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UTILIZATION OF TRITIATED WATER DILUTION TECHNIQUE IN DETERMINATION OF NITROGEN PARTITIONING IN CASHMERE GOATS

氚水稀释技术在测定绒山羊氮分配中的应用研究



全 文 :© 1994-2010 China Academic Journal Electronic Publishing House. All rights reserved. http://www.cnki.net
 核 农 学 报 2010, 24 (1) : 0187~0191
Journal of N uclear Agricu ltura l Sciences
收稿日期 : 2009205230 接受日期 : 2009208204
基金项目 :河南农业大学博士科研启动基金 (30300098)
作者简介 :王林枫 (19682) ,男 ,河南汝阳人 ,博士 ,副教授 ,从事动物营养生理与泌乳研究。E2mail: wanglf1968@1261com
文章编号 : 100028551 (2010) 0120187205
氚水稀释技术在测定绒山羊氮分配中的应用研究
王林枫 1  杨改青 2  刘 平 3  张世君 4
(11河南农业大学牧医工程学院 ,河南 郑州 450002; 21河南农业大学生命研究中心 ,河南 郑州 450002;
31河南省永城市畜牧局 ,河南 永城 476600; 41河南宏邦生物科技有限公司 ,河南 新郑 451162)
摘  要 :为研究含氮物质在绒山羊体内的分配规律 ,本研究选择年龄在 2~215周岁的绒山羊羯羊 ,采用
消化代谢和氚水稀释技术结合的方法测定不同时期绒山羊总氮沉积量、体氮和毛绒氮的分配量。结果
表明 ,用消化代谢和氚水稀释技术可以准确地测定绒山羊的体氮和毛绒氮的分配量 ,不同时期的体氮和
毛绒氮的分配比例有较大差异。在非生绒期和生绒旺盛期 ,体氮的分配比例分别为 7517% ±0162%和
6616% ±212% ,毛绒氮的分配比例分别为 2413% ±0162%和 3314% ±212% ,表明不同时期绒山羊的
生长方向发生变化。同时发现内分泌也随季节发生变化 ,主要表现为非生绒期 PRL (催乳素 )和 IGF2I
(类胰岛素生长因子 I)的水平高 ,MT(褪黑素 )的水平低 ;生绒旺盛期 PRL和 IGF2I的水平低 ,MT的水
平高。证明了氚水稀释技术在测定动物氮分配中的可行性 ,揭示了不同时期含氮物质在绒山羊体内分
配的变化规律以及内分泌在这些变化中的调节作用 ,为不同季节对绒山羊采取合适的饲养管理提供了
理论依据。
关键词 :绒山羊 ; 同位素 ; 氚水 ; 稀释技术 ;氮分配
UTIL IZATIO N O F TRITIATED W ATER D IL UTIO N TECHNIQUE IN D ETERM INATIO N
O F N ITRO GEN PART IT IO NING IN CASHM ERE GOATS
WANG L in2feng1  YANG Gai2qing2  L IU Ping3  ZHANG Shi2jun4
(11College of Anim al Science and V eterinary M edicine, Henan Agricu ltura l U niversity, Zhengzhou, Henan 450002;
21L ife Science R esearch Center of Henan A gricu ltural U niversity, Zhengzhou, Henan 450002;
31Yong Cheng Anim al Husbandry B ureau, Yongcheng, Henan 476600;
41Henan Hongbang B iotechnology Co. , L td, Henan, X inzheng, Henan 451162 )
Abstract: In order to investigate nitrogen partitioning in local cashmere goats, six Inner Mogolia W hite Cashmere goats
between 2 to 215 years old were used to determ ine the nitrogen partitioning in cashmere goats. The total retained nitrogen
( TN) in body, distribution of body nitrgen and hair nitrogen were measured by general digestive and metabolism method
combined with tritiated water dilution technique. Results showed that the combined methods were ideal for determ ining
body nitrgen (BN) and hair nitrogen ( fur nitrogen, FN ) of Cashmere goats. There were obvious significance between BN
and FN in different seasons. In telogen, BN and FN partitioning was 7517% ±0162% and 2413% ±0162% ,
respectively. W hereas, it changed to 6616% ±212% and 3314% ±212% in anagen. BN partitioning decreased when
the season changed from telogen to anagen, while FN partitioning increased, which indicated that more nitrogen
substance was partitioned to body growth in telogen, and more nitrogen substance was distribute to cashmere growth in
anagen. These transformation were related to the changing of photoperiod and some hormones, such as melatonin (MT) ,
p rolactin ( PRL) and IGF2I. It could be concluded that tritiated water dilution technique can be used to detect body
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p rotein content as well as BN , combining general digestive and metabolism experiment, FN partitoning can be
determ ined. BN and FN partitoning varied with the season in cashmere goats because of hormones changing.
Key words: cashmere goats; isotope; tritiated water; dilution technique; nitrogen partitioning
  绒山羊是我国北方特有的绒肉兼用型山羊品种 ,
其绒毛生长的季节性强 ,秋季为生绒旺盛期 ,春夏为非
生绒期。绒毛生长的季节性决定了其含氮物质分配方
向和比例不同 ,但由于研究方法的限制 ,对于绒山羊在
不同季节的营养分配和营养需要一直不能准确量化确
定 ,生产中带有一定盲目性。传统的营养分配的研究
方法是屠宰分析法 ,这种方法虽然简单 ,却是一种破坏
性的测定方法 ,不仅耗质昂贵 ,工作繁重 ,而且不能重
复 ,其应用受到很大限制。因此 ,人们一直试图找到一
种准确而廉价的方法 ,既能测定动物体内营养分配量 ,
又不伤害被测动物。在研究过程中 ,曾经用生物染料、
尿素、安替比林等作指示剂活体测定动物体成分及营
养分配 , 但效果不甚理想。 1947 年 , Pace 将氚水
(3 H2 O, TOH)稀释技术用于测动物体成分 [ 1 ] ,之后该
技术得到不断改进和推广应用 ,技术日趋成熟。目前 ,
该技术已成为动物生理、营养、育种、畜牧生产和研究
中的一个重要研究手段 [ 2 ]。本文用消化代谢和氚水
稀释技术结合的方法研究不同季节绒山羊体内氮在不
同方向的分配比例 ,以期为指导生产实践提供科学依
据。
1 材料与方法
111 试验动物及时间
选择年龄 2~215周岁 ,体重 22~26kg的内蒙古
白绒山羊成年羯羊 36只 ,试验分别于 2~5月和 9~
12月 (绒山羊处于非生绒期和生绒旺盛期 )进行 ,每期
试验前羊空腹称重 ,按体重 315%的比例 (干物质 )给
于饲粮 ,预饲期 7d,试验期 90d,预饲期和试验期的日
粮相同。试验地点为内蒙古畜牧科学院。
112 试验日粮及饲养管理
试验日粮配制参照 NRC (1981)山羊饲养标准 [ 3 ] ,
按 112倍维持需要量供给日粮 ,精、粗粮按 30∶70混
合 ,粗蛋白含量 11104%。试验羊单笼饲养 ,定时分次
饲喂 ,早晨和下午 2次喂给 ,自由饮水。每日收集剩料
量 ,称重 ,准确记录每日采食量 ,保存 ,待测。试验前备
足饲料 ,保证试验期内饲料均不变。
113 动物总沉积氮 ( TN)的测定
采用消化代谢试验进行 TN的测定 ,在试验第 1
个月和第 3个月分别进行一次消化代谢试验 ,每次
15d,求 2次氮的平均沉积速率 ( g /d) ,作为试验期羊
的平均沉积速率计算 90d氮的总沉积量 ( TN )。具体
方法为 :早晨羊空腹称重后带上自制的集粪袋和集尿
袋收集全部粪尿 ,每天 8: 00和 16: 00两次收集粪尿 ,
准确记录每次采集的粪量和尿量 ,各取 10%的量作为
待测样品 ,将每只羊在试验期内的样品混合 ,保存于
- 20℃冰柜中 ,待测。每次所采尿样加 1m l浓度为
1mmol/L的 H2 SO4 以调尿液 pH低于 3,常温保存待
测。
粪、尿氮的测定方法 :将试验期内所取的粪样品混
合均匀 ,按五点采样法取 200g粪样在 65℃烘箱中风
干 ,去除粪样上的杂物 ,称重 ,计算水分含量 ,然后将粪
样粉碎 ,取适量粉样用凯氏定氮法测定粪中含氮量 ,根
据水分含量换算成鲜粪样中氮含量 ,再根据试验期内
总鲜粪量计算出试验期内粪中总氮量。尿氮量的测定
根据每 mL尿样中的氮含量和试验期内尿的总量计算
而得 ,尿氮测定方法按照凯氏定氮法进行。
食入氮的测定方法 :将试验期内每只羊每天的剩
料收集混合 ,按照 5点取样法取剩料样 100g左右 (不
足 100g的取全样 ) , 65℃烘干、粉碎 ,凯氏定氮法测定
剩料氮含量 ,根据剩料总量计算剩料总氮量 ;用总的所
给饲料中的氮含量和剩料中的氮含量之差计算总食入
氮量。饲料含氮量与上述测定方法相同。
沉积氮的计算方法 :沉积氮 ( TN) =食入氮 - 粪氮
-尿氮
90h内总沉积氮的计算方法 :根据试验期内两次
消化代谢试验测定的氮沉积速率 ( g /d) ,计算平均氮
沉积速率 ,乘以 90h,即为 90h内氮的总沉积量。
114 体氮 ( BN)分配量的测定
在预饲期和试验结束时 ,试验羊禁食禁水 24h,剪
毛 ,空腹称重 ,在试羊两侧颈静脉各安装一支带三通的
静脉插管 ,每只羊抽取 7m l血样 ,制血浆作为空白样
(对照 )。抽完血后 ,静脉插管内充肝素生理盐水 (600
IU )抗凝 ,关闭三通。
11411 氚水注射液的配制及称取  氚水原液 ( 1mCi/
m l或 317 ×107Bq)购自中国原子高科核技术应用股份
有限公司 (中国原子能研究院同位素所 )。原液用生
理盐水 10倍稀释制成 (100μCi/m l或 317 ×106 Bq)注
射液 ,过滤灭菌 ,备用。氚水注射液按 317 ×105 ~1111
×106 Bq /kg(10~30μCi/kg)的剂量用一次性注射器
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 1期 氚水稀释技术在测定绒山羊氮分配中的应用研究
抽取 [ 4 ] ,准确称重注射器 (精确到 010001 g) ,戴上针
头 ,针头尖端用蜡密封 ,防止氚水挥发 ,每只羊用的注
射器按对应序号放入洁净带盖托盘里。称取过程中双
手戴防静电手套 ,以防注射器上因静电而吸附周围灰
尘 ,影响试验精度。
11412 氚水的注入  将称取注射器里的氚水注射液
注入到对应羊的一侧颈静脉内 ,注入前打开三通 ,抽出
静脉插管内的肝素生理盐水 ,注完后用另一支洁净注
射器适量抽取生理盐水 (不超过 5m l) ,冲洗静脉插管 ,
使氚水注射液全部进入试羊体内 ,每次注射前要关闭
三通 ,以防血液及氚水注射液从静脉插管逆流出。注
射完毕后 , 装氚水的注射器要准确称重 (精确到
010001g,下同 ) ,注射前后注射器重量即为注射入羊体
内氚水注射液的重量。根据上述氚水的浓度可知注射
入羊体内的氚水总量。注射完毕后 ,所有接触氚水的
物品均收集在红色塑料桶内 ,按照国家放射性物品管
理办法妥善处理。
11413 血浆样品的制备  注完氚水后的 6h内 ,每 2h
采血样 7m l,共采 3次 ,编号 , 3500 r/m in离心 15m in,抽
取血浆 ,于 - 20℃冰箱密封保存 ,待测。采血样后的绒
山羊收集 2周之内全部粪样、尿样 ,集中处理。
11414 血浆中水的提取  取洁净的高速离心管 ,编
号 ,称重。取 5m l洁净注射器抽取血浆样品 110m l,准
确称重后将血浆注入高速离心管中 ,再准确称取注射
器重量 ,计算注入血浆重量。再称取 410m l二氧六环
的重量 ,注入离心管中 ,密封 ,混匀 ,至出现絮状沉淀。
将离心管平衡 ,对称放入高速离心机中 ,以 10000 r/m in
离心 20m in,吸取出上清夜 ,放入相同编号的洁净小瓶
内 ,密封 ,冷藏 ,防止水份和二氧六环挥发。离心管内
的血浆沉淀物冻干后精确称重 ,与空管的重量之差即
为血浆沉淀物重 ,由全血浆重量减去血浆沉淀物重即
为血浆中水的含量。由已知加入的二氧六环的重量可
以计算出上清液中水的百分含量 ( % )。上述操作过
程中均需戴防静电手套 ,以免管壁吸附灰尘 ,影响结
果。各步操作均须迅速并及时盖上管盖或瓶盖 ,以防
二氧六环挥发。
11415 闪烁液的制备  称取萘 60g、PPO 410g、POPOP
012g于烧杯中 ,加入甲醇 100m l、乙二醇 20m l,再加入
适量二氧六环溶解 ,然后转移至 1000m l容量瓶中 ,用
以清洗烧杯数次的二氧六环也注入容量瓶中 ,用二氧
六环定容至 1000m l,再转移至棕色瓶中 ,置于暗处保
存待用 [ 2, 5 ]。
11416 待测样的制备及测定  准确称取 11414中血
浆上清夜 110m l于洁净闪烁瓶中 ,加 9m l闪烁液 ,加盖
密封 ,加样过程中戴防静电手套 ,并在洁净环境中进
行。空白样和注射液 (适量稀释 ,本试验为 1万倍稀
释 )也同样加闪烁液 ,装样后的闪烁瓶按序号放入 β
计数器中 (本试验为 Backman L s 5801) ,以空白样作本
底 ,测定样品的放射性计数 (DPM )。测定后的样品液
收集到红色小塑料桶内 ,密封 ,按规定处理。
115 毛、绒氮 ( FN)分配量的测定
对于绒山羊羯羊来说 ,测定毛绒氮涉及 2个变量 :
日粮总沉积氮 ( TN)和体氮分配量 (BN)。
日粮总沉积氮 ( TN )用消化代谢试验方法测得 ,见
113。体氮分配量 (BN )用试验前后体氮的差计算求
得 :
体氮分配量 ( g)
=试验结束时体氮含量 -试验开始时体氮含量 (1)
体氮含量 ( g)
=体蛋白含量 ( kg) ×0116 ×1000 (2)
体蛋白含量 ( kg) = 01255X - 0135
r = 01969[ 6 ]
  其中 , X为氚水间隙 ( kg) ,计算公式如下 :
氚水间隙 (X)
=
每克氚水注射液的 DPM ×稀释倍数 ×注射量 ( g)
样品中每克水的 DPM -空白样每克水的 DPM
(3)
  综上 ,毛绒氮的分配量可用差减法计算 :
毛绒氮分配量 ( g) =总沉积氮 -体氮分配量
= (食入氮 -粪氮 -尿氮 ) -体氮分配量 (5)
116 血浆制备及主要激素测定
试验羊分别于试验开始后 1周、3周、5周进行全
天候采血制备血浆。具体方法是采血前在颈静脉安装
带有三通延长管的动静脉留滞针 ,固定 ,延长管内充盈
肝素溶液 (600 IU)以防凝血堵塞。等最后一只羊留滞
针安装齐备后开始全天候采血 ,每隔 2h采血 1次 ,共
采 12次 ,每次采血 5m l,血样装入真空抗凝管中 ,夜间
采血在 15W 的红灯下进行 ,采完后将灯关闭。血样
3500 r/m in离心 15m in,用洁净一次性注射器抽出上层
血浆分别注入洁净的小瓶中 ,密封 ,保存 ,待测。若一
天内检测 ,可 2~8℃保存 ;若一个月内检测 ,可 - 20℃
保存 ;若超过一个月检测 ,应在 - 70℃保存。溶血、脂
血和黄疸症的血样不能用于测试 ,保存过程中避免血
浆反复冻融。
血浆样品分别测定指标褪黑激素 (MT)、催乳素
( PRL)和类胰岛素生长因子 - I( IGF2I)。MT、PRL用
酶联免疫法 ( EL ISA )检测 , IGF2I用放射免疫法 (R IA )
检测。褪黑素试剂盒购自德国 IBL2HAMBURG公司 ,
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其他激素试剂盒为国内某生物公司 ,测定方法按说明
书进行。
117 数据统计分析
试验结果以平均值 ±标准差表示 ,各组之间显著
性比较采用 SAS(810)软件包中的平衡实验设计方差
分析过程 (ANOVA )进行。若结果差异性显著则运用
Duncan氏新复极差法进行均数间多重比较 , P < 0101
为差异极显著 , P < 0105为差异显著。
2 结果与讨论
不同时期绒山羊饲料氮采食量、沉积量、体氮、毛
氮分配结果见表 1。
从表 1中可以看出 ,利用消化代谢试验和氚水稀
释技术可以测定绒山羊体氮和毛绒氮的分配量和分配
比例。在非生绒期体氮和毛绒氮的分配比例分别为
7517% ±0162%和 2413% ±0162% ;在生绒旺盛期 ,
体氮和毛绒氮的分配比例分别为 6616% ±2120%和
33140% ±212%。
在非生绒期和生绒旺盛期 ,绒山羊的氮食入量、沉
积量、体氮、毛氮的分配有一定差异。在生绒旺盛期 ,
绒山羊的饲料氮食入量分别为 95919 ±211g,高于非
生绒期的 89618 ±39g,但差异不显著。随着食入氮的
增加 ,绒山羊的氮总沉积量随之增加 ,非生绒期和生绒
旺盛期分别为 11210 ±40g和 14312 ±815g,氮沉积效
率分别为 1212% ±4109%和 14193% ±019% ,沉积速
率分别为 1124 ±0154g/d和 1159 ±0109g/d,生绒旺盛
期高于非生绒期 ,但差异均不显著 ( P > 0105)。
表 1 不同时期绒山羊食入氮的沉积情况及其在体、毛绒中的分配比例
Table 1 D ietary nitrogen change efficiency and partitioning ratio in cashmere goat at telogen and anagen periods
项目 item 非生绒期 telogen 生绒旺盛期 anagen
90天食入总 ntotal nintake, TIN ( g) 89618 ± 39a 95919 ± 211a
每天 N食入量 daily N intake, D IN ( g/ d) 9196 ± 0143a 10167 ± 0102a
总沉积 N量 total retained N, TN ( g) 11210 ± 40a 14312 ± 815a
总沉积 N /食入 N比例 RN / TIN ( % ) 1212 ± 4109a 14193 ± 019a
沉积速率 N retained rate, RR ( g/d) 1124 ± 0154a 1159 ± 0109a
体 N分配量 body N partitioning, BN ( g ) 8414 ±2916a 9418 ± 216a
体沉积 N /沉积 N比例 BN / TN ( % ) 7517 ± 0162a 6616 ± 212b
体沉积 N /总食入 N比例 BN /T IN ( % ) 8149 ± 0138a 9188 ± 0129a
毛绒 N分配量比例 fur N partitioning, FN ( g ) 2716 ±1013b 4814 ± 519a
毛绒氮 /总沉积 N比例 FN /TN ( % ) 2413 ± 0162b 3314 ± 212a
毛沉积 N /总食入 N比例 FN /TTN ( % ) 310 ± 1106a 511 ± 0162a
注 :同行标注字母不同者差异显著 ( P < 0105) ,有相同字母者差异不显著 ( P > 0105)。下表同。
Note: D ifferent letters within a line are significantly different from each other ( P < 0105 ) , the same letter within a line are not significantly different ( P >
0105) . The same as following table.
  从氮分配量来看 ,非生绒期体氮的分配比例显著
高于生绒旺盛期 ( P < 0105) ,分别为 7517% ±0162%
和 6616% ±2120% ,分别占食入氮的 8149% ±0138%
和 9188% ±0129% ,表明非生绒期用于体成分生长的
含氮物质比例高于生绒旺盛期。与体氮相反 ,毛绒氮
的分配比例生绒旺盛期为 33140% ±212% ,显著高于
非生绒期的 2413% ±0162% ( P < 0105) ,表明在生绒
旺盛期有更多的含氮物质分配于绒毛生长。
绒山羊之所以表现出不同时期氮分配比例的变
化 ,与不同季节的光照和激素分泌状况密切相关 [ 7 ]。
不同时期绒山羊主要激素的水平见表 2。
在非生绒期 (2月 ~6月 ) ,光照时间逐渐变长 ( 5
月平均光照 15128h) ,绒山羊体内褪黑素 (MT)分泌逐 表 2 不同时期绒山羊血液中的主要激素水平Table 2 Major p lasma hormones level inthe goats in different periods时间growth period 褪黑素MT(pg/m l) 催乳素PRL ( ng/m l) 类胰岛素生长因子 IIGF2I ( ng/m l)非生绒期 telogen 6717 ±1416b 714 ±2109a 19712 ±618a生绒旺盛期 anagen 9315 ±2611a 4195 ±1165a 10811 ±914b渐减少 ,催乳素 ( PRL )、类胰岛素生长因子 Ⅰ( IGF2I)分泌逐渐增加。由于 PRL、IGF2I有促进蛋白合成的作用 ,故非生绒期绒山羊体蛋白合成量增加 ,体氮的分配量从而也增加 [ 8 ]。而在生绒旺盛期 ( 8月 ~10月 ) ,光照时间慢慢变短 ( 9月平均光照 13123h) ,PRL、IGF2I的分泌减少 ,绒山羊体蛋白合成减少 ,体氮
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的分配量下降 [ 9 ] ;而此时褪黑素 (MT)的分泌量增加 ,
褪黑素具有促绒毛生长作用 ,使日粮氮向绒毛方向的
分配量增加 [ 10 ]。
由上述结果可以看出 ,利用同位素 (氚水 )稀释技
术能较好地测定绒山羊的体氮沉积和毛绒氮的分配去
向 ,准确、客观地反映绒山羊日粮氮分配状况 ,与屠宰方
法相比完全符合动物的实际体况 [ 11 ]。此外 ,该法还有
成本低、速度快、结果稳定、再现性好、动物可以重复使
用等优点 ,克服了屠宰法不可重复的弊端 ,减小了动物
个体差异对试验带来的影响 ;且适用于对绵羊、猪、鸡、
牛等不同动物试验 ,为不同物种之间的比较奠定了基
础 [ 12 ]。除蛋白质外 ,还可以测定其他体成分 ,如体水
分、脂肪和灰分 ,并可用于体成分沉积、动物体内水周转
率、奶牛干物质采食量、幼畜吮乳量等方面的测定。
本研究所用的氚水安全性高。首先对操作者安
全 ,氚水示踪剂属于最软的β辐射体 ,其β粒子能量
很低 , 平均为 517Kev, 在软组织中的最大射程为
016mm /cm2 ,其发射的β射线对人体不会产生外照辐
射危害效应 ,人工操作是安全的。但操作过程中需要
带乳胶手套 ,以防氚水直接接触皮肤。
其次对试畜安全。氚的物理半衰期很长 ,为 1214
年 ,但它的生物半衰期短 ,一般为数天至十数天 ,长短
受动物生理状况、饲料、饮水及气候因素影响。
A schbacher等曾报道氚在哺乳牛体内的半衰期为 219
~311d,非哺乳牛体内为 510 ~514d[ 13 ]。 Till等和
Sm ith等曾报道认为舍饲羊体内为 315~1613d[ 14, 15 ] ;
徐子伟等指出 ,在绿嫩茂盛青草地放牧 ,水分摄入多 ,
周转快 ,氚在羊体内生物半衰期为 213d。可以看出 ,
无论何种情况下 ,氚水的生物半衰期都很短 ,对动物低
毒 ,且不影响家畜肉用价值 [ 13 ]。如果肉用 ,最好在试
验结束后 115~2个月屠宰 ,尽可能让动物将体内氚水
排出体外。
对于舍饲绒山羊 ,在试验结束后的 2周内收集动物
粪尿 ,连同试验过程中收集的其他各种废弃物 ,装入红
色大塑料桶 ,密封 ,标记 ,送往当地核废料处理场 ,集中
处理。如果没有处理场 ,应在远离人类活动的地方埋入
地下 2m深 30年以上 ,并在地上设固定提示标志。
3 结论
311 氚水稀释技术测定动物营养分配 ,氚水用量少 ,
污染小 ,安全性高 ,对动物和人不会造成大的伤害 ,可
以在动物研究中推广应用。
312 利用消化代谢试验方法能较为准确地测定日粮
氮在绒山羊体内的总沉积量 ,氚水稀释技术可以准确
测定绒山羊体内中氮的分配量 ,两者结合可以测定一
段时间内毛绒氮的分配量。
313 生绒旺盛期绒山羊的氮采食量、沉积量、沉积效
率及毛绒氮分配比例均高于非生绒期 ,而体氮的分配
比例低于非生绒期。这些变化与不同季节光照和相关
激素的含量有关。生绒旺盛期血液中 MT (褪黑素 )的
水平高 ,促进绒毛的生长 ,促进含氮物质向绒毛方向分
配 ;非生绒期 MT的含量降低 ,绒毛生长减慢 ,毛绒氮
的分配减少 ,而 IGF2I的水平升高 ,促进绒山羊机体生
长 ,体氮分配量增加。
314 不同季节绒山羊体内氮分配比例的变化 ,为对绒
山羊采取科学的饲养管理提供理论依据 ,在不同的季
节采取不同的饲养方法 ,以达到最佳的饲养效果。
参考文献 :
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(责任编辑  邱爱枝 )
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