全 文 :植物保护学报 Journal of Plant Protectionꎬ 2015ꎬ 42(5): 770 - 776 DOI: 10 13802 / j. cnki. zwbhxb. 2015 05 011
基金项目: 西南科技大学科研基金项目(11zx7113)ꎬ四川省攻关项目(2011NZ0098 ̄3)
∗通讯作者(Author for correspondence)ꎬ E ̄mail: yangszh@ 126. com
收稿日期: 2014 - 09 - 08
抗条锈病小麦种质 WS4 ̄8 的抗性鉴定及遗传
杨随庄1ꎬ2∗ 王 炜3 曹世勤4 杨仕雷1ꎬ2 黄可兵1ꎬ2 刘光辉2
(1.西南科技大学小麦研究所ꎬ 四川 绵阳 621010ꎻ 2.西南科技大学生命科学与工程学院ꎬ 四川 绵阳 621010ꎻ
3.甘肃省农业科学院生物技术研究所ꎬ 兰州 730070ꎻ 4.甘肃省农业科学院植物保护研究所ꎬ 兰州 730070)
摘要: 为明确小麦体细胞无性系 4 ̄8(WS4 ̄8)抗条锈病的遗传稳定性及抗性遗传特点ꎬ采用基因推
导、抗性鉴定、遗传分析等方法对其进行了抗条锈性的鉴定和等位性分析ꎮ 结果表明ꎬWS4 ̄8 所携
带的抗性基因与已知抗性基因不同ꎻWS4 ̄8 的条锈病抗性表现优异ꎬ遗传稳定ꎻ用 CY33 小种对
WS4 ̄8 和铭贤 169 的正交、反交组合 F1 和 F2 代植株人工接种鉴定表明ꎬF1 全部抗病ꎬF2 群体符合
3R ∶ 1S单基因控制的抗性遗传规律ꎬWS4 ̄8 对 CY33 的抗性由 1 对显性核基因控制ꎻ用 CY33 对
WS4 ̄8 分别与 Yr5 / 6 × AvocetS、Yr10 / 6 × AvocetS、Yr15 / 6 × AvocetS 及 92R137(Yr26)组配的杂交组
合 F1 及 F2 代植株人工接种鉴定表明ꎬF1 全部抗病ꎬ而 F2 中有感病植株ꎬ说明WS4 ̄8 所携带的抗条
锈病基因与 Yr5、Yr10、Yr15、Yr26 不等位ꎮ 研究表明ꎬWS4 ̄8 的抗条锈性是由 1 对显性核基因控制ꎬ
与已知抗性基因不同ꎬ可能是一个新的抗条锈病基因ꎮ
关键词: 小麦种质ꎻ 小麦体细胞无性系 4 ̄8(WS4 ̄8)ꎻ 抗条锈病鉴定ꎻ 遗传分析
Identification and genetic analysis of resistance to stripe rust
in wheat germplasm WS4 ̄8
Yang Suizhuang1ꎬ2∗ Wang Wei3 Cao Shiqin4 Yang Shilei1ꎬ2 Huang Kebing1ꎬ2 Liu Guanghui2
(1. Wheat Research Instituteꎬ Southwest University of Science and Technologyꎬ Mianyang 621010ꎬ Sichuan Provinceꎬ Chinaꎻ
2. College of Life Science and Engineeringꎬ Southwest University of Science and Technologyꎬ Mianyang 621010ꎬ
Sichuan Provinceꎬ Chinaꎻ 3. Institute of Biotechnologyꎬ Gansu Academy of Agricultural Sciencesꎬ
Lanzhou 730070ꎬ Gansu Provinceꎬ Chinaꎻ 4. Institute of Plant Protectionꎬ Gansu Academy of
Agricultural Sciencesꎬ Lanzhou 730070ꎬ Gansu Provinceꎬ China)
Abstract: Gene postulationꎬ resistance identification and genetic analysis were applied to study the
genetic stability and characteristics of the resistance to stripe rust in wheat somaclone 4 ̄8 (WS4 ̄8). The
results showed that the gene with the resistance to stripe rust conferred by WS4 ̄8 was different from any
other known genes so farꎬ and the resistance was outstanding and stableꎻ the genetic analysis and allelism
test were conducted by inoculating all of the following materials with Chinese PST race CY33 at seedling
stage. The F1ꎬ F2 and BC1 populations constructed on the basis of hybridization between WS4 ̄8 and a
susceptible wheat line Mingxian 169ꎬ as well as their male and female parentsꎻ the F1 and F2 populations
constructed on the basis of hybridization of WS4 ̄8 with Yr5 / 6 × AvocetSꎬ Yr10 / 6 × AvocetSꎬ Yr15 / 6 ×
AvocetS and 92R137(Yr26)ꎬ respectively. The resistance to CY33 in WS4 ̄8 was controlled by a single
dominant nucleus geneꎬ and the resistance gene in WS4 ̄8 was different from one of the known genes Yr5ꎬ
Yr10ꎬ Yr15 and Yr26 based on the allelism test. The gene in WS4 ̄8 might be a novel gene for stripe rust
resistance.
Key words: wheat germplasmꎻ wheat somaclone4 ̄8 (WS4 ̄8)ꎻ identification of stripe rust resistanceꎻ
genetic analysis
小麦条锈病是由小麦条形柄锈菌(Puccinia stri ̄
iformis f. sp. tritici)引起的世界性小麦病害ꎬ是我国
小麦生产中的主要病害ꎬ选育和种植抗病品种是防
治该病最经济有效且保护环境的措施 ( Stubbsꎬ
1985ꎻ李振岐和曾士迈ꎬ2002)ꎮ 抗源基因资源的发
掘、研究和利用是进行抗条锈病品种选育的基础ꎮ
小麦抗条锈病育种史是抗条锈病种质资源(基
因)利用的更迭与条锈菌生理小种频繁变异的竞赛
史ꎮ 多年来ꎬ各学者通过系谱分析、抗性鉴定、基因
推导、遗传分析和标记定位等方法分析了 100 多个
小麦抗条锈病基因(包括正式命名和暂时命名)ꎬ其
中大部分来自普通小麦ꎬ少部分来自小麦野生近缘
属ꎬ这些基因的抗性类型分为 2 类ꎬ一类属于全生育
期抗性ꎬ另一类属于成株期抗性ꎬ前者表现为质量性
状的遗传特点ꎬ后者表现为数量性状的遗传特点
(任妍ꎬ2012)ꎬ其中有些基因应用于小麦抗条锈病
品种改良ꎬ育成的抗条锈病品种在生产上已得到推
广应用ꎬ为小麦生产作出了贡献(杨作民ꎬ2003ꎻ何
中虎等ꎬ2011)ꎮ 近年来ꎬ虽然利用抗病种质资源培
育出一大批抗病品种已在生产上推广应用ꎬ但通过
抗病性鉴定及检测发现ꎬ不同小麦品种中都具有相
同或相近的抗性基因ꎬ主要集中在 92R 系 (携带
Yr26)、贵农系以及少数携带 Yr24 的 CIMMYT(国际
玉米小麦改良中心ꎬ International Maize and Wheat
Improvement Center)种质上ꎬ并且这些抗源基因资
源在条锈病的不同流行区同时使用ꎬ从而加快小麦
条锈菌定向选择和品种抗病性丧失的速度ꎬ为条锈
病的再次流行带来隐患ꎬ对小麦生产造成严重威胁
(李峰奇等ꎬ2008ꎻ韩德俊等ꎬ2010)ꎮ 因此ꎬ不断发
掘、鉴定、筛选、研究和利用抗条锈病基因资源ꎬ增加
抗条锈病基因资源的丰富度ꎬ是小麦种质资源和育
种研究的一项基本战略性课题ꎬ对于改良小麦品种
抗性基因单一化和抗病基因的合理布局具有重要
意义ꎮ
体细胞无性系变异是植物组织培养过程中的一
种普遍现象ꎬ已从组织培养再生植株及其后代的形
态(Larkin et al. ꎬ1984ꎻ叶兴国等ꎬ1998)、生理生化、
分子水平(杨随庄等ꎬ2007)上得到验证ꎮ 然而ꎬ这
些研究主要集中在对经过多年田间鉴定筛选而育成
遗传稳定的品种(系)ꎬ对变异性状的遗传基础缺乏
进一步深入研究ꎮ WS4 ̄8 是利用体细胞无性系变异
方法获得的再生植株ꎬ通过田间诱发鉴定选择而育
成的抗条锈病种质材料ꎬ经人工接种鉴定ꎬWS4 ̄8 对
CY33 等条锈菌生理小种(或致病类型)抗性良好ꎮ
本试验在已有的研究基础上(杨随庄等ꎬ2008)ꎬ进
一步对 WS4 ̄8 进行抗性鉴定和遗传研究ꎬ以期为利
用体细胞无性系变异方法创制抗条锈病小麦种质资
源提供科学依据ꎬ为小麦抗条锈病基因资源提供新
途径ꎬ并为利用该材料进行抗条锈病育种提供理论
指导ꎮ
1 材料与方法
1 1 材料
供试小麦品种:感病品种永良 4 号、感病对照品
种铭贤 169、抗病品种 WS4 ̄8、92R137(Yr26)及各杂
交组合世代材料均来自西南科技大学小麦研究所ꎻ
抗病品种 Yr5 / 6 × AvocetS、 Yr10 / 6 × AvocetS 及
Yr15 / 6 × AvocetS均由四川省农业科学院作物研究
所蒲宗君博士惠赠ꎻ用于基因推导分析的 28 个已知
抗小麦条锈病基因载体品种及 26 个不同毒性小麦
条锈菌生理小种(致病类型)均来自中国农业科学
院植物保护研究所麦类作物病害组ꎻ条锈病诱发鉴
定所用的条锈菌生理小种及致病类型主要有 CY33、
CY32、CY31、CY29、Su11 ̄4、 Su11 ̄7、Hy ̄8、 Su11 ̄11、
Su11 ̄13 等混合菌ꎬ均由甘肃省农业科学院植物保
护研究所提供ꎻ用于遗传分析的小麦条锈菌生理小
种 CY33 来自西北农林科技大学植物保护学院ꎮ
1 2 方法
1 2 1 苗期抗锈性接种鉴定
将 WS4 ̄8、永良 4 号、铭贤 169、WS4 ̄8 与铭贤
169 的杂交组合(F1、F2 及 BC1)、用于基因推导分析
的 28 个已知抗小麦条锈病基因载体品种及 WS4 ̄8
分别与 Yr5 / 6 × AvocetS、Yr10 / 6 × AvocetS、Yr15 / 6 ×
AvocetS及 92R137(Yr26)杂交的 F1 及 F2 代种子播
种于直径 10 cm、高 8 cm 塑料花盆内ꎬ播前 20 d 在
铭贤 169 上繁殖试验所需的条锈菌生理小种(或致
病类型)ꎬ播种后置于温度为 12 ~ 15℃的室温中
培养ꎮ
待小麦苗长至一心一叶期ꎬ用接种针将新鲜的
CY33 条锈菌生理小种孢子(纯化的条锈菌种与滑
石粉按 1 ∶ 20 均匀混合)轻涂于 WS4 ̄8、铭贤 169、
WS4 ̄8 与铭贤 169 的杂交组合( F1、F2 及 BC1 )及
1775 期 杨随庄等: 抗条锈病小麦种质 WS4 ̄8 的抗性鉴定及遗传
WS4 ̄8 分别与 Yr5 / 6 × AvocetS、 Yr10 / 6 × AvocetS、
Yr15 / 6 × AvocetS 及 92R137(Yr26)杂交的 F1 及 F2
代的叶片正面ꎬ将新鲜的 26 个不同毒性小麦条锈菌
生理小种(致病类型)孢子分别轻涂在 WS4 ̄8、永良
4 号、铭贤 169 及 28 个已知抗小麦条锈病基因载体
品种的叶片正面ꎮ 接种后ꎬ将幼苗放入保湿桶中ꎬ在
10℃下结露暗培养 24 h后取出置于光周期为 16 L∶
8 D、光照强度为 90 ~ 144 μmolm - 2s - 1、白天温度
为 15 ~ 18℃、夜晚为 10 ~ 14℃、相对湿度为 70%的
温室中培养 15 ~ 20 dꎬ待铭贤 169 充分发病后ꎬ调查
记载各单株的条锈病反应型ꎮ 反应型鉴定依据 6 级
标准进行记载(张小娟ꎬ2008)ꎬ即 0、0ꎻ、1、2、3、4ꎬ其
中 0 ~ 2 为抗病(R)ꎬ 3 ~ 4 为感病(S)ꎮ
根据苗期接种鉴定结果ꎬ通过比较分析 WS4 ̄8
和鉴别基因载体品种对参试菌系的抗性反应型ꎬ依
据基因对基因理论和寄主 -病原物相互作用原理ꎬ
推导 WS4 ̄8 可能携带的抗条锈病基因与已知抗条
锈病基因的异同(牛永春等ꎬ2000)ꎮ 统计 WS4 ̄8、
铭贤 169 及其杂交后代(F1、F2 及 BC1)接种植株中
抗病和感病植株数ꎬ计算抗感植株比例ꎬ用 SPSS
13 0 进行卡方检验所获得的分离比例ꎬ以确定抗病
基因的遗传特点(张小娟ꎬ2008)ꎮ 根据 WS4 ̄8 分别
与 Yr5 / 6 × AvocetS、Yr10 / 6 × AvocetS、Yr15 / 6 × Avo ̄
cetS及 92R137(Yr26)所组配杂交组合的 F2 群体的
抗病分离表现进行抗病基因等位性测试(蒲宗君
等ꎬ2007)ꎮ
1 2 2 抗锈性诱发与自然发病鉴定
于 2007—2014 年将永良 4 号、铭贤 169 及
WS4 ̄8 种植于大田ꎬ在兰州连续 8 年进行诱发鉴定ꎬ
在天水、陇南连续 8 年和绵阳连续 3 年进行自然发
病鉴定ꎬ在小麦生长中后期(根据各地生长进程不
同而异ꎬ在 4 月中下旬到 6 月中下旬)ꎬ待对照品种
铭贤 169 充分发病后ꎬ记录供试小麦在各地的发病
情况及反应型ꎬ划分标准同 1 2 1ꎮ 诱发鉴定按照
杨随庄等(2008)方法进行ꎮ 田间种植永良 4 号、铭
贤 169 及WS4 ̄8 各 3 ~ 5 行ꎬ行长 1 5 ~ 2 mꎬ行距 30
cmꎬ小区面积 1 8 ~ 2 25 m2ꎬ种植 2 个小区ꎬ在小区
的垂直方向播种 2 行铭贤 169 进行自然发病鉴定ꎮ
2 结果与分析
2 1 抗锈基因推导
感病对照品种铭贤 169 对各条锈菌系均表现感
病ꎬ说明接种成功ꎮ WS4 ̄8 对条锈菌系 61009、
60105、 CY26、 76093、 74187、 82061、 80551、 82517、
85019、86106 表现感病ꎬ而对其余 16 个菌系均表现
抗病ꎮ 永良 4 号对 59791、 58893、 68009、 75078、
78028、76093、82061、82517、85079、86094 菌系表现
抗病ꎬ对其余 16 个菌系表现感病(表 1)ꎮ WS4 ̄8 的
抗锈谱包含了部分永良 4 号的抗锈谱ꎬ这说明 WS4 ̄
8 所携带的这部分抗锈基因来源于永良 4 号ꎮ 根据
WS4 ̄8 与 28 个已知抗锈基因载体品种对 26 个条锈
菌系的抗性表现ꎬ比较与已知抗锈基因载体品种的
抗锈谱ꎬWS4 ̄8 携带未知的抗条锈病基因可能是一
个新的抗条锈病基因ꎮ
2 2 田间诱发与自然发病鉴定
铭贤 169 的田间抗病反应型为 4ꎬ完全能够代
表当地小麦条锈病的发生情况ꎮ WS4 ̄8 在各地均表
现抗病ꎬ田间抗病水平为免疫到中抗水平ꎻ永良 4 号
在各地均表现感病ꎬ田间反应型为 3、4ꎮ 由此可见ꎬ
WS4 ̄8 的抗条锈性显著优于永良 4 号(表 2)ꎮ 说明
WS4 ̄8 的抗锈性表现优异ꎬ能够稳定遗传ꎮ
2 3 抗性遗传分析
接种 CY33 菌系后ꎬWS4 ̄8 表现免疫(反应型为
0)ꎬ铭贤 169 表现高感(反应型为 4)ꎻ在 WS4 ̄8 /铭
贤 169 的正交组合中ꎬ18 个 F1 代单株均表现抗病ꎬ
在 123 个 F2 代单株植株中ꎬ有 94 株表现抗病ꎬ其余
29 株表现感病ꎬ符合由 1 对显性基因控制的 3R ∶ 1S
的分离比例 ( c2 = 0 133ꎬP > 0 05)ꎻ在铭贤 169 /
WS4 ̄8 的反杂交组合中ꎬ15 个 F1 代单株均表现抗
病ꎬ在 135 个 F2 代植株中ꎬ有 96 株表现抗病ꎬ其余
39 株表现感病ꎬ符合由 1 对显性基因控制的 3R ∶ 1S
的分离比例(c2 = 1 089ꎬP > 0 05)ꎻ在 WS4 ̄8 /铭贤
169 / /铭贤 169 回交组合中符合由 1 对显性基因控
制的 1R ∶ 1S 的分离比例(c2 = 0 167ꎬP > 0 05ꎬ表
3)ꎮ 说明WS4 ̄8 对 CY33 的抗性是由 1 对显性核基
因控制ꎮ
2 4 WS4 ̄8抗锈基因与 Yr5、Yr10、Yr15、Yr26的等位性
各组合的 F1 代植株均表现抗病ꎬ而 F2 代群体
植株中均出现了抗感分离现象ꎬ说明 WS4 ̄8 所携带
的抗锈基因与 Yr5、Yr10、Yr15、Yr26 不等位ꎬ是不同
于 Yr5、Yr10、Yr15、Yr26 的抗条锈病基因(表 4)ꎮ
3 讨论
新型抗源材料的创制、发掘和研究ꎬ并及时应用
到实际生产中是小麦抗条锈病育种亟待解决的基础
性任务ꎬ这种需求在我国小麦条锈菌越冬区显得尤
为迫切ꎬ提高该区小麦品种全生育期抗条锈病基因
的丰富度对我国小麦条锈病控制具有全局性和战略
277 植 物 保 护 学 报 42 卷
3775 期 杨随庄等: 抗条锈病小麦种质 WS4 ̄8 的抗性鉴定及遗传
表 2 小麦种质WS4 ̄8 抗条锈性鉴定
Table 2 Identification of the resistance of wheat somaclone WS4 ̄8 to stripe rust
年份
Year
兰州 Lanzhou 陇南 Longnan 天水 Tianshui 绵阳 Mianyang
WS4 ̄8
永良 4号
Yongliang
4
铭贤 169
Mingxian
169
WS4 ̄8
永良 4号
Yongliang
4
铭贤 169
Mingxian
169
WS4 ̄8
永良 4 号
Yongliang
4
铭贤 169
Mingxian
169
WS4 ̄8
永良 4号
Yongliang
4
铭贤 169
Mingxian
169
2007 0 4 4 0ꎻ 4 4 1 4 4 — — —
2008 2 4 4 1 4 4 0ꎻ 4 4 — — —
2009 1 4 4 2 4 4 1 4 4 — — —
2010 0 3 4 0 3 4 0 3 4 — — —
2011 1 4 4 1 3 4 0ꎻ 4 4 — — —
2012 0 4 4 0 4 4 1 4 4 0 4 4
2013 0ꎻ 4 4 0 4 4 1 4 4 1 4 4
2014 1 4 4 0 4 4 0ꎻ 4 4 0ꎻ 4 4
—: 未鉴定ꎮ —: Not tested.
表 3 小麦种质WS4 ̄8 抗条锈性遗传分析
Table 3 Seedling plants resistant to CYR33 of WS4 ̄8ꎬ Mingxian 169 and their progenies
亲本及组合
Parents and cross
世代
Generation
抗感植株比
Ratio of R ∶ S
理论比
Expected ratio c
2 P
WS4 ̄8 P1 23R ∶ 0S — — —
铭贤 169 Mingxian 169 P2 0R ∶ 25S — — —
WS4 ̄8 /铭贤 169 F1 18R ∶ 0S — — —
WS4 ̄8 / Mingxian 169 F2 94R ∶ 29S 3R ∶ 1S 0 133 0 716
铭贤 169 / WS4 ̄8 F1 15R ∶ 0S — — —
Mingxian 169 / WS4 ̄8 F2 96R ∶ 39S 3R ∶ 1S 1 089 0 297
WS4 ̄8 /铭贤 169 / /铭贤 169
WS4 ̄8 / Mingxian 169 / / Mingxian 169
BC1 13R ∶ 11S 1R ∶ 1S 0 167 0 683
P1: 亲本 1ꎻ P2: 亲本 2ꎻ F1: 杂交 1代ꎻ F2: 杂交 2代ꎻ BC1: 回交 1 代ꎻ R: 抗病ꎻ S: 感病ꎻ —: 无ꎮ P1: Parent 1ꎻ P2: parent 2ꎻ
F1: hybrid 1st generationꎻ F2: hybrid 2nd generationꎻ BC1: backcross 1st generationꎻ R: resistantꎻ S: susceptibleꎻ —: none.
表 4 小麦种质WS4 ̄8 所携带的抗条锈基因与 Yr5、Yr10、Yr15 及 Yr26 的等位性测试
Table 4 Allelism test of the resistance gene in WS4 ̄8 with Yr5ꎬ Yr10ꎬ Yr15 and Yr26
组合
Cross
F1 反应型
Reaction type of F1
F2 反应型 Reaction of F2
总株数
Total no. of plants
抗病株
Resistant plant
感病株
Susceptible plant
WS4 ̄8 / Yr5 R 125 105 20
WS4 ̄8 / Yr10 R 109 90 19
WS4 ̄8 / Yr15 R 121 110 11
WS4 ̄8 / Yr26 R 99 84 15
性的意义(李振岐和曾士迈ꎬ2002)ꎮ 体细胞无性系
变异是创制抗病资源的有效途径 ( Larkin et al. ꎬ
1984)ꎬ而利用体细胞无性系变异方法获得的变异
性状ꎬ有的能够稳定遗传ꎬ有的不能遗传(Larkin et
al. ꎬ1984ꎻ陆维忠等ꎬ1995)ꎬ鉴定体细胞无性系变异
性状的遗传稳定性是利用这种变异的前提条件ꎮ 高
东迎等(2002)对感病杂交稻恢复系明恢 63 的体细
胞无性系 HX ̄3 进行了连续 8 年的抗水稻白叶枯病
鉴定ꎬ证明其抗病性能够稳定遗传ꎬ并对其抗性基因
进行了遗传分析和标记定位ꎮ 本研究中ꎬWS4 ̄8 是
对体细胞无性系变异后代材料通过田间条锈病诱发
鉴定ꎬ进行抗条锈病筛选而获得的抗病新种质ꎬ在兰
州连续 8 年进行诱发鉴定ꎬ在天水、陇南连续 8 年和
绵阳连续 3 年进行自然发病鉴定的研究结果表明ꎬ
WS4 ̄8 的抗锈性表现优异ꎬ并且能够稳定遗传ꎮ 据
目前国内外所报道的文献ꎬWS4 ̄8 为首次利用体细
胞无性系变异方法所获得的小麦抗条锈病种质ꎮ 因
此ꎬ体细胞无性系变异是创制小麦抗条锈病种质
(基因)资源的一种有效方法ꎬ对拓宽小麦抗条锈病
种质(基因)来源具有重要意义ꎮ
477 植 物 保 护 学 报 42 卷
已有学者利用已知抗病基因载体品种(系)与
条锈菌互作关系进行抗条锈病基因推导ꎬ在小麦抗
条锈病基因研究方面做了大量工作 (牛永春等ꎬ
2000ꎻ何名召等ꎬ2007ꎻ章振羽等ꎬ2012)ꎬ为抗病品种
合理布局和利用提供了参考ꎮ 本研究表明ꎬWS4 ̄8
对 CY33 的抗性是由 1 对显性核基因控制的遗传性
状ꎬ是属于全生育期抗病类型的种质(基因)资源ꎻ
WS4 ̄8 所携带的抗条锈基因与 Yr5、Yr10、Yr15 和
Yr26 基因不同ꎬ是小麦抗条锈病种质(基因)的一个
新来源ꎬ为下一步进行抗条锈病基因精细定位及基
因克隆奠定了基础ꎮ 本研究结果对丰富抗源基因多
样化具有重要的意义ꎻ同时ꎬ新种质 WS4 ̄8 农艺性
状较好ꎬ便于育种利用ꎬ有望在条锈病持续控制中发
挥重要的作用ꎮ
对体细胞无性变异材料通过多年田间抗病表现
型鉴定和抗病性筛选ꎬ育成了抗病性遗传稳定的小
麦(陆维忠等ꎬ1995ꎻArun et al. ꎬ2007)、大麦(Li et
al. ꎬ2001)、珍珠粟 ( Umesha et al. ꎬ1999)和亚麻
(Rutkowska ̄Krause et al. ꎬ2003)等作物品种(或种
质)ꎬ但对抗病性状的遗传基础缺乏进一步深入研
究ꎮ 本试验通过基因推导、抗性鉴定、遗传分析和等
位性测试ꎬ从遗传学方面证明了利用体细胞无性系
创制抗病遗传变异的研究成果ꎬ并为利用体细胞无
性系变异方法创制抗条锈病小麦种质资源提供了遗
传学方面的证据ꎬ从而为利用体细胞无性系变异方
法创制小麦抗条锈病基因资源提供了理论依据和新
途径ꎬ是进行小麦抗条锈病育种的重要基因来源ꎮ
致谢:西南科技大学康晓慧教授在本试验中给予了指导和帮
助ꎬ特此致谢!
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(责任编辑:高 峰)
677 植 物 保 护 学 报 42 卷