免费文献传递   相关文献

Research Advances and Perspectives on Rubber-producing Taraxacum

橡胶草的研究进展



全 文 :植物学报 Chinese Bulletin of Botany 2015, 50 (1): 133–141, www.chinbullbotany.com
doi: 10.3724/SP.J.1259.2015.00133
——————————————————
收稿日期: 2013-11-29; 接受日期: 2014-04-03
基金项目: 国家天然橡胶产业体系(No.CARS-34-GW7)、国家自然科学基金(No.31400579)、海南省自然科学基金(No.314139)和中国热
带农业科学院橡胶研究所基本科研业务费专项(No.1630022013023)
* 通讯作者。E-mail: sz_liu@126.com
橡胶草的研究进展
仇键1, 张继川3, 罗世巧1, 校现周1, 王锋4, 张立群3, 刘实忠1, 2*
1中国热带农业科学院橡胶研究所, 农业部橡胶树生物学与遗传资源利用重点实验室, 儋州 571737
2中国热带农业科学院湛江实验站, 湛江 524013; 3先进弹性体研究中心, 北京化工大学材料科学与工程学院, 北京 100029
4山东玲珑轮胎有限公司, 招远 265406
摘要 天然橡胶是一种不可替代的重要战略工业原料, 用途广泛。巴西橡胶树作为天然橡胶的主要来源, 受种植面积限制,
难以满足全球日益增长的对天然橡胶的需求。而南美叶疫病也是巴西橡胶树(Hevea brasiliensis)安全的潜在威胁。蒲公英
属产胶植物(橡胶草)最早发现于20世纪30年代, 可产生高质量的天然橡胶, 具有生长周期短、地理适应范围广、适合机械
化生产等特点, 被认为是一种理想的产胶备选作物。该文从橡胶草种质资源、遗传改良、栽培技术及产胶生物学机制等方
面综述了国内外橡胶草的研究进展和存在的问题, 并为我国开展橡胶草相关研究提出建议。
关键词 天然橡胶, 俄罗斯蒲公英, 短角蒲公英, 种质资源, 生物合成
仇键, 张继川, 罗世巧, 校现周, 王锋, 张立群, 刘实忠 (2015). 橡胶草的研究进展. 植物学报 50, 133–141.
天然橡胶是产胶植物中合成的聚异戊二烯高分
子化合物, 与钢铁、石油、煤炭并称为四大工业原料,
在军用、民用工业上都发挥了不可替代的作用。自然
界中, 超过2 500种植物能合成天然橡胶, 但大多分
子量太小, 仅巴西橡胶树(Hevea brasiliensis)、银色
橡胶菊(Parthenium argentatum)以及蒲公英属橡胶
草(包括俄罗斯蒲公英和短角蒲公英)可产生1 000
kDa以上的天然橡胶而具有应用价值。巴西橡胶树是
目前唯一大面积商业化种植的产胶植物, 主要分布于
亚洲、非洲和南美等热带及亚热带地区, 其中亚洲橡
胶产量占全球93%, 而南美作为巴西橡胶树原产地,
受叶疫病影响, 其产量仅占2%左右。近年来, 由于天
然橡胶供不应求, 石油资源(合成橡胶来源)日趋枯竭,
以及巴西橡胶树作为单一产胶植物可能面临的潜在
威胁 , 例如南美叶疫病 (van Beilen and Poirier,
2007a, 2007b), 使各国认识到发展巴西橡胶之外的
天然橡胶资源的重要性, 相继启动了巴西橡胶树替代
产胶作物的研发, 如美国PENRA和欧盟EU-PEAR-
LS项目。
我国是世界上最大的橡胶产品消耗国, 受国内橡
胶树种植面积限制, 天然橡胶自给率不足1/3(祁栋灵
等, 2013), 存在严重的天然橡胶战略物资安全隐患。
橡胶草原产于哈萨克斯坦和我国新疆天山山谷-特克
斯河流域, 喜冷凉, 在亚热带和温带也可生长, 其根
中含有高质量天然橡胶2.89%–27.89%(罗士苇等 ,
1951)。因此在我国广袤的北方地区种植橡胶草、发
展蒲公英橡胶可能是保障我国天然橡胶战略物资安
全的有效途径之一。在此背景下, 本文综述了国内外
橡胶草的研究进展, 并对存在的问题进行探讨, 以期
为我国蒲公英属橡胶草的研发提供参考。
1 橡胶草种质资源
1.1 橡胶草种质资源定义
橡胶草是我国对俄罗斯蒲公英的俗称, 由俄罗斯植物
学家Rodin于1931年在哈斯克斯坦境内天山山谷中
发现 , 1934年正式定名为Taraxacum koksaghyz
Rodin。按照Rodin的描述 , 俄罗斯蒲公英为菊科
(Asteraceae)蒲公英属(Taraxacum)多年生宿根草本
植物, 自交不亲和; 其干根折断后有橡胶丝; 叶肉质,
略带蓝青色, 叶缘无锯齿; 花序总苞尖端有小角(图
1)。 近些年, 由于对俄罗斯蒲公英的研究中断和认知
·专题论坛·
134 植物学报 50(1) 2015



图1 俄罗斯蒲公英(A)(来自美国农业部种子库NSL219131)和短角蒲公英(B)(采集于新疆特克斯河谷)的植株形态比较
Figure 1 The phenotypic comparison of Taraxacum koksaghyz (A) (NSL219131) and T. brevicorniculatum (B) (collected
from Tekes River, Zhaosu, Xinjiang)


不足, 德国科学家将蒲公英属短角蒲公英(T. brevi-
corniculatum)误当作俄罗斯蒲公英进行研究(Schmi-
dt et al., 2010a)。事实上, 短角蒲公英与俄罗斯蒲公
英野生生长区域重叠, 可能是俄罗斯蒲公英与四倍体
蒲公英属植物的杂交后代; 可无融合生殖; 叶呈倒披
针形, 羽状深裂, 叶色淡绿(图1); 其干根含胶量仅为
前者的1/4–1/2, 被认为是一种低劣的产胶植物(Shi
et al., 2011; van Dijk and Lecoulant, 2012; Kir-
schner et al., 2013)。由于短角蒲公英生物量大、繁
殖能力强, 有利于橡胶草相关性状的遗传改良, 因此
备受育种专家关注。种质资源的定义是作物及其可遗
传物质的总和, 包括野生种、近缘植物、古老品种以
及改良品种等类型(韩振海, 2009)。蒲公英属植物大
多有乳管, 可产生胶乳, 且无生殖隔离(van Dijk et
al., 1999)。因此广义上橡胶草种质资源可涵盖大多数
蒲公英属产胶植物, 包括俄罗斯蒲公英、短角蒲公英
以及西洋蒲公英(T. officinale)等。
1.2 橡胶草野生种质收集和保存
野生种质是橡胶草种质资源的主要类型。俄罗斯曾大
规模采集橡胶草野生种质进行种植驯化。美国、德国、
加拿大和澳大利亚等国也进行过短暂的引种试种。但
随着苏联解体和橡胶草被淘汰, 这些古老种质大多流
失。目前, 仅30余份俄罗斯蒲公英种质保存于俄罗斯
瓦维洛夫植物研究所, 1份可共享的种质(NSL219-
131)保存于美国农业部种子库。而短角蒲公英则在德
国卡尔斯鲁厄植物园、马尔堡大学、美国俄亥俄州立
大学OARDC以及荷兰KEYGENE公司等机构中均有
保存(Kirschner et al., 2013)。我国于1950年在新疆
自治区昭苏县特克斯河谷采得俄罗斯蒲公英, 其粗胶
含量为22.39%, 但无保存记录 (林伯煌和魏小弟 ,
2009a)。近些年, 随着橡胶草研究的兴起, 橡胶草种
质缺乏的现状促使橡胶草野生种质资源的调查、收集
和保存工作重新开展。Volis等(2009)考察哈斯克斯坦
境内Kegen河流域, 发现俄罗斯蒲公英野生种质稀
少, 含胶量也远低于文献报道, 他们认为20世纪50年
代的过度采掘导致野生资源极度匮乏。相反 , Kir-
schner研究组考察哈萨克斯坦Kegen-Sarydzhaz-
Tuzkel-Tekesg谷地后发现, 大量俄罗斯蒲公英野生
种群分布于潮湿高盐或干燥高盐低海拔区域, 其中大
种群 (个体数量大于1 000)18个 (van Dijk et al.,
2010)。自1996年, 中国热带农业科学院、石河子大
学、北京化工大学和海南大学(李若霖, 2012)等单位
也相继对我国新疆地区橡胶草野生资源进行考察, 但
尚未见我国野生资源现状的报道。
1.3 橡胶草种质评价
种质评价是种质资源工作的中心环节, 包括一般性状
仇键等: 橡胶草的研究进展 135

记载和特定性状评价。橡胶草作为潜在产胶作物, 其
产胶能力是种质评价的核心问题, 而含胶量测定是广
泛采用的评价方法。早期橡胶草含胶量测定主要有折
断法(Kleinhenz et al., 2010)和碱煮法(李增贵和程
溥, 1954; 林仲贤, 1954)。这两种方法操作简易, 但
对植物破坏大, 准确性偏低。目前, 一种基于快速溶
剂萃取(accelerated solvent extraction)与傅立叶红
外光谱(FTIR analysis)的产胶植物含胶量测定法已经
建立(Suchat et al., 2013), 在尽量不破坏植株的前提
下, 可实现快速准确测定含胶量。该方法将为橡胶草
的高通量种质评价提供可能 (Molenveld et al.,
2010)。此外, 一些农艺性状对橡胶草的开发利用也
非常重要, 如总生物量、种子活力、根生物量、主根
数、侧根数、菊糖含量等。Ritter等(2010a)采用温室
和田间实验, 比较不同来源橡胶草的根生物量、主根
数、主根长度, 侧根数、莲座数、叶片数、叶片长和
叶片生物量等性状, 对橡胶草种质的农艺性状进行评
价, 为育种提供参考。
2 橡胶草种质改良
种质改良是作物遗传育种研究的重要任务, 杂交是育
种的一个重要手段。橡胶草种质改良始于20世纪
40–50年代, 曾培育出Velikoalekseevskiy、No485和
四倍体Navashin三个品种 , 干根产量达10 t·hm–2
(Warmke, 1945; Степанов, 1952)。美国在二战期间
最好种质的含胶量为5%–6%, 产量达110 kg·hm–2
(Whaley and Bowen, 1947), 但这些古老的品种并
未被保留下来。随着橡胶草研究的复苏, 其杂交育种
工作再次受到重视。Kleinhenz等(2012)通过筛选高
含胶量橡胶草个体, 通过杂交获得120个含胶量大于
5%的单株后代。Černý等(2010)则进行了更加广泛的
种间杂交, 通过俄罗斯蒲公英、短角蒲公英、西洋蒲
公英以及四倍体俄罗斯蒲公英(包括天然和秋水仙素
诱导的四倍体)等之间的2 500组杂交, 培育出大量
或生长旺盛、或无融合生殖的新种质, 部分种质含胶
量已达6%–7%。但俄罗斯蒲公英自交不亲和, 不能
自花授粉产生稳定子代, 需单株筛选, 阻碍了其杂
交育种的进程。总体上橡胶草的杂交育种工作进展缓
慢。
基因工程是一种新的遗传改良手段, 可大大缩短
育种年限, 定向改造或创造新品种、新类型。橡胶草
组织培养和遗传转化较容易, 这给其遗传改良注入了
新的活力。Qiu等(2014)将拟南芥PAP1(production of
anthocyanin pigment 1)基因导入短角蒲公英中, 获
得高花青素含量的植株, 以期增加橡胶草的附加值。
Wahler等 (2009)沉默乳管特异表达多酚氧化酶
(PPO)基因, 促进了短角蒲公英排胶。Van Deenen
等(2013)在短角蒲公英乳管中过表达拟南芥ATP柠
檬酸裂解酶(ACL)基因, 增加流向橡胶合成的乙酰辅
酶A, 从而大幅度提高转基因植物的产胶量。目前, 橡
胶草天然橡胶合成途径中的许多蛋白和酶基因均被
克隆出来, 这为下一步进行橡胶草天然橡胶合成基因
工程调控奠定了基础。
3 橡胶草种苗繁育和栽培现状
3.1 种苗繁育
种苗繁育是实现优质品种推广和进一步改良的基础,
主要分为无性繁殖和有性繁殖两种方式。Levitt和
Hamm(1943)曾对俄罗斯蒲公英种子采集保存、种子
活力和发芽等方面进行过系统的研究, 所获得的种子
纯度达90%以上, 出苗率超过60%。为扩繁农业部种
子库的俄罗斯蒲公英, 美国俄亥俄州立大学建立了一
套橡胶草种子生产流程, 包括半控制种植、人工授粉、
种子机械化采集和脱粒、X-ray筛选等工序 , 截至
2012年共生产种子2 000多万颗(Kleinhenz et al.,
2010, 2012)。由于有性繁殖需异花授粉, 易受杂交污
染, 因此橡胶草的有性种子繁殖不利于保持种苗的优
良性状和纯度。早在1930年, 俄罗斯学者就注意到种
子繁育的俄罗斯蒲公英根的大小和含胶量差异很大。
此后, 民巴耶夫和李森科发现橡胶草可通过根或茎冠
扦插进行无性繁殖, 采用扦插繁殖不但能加速繁殖速
度, 而且扦插繁殖的橡胶草生长好, 发育均一, 根生
物量是种子繁殖的2倍(罗士苇等, 1951)。美国也有类
似的报道(Whaley and Bowen, 1947)。目前, 橡胶草
组织培养也获得了成功(林伯煌和魏小弟, 2009b; 林
伯煌等, 2009; 罗成华等, 2012), 这将有利于橡胶草
优良种质的扩繁和工厂化种苗生产。此外, 通过俄罗
斯蒲公英的无融合生殖改良, 这种无性种子繁殖在优
良性状固定上具有优势, 也将成为橡胶草种苗繁育的
136 植物学报 50(1) 2015

有效途径之一。
3.2 农艺栽培技术研究
俄罗斯和美国都曾开展过橡胶草的规模化种植, 并摸
索出一套适合本国的栽培系统, 包括种植地开垦、灌
溉、除草、施肥、轮作以及收获等农艺栽培技术
(Whaley and Bowen, 1947; 罗士苇等, 1951)。俄罗
斯科学家指出, 富含矿质以及有机质(尤其是氮、磷)
的土壤适于栽培橡胶草, 而酸性灰质土中加入石灰能
增大橡胶草的根产量及含胶量(罗士苇等, 1951)。据
美国农业部“紧急天然橡胶计划”报道, 橡胶草非常
适应美国北部的气候, 在有机质土壤及有机质较多的
矿质土壤中均生长良好, 可实现半机械化种植, 但除
草和收根仍需耗费大量人工(Whaley and Bowen,
1947)。因此, 橡胶草农艺栽培技术研究将主要面向
机械化和自动化栽培技术的研发。John研究组筛选出
咪草烟(imazethayr)、甲氧咪草烟(imazamox)和乙氧
氟草醚(oxyfluorfer)3种化学除草剂, 对橡胶草种植过
程中的杂草控制效果良好(Cardina et al., 2012)。
Munt等(2012)发现低N/P比值和适当密植不但可增加
根的生物量, 而且能控制主根分枝, 便于橡胶草根的
机械化采收。
4 橡胶草产胶生物学
4.1 乳管和胶乳
与橡胶树类似, 橡胶草的乳管为有节乳管, 列成多个
同心圆环, 同一环上的乳管彼此连通成为一个独立的
乳管体系(黄晓华和翟道道, 1989)。在乳管细胞结构
上, 橡胶草同样具有橡胶粒子, 它是橡胶生物合成的
重要细胞器。电子扫描显微镜观察结果显示, 俄罗斯
蒲公英的橡胶粒子平均直径约为320 nm, 与巴西橡
胶树相近。分子排阻色谱测定俄罗斯蒲公英根部的橡
胶平均分子量约为1 300 kDa, 大于巴西橡胶(大约
1 000 kDa)(Mooibroek and Cornish, 2000)。免疫交
叉反应显示橡胶草的小橡胶粒子蛋白(SRPP)和橡胶
树胶乳SRPP(即过敏原Hev b3)有较高的免疫相似性
(Cornish et al., 2012)。表明蒲公英橡胶可能含有类
似的过敏源, 因此不适用于医疗卫生用品, 但可应用
于轮胎、胶管、胶鞋等传统制造领域。
4.2 基因组和蛋白组研究
为揭示橡胶草产胶遗传基础, KEYGEN科学家运用流
式细胞分析仪, 确定俄罗斯蒲公英核型为2n=2x=16,
基因组大小为 1 450 Mb; 短角蒲公英核型为
2n=3x=24, 基因组为1 210 Mb; 西洋蒲公英核型为
2n=2x=16, 基因组为825 Mb(van Dijk and Lecou-
lant, 2012)。KEYGEN和NEIKER共同完成了俄罗斯
蒲公英遗传图谱的构建, 共获得784个ALFP标记和
151个SSR标记, 其中763个ALFP和57个SSR组成8
个连锁群, 定位了16个农艺性状(Ritter et al., 2010b;
Arias et al., 2012)。此外, KEYGEN构建了西洋蒲公
英的10×BAC文库, 并与明斯特大学和Amplicon ex-
press合作完成了俄罗斯蒲公英8×BAC文库的构建。
利用短角蒲公英顺式-异戊烯转移酶(CPT)和SRPP基
因序列 , 同源筛选出51个BAC(6.1 M)进行Roche
454测序 , 发现西洋蒲公英中仅1个CPT基因 , 即
CPT1。俄罗斯蒲公英含有3个CPT基因, 分别为CPT-
2a、CPT2b和CPT3, 其中CPT2a和CPT2b是一对等
位基因, 而CPT3有21 bp的缺失。俄罗斯蒲公英含7
个SRPP, 而西洋蒲公英仅有5个, 它们成基因簇分
布 , 其中TkSRPP4, 5, 6与TbSRPP类似(van Dijk
and Lecoulant, 2012)。在北美PENRA项目资助下,
内华达大学构建了俄罗斯蒲公英根EST文库, 共获得
4 702个ESTs和3 363个非重复序列(EST: LIBEST_
017559)。Shintani等(2010)比较俄罗斯蒲公英前3个
月根表达的EST, 获得11 700个ESTs和7 931个非重
复序列 (EST: LIBE ST_024575, EST: LIBEST_
024574)。目前, 菊科基因组计划已获得西洋蒲公英
的41 278个ESTs和15 761个非重复序列(http://com-
pgenomics.ucdavis.edu/)。随着蒲公英植物基因组学
研究的不断深入, 大量基因信息的积累和分析将有助
于对橡胶草产胶遗传基础的了解。
近期, 橡胶草的胶乳蛋白质组学研究已成为新的
研究热点, 尤其是橡胶粒子蛋白。Van der Meer等
(2010)采用2D LC-nano MS对不同俄罗斯蒲公英种
质的胶乳蛋白进行定量和定性分析, 共鉴定出355个
蛋白 , 包括异戊二烯异构酶 (IDI)、法尼基转移酶
(FPP)和CPT、SRPP以及GTP结合蛋白(GTP-bind-
ing protein)等橡胶粒子结合蛋白, 初步建立了蛋白组
成和橡胶合成的相关性。该研究组还通过流式细胞仪
仇键等: 橡胶草的研究进展 137

分析了橡胶粒子大小 , 确定其发育阶段 , 并运用
Q-TOF MS和荧光差异蛋白表达分析法(DIGE)分析
了橡胶粒子发育过程中的蛋白表达变化 (van der
Meer et al., 2012)。Wahler等(2012)对短角蒲公英不
同胶乳组分的278个蛋白进行分离鉴定, 结果表明胶
乳中含大量的脂类代谢以及转运相关蛋白, 而橡胶合
成相关蛋白在不同组分中均有分布。黄荣辉等(2013)
建立了胶乳蛋白提取和双向电泳法, 为下一步蛋白质
组学研究奠定了基础。
4.3 天然橡胶的生物合成
基因克隆方面, Schmidt等(2010a)克隆到5个短角蒲
公 英 SRPP 基 因 (TbSRPP1–5) 和 3 个 CPT 基 因
(TbCPT1–3), 发现TbSRPP1–5与其它植物的SRPP
基因序列相似, 均在胶乳中高表达。其中, TbSRPP3,
4, 5在胶乳中的表达量显著高于其它组织。短角蒲公
英CPT基因与橡胶树高度同源, 同样在胶乳中高表
达, 其中TbCPT1表达量最高, 其次是TbCPT3, 它们
的表达量随植株生长发育而增加。此外, 短角蒲公英
的甲羟戊酸途径也已被解析, 其中的酶基因均被克
隆, 如3-羟基-3-甲基-戊二酸酰辅酶A合酶(HMGS)、
3-羟基-3-甲基戊二酰辅酶A还原酶(HMGR)、甲羟戊
酸激酶(MVK)以及IDI等(van Deenen et al., 2012; 王
启超等 , 2012; 仇键等 , 2013)。在功能研究方面 ,
Hillebrand等 (2012)运用RNAi抑制短角蒲公英中
SRPP的表达, 导致橡胶粒子聚集和橡胶含量显著下
降 , 但对橡胶分子量影响不明显。Collins-Silva等
(2012)通过抑制俄罗斯蒲公英中TkSRPP3的表达 ,
发现橡胶含量和聚合长度均明显下降。由此可见 ,
SRPP在橡胶粒子结构稳定和天然橡胶合成中均起重
要作用。此外, SRPP受ABA信号途径中的bZIP转录
因子调控 , 可能参与ABA介导的胁迫应答反应
(Fricke et al., 2013)。产胶植物CPT可催化异戊二烯
(IPP)的长链聚合, 一直被认为是天然橡胶合成调控
中的关键酶。Schmidt等(2010b)研究发现CPT定位于
橡胶粒子上。在酵母中, CPT1–3均具有合成长链聚异
戊烯醇能力和较高的IPP亲和性。Post等(2012)沉默
短角蒲公英乳管中的CPT, 不但显著抑制了乳管橡胶
粒子形成和橡胶生物合成, 还造成三萜类化合物和菊
粉(inulin)的积累。
5 橡胶草研究中存在的问题
在PENRA和PEARLS项目的支持下, 国外在橡胶草
种质资源、栽培技术和产胶分子生物学等领域的研究
进展迅速, 蒲公英橡胶展现出一定的市场前景。但橡
胶草作为产胶植物, 还存在诸多的理论问题和技术难
题亟待解决。
5.1 种质资源
橡胶草种质定义不明确, 种质资源匮乏, 评价系统也
不完善, 极大地阻碍了橡胶草的种质改良。历史上橡
胶草通常指俄罗斯蒲公英及其驯化品种, 而种质的遗
传单一性不利于橡胶草的遗传改良。近期, 有学者预
测俄罗斯蒲公英与西洋蒲公英杂交每公顷可收获干
根6–9 t, 每公顷产胶量能达到1 200–1 800 kg(van
Beilen and Poirier, 2007a)。由此可见, 拓展橡胶草
种质资源类型, 同时对橡胶草种质资源的产量相关性
状(含胶量和根生物量等)、农艺性状(根形态、生殖方
式和耐密植性)、抗逆性(抗旱、耐盐碱、耐寒冷及抗
病虫害等)以及副产品(菊糖、菊芋糖和纤维素等)等重
要性状进行系统评价, 将有助于对新种质资源的挖掘
利用, 加速橡胶草的种质创新。
5.2 遗传改良
橡胶草遗传育种才刚起步, 还处于野生种质驯化阶
段。野生种质生物量小、含胶量低且变异大, 这成为
制约橡胶草商业化的主要因素。因此, 提高产胶能力
和增加生物量是橡胶草遗传改良的主要目标, 而一些
农艺性状(如抗性、机械化生产相关)和副产物含量等
特性的改良对橡胶草商业化也具有重要意义。
5.3 栽培
早期研究中, 俄罗斯和美国将橡胶草种植于肥沃土地
上, 以获得较高产量。考虑到粮食安全问题, 这种栽
培模式并不可取。事实上, 野生橡胶草适应性较强,
可广泛种植于热带、温带和寒带地区, 在干旱、盐碱
地条件下仍可生长良好。因此, 发展橡胶草的荒地和
盐碱地等边际性土地种植非常必要。此外, 研发生态
友好型和水土保护型种植系统也是今后橡胶草栽培
技术研究的重要方向。
138 植物学报 50(1) 2015

5.4 产胶机制
目前橡胶生物合成的生化途径已弄清, 但有关合成和
调控的细节仍有许多不清楚的地方, 特别是橡胶分子
的从头合成的分子调控机制, 它们与产胶植物的天然
橡胶产量和质量性状形成密切相关, 也是当前橡胶生
物合成研究中的一个热点和难点。与橡胶树比较, 橡
胶草具有类似的乳管系统, 遗传转化容易, 加之产胶
周期短, 是天然橡胶生物合成功能基因研究最好的模
式植物。注重橡胶草乳管发育、产胶机制等基础理论
研究, 既可为橡胶草定向分子育种奠定理论基础, 亦
可指导橡胶树等产胶植物的品种改良。
5.5 配套技术
研究大规模生产时橡胶草根的采收、储藏和橡胶绿色
提取等配套技术, 也是橡胶草产业化中亟待突破的技
术难题。
6 研究展望
我国作为橡胶草的原产地, 拥有丰富的野生种质资
源, 但相关领域研究起步较晚, 积累有限, 研发水平
还落后于国外。鉴于此, 我国要发展自身的蒲公英橡
胶产业, 首先, 应充分利用产地优势, 加强本土种质
资源发掘, 重视国际交流, 加大种质资源和成果引
进; 同时着力开展橡胶草种质含胶量、生物量、抗逆
性等相关性状的系统评价, 为育种、大规模种植和储
备提供优质种质资源。其次, 确定我国橡胶草的适种
区域, 在西北、华北、东北地区进行分区试种, 逐步
建立符合我国地域条件的栽培模式。此外, 挖掘控制
重要性状的主效基因或QTL, 发展应用分子标记、基
因工程及分子设计的现代育种技术, 与传统育种技术
相结合, 加速新种质和品种的培育进程, 获得一批拥
有自主知识产权的适应性广的高产多抗品种。
总之, 橡胶草生长迅速, 产胶周期短, 适合高效
机械化生产和田间作物轮作机制, 有潜力成为巴西橡
胶树替代产胶作物。与近万年的粮食作物驯化相比,
橡胶草作为蒲公英橡胶生产的原料, 其驯化改良将是
一个靠现代生物学理论和技术推动的快速过程。加大
力度重启橡胶草系统研究, 突破蒲公英橡胶产业的原
料瓶颈, 提高生产蒲公英天然橡胶的竞争力, 将对缓
解我国乃至全球天然橡胶紧缺和能源危机具有重要
意义。
参考文献
韩振海 (2009). 园艺作物种质资源学. 北京: 中国农业大学出
版社. pp. 210.
黄荣辉, 校现周, 仇键, 刘实忠, 罗世巧, 王启超, 梅志刚, 牛
静明 (2013). 橡胶草胶乳蛋白双向电泳方法的建立. 热带作
物学报 34, 272–275.
黄晓华, 翟道道 (1989). 杜仲树皮的解剖学观测及与巴西橡胶
草结构特征的比较. 陕西林业科技 (3), 30–34.
李若霖 (2012). 新疆橡胶草种质资源遗传多样性研究. 硕士论
文. 海口: 海南大学. pp. 102.
李增贵, 程溥 (1954). 用碱煮法测定青橡胶草中橡胶之含量
——部分I: 新疆多年生草根. 化学世界 (4), 168–169.
林伯煌, 孙怀娟, 魏小弟, 刘实忠 (2009). 橡胶草转化体系的
建立. 见: 中国植物生理学会第十次会员代表大会暨全国学
术年会论文摘要汇编. 开封: 中国植物生理与分子生物学学
会.
林伯煌, 魏小弟 (2009a). 橡胶草的研究进展. 安徽农业科学
37, 5950–5951.
林伯煌, 魏小弟 (2009b). 橡胶草的组织培养研究. 热带农业
工程 33(4), 1–3.
林仲贤 (1954). 用碱煮法测定青橡胶草中橡胶之含量(续)——
部分II: 一二年生鲜草根. 化学世界 (5), 213– 214.
罗成华, 闫洁, 祝建波 (2012). 橡胶草高频再生体系的建立.
北方园艺 (7), 115–119.
罗士苇, 冯午, 吴相钰 (1951). 橡胶草. 北京: 中国科学院. pp.
147.
祁栋灵, 王秀全, 张志扬, 黄月球 (2013). 中国天然橡胶产业
现状及其发展建议. 热带农业科学 33(2), 79–87.
仇键 , 刘实忠 , 张志平 , 魏芳 , 杨文凤 , 罗世巧 , 校现周
(2013). 橡胶草异戊烯焦磷酸异构酶基因的电子克隆及分析.
生物信息学 11, 209–215.
王启超, 刘实忠, 校现周 (2012). 橡胶草HMGR基因的克隆及
表达分析. 植物研究 32, 61–68.
Степанов ТР (刘文彬译) (1952). 橡胶草栽培法. 沈阳: 东北
农业出版社. pp. 115.
Arias M, Hernández M, Remondegui N, Huvenaars K, van
Dijk PJ, Ritter E (2012). Taraxacum koksaghyz linkage
map construction. EU-PEARLS consortium: BioRubber for
Europe in Global Perspective. Wageningen. http://www.
wageningenur.nl/en/show/2012-Congress-Bio-Rubber-for-
仇键等: 橡胶草的研究进展 139

Europe-in-Global-Perspective.htm. pp. 53.
Cardina J, Cornish K, Bennett M, Kleinhenz M (2012).
Approaches to weed management in Russian dandelion.
EU-PEARLS consortium: BioRubber for Europe in Global
Perspective. Wageningen. http://www. wageningenur.nl/en/
show/2012-Congress-BioRubber-for-Europe-in-Global-Per
spective.htm. pp. 55.
Černý T, Kirschner J, Štěpánek J (2010). Pathways to-
wards the creation of an agamospermous hybrid dandelion
rich in rubber. EU-PEARLS consortium: The Future of
Natural Rubber. Montpellier. http:// www.wageningenur.nl/
en/show/2010-Meeting-The-future-of-natural-rubber.htm.pp.
18.
Collins-Silva J, Nural AT, Skaggs A, Scott D, Hathwaik U,
Woolsey R, Schegg K, McMahan C, Whalen M, Cornish
K, Shintani D (2012). Altered levels of the Taraxacum
koksaghyz (Russian dandelion) small rubber particle pro-
tein, TkSRPP3, result in qualitative and quantitative
changes in rubber metabolism. Phytochemistry 79, 46–56.
Cornish K, Xie WS, Ohlemacher CJ, Kostyal D, Shintani
DK, Kleinhenz M, Michel F, Hamilton RG (2012). Quality
and allergenicity of alternative natural rubber lattices.
EU-PEARLS consortium: BioRubber for Europe in Global
Perspective. Wageningen. http://www.wageningenur.nl/en/
show/2012-Congress-BioRubber-for-Europe-in-Global-Per
spective.htm. pp. 56.
Fricke J, Hillebrand A, Twyman RM, Prufer D, Grono- ver
CS (2013). Abscisic acid-dependent regulation of small
rubber particle protein gene expression in Taraxacum bre-
vicorniculatum is mediated by TbbZIP1. Plant Cell Physiol
54, 448–464.
Hillebrand A, Post JJ, Wurbs D, Wahler D, Lenders M,
Krzyzanek V, Prüfer D, Gronover CS (2012). Down-
regulation of small rubber particle protein expression af-
fects integrity of rubber particles and rubber content in
Taraxacum brevicorniculatum. PLoS One 7, e41874.
Kirschner J, Štěpánek J, Černý T, De Heer P, van Dijk PJ
(2013). Available ex situ germplasm of the potential rubber
crop Taraxacum koksaghyz belongs to a poor rubber pro-
ducer, T. brevicorniculatum (Compositae–Crepidinae).
Genet Resour Crop Ev 60, 455–471.
Kleinhenz MD, Bennett MA, Cardina J, Michel FC, Rose-
berg R, Grohs R, Todd J, Ohlemacher CJ, Ravlin FW,
Cornish K (2012). Taraxacum koksaghyz biological feed-
stock development: process components, approach and
team progress. EU-PEARLS consortium: BioRubber for
Europe in Global Perspective. Wageningen. http://www.
wageningenur.nl/en/show/2012-Congress-BioRubber-for-
Europe-in-Global-Perspective.htm. pp. 36.
Kleinhenz MD, Michel FC, Roseberg R, St Martin S, Seiple
R, Ohlemacher CJ, McMahan CM, Shintani DK, Myers
SC, Cornish K, Ravlin FW (2010). Taraxacum koksaghyz
as a sustainable source of natural rubber and inulin: de-
velopment of biological feedstocks and root processing and
rubber quality validation. EU-PEARLS consortium: The
Future of Natural Rubber. Montpellier. http://www.wagen-
ingenur.nl/en/show/2010-Meeting-The-future-of-natural-ru-
bber.htm. pp. 4–5.
Levitt J, Hamm PC (1943). A method of increasing the rate
of seed germination of Taraxacum koksaghyz. Plant
Physiol 18, 288–293.
Molenveld K, van Leeuwen M, Teunissen W (2010). Vari-
ability in the wild species of T. koksaghyz as measured via
several analyses techniques. EU-PEARLS consortium:
The Future of Natural Rubber. Montpellier. http: //www.wa-
geningenur.nl/en/show/2010-Meeting-The-future-of-natural-
rubber.htm. pp. 15–16.
Mooibroek H, Cornish K (2000). Alternative sources of
natural rubber. Appl Microbiol Biotechnol 53, 355–365.
Munt O, Arias M, Hernandez M, Ritter E, Gronover CS,
Prüfera D (2012). Fertilizer and planting strategies to in-
crease biomass and improve root morphology in the natu-
ral rubber producer Taraxacum brevicorniculatum. Ind Crop
Prod 36, 289–293.
Post J, van Deenen N, Fricke J, Kowalski N, Wurbs D,
Schaller H, Eisenreich W, Huber C, Twyman RM, Prüfer
D, Gronover CS (2012). Laticifer-specific cis-prenyltrans-
ferase silencing affects the rubber, triterpene, and inulin
content of Taraxacum brevicorniculatum. Plant Physiol 158,
1406–1417.
Qiu J, Sun SQ, Luo SQ, Zhang JC, Xiao XZ, Zhang LQ,
Wang F, Liu SZ (2014). Arabidopsis AtPAP1 transcription
factor induces anthocyanin production in transgenic Ta-
raxacum brevicorniculatum. Plant Cell Rep 33, 669–680.
Ritter E, Hernandez M, Remondegui N, Arias M (2010a).
Agronomic performance and latex characteristics of
Taraxacum accessions. EU-PEARLS consortium: The Fu-
ture of Natural Rubber. Montpellier. http://www.wagenin-
genur.nl/en/show/2010-Meeting-The-future-of-natural-rub-
ber.htm. pp. 12–13.
Ritter E, Hernandez M, Remondegui N, Arias M, Huver-
naars K, van Dijk PJ (2010b). Linkage mapping in Tarax-
acum using AFLP and COS and SSR markers. EU-
PEARLS consortium: The Future of Natural Rubber.
140 植物学报 50(1) 2015

Montpellier. http://www.wageningenur.nl/en/show/2010-Mee-
ting-The-future-of-natural-rubber.htm. pp. 21.
Schmidt T, Hillebrand A, Wurbs D, Wahler D, Lenders M,
Gronover CS, Prüfer D (2010a). Molecular cloning and
characterization of rubber biosynthetic genes from Tarax-
acum koksaghyz. Plant Mol Biol Rep 28, 277–284.
Schmidt T, Lenders M, Hillebrand A, van Deenen N, Munt
O, Reichelt R, Eisenreich W, Fischer R, Prufer D, Gr-
onover CS (2010b). Characterization of rubber particles
and rubber chain elongation in Taraxacum koksaghyz.
BMC Biochem 11, 11.
Shi Z, Chen YL, Chen YS, Lin YR, Liu SW, Ge XJ, Gao TG,
Zhu SX, Liu Y, Yang QE, Humphries CJ, von Raab-
Straube E, Gilbert MG, Nordenstam B, Kilian N, Brouille,
L, Illarionova ID, Hind DJN, Jeffrey C, Bayer RJ, Kir-
schner J, Greuter W, Anderberg AA, Semple JC,
Štěpánek J, Freire SE, Martins L, Koyama H, Kawahara
T, Vincent L, Sukhorukov AP, Mavrodiev EV, Gottsch-
lich G (2011). Asteraceae (Compositae). In: Wu ZY, Raven
PH, Hong DY, eds. Flora of China Volume 20–21 (As-
teraceae). Beijing & St. Louis: Science Press & Missouri
Botanical Garden Press. pp. 311.
Shintani D, Nural-Taban H, Collins J, Hathwaik U, Cornish
K, McMahan C, Whalen M, Xie WS, Scott D, Lazo G,
Distefano M, Degraw A, Henry O (2010). Summary of U.S.
efforts to identify rubber biosynthetic genes. EU-PEARLS
consortium: The Future of Natural Rubber. Montpellier. http://
www.wageningenur.nl/en/show/2010-Meeting-The-future-of-
natural-rubber.htm. pp. 7.
Suchat S, Pioch D, Palu S, Tardan E, van Loo EN, Da-
vrieux F (2013). Fast determination of the resin and rubber
content in Parthenium argentatum biomass using near in-
frared spectroscopy. Ind Crop Prod 45, 44– 51.
Van Beilen JB, Poirier Y (2007a). Establishment of new
crops for the production of natural rubber. Trends Biotech-
nol 25, 522–529.
Van Beilen JB, Poirier Y (2007b). Guayule and Russian
dandelion as alternative sources of natural rubber. Crit Rev
Biotechnol 27, 217–231.
Van Deenen N, Bachmann AL, Schmidt T, Schaller H,
Sand J, Prüfer D, Gronover CS (2012). Molecular cloning
of mevalonate pathway genes from Taraxacum brevicor-
niculatum and functional characterisation of the key en-
zyme 3-hydroxy-3-methylglutaryl-coenzyme a reductase.
Mol Biol Rep 39, 4337–4349.
Van Deenen N, Frahm L, Poirier Y, Prüfer D, Gronover CS
(2013). Laticifer-specific expression of an Arabidopsis ATP
citrate lyase enhances rubber biosynthesis in Taraxacum
brevicorniculatum. Biosynthesis, Function and Biotech-
nology of Isoprenoids in Terrestrial and Marine Organisms.
Kolymvari, Crete. http://www.abstract.xlibx.com/aother/
68826-36-2-terpnet-2013-terpnet-2013-11th-international-m
eeting-biosynt.php. pp. 200.
Van der Meer I, Cordewener J, van Arkel J, Hesselink T,
Koops A, America T (2012). Identification of key elements
in the proteome of Russian dandelion (Taraxacum kok-
saghyz) involved in rubber synthesis. EU-PEARLS consor-
tium: BioRubber for Europe in Global Perspective. Wagen-
ingen. http://www.wageningenur.nl/en/show/2012-Congress-
BioRubber-for-Europe-in-Global-Perspective.htm. pp. 43.
Van der Meer I, Helsper JPFG, America AHP, Cordewener
JHG, Bergervoet JHW, van Arkel J, Willemsz D, Koops
AJ (2010). Quantitative proteomics and flow cytometric
analysis of Taraxacum koksaghyz accessions. EU-PEARLS
consortium: The Future of Natural Rubber. Montpellier. http://
www.wageningenur.nl/en/show/2010-Meeting-The-future-of-
natural-rubber.htm. pp. 9.
Van Dijk PJ, de Heer P, Kirschner J, Štěpánek J, Baitulin
IO, Černý T, Molenveld K, Gronover CS (2010). Taxon-
omy and diversity of natural populations and ex-situ collec-
tions of the Russian dandelion (Taraxacum koksaghyz
Rod.), a potential rubber crop. EU-PEA-RLS consortium:
The Future of Natural Rubber. Montpellier. http://www.wagen-
ingenur.nl/en/show/2010-Meeting-The-future-of-natural-rubber.
htm. pp. 11–12.
Van Dijk PJ, Lecoulant S (2012). The genomic organization
of rubber biosynthesis genes in the Russian dandelion
(Taraxacum koksaghyz) and the common dandelion (T. of-
ficinale). EU-PEARLS consortium: BioRub- ber for Europe
in Global Perspective. Wageningen. http://www. wagening-
enur.nl/en/show/2012-Cong-ress-BioRubber-for-Europe-in-
Global-Perspective.htm. pp. 44.
Van Dijk PJ, Tas ICQ, Falque M, Bakx-Schotman T (1999).
Crosses between sexual and apomictic dandelions
(Taraxacum). II. The breakdown of apomixis. Heredity 83,
715–721.
Volis S, Uteulin K, Mills D (2009). Russian dandelion
(Taraxacum koksaghyz): one more example of overcol-
lecting in the past? J Appl Bot Food Qual 83, 60–63.
Wahler D, Colby T, Kowalski NA, Harzen A, Wotzka SY,
Hillebrand A, Fischer R, Helsper J, Schmidt J,
Gronover CS, Prüfer D (2012). Proteomic analysis of latex
from the rubber-producing plant Taraxacum brevicornicu-
latum. Proteomics 12, 901–905.
仇键等: 橡胶草的研究进展 141

Wahler D, Gronover CS, Richter C, Foucu F, Twyman RM,
Moerschbacher BM, Fischer R, Muth J, Prüfer D (2009).
Polyphenoloxidase silencing affects latex coagulation in
Taraxacum species. Plant Physiol 151, 334–346.
Warmke HE (1945). Experimental polyploidy and rubber
content in Taraxacum koksaghyz. Bot Gaz 106, 316– 324.
Whaley GW, Bowen JS (1947). Russian dandelion (kok-
saghyz). An Emergency Source of Natural Rubber. United
States Department of Agriculture. Washington: Miscella-
neous Publication No.618.

Research Advances and Perspectives on Rubber-producing Taraxacum
Jian Qiu1, Jichuan Zhang3, Shiqiao Luo1, Xianzhou Xiao1, Feng Wang4, Liqun Zhang3, Shizhong Liu1, 2*
1Key Laboratory of Biology and Genetic Resources of Rubber Tree, Rubber Research Institute, Chinese Academy of Tropical
Agricultural Sciences, Danzhou 571737, China; 2Zhanjiang Experiment Station, Chinese Academy of Tropical Agricultural
Sciences, Zhanjiang 524013, China; 3Center of Advanced Elastomer Materials, College of Materials and Engineering,
Beijing University of Chemical and Technology, Beijing 100029, China; 4Shandong Linglong Tyre Company
Limited, Zhaoyuan 265406, China
Abstract Natural rubber (NR) is a rare material of strategic importance that, for many of its most significant applications,
cannot be replaced by synthetic alternatives. The rubber tree Hevea brasiliensis is the almost exclusive commercial
source of natural rubber but cannot meet the growing global demands for rubber because of restricted cultivation. More-
over, South American leaf blight is a potential risk to decimate tress in terms of production. Plants of rubber-producing
Taraxacum, producing high-molecular-weight NR, are fast-growing, widely adaptable and easily harvested and so con-
sidered a promising alternative rubber source. We review advances in study of rubber-producing Taraxacum, including
germplasm resources and breeding, agronomic techniques, and the biological mechanism of NR biosynthesis. The hot-
spots and key issues are discussed to propose study of rubber-producing Taraxacum and to provide references for this
research in China.
Key words natural rubber, Taraxacum koksaghyz, T. brevicorniculatum, germplasm resources, biosynthesis
Qiu J, Zhang JC, Luo SQ, Xiao XZ, Wang F, Zhang LQ, Liu SZ (2015). Research advances and perspectives on rub-
ber-producing Taraxacum. Chin Bull Bot 50, 133–141.
———————————————
* Author for correspondence. E-mail: sz_liu@126.com
(责任编辑: 白羽红)