全 文 :植物生理学报 Plant Physiology Journal 2012, 48 (7): 705~713 705
收稿 2012-04-09 修定 2012-05-14
资助 国家自然科学基金(30460016)和中国烟草总公司云南省公
司科技计划项目(2010YN10)。
* 共同第一作者。
** 通讯作者(E-mail: gongming63@163.com; Tel: 0871-
5941370)。
抗氧化系统参与循环干旱锻炼提高烟草植株抗旱性的形成
荣智媛1,*, 张晓海2,*, 杨双龙1, 徐照丽2, 李军营2, 黄国宾1, 赵静1, 龚明1,**
1云南师范大学生命科学学院, 生物能源持续开发利用教育部工程研究中心, 云南省生物质能与环境生物技术重点实验室,
昆明650500; 2云南省烟草农业科学研究院, 云南玉溪653100
摘要: 对漂浮育苗的烟草幼苗进行控水-半萎焉-复水-恢复的循环干旱锻炼。结果表明, 这种干旱锻炼能显著提高烟草叶片
抗氧化剂谷胱甘肽(GSH)、抗坏血酸(AsA)的含量、还原型抗氧化剂在总抗氧化剂中的比例和抗氧化酶包括超氧化物歧化
酶(SOD)、抗坏血酸过氧化物酶(APX)、过氧化氢酶(CAT)、愈创木酚过氧化物酶(GPX)、谷胱甘肽还原酶(GR)的活性, 降
低丙二醛(MDA)的含量。当烟草植株遭受后续的干旱胁迫时, 与未锻炼的对照相比, 干旱锻炼过的烟草植株能保持较高的
GSH和AsA含量、还原型抗氧化剂在总抗氧化剂中的比例和抗氧化酶(SOD、APX、CAT、GPX和GR)活性, 以及较低的
MDA含量, 表明这种循环干旱锻炼提高了细胞抗氧化能力, 有助于缓解烟草植株由干旱引起的氧化胁迫及其所导致的伤
害, 最终提高其抗旱性。这些结果表明, 抗氧化系统参与了循环干旱锻炼提高烟草植株抗旱性的形成过程。
关键词: 烟草; 循环干旱锻炼; 抗氧化系统; 干旱胁迫; 抗旱性
Involvement of Antioxidant Defense System in Enhancement of Drought Re-
sistance in Tobacco (Nicotiana tabacum L.) Plants through Circular Drought-
Hardening
RONG Zhi-Yuan1,*, ZHANG Xiao-Hai2,*, YANG Shuang-Long1, XU Zhao-Li2, LI Jun-Ying2, HUANG Guo-Bin1, ZHAO Jing1,
GONG Ming1,**
1Key Laboratory of Biomass Energy and Environmental Biotechnology of Yunnan Province, Engineering Research Center of Sus-
tainable Development and Utilization of Biomass Energy, Ministry of Education, School of Life Sciences, Yunnan Normal Univer-
sity, Kunming 650500, China; 2Yunnan Academy of Tobacco Agricultural Sciences, Yuxi, Yunnan 653100, China
Abstract: Circular drought-hardening was applied on tobacco seedlings raised on floating trays by the circle of
water control-half wilting-rehydration-recovery. The results showed that the circular drought-hardening can sig-
nificantly increased contents of the antioxidant glutathione (GSH) and ascorbic acid (AsA), the ratio of reduced
to total antioxidants and activities of the antioxidant enzymes including superoxide dismutase (SOD), ascorbate
peroxidase (APX), catalase (CAT), guaiacol peroxidase (GPX), glutathione reductase (GR), and decreased the
content of malondialdehyde (MDA). When the circular drought-hardened seedlings were subjected to following
drought stress, as compared with control without the drought-hardening, they could retain higher contents of
GSH and AsA, ratio of reduced to total antioxidants and activities of the antioxidant enzymes (SOD, APX,
CAT, GPX, GR), and lower content of MDA. All these results indicated that the circular drought-hardening en-
hanced intracellular anti-oxidative capacity in tobacco plants, which will be helpful to alleviate drought-induced
oxidative stress and subsequent damage, and finally to increase drought resistance, and antioxidant defense sys-
tem took part in the drought hardening-induced enhancement of drought resistance in tobacco plants.
Key words: tobacco; circular drought-hardening; antioxidant defense system; drought stress; drought resistance
干旱是影响农业生产与生态环境的重要因子
(Ashraf 2010; Neumann 2008)。烟草起源于雨量充
沛的热带, 整个生育期对水分的要求都很高。水
分参与烟草体内一切代谢过程及烟草的形态构成,
是形成优质烟叶的重要生理生化基础(农梦玲等
2008)。近几年中国西南部地区频繁发生的干旱
(曾少聪2010), 对烤烟的生产带来严重的影响。
在农业生产中, 干旱锻炼是一种有效提高农
植物生理学报706
作物抗旱性的方法。干旱锻炼是指将植物处于一
种致死量以下的干旱条件中, 让植物经受干旱磨
炼, 以提高其对严重干旱的适应能力(谭晓荣等
2009)。干旱锻炼过的植株根系发达, 保水能力强,
叶绿素含量高, 干物质积累多, 抗逆能力强(陈润政
等1998)。
在逆境胁迫下, 植株体内过氧化氢和超氧阴
离子自由基等活性氧类(reactive oxygen species,
ROS)发生积累, 导致细胞的损伤甚至死亡(丁福章
等2008; Foyer和Noctor 2005; Langebartels等2002)。
植物在长期的进化过程中, 形成了较完善的包括
抗氧化酶和非酶类抗氧化剂的抗氧化系统来清除
细胞内的ROS, 从而维持细胞内ROS的平衡(Gill和
Tuteja 2010; Gechev等2002)。在逆境胁迫初期, 为
抵御ROS对细胞的毒害, 植物细胞往往主动启动这
些活性氧清除机制。有研究表明, 在干旱胁迫早
期, 植物体内抗氧化剂含量和抗氧化酶活性都有
所上升(Osipova等2011; Bian和Jiang 2009; Bai等
2006; Luna等2004); 在植物体中过表达抗氧化酶基
因可明显改善植物的抗旱性(Faize等2011; Badawi
等2004)。这些研究表明, 抗氧化酶的表达量和抗
氧化物质的积累量在植物对干旱胁迫的响应中具
有重要作用。
云南由于其特定的生态环境, 拥有独特和优
质的烟叶风格(柯学等2011), 成为中国主产优质烟
区, 在全国占重要地位。但云南烟草在移栽期及
田间生长早期经常面临着春末夏初的干旱, 对烟
叶生产有严重影响。在前期的工作中, 我们证实
了渗透调节参与了循环干旱锻炼提高的烟草植株
抗旱性的形成(黄国宾等2012)。在本研究中, 拟通
过测定循环干旱锻炼及后续干旱胁迫下烟草叶片
中主要抗氧化剂含量、抗氧化酶活性及丙二醛含
量的变化, 为探索抗氧化系统在循环干旱锻炼提
高的烟草植株抗旱性中的作用提供相应的理论依
据。
材料与方法
1 材料
试验材料为烟草(Nicotiana tabacum L.)品种
‘K326’, 按GB/T 25241.1-2010的方法培育和管理烟
苗。
2 方法
2.1 循环干旱锻炼及干旱胁迫处理
按我们前文(黄国宾等2012)的方法进行: 在烟
草幼苗移栽前10~14 d对幼苗进行循环干旱锻炼,
使其适当遭受水分胁迫至半萎焉塌架时再加水以
使其恢复, 完成一个循环锻炼周期。经不同循环
干旱锻炼次数的烟苗移栽至盆钵, 还苗后转移至
干旱棚内, 进行干旱胁迫处理。在循环干旱锻炼
烟苗1、3、5、7次及后续干旱胁迫10 d和20 d时,
取叶片, 液氮速冻保存在–86 ℃的超低温冰箱中。
2.2 抗坏血酸和谷胱甘肽含量的测定
还原型抗坏血酸(AsA)、氧化型抗坏血酸
(DHA)、还原型谷胱甘肽(GSH)和氧化型谷胱甘
肽(GSSG)的提取按照我们实验室以前的方法(李
忠光等2002)。AsA和DHA含量的测定按照Jiang和
Zhang (2001)的方法, GSH和GSSG含量的测定按
照Nagalakshmi和Prasad (2001)的方法。
2.3 抗氧化酶活性的测定
5种抗氧化酶的提取按照我们实验室以前的
方法(李忠光等2003); 超氧化物歧化酶(SOD)的测
定用氮蓝四唑(NBT)还原法(Giannopolitis和Ries
1977); 抗坏血酸过氧化物酶(APX)的测定按照Na-
kano和Asada (1981)的方法; 过氧化氢酶(CAT)的测
定参照Aebi (1984)的方法; 愈创木酚过氧化物酶
(GPX)的测定按照Britton和Maehly (1955)的方法;
谷胱甘肽还原酶(GR)的测定参照Halliwell和Foyer
(1978)的方法。
2.4 MDA含量的测定
丙二醛(MDA)的测定参照陈建勋和王小峰
(2002)的方法。
2.5 数据处理
每组试验重复3次, 每次试验2个测定重复。试
验原始数据用SPSS 11.5统计软件分析和t检验, 图
中*或**分别表示与对照的差异显著(P<0.05)或极
显著(P<0.01)。统计结果用SigmaPlot 10.0作图。
实验结果
1 干旱锻炼及其移栽后的干旱胁迫对烟草植株叶
片中抗氧化剂AsA和GSH含量的影响
1.1 AsA含量变化
还原型抗坏血酸(AsA)是一种普遍存在于植
荣智媛等: 抗氧化系统参与循环干旱锻炼提高烟草植株抗旱性的形成 707
物组织的高丰度小分子抗氧化物质, 它可以直接
与ROS反应, 在植物抵抗氧化胁迫中具有重要作用
(Navrot等2007)。如图1所示, 循环干旱锻炼期间,
随着干旱锻炼循环次数的增加, 锻炼过的烟草幼
苗AsA的含量显著增加, 如5个循环锻炼的幼苗
AsA含量比对照高出93.3% (图1-A)。相反经过5~7
个循环锻炼的烟草幼苗氧化型抗坏血酸(DHA)含
量显著下降(图1-C)。此外, 总抗坏血酸(AsA+DHA)
含量和还原型抗坏血酸在总含量中的比值[AsA/
(AsA+DHA)]都随着干旱锻炼循环次数的增加而
增加(图1-B、D)。
当对照和经过干旱锻炼的烟草植株移栽还苗
后继续进行干旱胁迫10 d和20 d, 经过干旱锻炼的
烟草植株AsA含量显著高于未锻炼的对照, 如经过
3个循环干旱锻炼的幼苗AsA含量在干旱胁迫第10
天时比对照高出26.6% (图2-A); 而经过干旱锻炼
的幼苗DHA含量明显低于未经锻炼的烟草植株
(图2-C); 但总抗坏血酸(AsA+DHA)含量无显著变
化(图2-B)。经过干旱锻炼的烟草幼苗在遭遇后续
的干旱胁迫时AsA/(AsA+DHA)比例显著高于对照
(图2-D), 表明干旱锻炼提高了烟草植株在锻炼期
间和随后的干旱胁迫下的AsA含量及其在总含量
中的比值。
1.2 GSH含量变化
还原型谷胱甘肽(GSH)广泛分布于哺乳动
物、植物和微生物细胞内, 是最主要的、含量最
丰富的含巯基的低分子肽, 它可以直接或间接与
ROS反应(Szalai等2009; Miller等2008)。如图3所
示, 烟草幼苗GSH含量从3个循环开始随着锻炼次
数的增加GSH含量逐渐升高, 经过7个循环锻炼的
幼苗GSH含量比对照高出84.1% (图3-A)。氧化型
谷胱甘肽(GSSG)含量也随锻炼次数增加而上升,
经历3个循环锻炼的烟草幼苗GSSG含量最高, 比
对照高出25% (图3-C)。此外, 总谷胱甘肽(GSH+
GSSH)含量和GSH/(GSH+GSSH)比值从3个循环锻
炼开始随干旱锻炼次数的增加而逐渐升高, 在7个
循环结束时均显著高于未经锻炼的烟草幼苗(图
3-B、D)。
当对照和经过干旱锻炼的烟草植株进一步遭
受后续的干旱胁迫时, 在干旱胁迫10 d后, 经过干
旱锻炼的烟草植株GSH含量均显著高于未锻炼的
烟草植株, 经过5个循环的烟草植株GSH含量最高,
图1 循环干旱锻炼期间烟草幼苗叶片AsA (A)、AsA+DHA (B)、DHA (C)含量和AsA/(AsA+DHA)比值(D)的变化
Fig.1 Change of AsA (A), AsA+DHA (B) and DHA (C) contents and the ratio of AsA/(AsA+DHA) (D) in tobacco leaves during
the circular drought-hardening
植物生理学报708
高出对照118.1% (图4-A)。此外, 经过干旱锻炼的
烟草植株GSSG含量在干旱胁迫20 d后显著低于对
照组(图4-C)。总体而言, 干旱锻炼可提高烟草植
株在锻炼过程中以及后续干旱胁迫中GSH含量和
图2 干旱胁迫对干旱锻炼和未经锻炼(对照)的烟草植株叶片中AsA (A)、AsA+DHA (B)、DHA (C)含量
和AsA/(AsA+DHA)比值(D)的影响
Fig.2 Effect of drought stress on the contents of AsA (A), AsA+DHA (B) and DHA (C) and the ratio of AsA/(AsA+DHA) (D) in
leaves of the drought-hardening and control tobacco plants
图3 循环干旱锻炼期间烟草幼苗叶片GSH (A)、GSH+GSSG (B)、GSSG (C)含量和GSH/(GSH+GSSG)比值(D)的变化
Fig.3 Change of GSH (A), GSH+GSSG (B) and GSSG (C) contents and the ratio of GSH/(GSH+GSSG) (D) in tobacco leaves
during the circular drought-hardening
荣智媛等: 抗氧化系统参与循环干旱锻炼提高烟草植株抗旱性的形成 709
GSH/(GSH+GSSG)比值(图4-A、D)。
2 干旱锻炼及其移栽后的干旱胁迫对烟草植株叶
片中抗氧化酶活性的影响
超氧化物歧化酶(SOD)是植物抗氧化酶中的
关键一员, 其功能是将O2·ˉ歧化为H2O2 (Gill和Tuteja
2010; Badawi等2004; Alscher等2002)。如图5所示,
在干旱锻炼循环期间, 经干旱锻炼的烟草幼苗随
着循环次数的增加SOD活性是先上升后下降, 在5
个循环锻炼后达到最高值, 其烟草幼苗SOD活性
比对照高出52.7% (图5-A)。当对照和经过干旱锻
炼的烟草植株移栽还苗后继续进行干旱胁迫10 d
和20 d, 经干旱锻炼的植株SOD活性保持在较高水
平并显著高于未锻炼对照组(图5-B)。
抗坏血酸过氧化物酶(APX)被认为是解毒
H2O2的关键酶, 它通过催化抗坏血酸-谷胱甘肽循
环来发挥这一关键作用(Gill和Tuteja 2010; Jaleel等
2009; Ahmad等2008)。在干旱锻炼循环过程中, 经
干旱锻炼的烟草幼苗APX活性随锻炼次数的增加
图4 干旱胁迫对干旱锻炼和未经锻炼(对照)的烟草植株叶片中GSH (A)、GSH+GSSG (B)、GSSG (C)含量和
GSH/(GSH+GSSG)比值(D)的影响
Fig.4 Effect of drought stress on the contents of GSH (A), GSH+GSSG (B) and GSSG (C) and the ratio of GSH/(GSH+GSSG) (D)
in leaves of the drought-hardening and control tobacco plants
图5 循环干旱锻炼期间(A)及干旱胁迫期间(B)烟草叶片SOD活性变化
Fig.5 Changes of SOD activity in tobacco leaves during the circular drought-hardening (A) and following drought stress (B)
植物生理学报710
而升高, 经过5个循环干旱的烟草幼苗APX活性比
对照高出62.0% (图6-A)。当对照和经过干旱锻炼
的烟草植株移栽还苗后继续进行干旱胁迫10 d和
20 d, 经过干旱锻炼的烟草植株APX活性保持在较
高水平并除了3个循环的连续干旱20 d外均显著高
于未锻炼对照组(图6-B)。
过氧化氢酶(CAT)的功能是将胞内的H2O2直接
分解生成H2O (Gill和Tuteja 2010; Jaleel等2009)。
在干旱锻炼循环过程中经干旱锻炼的烟草幼苗
CAT活性随锻炼次数的增加先升高后降低, 经3个
循环锻炼的烟草幼苗CAT活性达到最高并比对照
高出33.4% (图6-C)。当对照和经过干旱锻炼的烟
草植株移栽还苗后继续进行干旱胁迫10 d和20 d,
CAT活性随胁迫时间的延长而降低, 但经干旱锻炼
植株的CAT活性均高于未锻炼组(图6-D)。
愈创木酚过氧化物酶(GPX)存在于细胞的多
个部位, 利用愈创木酚为电子供体清除H2O2 (Gill和
Tuteja 2010)。由图6-E可看出, 经干旱锻炼的烟草
幼苗GPX活性随锻炼次数的增加逐渐升高, 经7个
循环锻炼的幼苗GPX高出对照103.2% (图6-E)。当
对照和经过干旱锻炼的烟草植株移栽还苗后继续
进行干旱胁迫10 d和20 d, 在干旱胁迫过程中GPX
图6 循环干旱锻炼期间及干旱胁迫期间烟草叶片APX (A、B)、CAT (C、D)和GPX (E、F)活性变化
Fig.6 Changes of APX (A, B)、CAT (C, D) and GPX (E, F) activities in tobacco leaves during the circular drought-hardening and
following drought stress
荣智媛等: 抗氧化系统参与循环干旱锻炼提高烟草植株抗旱性的形成 711
活性随胁迫时间的延长而逐渐降低, 但经干旱锻
炼植株GPX活性均显著高于未锻炼组(图6-F)。
谷胱甘肽还原酶(GR)是植物谷胱甘肽-抗坏
血酸循环中重要的酶类, 可将GSSG还原为GSH
(Gill和Tuteja 2010)。GR在植物对逆境的适应中起
重要作用, 逆境胁迫初期常引发GR活性及相关基
因的快速上调(郭丽红等2006)。由图7可看出, 随
干旱循环次数的增加, 经干旱锻炼的烟草幼苗GR
活性逐渐升高, 在5个循环结束后GR活性高出对照
组51.0% (图7-A)。当对照和经过干旱锻炼的烟草
植株移栽还苗后继续进行干旱胁迫10 d和20 d, 经
干旱锻炼的烟草植株GR活性均高于对照组(图
7-B)。
3 干旱锻炼及其移栽后的干旱胁迫对烟草植株叶
片中MDA含量的影响
丙二醛(MDA)常被用来作为氧化胁迫导致的
脂质过氧化的指标(Gobel和Feussner 2009)。如图
8-A所示, 在干旱锻炼过程中, 经过干旱锻炼的烟
草幼苗MDA含量均低于对照组。当对照和经过干
旱锻炼的烟草植株移栽还苗后继续进行干旱胁迫
10 d和20 d, 经干旱锻炼的烟草植株MDA含量均低
于未锻炼组(图8-B)。
讨 论
干旱环境通常会引起植物活性氧(ROS)的产
生, 这些ROS一方面作为第二信使, 参与植物对逆
境的响应过程; 另一方面ROS在细胞内的积累会
导致氧化胁迫, 对生物膜造成损伤, 破坏DNA结构
等(Suzuki等2011; Møller和Sweetlove 2010)。当植
物遭受到干旱胁迫时, 植物体内发生一系列的生
理生化反应来抵御胁迫造成的伤害, 其中抗氧化
系统是抵御胁迫的关键环节。植物体内的抗氧化
图7 循环干旱锻炼期间(A)及干旱胁迫期间(B)烟草叶片GR活性变化
Fig.7 Changes of GR activity in tobacco leaves during the circular drought-hardening (A) and following drought stress (B)
图8 循环干旱锻炼期间(A)及干旱胁迫期间(B)烟草叶片MDA含量变化
Fig.8 Changes of MDA content in tobacco leaves during the circular drought-hardening (A) and following drought stress (B)
植物生理学报712
酶和小分子物质可以清除这些活性氧自由基, 对
干旱胁迫作出的适应性反应(Thapa等2011)。
植物体内参与抗氧化保护反应的酶类主要有
SOD、CAT、APX、GR等(Jaleel等2009; Navrot等
2007; 赵丽英等2005), 这些酶共同作用可将超氧阴
离子自由基及H2O2转化为H2O和O2, 缓解ROS导致
的氧化胁迫, 从而减轻干旱胁迫对植物造成的伤
害。植物在遭受到逆境胁迫时, 往往通过主动调
节抗氧化物质(AsA、GSH等)的含量和抗氧化酶
类(SOD、CAT、GR等)的活性来清除ROS, 抵御和
减缓其对细胞的伤害(Vaseva等2012; Faize等2011;
Yang等2008; 杜琳和张荃2008; Fazely等2007; Red-
dy 2004)。
已有一些研究表明, 短期的干旱锻炼可提高
植物的耐旱性(Luo等2011; 孙存华1999; 郭贤仕和
山仑1994), 但目前对抗氧化系统是否参与干旱锻
炼提高烟草抗旱性的过程未见报道。
研究结果表明, 本实验中所用的循环干旱锻
炼方法能显著提高烟草幼苗叶片抗氧剂AsA和
GSH含量、还原型抗氧化剂在总抗氧化剂中的比
例[AsA/(AsA+DHA)和GSH/(GSH+GSSG)] (图1、
3)和抗氧化酶SOD、CAT、APX、GPX、GR活性
(图5~7), 降低叶片MDA含量(图8)。当干旱锻炼过
的烟草植株遭受后续的干旱胁迫时, 与未锻炼的
对照相比, 其抗氧化剂含量、还原型抗氧化剂在
总抗氧化剂中的比例(图2、4)和抗氧化酶活性(图
5~7)普遍高于未锻炼组, 而MDA含量低于对照组
(图8), 表明经过干旱锻炼的烟草植株具有较高的
细胞抗氧化能力, 这种提高的细胞抗氧化能力有
助于植株在遭受后续的干旱胁迫时, 能及时清除
干旱胁迫诱导的ROS累积, 减缓和降低由干旱引起
的氧化胁迫及其所导致的伤害, 最终提高其抗旱
性。这些结果表明, 抗氧化系统在循环干旱锻炼
提高烟草抗旱性中发挥着重要作用。
参考文献
陈建勋, 王小峰(2002). 植物生理学实验指导. 广州: 华南理工大学
出版社, 124
陈润政, 黄上志, 宋松泉, 傅家瑞(1998). 植物生理学. 广州: 中山大
学出版社, 278~286
丁福章, 李继新, 袁有波, 雷波(2008). 烟草抗旱生理生化研究进展.
河北农业科学, 12 (3): 10~12
杜琳, 张荃(2008). 植物谷胱甘肽与抗氧化胁迫. 山东科学, 21 (2):
27~32
郭丽红, 陈善娜, 王德斌, 龚明(2006). 热激和热胁迫过程中玉米幼
苗谷胱甘肽还原酶活性和同工酶的变化. 云南大学学报(自然
科学版), 28 (3): 262~266
郭贤仕, 山仑(1994). 前期干旱锻炼对谷子水分利用效率的影响. 作
物学报, 20 (3): 352~356
黄国宾, 张晓海, 杨双龙, 李军营, 徐超华, 荣智媛, 杨利云, 龚明
(2012). 渗透调节参与循环干旱锻炼提高烟草植株抗旱性的
形成. 植物生理学报, 48: 465~471
柯学, 李军营, 李向阳, 邬春芳, 徐超华, 晋艳, 龚明(2011). 不同光
质对烟草叶片生长及光合作用的影响. 植物生理学报, 47 (5):
512~520
李忠光, 杜朝昆, 龚明(2003). 在单一提取系统中同时测定植物
ASA/DHA和GSH/GSSG. 云南师范大学学报, 23 (3): 67~70
李忠光, 李江鸿, 杜朝昆, 黄号栋, 龚明(2002). 在单一提取系统
中同时测定五种植物抗氧化酶. 云南师范大学学报, 22 (6):
45~48
农梦玲, 刘永贤, 李伏生(2008). 干旱胁迫对烟草生理生化特征影响
的研究进展. 广西农业科学, 39 (2): 155~159
孙存华(1999). 模拟干旱诱导对藜抗旱力的影响. 应用生态学报, 10
(1): 16~18
谭晓荣, 伏毅, 戴媛(2009). 干旱锻炼提高小麦幼苗抗旱性的抗氧化
机理研究. 作物杂志, (5): 19~23
曾少聪(2010). 生态人类学视野中的西南干旱——以云南旱灾为
例. 贵州社会科学, 251 (11): 24~28
赵丽英, 邓西平, 山仑(2005). 活性氧清除系统对干旱胁迫的响应机
制. 西北植物学报, 25 (2): 413~418
Aebi H (1984). Catalase in vitro. Methods Enzymol, 105: 121~126
Ahmad P, Sarwat M, Sharma S (2008). Reactive oxygen species, anti-
oxidants and signaling in plants. J Plant Biol, 51 (3): 167~173
Alscher RG, Erturk N, Heath L (2002). Role of superoxide dismutases
(SODs) in controlling oxidative stress in plants. J Exp Bot, 53
(372): 1331~1341
Ashraf M (2010). Inducing drought tolerance in plants: recent advanc-
es. Biotechnol Adv, 28: 169~183
Badawi GH, Yamauchi Y, Shimada E, Sasaki R, Kawanoa N, Tanaka
K, Tanaka K (2004). Enhanced tolerance to salt stress and wa-
ter deficit by overexpressing superoxide dismutase in tobacco
(Nicotiana tabacum) chloroplasts. Plant Sci, 166: 919~928
Bai LP, Sui FG, Ge TD, Sun ZH, Lu YY, Zhou GS (2006). Effect of
soil drought stress on leaf water status, membrane permeability
and enzymatic antioxidant system of maize. Pedosphere, 16 (3):
326~332
Bian SM, Jiang YW (2009). Reactive oxygen species, antioxidant en-
zyme activities and gene expression patterns in leaves and roots
of Kentucky bluegrass in response to drought stress and recov-
ery. Sci Hortic, 120: 264~270
Britton C, Maehly AC (1955). Assay of catalase and peroxidases. In:
Colowick SP, Kaplan NO (eds). Methods in Enzymology, Part 2.
New York: Academic Press, 764~775
Faize M, Burgos L, Faize L, Piqueras A, Nicolas E, Espin GB, More-
no MJC, Alcobendas R, Artlip T, Hernandez JA (2011). Involve-
ment of cytosolic ascorbate peroxidase and Cu/Zn-superoxide
dismutase for improved tolerance against drought stress. J Exp
荣智媛等: 抗氧化系统参与循环干旱锻炼提高烟草植株抗旱性的形成 713
Bot, 62: 2599~2613
Fazely F, Ghorbanli M, Niknam V (2007). Effect of drought on
biomass, protein content, lipid peroxidation and antioxidant en-
zymes in two sesame cultivars. Biol Plant, 51 (1): 98~103
Foyer CH, Noctor G (2005). Oxidant and antioxidant signalling in
plants: a re-evaluation of the concept of oxidative stress in a
physiological context. Plant Cell Environ, 28: 1056~1071
Gechev T, Gadjev I, Breusegem FV, Inzé D, Dukiandjiev S, Toneva V,
Minkov I (2002). Hydrogen peroxide protects tobacco from oxi-
dative stress by inducing a set of antioxidant enzymes. Cell Mol
Life Sci, 59: 708~714
Giannopolitis CN, Ries SK (1977). Superoxide dismutases: I. occur-
rence in higher plants. Plant Physiol, 59: 309~314
Gill SS, Tuteja N (2010). Reactive oxygen species and antioxidant
machinery in abiotic stress tolerance in crop plants. Plant Physiol
Biochem, 48: 909~930
Gobel G, Feussner I (2009). Methods for the analysis of oxylipins in
plants. Phytochemisty, 70: 1485~1503
Halliwell B, Foyer CH (1978). Properties and physiological function
of a glutathione reductase purified from spinach leaves by affin-
ity chromatography. Planta, 139: 9~17
Jaleel CA, Riadh K, Gopi R, Manivannan P, Ines J, Al-Juburi HJ,
Zhao CX, Shao HB, Panneerselvam R (2009). Antioxidant de-
fense responses: physiological plasticity in higher plants under
abiotic constraints. Acta Physiol Plant, 31: 427~436
Jiang MY, Zhang JH (2001). Effect of abscisic acid on active oxygen
species, antioxidative defense system and oxidative damage in
leaves of maize seedlings. Plant Cell Physiol, 42: 1265~1273
Langebartels C, Wohlgemuth H, Kschieschan S, Grün S, Sandermann
H (2002). Oxidative burst and cell death in ozone-exposed
plants. Plant Physiol Biochem, 40: 567~575
Luna CM, Pastori GM, Driscoll S, Groten K, Bernardand S, Foyer CH
(2004). Drought controls on H2O2 accumulation, catalase (CAT)
activity and CAT gene expression in wheat. J Exp Bot, 56 (411):
417~423
Luo YY, Zhao XY, Zhou RL, Zuo XA, Zhang JH, Li YQ (2011).
Physiological acclimation of two psammophytes to repeated soil
drought and rewatering. Acta Physiol Plant, 33: 79~91
Miller G, Shulaev V, Mittler R (2008). Recative oxygen signaling and
abiotic stress. Physiol Plant, 133: 481~489
Møller IM, Sweetlove LJ (2010). ROS signalling—specificity is re-
quired. Trends Plant Sci, 15 (7): 370~374
Nagalakshmi N, Prasad MNV (2001). Responses of glutathione
cycle enzymes and glutathione metabolism to copper stress in
Scenedesmus bijugatus. Plant Sci, 160: 291~299
Nakano Y, Asada K (1981). Hydrogen peroxide is scavenged by
ascorbate-specific peroxidase in spinach chloroplasts. Plant Cell
Physiol, 22: 867~880
Navrot N, Rouhier N, Gelhaye E, Jacquot JP (2007). Reactive oxygen
species generation and antioxidant systems in plant mitochon-
dria. Physiol Plant, 129: 185~195
Neumann PM (2008). Coping mechanisms for crop plants in drought-
prone environments. Ann Bot, 101: 901~907
Osipova SV, Permyakov AV, Permyakova MD, Pshenichnikova TA,
Borner A (2011). Leaf dehydroascorbate reductase and catalase
activity is associated with soil drought tolerance in bread wheat.
Acta Physiol Plant, 33: 2169~2177
Reddy AR, Chaitanya KV, Vivekanandan M (2004). Drought-induced
responses of photosynthesis and antioxidant metabolism in
higher plants. J Plant Physiol, 161 (11): 1189~1202
Suzuki N, Miller G, Morales J, Shulaev V, Torres MA, Mittler R
(2011). Respiratory burst oxidases: the engines of ROS signal-
ing. Curr Opin Plant Biol, 14: 691~699
Szalai G, Kellos T, Galiba G, Kocsy G (2009). Glutathione as an an-
tioxidant and regulatory molecule in plants under abiotic stress
conditions. J Plant Growth Regul, 28: 66~80
Thapa G, Dey M, Sahoo L, Panda SK (2011). An insight into the
drought stress induced alterations in plants. Biol Plant, 55 (4):
603~613
Vaseva I, Akiscan Y, Lyudmila SS, Kostadinova A, Nenkova R, An-
ders I, Feller U, Demirevska K (2012). Antioxidant response to
drought in red and white clover. Acta Physiol Plant, published on
line: 26 Feb.2012
Yang Y, Han C, Liu Q, Lin B, Wang JW (2008). Effect of drought and
low light on growth and enzymatic antioxidant system of Picea
asperata seedlings. Acta Physiol Plant, 30: 433~440