免费文献传递   相关文献

转录激活因子CBF 在植物调节冷驯化中的作用



全 文 :植物生理学通讯 第42卷 第3期,2006年6月 589
转录激活因子CBF 在植物调节冷驯化中的作用
任艳利1,2 崔百明1,2 卫海滨1 彭明1,*
1 中国热带农业科学院热带生物技术研究所,热带作物生物技术国家重点实验室,海口 571101;2 石河子大学生命科
学学院,新疆石河子 832003
Role of CBF in Regulating Cold Acclimation in Plants
REN Yan-Li1,2, CUI Bai-Ming1,2, WEI Hai-Bin1, PENG Ming1,*
1State Key Laboratory of Tropical Crop Biotechnology, Institute of Tropical Bioscience and Biotechnology, Chinese Academy
of Tropical Agricultural Sciences, Haikou 571101, China; 2College of Life Science, Shihezi University, Shihezi, Xinjiang 832003,
China
提要 某些植物经过一段时间的非冻低温作用后,抗冻性增强,这种现象称为冷驯化。CBF 转录激活因子在其中起关键
性的调节作用。最近,基因组学和代谢组学的研究表明,CBF 冷响应途径在植物低温响应中占主导地位。文章介绍相关
的研究进展。
关键词 CBF;冷驯化;CRT/DRE DNA 调控元件;抗冻
收稿 2005-11-21 修定  2006-03-08
资助 国家自然科学基金(30460114)。
*通讯作者(E-mail: mmpeng_2000@yahoo.com, Tel:
0898-66890981)。
低温冻(寒)害是农业生产中的一种严重的自然
灾害,是限制农作物的地理分布和造成农作物产
量和质量下降的因素之一(Thomashow 1999)。许
多植物经过一段时间的非冻低温作用后,抗冻性
增强,这种现象称为冷驯化(cold acclimation, CA)
(Guy 1990)。1985年,Guy等首次报道菠菜在冷
驯化过程中基因表达会发生改变以后,冷调控基
因(cold-regulated gene, COR)的克隆及其功能、表
达、调控遂成为研究热点(Hughes和Dunn 1996),
并因此促成在冷驯化中起关键作用的CRT/DRE结
合因子(C-repeat binding factor/dehydration-respon-
sive element binding protein, CBF/DREB1)家族的发
现(Medina等 1999)。在拟南芥中,CBF/DREB1通
过与 C RT ( C- r ep ea t ) (B aker 等 1 99 4 ) /D R E
(dehydration responsive element) (Yamaguchi-
Shinozaki和 Shinozaki 1994)元件的特异结合,调
节包括 COR15a、COR6.6、COR47和 COR78等
近 4 0 个低温响应基因的协同表达( F o w l e r 和
Thomashow 2002),产生一系列的生理生化反
应:脯氨酸合成增加,可溶性糖积累,并提高
拟南芥的抗冻能力(Gilmour等 2000)。
1 CBF基因家族
Stockinger等(1997)采用酵母单杂交方法从拟
南芥中分离出一个 cDNA 克隆,其编码一种转录
激活因子,能与 COR 基因启动子区的 CRT/ DRE
元件(Jiang等1996)特异结合,命名为CBF1 (CRT/
DRE binding factor 1) (Stockinger等1997)。1998
年,Gilmour 等又从拟南芥 cDNA 文库中鉴定出
CBF2 和 CBF3。与此同时,在另一个实验室中,
Liu 等(1998)独立鉴定出 5 种 DRE 蛋白,其中,
D R E B 1 b、c、a 分别对应于 C B F 1、2、3。3
个 CBF/DREB 基因连锁组成一个小型基因家族,
同向串连重复排列在拟南芥4号染色体的短臂上,
与分子标记m600和PG11紧密相连(图1) (Gilmour
等 1998)。2002 年,Haake 等鉴定出受干旱而非
低温诱导表达的CBF4,它位于5号染色体上,和
其它 3 个 CBF 基因相似,也是 COR 基因表达的一
个调节因子。
C B F 转录激活因子属于 A P 2 类转录因子
(Gilmour 等 1998;Liu 等 1998),其一级结构中
含有AP2 DNA 结合域、碱性核定位信号区和酸性
转录激活域(Kanaya 等 1999)。AP2 DNA 结合域,
由大约60个氨基酸残基组成,是迄今仅在植物蛋
白中发现的 DNA 结合基序,在其后半部的高度保
守核心区域能够形成亲水和亲脂性 a螺旋(Gao 等
2002),参与同其它转录因子及 DNA 间的相互作
用(Kanaya等 1999)。碱性核定位信号区位于N末
端区域,富含精氨酸和赖氨酸残基,CBF 转录激
植物生理学通讯 第42卷 第3期,2006年6月590
活因子进入细胞核的过程受该区域的控制。位于
C 末端的转录激活区酸性氨基酸含量较高,其 pI
在3.6~3.8之间,这一区域被认为在转录激活中起
主导作用。
但对CBF1 和 CBF2 的低温诱导特性影响不大,甚
至在低温处理 6~8 h 后 CBF2 的表达还有所增加,
说明不同 CBF 的低温诱导表达受不同调节因子的
调节,CBF 启动子中包含多个 MYC 和 MYB 的结
合位点,暗示可能存在 MYC 类和 MY B 类转录因
子的共同调节机制。
除了 MYC 类转录因子 ICE1 外,DEAD 盒蛋
白家族中的某些 R N A 解旋酶也参与低温响应过
程。拟南芥Los4-1突变体对冷害敏感,该突变体
的CBF 及其下游基因表达量均下降。超表达CBF3
可恢复突变体的抗寒性(Gong 等 2002)。LOS4 编
码一个 DEAD 盒蛋白家族中的 RNA 解旋酶,该酶
在 mRNA 从细胞核外运中起作用,并影响拟南芥
的发育和逆境胁迫反应(Gong等2005)。非常有趣
的是,LOS4的另一个突变体Los4-2 增加 CBF2 及
其下游基因的表达,并比野生型具有更强的抗冻
能力,但同时 Los4-2 对热敏感(Gong 等 2005)。
LOS4为组成型表达,Los4-1和 Los4-2均为单个
氨基酸的突变,但二者在相反的方向上改变拟南
芥对温度响应的基因表达,说明 RNA 解旋酶可能
在温度响应中起重要作用。到目前为止,还不清
楚 R N A 解旋酶是如何调节温度响应过程的,然
而,RNA 易形成二级结构,这种二级结构受温度
影响,因而使其可能起温度传感器的作用
(Johansson 等 2002)。RNA 解旋酶又可能通过对
RNA 二级结构的调节而改变植物对温度的响应反
应。
除 CBF4 受干早和 ABA 诱导表达外,CBF1、
2、3均受低温诱导表达(Knight等2004)。有趣的
是,温度快速下降并不是 C B F 诱导表达所必需
的。Zarka 等(2003)在梯度降温的实验中发现,
CBF 的表达量与绝对温度有关,温度越低,CBF
表达量越高,即 CBF 基因的表达需要的是低温程
度而不是降温过程。植物似乎可以精确地感知环
境温度,并严格控制对环境胁迫的响应程度。是
什么分子充当了温度传感器的作用?迄今知之甚
少。也许上述的 RNA 解旋酶对低温响应基因的调
控现象给我们对这问题的认识提出了一个值得思考
的方向。
与 COR 基因在低温下持续表达不同,CBF 受
低温诱导表达是瞬时的,将拟南芥从20℃移至4℃
图1 CBF基因和COR基因在拟南芥染色体
中的位置(Gilmour等1998)
2 CBF对抗冻基因的调控
CBF 通过与 CRT/DRE 顺式作用元件的结合激
活低温和脱水响应基因的表达,从而提高植物的
抗逆性。当拟南芥处于低温下时,CBF 基因的转
录水平能在15 min内迅速提高,2 h后含有CRT/
D R E 元件的一组 COR 基因得以表达,即 COR 基
因的表达包括一个低温信号转导过程(Thomashow
1999)。CBF 对低温的快速响应,说明 CBF 基因
的冷诱导表达无需新蛋白质的合成。Gilmour 等
(1998)推测,在正常温度下,植物体内存在一种
转录因子能识别 CBF 启动子,这一转录因子称为
CBF 表达诱导剂(inducer of CBF expression,
ICE)。2003 年,Chinnusamy 等首次分离到ICE1
基因。其编码一个类似 MYC 的 bHLH 转录激活因
子,能特异地与 CBF3 启动子中的 MYC 识别序列
结合。拟南芥 ice1 突变体抑制 CBF3 及其下游基
因的表达,ICE1 超表达转基因植株则能增强 CBF
调节子的表达。但ICE1如何调节CBF的表达尚不
清楚。常温下,ICE1 处于非活性状态;只有在
低温条件下,ICE1 才表现出对CBF 基因的转录活
性。ICE1的转录活性可能受磷酸化或去磷酸化作
用以及其它转录因子的调节( C h i n n u s a m y 等
2003)。尽管拟南芥ice1突变体抑制CBF3的表达,
植物生理学通讯 第42卷 第3期,2006年6月 591
3 h 后,CBF 转录水平达到最大值,随后显著下
降,说明 CBF 和 / 或其下游基因产物能反馈抑制
CBF 基因的表达。拟南芥 ice1 突变体抑制 CBF3
基因的表达,但在低温处理 6~8 h 后,CBF2 的
表达反而增加,间接反映了 CBF 家族内部有自我
抑制作用(Zarka等 2003)。拟南芥cbf2缺失突变
体出乎意料地具有更强的抗逆性,研究发现,突
变体中 CBF1 和 CBF3 及其下游基因的表达均高于
野生型拟南芥,说明 CBF2 是 CBF1 和 CBF3 的负
调节因子(Novillo等2004)。拟南芥翻译延伸因子
EF2的突变体los1-1在低温下丧失翻译蛋白质的能
力,不能诱导低温响应基因的表达,因而对冻害
敏感,但 CBF 在转录水平的表达则显著增强,表
明 CBF 的转录水平受其自身及其下游基因产物的
反馈抑制(Guo 等 2002)。
3 CBF低温响应途径在冷驯化中的主导地位
在 CA 过程中,CBF 激活大量 COR 基因的表
达,从而提高植物的抗冻能力。但遗传学分析表
明,C B F 途径并不是植物抗冻机制中的唯一系
统。拟南芥eskimo1 突变体比野生型具有更强的
抗冻性,但并不组成型表达 C O R 基因,说明突
变发生在CBF途径之外(Xin和 Browse 1998)。同
样特征的突变体还有ada2 (Vlachonasios等2003)。
近年来,基因组学和代谢组学的发展,使人
们能够更全面地了解 CBF 途径在植物抗冻中所起
的作用。Fowler 和 Thomashow (2002)采用 DNA
芯片分析了拟南芥 8 000 个基因对低温处理的反
应,发现低温响应基因有 306 个,其中转录上调
的有 218 个,下调的 88 个。41 个基因在 CBF 转
基因拟南芥中上调,其中30个基因同时受低温和
CBF 超表达所诱导,包括2个转录因子RAP2.1 和
RAP2.6,均属 CBF 调节子。至少有 28% 的低温
响应基因不受CBF调节,其中包含15个转录因子
基因,说明除 CBF 途径外,还存在多个低温调节
途径(Fowler和Thomashow 2002)。与代谢相关的
低温响应基因包括棉子糖家族寡糖(raffinose fam-
ily oligosaccharide, RFO)途径的AtGolS3基因、11
个与花青素代谢相关基因、7 个与细胞壁多糖有
关的基因、脯氨酸合成酶基因P5CS 等。AtGolS3
和 P5CS 同时也在 CBF 转基因拟南芥中高表达。
RFO途径的 AtGolS3 和脯氨酸合成酶基因P5CS 的
高表达可以分别用来解释果糖、葡萄糖、半乳
糖、蔗糖、蜜二糖、棉子糖等寡糖和脯氨酸的
积累(Gilmour等2000),这些细胞相容物质具有冰
晶保护作用。
最近,Vogel等(2005)使用包含了24 000个拟
南芥基因探针的“Affymetrix GeneChip®”,再次研
究了拟南芥低温响应转录本,发现有 514 个基因
对低温响应,其中,302 个表达上调,212 个下
调。85 个低温诱导基因和 8 个低温抑制基因受
CBF2 调节,占低温响应基因的 18%,高于此前
12% 的报道。值得关注的是,受低温诱导高表达
(大于15倍)的25个基因中,有19个(84%)受CBF2
诱导,另有 2 个(18%)受 CBF2 和 ZAT12 共同诱
导,即 92% 的低温诱导高表达基因属于 CBF2 和
ZAT12调节子(Vogel等 2005)。
Cook 等(2004)比较了抗冻性有明显差别的2
个拟南芥生态型——Wassilewskija-2 (Ws-2)和Cape
Verde Islands-1 (Cvi-1)在低温处理时物质代谢的变
化。在测试的 434 个代谢物中,有 325 个(75%)
在抗性较强的 Ws-2 中含量增加,其中有 256 个
(79%)在常温下的转CBF 基因的 Ws-2 中增加;有
269个在抗性较差的Cvi-1中含量增加,其中244
个(91%)在低温下的Ws-2 中也增加。尽管大多数
在低温下含量增高的代谢物同时也出现在Ws-2和
Cvi-1中,但有30% (96个)代谢物在Cvi-1的积累
水平是低于Ws-2的,其中83% (80个)在 CBF3超
表达时积累,这包括 RFO 途径的蜜二糖、肌醇、
果糖、葡萄糖和蔗糖,以及 P5CS 基因相关的脯
氨酸。基因表达分析的结果表明,Cvi-1 中 CBF
及其下游基因 COR15a、COR78、AtGolS3 的表
达量明显低于Ws-2,而非 CBF 途径的 3个冷响应
基因 —— 蔗糖合成酶基因(SuSy)、苯丙氨酸解氨
酶基因(PAL2)和查尔酮合成酶基因(ChS)的表达量
与 Ws-2 相当。因此,认为 Cvi-1 抗冻能力下降
可能是 CBF 表达较弱所致。CBF 途径在 CA 过程
中占据主导地位(Cook 等 2004)。
4 CBF低温响应途径的广泛存在
CB F 广泛存在于各种植物中,这包括大麦、
苜蓿、葡萄、油菜等可冷驯化的植物以及水稻、
玉米、番茄、橡胶等热带起源的不可冷驯化的植
物(Jaglo 等 2001)。与拟南芥相似,油菜的 CBF
植物生理学通讯 第42卷 第3期,2006年6月592
基因和 COR 基因(Bn115)也受低温诱导表达,超
表达拟南芥 CBF 基因可以诱导 Bn115 的表达,并
提高油菜的抗冻能力,说明油菜在功能上有与拟
南芥类似的CBF低温响应途径(Jaglo等2001)。已
知的番茄 CBF 基因有 3 个,和拟南芥一样,3 个
基因串联排列成一簇,但只有 LeCBF1 是低温诱
导表达的。超表达 LeCBF1 同样可以激活 COR 基
因的表达,并提高转基因拟南芥的抗冻能力,说
明LeCBF1和 AtCBFs是同功的,但超表达LeCBF1
和AtCBF3并不能提高番茄的抗冻能力。分析8700
个番茄基因时发现,受LeCBF1 和 AtCBF3 诱导表
达超过2.5倍的仅有4个基因,其中3个属CBF调
节子,包括 2 个脱水素基因和 1 个可能编码蛋白
酶抑制剂的基因,而属拟南芥 CBF 调节子的棉子
糖合成酶、脯氨酸合成酶和转录因子RAP2.1均不
在番茄 CBF 调节子之列。说明番茄同样具有 CBF
途径,但与拟南芥的有较大区别(Zhang等2004)。
5 用CBF转录激活因子提高作物抗逆性
植物的抗逆性属于复杂的数量性状,是多种
抗逆机制共同作用的结果,用单一的功能基因转
化植物,难以达到理想效果。而逆境调节的转录
因子能够激活大量抗逆功能基因的表达,产生一
系列代谢和发育上的表型变化,从而提高植物的
抗冻、耐旱和耐盐特性。由于 C B F 及其调节子
广泛存在于各类作物中,并在植物冷适应性反应
中起着类似开关的关键作用,因此,通过转单个
CBF 基因就有可能同时表达一组抗性基因,从而
提高作物的抗冻性(Kasuga等1999)。除了低温耐
性外,CBF 转录激活因子过量表达也增强了某些
植物对干旱和高盐胁迫的抗性(表 1)。
CBF 过量表达在转基因作物中引发了广泛的
生理变化:蔗糖、棉子糖、果糖、葡萄糖以及
脯氨酸等细胞相容性物质积累;产生多种晚期胚
胎丰富蛋白(late embryogenesis abundant,LEA)和
亲水多肽(Jaglo等2001); 过氧化氢含量下降(Hsieh
等 2002a,b); 促进叶绿体发育,增强光合作用
和糖代谢效率(Savitch等2005)等。这些生理变化
被认为与非生物胁迫抗性有关。
超量表达 C B F 基因在提高作物抗逆性的同
时,也普遍存在转基因作物生长发育受阻、植株
矮化及减产等问题。使用胁迫诱导型启动子或中
等强度的启动子可能是有效解决该问题的方法之
一。例如,CBF3 基因在胁迫诱导型 RD29a 基因
的启动子控制下,可在拟南芥和烟草中诱导表达
(Kasuga 等 1999,2004;押辉远等2005),转基
因拟南芥的抗冻和抗旱能力均有所提高,而生长
发育受到的影响十分轻微。然而,除表达强度
外,最近的报道表明,CBF 在影响植物发育方面
尚存在其它不明机制。Hsieh等(2002a,b)报道,
赤霉素可恢复转AtCBF3番茄的正常生长表型而不
影响其获得的抗性。Oh 等(2005)报道 AtCBF3 在
水稻中呈组成型表达而无发育迟滞的状况。
6 结语
CBF 在植物冷驯化过程中起关键性的调节作
用,深入研究 CBF 低温响应途径对揭示植物抗冻
机制有重要意义。CBF 广泛存在于各种高等植物
表1 转CBF转录激活因子的抗逆基因工程
基因名称 基因来源 转基因植物 研究方法 性状 参考文献
CBF1、DREB1a (CBF3) 拟南芥 拟南芥 超表达;胁迫 抗冻、抗旱、耐盐 Jaglo-Ottosen等1998; Liu等 1998;
诱导表达 Haake等 2002; 押辉远等 2005
C B F 1 、C B F 2 、C B F 3 拟南芥 油菜 超表达 抗冻、抗旱 Jaglo等2001
C B F 1 拟南芥 番茄 超表达 抗旱、抗寒、抗氧化胁迫 Hsieh等2002a, b; Lee等2003
C B F 1 拟南芥 草莓 超表达 抗冻 Owens 等 2002
Z m C B F 玉米 玉米 超表达 抗冻 Chaiappetta 2002
DREB1a (CBF3) 拟南芥 小麦 超表达 抗旱 Pellegrineschi等2002
Os DR EB 1A 水稻 拟南芥 超表达 抗冻、抗旱、耐盐 Dubouzet 等 2003
DREB1a (CBF3) 拟南芥 烟草 超表达;胁迫 抗旱、抗寒 Kasuga 等 2004
诱导表达
CBF/DREB1 油菜 油菜 超表达 抗冻 Savitch等2005
C B F 3 拟南芥 水稻 超表达 抗非生物胁迫 Oh 等 2005
植物生理学通讯 第42卷 第3期,2006年6月 593
中,包括抗冻和不抗冻植物,因此,通过比较
CBF 途径在这两类植物中的区别,可以更深刻地
理解植物抗冻 / 寒的分子机制。转录组学、代谢
组学和生物信息学等高通量的分析方法使该研究成
为现实。
已有研究证明,许多代谢途径属于 CBF 调节
子。除了与抗性相关的途径外,某些与发育相关
途径可能也在其中。对 CBF 调节子的全面理解将
使我们在提高作物抗逆性的同时,可最大程度地
降低 CBF 在发育中带来的负作用。
参考文献
押辉远, 秦广雍, 霍裕平(2005). Prd29A及DREB1A的克隆和干
旱诱导型植物表达载体的构建与鉴定. 植物生理学通讯, 41
(3): 371~375
Baker SS, Wilhelm KS, Thomashow MF (1994). The 5 region of
Arabidopsis thaliana cor15a has cis acting elements that
confer cold, drought and ABA regulated gene expression.
Plant Mol Biol, 24: 701~713
Chaiappetta L (2002). Ottenimento di piante transegniche di
mais tolleranti al freddo [PhD thesis]. Bologna, Italy: Uni-
versity of Bologna
Chinnusamy V, Ohta M, Kanrar S, Lee BH, Hong X, Agarwal M,
Zhu JK (2003). ICE1: a regulator of cold-induced
transcriptome and freezing tolerance in Arabidopsis. Genes
Dev, 17 (8): 1043~1054
Cook D, Fowler S, Fiehn O, Thomashow MF (2004). A promi-
nent role for the CBF cold response pathway in configuring
the low-temperature metabolome of Arabidopsis. Proc Natl
Acad Sci USA, 101 (42): 15243~15248
Dubouzet JG, Sakuma Y, Ito Y, Kasuga M, Dubouzet EG, Miura S,
Seki M, Shinozaki K, Yamaguchi-Shinozaki K (2003). OsDREB
genes in rice, Oryza sativa L., encode transcription activators
that function in drought-, high-salt- and cold-responsive gene
expression. Plant J, 33: 751~763
Fowler S, Thomashow MF (2002). Arabidopsis transcriptome
profiling indicates that multiple regulatory pathways are
activated during cold acclimation in addition to the CBF
cold response pathway. Plant Cell, 14: 1675~1690
Gao MJ, Allard G, Byass L, Flanagan AM, Singh J (2002). Regula-
tion and characterization of four CBF transcription factors
from Brassica napus. Plant Mol Biol, 49: 459~471
Gilmour SJ, Sebolt AM, Salazar MP, Everard JD, Thomashow MF
(2000). Overexpression of the Arabidopsis CBF3 transcrip-
tional activator mimics multiple biochemical changes asso-
ciated with cold acclimation. Plant Physiol, 124 (4):
1854~1865
Gilmour SJ, Zarka DG, Stockinger EJ, Salazar MP, Houghton JM,
Thomashow MF (1998). Low temperature regulation of the
Arabidopsis CBF family of AP2 transcriptional activators as
an early step in cold-induced COR gene expression. Plant J,
16 (4): 433~442
Gong Z, Dong CH, Lee H, Zhu JH, Xiong L, Gong D, Stevenson
B, Zhu JK (2005). A DEAD box RNA helicase is essential for
mRNA export and important for development and stress
responses in Arabidopsis. Plant Cell, 17: 256~267
Gong Z, Lee H, Xiong L, Jagendorf A, Stevenson B, Zhu JK (2002).
RNA helicase-like protein as an early regulator of transcrip-
tion factors for plant chilling and freezing tolerance. Proc
Natl Acad Sci USA, 99: 11507~11512
Guo Y, Xiong L, Ishitani M, Zhu JK (2002). An Arabidopsis
mutation in translation elongation factor 2 causes superin-
duction of CBF/DREB1 transcription factor genes but blocks
the induction of their downstream targets under low
temperatures. Proc Natl Acad Sci USA, 99 (11): 7786~7791
Guy CL (1990). Cold acclimation and freezing stress tolerance:
role of protein metabolism. Annu Rev Plant Physiol Plant
Mol Biol, 41: 187~223
Guy CL, Niemi KJ, Brambl R (1985). Altered gene expression
during cold acclimation of spinach. Proc Natl Acad Sci USA,
82 (11): 3673~3677
Haake V, Cook D, Riechmann JL, Pineda O, Thomashow MF,
Zhang JZ (2002). Transcription factor CBF4 is a regulator
of drought adaptation in Arabidopsis. Plant Physiol, 130
(2): 639~648
Hsieh TH, Lee JT, Charng YY, Chan MT (2002a). Tomato plants
ectopically expressing Arabidopsis CBF1 show enhanced
resistance to water deficit stress. Plant Physiol, 130: 618~626
Hsieh TH, Lee JT, Yang PT, Chiu LH, Charng YY, Wang YC,
Chan MT (2002b). Heterology expression of the Arabidopsis
C-repeat/dehydration response element binding factor 1 gene
confers elevated tolerance to chilling and oxidative stresses
in transgenic tomato. Plant Physiol, 129: 1086~1094
Hughes MA, Dunn MA (1996). The molecular biology of plant
acclimation to low temperature. J Exp Bot, 47: 291~305
Jaglo KR, Kleff S, Amundsen KL, Zhang X, Haake V, Zhang JZ,
Deits T, Thomashow MF (2001). Components of the
Arabidopsis C-repeat/dehydration-responsive element bind-
ing factor cold-response pathway are conserved in Brassica
napus and other plant species. Plant Physiol, 127 (3):
910~917
Jaglo-Ottosen KR, Gilmour SJ, Zarka DG, Schabenberger O,
Thomashow MF (1998). Arabidopsis CBF1 overexpression
induces COR genes and enhances freezing tolerance. Science,
280: 104~106
Jiang C, Iu B, Singh J (1996). Requirement of a CCGAC cis-acting
element for cold induction of the BN115 gene from winter
植物生理学通讯 第42卷 第3期,2006年6月594
Brassica napus. Plant Mol Biol, 30 (3): 679~684
Johansson J, Mandin P, Renzoni A, Chiaruttini C, Springer M,
Cossart P (2002). An RNA thermosensor controls expres-
sion of virulence genes in Listeria monocytogenes. Cell, 110:
551~561
Kanaya E, Nakajima N, Morikawa K, Okada K, Shimura Y (1999).
Characterization of the transcriptional activator CBF1 from
Arabidopsis thaliana. Evidence for cold denaturation in
regions outside of the DNA binding domain. J Biol Chem,
274 (23): 16068~16076
Kasuga M, Liu Q, Miura S, Yamaguchi-Shinozaki K, Shinozaki K
(1999). Improving plant drought, salt, and freezing toler-
ance by gene transfer of a single stress-inducible transcrip-
tion factor. Nat Biotechnol, 17: 287~291
Kasuga M, Miura S, Shinozaki K, Yamaguchi-Shinozaki K (2004).
A combination of the Arabidopsis DREB1A gene and stress-
inducible rd29A promoter improved drought- and low-tem-
perature stress tolerance in tobacco by gene transfer. Plant
Cell Physiol, 45 (3): 346~350
Knight H, Zarka DG, Okamoto H, Thomashow MF, Knight MR
(2004). Abscisic acid induces CBF gene transcription and
subsequent induction of cold-regulated genes via the CRT
promoter element. Plant Physiol, 135: 1710~1717
Lee JT, Prasad V, Yang PT, Wu JF, Ho THD, Charng YY, Chan
MT (2003). Expression of Arabidopsis CBF1 regulated by an
ABA/stress promoter in transgenic tomato confers stress
tolerance without affecting yield. Plant Cell Environ, 26:
1181~1190
Liu Q, Kasuga M, Sakuma Y, Abe H, Miura S, Yamaguchi-Shinozaki
K, Shinozaki K (1998). Two transcription factors, DREB1
and DREB2, with an EREBP/AP2 DNA binding domain sepa-
rate two cellular signal transduction pathways in drought-
and low-temperature-responsive gene expression,
respectively, in Arabidopsis. Plant Cell, 10: 1391~1406
Medina J, Bargues M, Terol J, Perez-Alonso M, Salinas J (1999).
The Arabidopsis CBF gene family is composed of three genes
encoding AP2 domain-containing proteins whose expres-
sion is regulated by low temperature but not by abscisic acid
or dehydration. Plant Physiol, 119 (2): 463~470
Novillo F, Alonso JM, Ecker JR, Salinas J (2004). CBF2/DREB1C
is a negative regulator of CBF1/DREB1B and CBF3/DREB1A
expression and plays a central role in stress tolerance in
Arabidopsis. Proc Natl Acad Sci USA, 101 (11): 3985~3990
Oh SJ, Song SI, Kim YS, Jang HJ, Kim SY, Kim MJ, Kim YK, Nahm
BH, Kim JK (2005). Arabidopsis CBF3/DREB1A and ABF3
in transgenic rice increased tolerance to abiotic stress without
stunting growth. Plant Physiol, 138: 341~351
Owens CL, Thomashow MF, Hancock JF, Iezzoni AF (2002).
CBF1 orthologs in sour cherry and strawberry and the heter-
ologous expression of CBF1 in strawberry. J Am Soc Hortic
Sci, 127: 489~494
Pellegrineschi A, Ribaut JM, Trethowan R, Yamaguchi-Shinozaki
K, Hoisington D (2002). Progress in the genetic engineering
of wheat for water-limited conditions. JIRCAS Working
Report, 55~60
Savitch LV, Allard G, Seki M, Robert LS, Tinker NA, Huner NA,
Shinozaki K, Singh J (2005). The effect of overexpression
of two Brassica CBF/DREB1-like transcription factors on
photosynthetic capacity and freezing tolerance in Brassica
napus. Plant Cell Physiol, 46 (9): 1525~1539
Stockinger EJ, Gilmour SJ, Thomashow MF (1997). Arabidopsis
thaliana CBF1 encodes an AP2 domain-containing tran-
scriptional activator that binds to the C-repeat/DRE, a cis-
acting DNA regulatory element that stimulates transcrip-
tion in response to low temperature and water deficit. Proc
Natl Acad Sci USA, 94 (3): 1035~1040
Thomashow MF (1999). Plant cold acclimation: freezing toler-
ance genes and regulatory mechanisms. Annu Rev Plant
Physiol Plant Mol Biol, 50: 571~599
Vlachonasios KE, Thomashow MF, Triezenberg SJ (2003). Dis-
ruption mutations of ADA2b and GCN5 transcriptional adap-
tor genes dramatically affect Arabidopsis growth,
development, and gene expression. Plant Cell, 15: 626~638
Vogel JT, Zarka DG, Van Buskirk HA, Fowler SG, Thomashow
MF (2005). Roles of the CBF2 and ZAT12 transcription
factors in configuring the low temperature transcriptome of
Arabidopsis. Plant J, 41 (2): 195~211
Xin Z, Browse J (1998). Eskimo1 mutants of Arabidopsis are
constitutively freezing-tolerant. Proc Natl Acad Sci USA,
95: 7799~7804
Yamaguchi-Shinozaki K, Shinozaki K (1994). A novel cis-acting
element in an Arabidopsis gene is involved in responsiveness
to drought, low-temperature, or high-salt stress. Plant Cell,
6 (2): 251~264
Zarka DG, Vogel JT, Cook D, Thomashow MF (2003). Cold
induction of Arabidopsis CBF genes involves multiple ICE
(inducer of CBF expression) promoter elements and a cold-
regulatory circuit that is desensitized by low temperature.
Plant Physiol, 133 (2): 910~918
Zhang X, Fowler S, Cheng H, Lou Y, Rhee SY, Stockinger EJ,
Thomashow MF (2004). Freezing-sensitive tomato has a
functional CBF cold response pathway, but a CBF regulon that
differs from that of freezing-tolerant Arabidopsis. Plant J,
39 (6): 905~919