes in phosphorus consumption and its environmental loads from food by residents in Xiamen City
WANG Huina,ZHAO Xiaofeng,TANG Lina, et al (4495)
………………………………
…………………………………………………………………………
Research Notes
Intercropping enhances the farmland ecosystem services SU Benying, CHEN Shengbin, LI Yonggeng, et al (4505)…………………
Assessment indicator system of eco-industry in mining area WANG Guangcheng, WANG Huanhuan, TAN Lingling (4515)…………
2254 生 态 学 报 33 卷
《生态学报》2013 年征订启事
《生态学报》是由中国科学技术协会主管,中国生态学学会、中国科学院生态环境研究中心主办的生态学
高级专业学术期刊,创刊于 1981 年,报道生态学领域前沿理论和原始创新性研究成果。 坚持“百花齐放,百家
争鸣冶的方针,依靠和团结广大生态学科研工作者,探索生态学奥秘,为生态学基础理论研究搭建交流平台,
促进生态学研究深入发展,为我国培养和造就生态学科研人才和知识创新服务、为国民经济建设和发展服务。
《生态学报》主要报道生态学及各分支学科的重要基础理论和应用研究的原始创新性科研成果。 特别欢
迎能反映现代生态学发展方向的优秀综述性文章;研究简报;生态学新理论、新方法、新技术介绍;新书评价和
学术、科研动态及开放实验室介绍等。
《生态学报》为半月刊,大 16 开本,300 页,国内定价 90 元 /册,全年定价 2160 元。
国内邮发代号:82鄄7,国外邮发代号:M670
标准刊号:ISSN 1000鄄0933摇 摇 CN 11鄄2031 / Q
全国各地邮局均可订阅,也可直接与编辑部联系购买。 欢迎广大科技工作者、科研单位、高等院校、图书
馆等订阅。
通讯地址: 100085 北京海淀区双清路 18 号摇 电摇 摇 话: (010)62941099; 62843362
E鄄mail: shengtaixuebao@ rcees. ac. cn摇 网摇 摇 址: www. ecologica. cn
本期责任副主编摇 骆世明摇 摇 摇 编辑部主任摇 孔红梅摇 摇 摇 执行编辑摇 刘天星摇 段摇 靖
生摇 态摇 学摇 报
(SHENGTAI摇 XUEBAO)
(半月刊摇 1981 年 3 月创刊)
第 33 卷摇 第 14 期摇 (2013 年 7 月)
ACTA ECOLOGICA SINICA
摇
(Semimonthly,Started in 1981)
摇
Vol郾 33摇 No郾 14 (July, 2013)
编摇 摇 辑摇 《生态学报》编辑部
地址:北京海淀区双清路 18 号
邮政编码:100085
电话:(010)62941099
www. ecologica. cn
shengtaixuebao@ rcees. ac. cn
主摇 摇 编摇 王如松
主摇 摇 管摇 中国科学技术协会
主摇 摇 办摇 中国生态学学会
中国科学院生态环境研究中心
地址:北京海淀区双清路 18 号
邮政编码:100085
出摇 摇 版摇
摇 摇 摇 摇 摇 地址:北京东黄城根北街 16 号
邮政编码:100717
印摇 摇 刷摇 北京北林印刷厂
发 行摇
地址:东黄城根北街 16 号
邮政编码:100717
电话:(010)64034563
E鄄mail:journal@ cspg. net
订摇 摇 购摇 全国各地邮局
国外发行摇 中国国际图书贸易总公司
地址:北京 399 信箱
邮政编码:100044
广告经营
许 可 证摇 京海工商广字第 8013 号
Edited by摇 Editorial board of
ACTA ECOLOGICA SINICA
Add:18,Shuangqing Street,Haidian,Beijing 100085,China
Tel:(010)62941099
www. ecologica. cn
shengtaixuebao@ rcees. ac. cn
Editor鄄in鄄chief摇 WANG Rusong
Supervised by摇 China Association for Science and Technology
Sponsored by摇 Ecological Society of China
Research Center for Eco鄄environmental Sciences, CAS
Add:18,Shuangqing Street,Haidian,Beijing 100085,China
Published by摇 Science Press
Add:16 Donghuangchenggen North Street,
Beijing摇 100717,China
Printed by摇 Beijing Bei Lin Printing House,
Beijing 100083,China
Distributed by摇 Science Press
Add:16 Donghuangchenggen North
Street,Beijing 100717,China
Tel:(010)64034563
E鄄mail:journal@ cspg. net
Domestic 摇 摇 All Local Post Offices in China
Foreign 摇 摇 China International Book Trading
Corporation
Add:P. O. Box 399 Beijing 100044,China
摇 ISSN 1000鄄0933
CN 11鄄2031 / Q
国内外公开发行 国内邮发代号 82鄄7 国外发行代号 M670 定价 90郾 00 元摇