全 文 ：植物保护学报 Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｐｌａｎｔ Ｐｒｏｔｅｃｔｉｏｎꎬ ２０１５ꎬ ４２(５): ８２７ － ８３３ ＤＯＩ: １０􀆰 １３８０２ / ｊ. ｃｎｋｉ. ｚｗｂｈｘｂ. ２０１５􀆰 ０５􀆰 ０１９
基金项目: 四川省凉山州烟草公司科技攻关项目(２０１２￣１２)ꎬ重庆市科委重点项目(ｃｓｔｃ２０１３ｙｙｋｆＢ８００１１)
∗通讯作者(Ａｕｔｈｏｒ ｆｏｒ ｃｏｒｒｅｓｐｏｎｄｅｎｃｅ)ꎬ Ｅ￣ｍａｉｌ: ｌｉｎｇｙｕａｎｈ＠ ａｌｉｙｕｎ. ｃｏｍ
收稿日期: ２０１４ － ０９ － ０９
寡雄腐霉发酵液对温室番茄生长及灰霉病的防治作用
贾瑞莲　 耿明明　 袁　 玲∗
(西南大学资源环境学院ꎬ 重庆 北碚 ４００７１６)
摘要: 为了研制高效、无毒的生物农药ꎬ采用自主分离的寡雄腐霉生防菌株 Ｐｙｔｈｉｕｍ ｏｌｉｇａｎｄｒｕｍ
ＣＱ２０１０ 制备发酵液ꎬ研究其对温室番茄生长及灰霉病的防治作用ꎮ 结果表明ꎬ寡雄腐霉发酵液
(Ｐｙｔｈｉｕｍ ｏｌｉｇａｎｄｒｕｍ ｂｒｏｔｈꎬＰＯＢ)能显著提高番茄叶绿素含量ꎬ增强根系活力ꎬ增加氮、磷、钾吸收ꎬ
促进植株生长ꎬ使生物量比对照提高 ６５􀆰 １４％ ꎻ同时能激活与叶片抗病性相关的过氧化物酶和过氧
化氢酶活性ꎬ诱导植株产生抗病性反应ꎬ提高抗病能力ꎬ其效果优于寡雄腐霉卵孢子制剂ꎻ而且
ＰＯＢ能显著抑制离体灰葡萄孢菌的菌丝生长和孢子萌发ꎻ施用 ＰＯＢ 能使番茄灰霉病发病率下降
２２􀆰 ２８％ ~３１􀆰 ０５％ ꎬ病情指数从 ５２􀆰 ５ (对照)下降至 ２２􀆰 ５ ~ ２７􀆰 ５ꎬ相对防治效果达 ４７􀆰 ６２％ ~
５７􀆰 １４％ ꎬ叶片丙二醛含量显著降低ꎬ说明 ＰＯＢ减轻了灰葡萄孢菌对细胞膜的伤害ꎮ 表明 ＰＯＢ兼具
促进番茄生长及防治灰霉病的作用ꎮ
关键词: 寡雄腐霉ꎻ 番茄ꎻ 生长ꎻ 灰霉病
Ｉｎｆｌｕｅｎｃｅｓ ｏｆ Ｐｙｔｈｉｕｍ ｏｌｉｇａｎｄｒｕｍ ｂｒｏｔｈ ｏｎ ｔｈｅ ｇｒｏｗｔｈ ａｎｄ ｂｏｔｒｙｔｉｓ ｃｏｎｔｒｏｌ
ｏｆ ｔｏｍａｔｏ ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ ｉｎ ｇｒｅｅｎｈｏｕｓｅｓ
Ｊｉａ Ｒｕｉｌｉａｎ　 Ｇｅｎｇ Ｍｉｎｇｍｉｎｇ　 Ｙｕａｎ Ｌｉｎｇ∗
(Ｃｏｌｌｅｇｅ ｏｆ Ｒｅｓｏｕｒｃｅｓ ａｎｄ Ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔꎬ Ｓｏｕｔｈｗｅｓｔ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙꎬ Ｂｅｉｂｅｉ ４００７１６ꎬ Ｃｈｏｎｇｑｉｎｇꎬ Ｃｈｉｎａ)
Ａｂｓｔｒａｃｔ: Ｉｎ ｏｒｄｅｒ ｔｏ ｄｅｖｅｌｏｐ ｎｏｎｔｏｘｉｃ ａｎｄ ｅｆｆｉｃｉｅｎｔ ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ ｐｅｓｔｉｃｉｄｅｓꎬ ａ ｐｏｔ ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔ ｗａｓ ｃａｒｒｉｅｄ
ｏｕｔ ｔｏ ｓｔｕｄｙ ｔｈｅ ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｆｅｒｍｅｎｔａｔｉｏｎ ｂｒｏｔｈ ｐｒｏｄｕｃｅｄ ｆｒｏｍ ａ ｓｅｌｆ￣ｉｓｏｌａｔｅｄ Ｐｙｔｈｉｕｍ ｏｌｉｇａｎｄｒｕｍ ( ｓｔｒａｉｎ
ＣＱ２０１０) ｏｎ ｔｈｅ ｇｒｏｗｔｈ ａｎｄ ｂｏｔｒｙｔｉｓ ｃｏｎｔｒｏｌ ｏｆ ｔｏｍａｔｏ ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ ｉｎ ｇｒｅｅｎｈｏｕｓｅｓ. Ｔｈｅ ｒｅｓｕｌｔｓ ｓｈｏｗｅｄ ｔｈａｔ
Ｐｙｔｈｉｕｍ ｏｌｉｇａｎｄｒｕｍ ｂｒｏｔｈ (ＰＯＢ) ｐｒｏｍｏｔｅｄ ｔｈｅ ｇｒｏｗｔｈ ａｎｄ ｉｎｃｒｅａｓｅｄ ｔｈｅ ｂｉｏｍａｓｓ ｏｆ ｔｏｍａｔｏ ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ ｂｙ
６５􀆰 １４％ ｃｏｍｐａｒｅｄ ｔｏ ｔｈｅ ｃｏｎｔｒｏｌ. Ｓｉｍｉｌａｒｌｙꎬ ｌｅａｆ ｃｈｌｏｒｏｐｈｙｌｌꎬ ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ ｏｆ ｒｏｏｔｓ ａｎｄ ｎｉｔｒａｔｅ ｒｅｄｕｃｔａｓｅꎬ
ａｎｄ ｐｌａｎｔ ｎｕｔｒｉｅｎｔ ｕｐｔａｋｅꎬ ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ ｎｉｔｒｏｇｅｎꎬ ｐｈｏｓｐｈｏｒｕｓ ａｎｄ ｐｏｔａｓｓｉｕｍꎬ ｗｅｒｅ ｉｎｃｒｅａｓｅｄ ｄｕｅ ｔｏ ＰＯＢ
ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎ. ＰＯＢ ａｌｓｏ ｓｔｉｍｕｌａｔｅｄ ｔｈｅ ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ ｏｆ ｅｎｚｙｍｅｓ ｒｅｌａｔｅｄ ｔｏ ｄｉｓｅａｓｅ ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅꎬ ｓｕｃｈ ａｓ
ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ ａｎｄ ｃａｔａｌａｓｅꎬ ｉｎｄｕｃｅｄ ｐｌａｎｔ ｄｉｓｅａｓｅ ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ ｒｅａｃｔｉｏｎꎬ ａｎｄ ｒａｉｓｅｄ ｔｈｅ ａｂｉｌｉｔｙ ｏｆ ｄｉｓｅａｓｅ
ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅꎬ ａｎｄ ｂｅｔｔｅｒ ｅｆｆｅｃｔｓ ｗｅｒｅ ｏｂｔａｉｎｅｄ ｕｎｄｅｒ ＰＯＢ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ ｔｈａｎ Ｐ. ｏｌｉｇａｎｄｒｕｍ ｓｐｏｒｅｓ.
Ｆｕｒｔｈｅｒｍｏｒｅꎬ ＰＯＢ ｉｎｈｉｂｉｔｅｄ ｍｙｃｅｌｉａｌ ｇｒｏｗｔｈ ａｎｄ ｓｐｏｒｅ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ｏｆ Ｂｏｔｒｙｔｉｓ ｃｉｎｅｒｅａ Ｐｅｒｓ. ａｎｄ ｌｏｗｅｒｅｄ
ｔｈｅ ｄｉｓｅａｓｅ ｉｎｃｉｄｅｎｃｅ ｏｆ ｔｏｍａｔｏ ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ ｂｙ ２２􀆰 ２８％ －３１􀆰 ０５％ ａｆｔｅｒ ｐａｔｈｏｇｅｎ ｉｎｏｃｕｌａｔｉｏｎ. Ｔｈｅ ｄｉｓｅａｓｅ
ｉｎｄｅｘ ｆｅｌｌ ｆｒｏｍ ５２􀆰 ５ (ＣＫ) ｔｏ ２２􀆰 ５ － ２７􀆰 ５ (ＰＯＢ) ａｎｄ ｔｈｅ ｒｅｌａｔｉｖｅ ｃｏｎｔｒｏｌ ｅｆｆｉｃａｃｙ ｒｅａｃｈｅｄ ４７􀆰 ６２％ －
５７􀆰 １４％ . Ｍａｌｏｎｄｉａｌｄｅｈｙｄｅ ｉｎ ｔｈｅ ｌｅａｖｅｓ ｏｆ ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ ｉｎｆｅｃｔｅｄ ｗｉｔｈ ｐａｔｈｏｇｅｎ ｗａｓ ｒｅｄｕｃｅｄ ｂｙ ＰＯＢꎬ
ｓｕｇｇｅｓｔｉｎｇ ｔｈｅ ｐｒｅｖｅｎｔｉｏｎ ｏｆ ｃｅｌｌ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｆｒｏｍ ｈａｒｍｆｕｌｎｅｓｓ ｂｙ ｐａｔｈｏｇｅｎｉｃ ｍｉｃｒｏｂｅｓ. Ｔｈｅ ｒｅｓｕｌｔｓ
ｉｎｄｉｃａｔｅｄ ｔｈａｔ ＰＯＢ ｃｏｕｌｄ ｐｒｏｍｏｔｅ ｐｌａｎｔ ｇｒｏｗｔｈ ａｎｄ ｃｏｎｔｒｏｌ ｄｉｓｅａｓｅ ｏｃｃｕｒｒｅｎｃｅ.
Ｋｅｙ ｗｏｒｄｓ: Ｐｙｔｈｉｕｍ ｏｌｉｇａｎｄｒｕｍꎻ ｔｏｍａｔｏꎻ ｇｒｏｗｔｈꎻ ｂｏｔｒｙｔｉｓ
　 　 番茄是全世界设施栽培最多的蔬菜之一ꎮ 由于
温室番茄的密度大、湿度高ꎬ因此容易发生由灰葡萄
孢菌 Ｂｏｔｒｙｔｉｓ ｃｉｎｅｒｅａ Ｐｅｒｓ. 引起的灰霉病ꎬ该病传播
快ꎬ危害茎、叶、花、果等ꎬ造成番茄减产ꎬ甚至绝收
(Ｒｉｓｔａｎｉｏ ｅｔ ａｌ. ꎬ２００１ꎻ纪军建等ꎬ２０１２)ꎮ 目前ꎬ化学
农药是防治温室番茄灰霉病的主要措施ꎬ具有经济、
简便、高效等特点ꎬ但农药残留危害着人类健康ꎮ 在
欧美发达国家ꎬ使用化学农药防治温室蔬菜病害正
逐年减少ꎬ物理和生物防治日益普遍(欧阳由男等ꎬ
２００７ꎻ张博和李长松ꎬ２００８)ꎬ而在我国防治番茄灰
霉病的生物制剂鲜少(武哲等ꎬ２０１３)ꎮ
寡雄腐霉 Ｐｙｔｈｉｕｍ ｏｌｉｇａｎｄｒｕｍ 属卵菌门腐霉科
腐霉属ꎬ其菌丝可寄生于病原菌体内ꎬ干扰寄主的代
谢活动ꎬ并消耗细胞内的养分ꎬ造成病菌死亡(王爱
英等ꎬ２００７)ꎮ 研究表明ꎬ真菌细胞壁的主要成分为
多糖ꎬ其次为蛋白质和类脂ꎮ 其中ꎬ低等真菌的细胞
壁成分以纤维素为主ꎬ酵母菌以葡聚糖为主ꎬ而高等
真菌则以几丁质为主(于雪梅和郭顺星ꎬ２０００)ꎮ 寡
雄腐霉能分泌纤维素酶、蛋白酶、几丁质酶和 β￣１ꎬ３￣
葡聚糖酶等多种酶类ꎬ水解真菌细胞壁成分(胡小
倩等ꎬ２００９)ꎮ 离体培养发现ꎬ寡雄腐霉能分泌寡雄
蛋白和小分子抗菌物质ꎬ抑制植物病原真菌的生长
繁殖(赵建等ꎬ２０１３ａ)ꎬ激发作物抗病防御反应和诱
导产生抗病性能ꎬ包括产生对病原菌具有毒性的植
保素 ( ｐｈｙｔｏａｌｅｘｉｎꎬ ＰＡ) 及与病程相关的蛋白质
(ｐａｔｈｏｇｅｎｅｓｉｓ￣ｒｅｌａｔｅｄ ｐｒｏｔｅｉｎｓꎬＰＲＰ)等ꎬ提高过氧化
物酶、多酚氧化酶和苯丙氨酸解氨酶活性ꎬ减轻病菌
危害或降低发病率( Ｐｉｃａｒｄ ｅｔ ａｌ. ꎬ２０００ꎻＴａｋｅｎａｋａꎬ
２００３ꎻＴａｋｅｎａｋａ ＆ Ｔａｍａｇａｋｅꎬ２００９)ꎮ 此外ꎬ寡雄腐
霉还能合成色胺、色氨酸、吲哚乙酸等生长活性物
质ꎬ促进植物生理代谢、养分吸收和生长发育(Ｂｒｏ￣
ｚｏｖａꎬ２００２)ꎮ
目前ꎬ国内外主要利用寡雄腐霉卵孢子制剂防
治作物真菌病害ꎬ包括疫霉属、灰霉菌属、轮枝菌属、
镰刀菌、盘核霉、丝核菌属、链格孢属、腐霉属、葡萄
孢霉及蠕孢菌等 ２０ 余种病原真菌引起的病害(康
振生ꎬ２０１０)ꎮ 但在应用寡雄腐霉活体菌剂时ꎬ其生
防效果依赖于卵孢子萌发和菌丝生长ꎬ而且常受温
度、湿度、光照、降雨、土壤、施肥、耕作、化学农药等
多种自然或人为因素影响ꎬ故防治效果欠佳ꎬ稳定性
差(侯颖等ꎬ２０１４)ꎮ 利用寡雄腐霉的次级代谢产物
进行生物防治ꎬ可减少人为和环境因素的干扰ꎬ提高
防治效果ꎮ 因此ꎬ本研究利用自主分离的寡雄腐霉
生防菌株 ＣＱ２０１０ꎬ通过高密度发酵技术制备寡雄腐
霉发酵液(Ｐ. ｏｌｉｇａｎｄｒｕｍ ｂｒｏｔｈꎬ简称 ＰＯＢ)(赵建等ꎬ
２０１３ａ)ꎬ并以寡雄腐霉卵孢子制剂为对照ꎬ研究二
者对番茄幼苗生长的影响和对灰霉病的防治作用ꎬ
以期为研发高效、无毒、成本低廉的微生物代谢产物
类生物农药ꎬ安全有效地防治番茄灰霉病奠定基础ꎮ
１ 材料与方法
１􀆰 １ 材料
供试作物与菌种:番茄品种为美国 ９０３ 号ꎬ江苏
南京金丰种苗有限公司ꎮ 番茄灰霉病菌即灰葡萄孢
菌由西南大学植物保护学院提供ꎻ自主分离获得寡
雄腐霉生防菌株 Ｐ. ｏｌｉｇａｎｄｒｕｍ ＣＱ２０１０ꎬ二者均用
传统方法保存(置于 ４℃冰箱中ꎬ６０ ~ ９０ ｄ 转接 １
次)ꎻ寡雄腐霉卵孢子菌剂ꎬ捷克生物制剂有限公
司ꎬ按使用说明用 Ｂｏｎｎｅｔ液体培养基代替清水配制
成 １∶ １ ０００的孢子悬液备用ꎮ ２０￣１０￣５ 复合肥ꎬ重庆
江北化肥有限公司ꎮ
供试土壤:采集本校农场 ０ ~ ２０ ｃｍ 耕作层土
壤ꎬ拣去杂物ꎬ晾干ꎬ溴甲烷消毒ꎬ每千克土壤混入
１０ ｇ ２０￣１０￣５ 复合肥ꎬ是重庆市典型的、具有代表性
的灰棕紫泥紫色土ꎬ质地中壤ꎬ ｐＨ ６􀆰 ９１ꎬ有机质
１９􀆰 ７９ ｇ / ｋｇ、全氮 ２􀆰 ７８ ｇ / ｋｇ、全磷 ０􀆰 ４２ ｇ / ｋｇ、全钾
２０􀆰 ５４ ｇ / ｋｇ、碱解氮 ２８􀆰 ４２ ｍｇ / ｋｇ、有效磷 １０􀆰 ７１ ｍｇ /
ｋｇ、有效钾 １４９􀆰 ２ ｍｇ / ｋｇꎮ
培养基:马铃薯葡萄糖琼脂 ( ｐｏｔａｔｏ ｄｅｘｔｒｏｓｅ
ａｇａｒꎬＰＤＡ)固体培养基:２００ ｇ 马铃薯、２０ ｇ 葡萄糖、
１５ ~ ２０ ｇ琼脂、１ ０００ ｍＬ水ꎬ用于保存灰霉病菌和寡
雄腐霉生防菌ꎻＢｏｎｎｅｔ 液体培养基:０􀆰 ６ ｇ ＫＨ２ＰＯ４、
０􀆰 ７ ｇ ＫＮＯ３、０􀆰 ２５ ｇ ＭｇＳＯ４􀅰７Ｈ２Ｏ、０􀆰 １２５ ｇ Ｋ２ＨＰＯ４􀅰
３Ｈ２Ｏ、０􀆰 ３ ｇ硝酸钙、１ ｇ 天冬酰胺、２０ ｇ 葡萄糖、１􀆰 ５
ｍｇ ＭｎＳＯ４􀅰Ｈ２Ｏ、４ ｍｇ ＺｎＳＯ４􀅰７Ｈ２Ｏ、０􀆰 １ ｍｇ Ｎａ２ ￣
ＭｏＯ４􀅰２Ｈ２Ｏ、１ ｍｇ Ｈ３ＢＯ３、１ ｍｇ泛酸钙、８ ｍｇ ＥＤＴＡ￣
ＦｅＮａ、１ ｍｇ吡哆醇、１ ｍｇ盐酸硫胺素、１ ｍｇ 烟酸、２０
μｇ ＣｕＳＯ４􀅰５Ｈ２Ｏ、２０ μｇ ＣｏＣｌ２􀅰６Ｈ２Ｏ、２０ μｇ ＫＩꎬ接种
寡雄腐霉生防菌ꎬ摇床暗培养 ７ ｄ (２５ ± １℃、６０ ~ ８０
ｒ / ｍｉｎ)ꎬ２０ μｍ 滤膜真空抽滤ꎬ获得 ＰＯＢ 备用(赵建
等ꎬ２０１３ａ)ꎮ
供试仪器:７２２Ｅ 型可见分光光度仪ꎬ上海光谱
仪器有限公司ꎻＤＨＰ￣９２７２ 型电热恒温培养箱ꎬ上海
浦东荣丰科学仪器有限公司ꎻＳＨ３￣８２Ａ 型恒温振荡
器ꎬ苏州威尔实验用品有限公司ꎮ
１􀆰 ２ 方法
１􀆰 ２􀆰 １ ＰＯＢ对番茄生长、生理指标及养分吸收的影响
试验于 ２０１４ 年在西南大学温室中进行ꎮ 共设
８２８ 植　 物　 保　 护　 学　 报 ４２ 卷
３ 个处理:(１)浇灌 Ｂｏｎｎｅｔ液体培养基(ＣＫ)ꎻ(２)浇
灌寡雄腐霉卵孢子悬液 ( Ｐ. ｏｌｉｇａｎｄｒｕｍ ｓｐｏｒｅｓꎬ
ＰＯＳ)ꎻ(３)浇灌寡雄腐霉发酵液 ＰＯＢꎮ 将供试土壤
装入直径 １０ ｃｍ、高 １５ ｃｍ塑料钵中ꎬ每盆播种 ３ ~ ４
粒番茄种子ꎬ待番茄幼苗长到 ４ 叶期ꎬ保留 １ 株健康
幼苗ꎬ继续培养 ７ ｄ备用ꎮ 每盆幼苗间隔 ７ ｄ各喷施
１ 次 １０ ｍＬ不同处理液ꎬ共喷施 ２ 次ꎮ 每处理 ２０ 株
幼苗ꎬ重复 ３ 次ꎬ共 ６０ 盆ꎮ 按温室商品化番茄种植
方法常规管理ꎮ
处理后第 ３５ 天ꎬ收获番茄植株ꎬ测量株高和根
长ꎬ并称取生物量ꎮ 同时选取最大展开叶ꎬ取剪碎的
新鲜叶片 ０􀆰 ２ ｇꎬ用丙酮提取 －分光光度法测定叶绿
素含量ꎮ 取 ０􀆰 １ ｇ新鲜植物叶片用亚硝酸还原法测
定硝酸还原酶( ｎｉｔｒａｔｅ ｒｅｄｕｃｔａｓｅꎬＮＲ)活性(周宝利
等ꎬ２０１０)ꎮ 另取 ０􀆰 ５ ｇ 最大展开叶ꎬ洗净后置于预
冷研钵中ꎬ加入 ２ ｍＬ ５０ ｍｍｏｌ / Ｌ ４℃磷酸缓冲液
(ｐＨ ７􀆰 ８)ꎬ在冰浴上研磨成匀浆ꎬ４℃条件下 ４ ０００
ｒ / ｍｉｎ离心 ２０ ｍｉｎꎬ制得上清液ꎬ依次用高锰酸钾还
原法、愈创木酚法和氮蓝四唑还原法测定其中的过
氧化氢酶(ｃａｔａｌａｓｅꎬＣＡＴ)、过氧化物酶(ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅꎬ
ＰＯＤ) 和超氧化物歧化酶 ( ｓｕｐｅｒｏｘｉｄｅ ｄｉｓｍｕｔａｓｅꎬ
ＳＯＤ)ꎮ 选取新鲜须根ꎬ用 ＴＴＣ 法测定根系活力(陈
建勋和王晓峰ꎬ２００６)ꎮ 将植株 １０５℃杀青后ꎬ８０ ±
２℃烘干ꎬ常规分析氮、磷、钾含量(鲍士旦ꎬ２０００)ꎮ
１􀆰 ２􀆰 ２ ＰＯＢ对灰霉病菌抑制作用的测定
在 ２５℃条件下ꎬ用 ＰＤＡ培养基暗培养活化灰葡
萄孢菌 ４ ｄꎬ然后转接培养 １０ ｄꎬ无菌水洗涤孢子ꎬ配
制成 １０３ ＣＦＵ / ｍＬ 孢子悬液备用ꎮ 将活化后的灰葡
萄孢菌和孢子悬液分别接种于 ＰＤＡ培养基上ꎬ在二
者周围分别滴加 １􀆰 ０ ｍＬ ＰＯＢ原液、２ ∶ １和 １∶ １两种
不同稀释度的 ＰＯＢ 溶液ꎬ以加等量无菌水为对照ꎬ
２５℃暗培养 ４ ｄꎬ重复 ５ 次ꎬ观察菌丝生长情况ꎮ
取上述不同稀释度的 ＰＯＢ 溶液ꎬ按 ２５ ∶ １的比
例与灰霉菌孢子悬液混合ꎬ以加等量无菌水为对照ꎬ
取 ０􀆰 ５ ｍＬ混合液ꎬ分别接种于 ＰＤＡ培养基上ꎬ２５℃
暗培养 ３ ｄꎬ重复 ５ 次ꎮ 采用十字交叉法测定菌落直
径ꎮ 菌丝生长抑制率 ＝ (对照菌落直径 －处理菌落
直径) /对照菌落直径 × １００％ (黄彰欣ꎬ２００９)ꎬ孢子
萌发率 ＝ (对照菌落数 － 处理菌落数) /对照菌落
数 × １００％ (方中达ꎬ２００４)ꎮ
１􀆰 ２􀆰 ３ ＰＯＢ对番茄灰霉病防治作用的测定
按温室商品化方法种植番茄幼苗至 ６ 叶期ꎬ然
后分别进行以下试验处理:(１)叶面喷洒 ＰＤＡ 液体
培养基(ＣＫ)ꎻ(２)叶面喷洒灰葡萄孢菌孢子悬液
(接种病菌)ꎻ(３)叶面喷洒 ＰＯＢ ２４ ｈ 后ꎬ再喷洒灰
葡萄孢菌孢子悬液(ＰＯＢ ＋接种病菌)ꎻ(４)叶面喷
洒灰葡萄孢菌孢子悬液 ２４ ｈ 后ꎬ再喷洒 ＰＯＢ(接种
病菌 ＋ ＰＯＢ)ꎮ 孢子悬液浓度同 １􀆰 ２􀆰 ２ꎮ 在接种病
菌后ꎬ均参照谢晨昭等(２００８)方法保湿 ４８ ｈꎬ以利
于病菌感染ꎮ 无菌水、灰霉菌孢子悬液和 ＰＯＢ 的喷
洒量以湿润叶片为度ꎬ每处理 ５ 株番茄幼苗ꎬ重复 ４
次ꎬ管理方法同 １􀆰 ２􀆰 １ꎮ
处理后第 １２ 天ꎬ选取 ０􀆰 ２ ｇ 最大展开叶ꎬ用磷
酸缓冲液提取ꎬ硫代巴比妥酸比色法测定丙二醛含
量(尹亚丽等ꎬ２０１０)ꎮ 并在处理后每隔 ５ ｄ 统计 １
次番茄植株发病率、病情指数和防治效果ꎬ共统计 ３
次ꎬ发病率 ＝发病株数 /总株数 １´００％ ꎻ病情指数 ＝
∑(各级叶片数 ×相对级数) / (调查总叶片数 ×最
高级数) × １００ꎻ防治效果 ＝ (对照病情指数 －处理
病情指数) /对照病情指数 １´００％ ꎮ
１􀆰 ３ 数据分析
试验数据用 Ｅｘｃｅｌ ２００３ 和 ＳＰＳＳ １８􀆰 ０ 软件进行
统计分析ꎬ采用最小差异显著法(ＬＳＤ)进行差异显
著性检验ꎮ
２ 结果与分析
２􀆰 １ ＰＯＢ对番茄生长、生理指标及养分吸收的影响
２􀆰 １􀆰 １ 番茄幼苗生长状况
ＰＯＳ和 ＰＯＢ可显著促进番茄幼苗生长ꎬ以 ＰＯＢ
最为显著ꎮ 在 ＰＯＢ 处理中ꎬ每株番茄株高、根长和
生物量依次为 ２４􀆰 ６１ ｃｍ、１８􀆰 ０２ ｃｍ和 １３􀆰 ３１ ｇꎬ分别
比对照增加 ４３􀆰 ４１％ 、６０􀆰 ７５％和 ６５􀆰 １４％ ꎻ在 ＰＯＳ处
理中ꎬ每株番茄株高、根长和生物量依次为 １９􀆰 ９１
ｃｍ、１４􀆰 ２２ ｃｍ和 １０􀆰 ９９ ｇꎬ分别比对照增加 １６􀆰 ０３％ 、
２６􀆰 ８５％和 ３６􀆰 ３５％ (表 １)ꎮ
表 １ 番茄幼苗的生长状况
Ｔａｂｌｅ １ Ｇｒｏｗｔｈ ｏｆ ｔｏｍａｔｏ ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ ｕｎｄｅｒ ｖａｒｉｏｕｓ ｔｒｅａｔｍｅｎｔｓ
处理
Ｔｒｅａｔｍｅｎｔ
株高 (ｃｍ)
Ｐｌａｎｔ ｈｅｉｇｈｔ
根长 (ｃｍ)
Ｒｏｏｔ ｌｅｎｇｔｈ
生物量 (ｇ ＤＷ/ ｐｌａｎｔ)
Ｂｉｏｍａｓｓ
ＣＫ １７􀆰 １６ ±１􀆰 ４３４ ｃ １１􀆰 ２１ ±１􀆰 ３３５ ｃ ８􀆰 ０６ ±０􀆰 ６１４ ｃ
ＰＯＳ １９􀆰 ９１ ±１􀆰 ７２９ ｂ １４􀆰 ２２ ±１􀆰 １３４ ｂ １０􀆰 ９９ ±０􀆰 ７３４ ｂ
ＰＯＢ ２４􀆰 ６１ ±１􀆰 ８４８ ａ １８􀆰 ０２ ±１􀆰 １４３ ａ １３􀆰 ３１ ±１􀆰 ５１２ ａ
　 　 ＣＫ: Ｂｏｎｎｅｔ液体培养基ꎻ ＰＯＳ:寡雄腐霉孢子悬浮液ꎻ ＰＯＢ:
寡雄腐霉发酵液ꎮ 表中数据为平均数 ±标准差ꎮ 同列不同小写
字母表示经 ＬＳＤ法检验在 Ｐ < ０􀆰 ０５ 水平差异显著ꎮ ＣＫ: Ｂｏｎｎｅｔ
ｌｉｑｕｉｄ ｍｅｄｉｕｍꎻ ＰＯＳ: Ｐ. ｏｌｉｇａｎｄｒｕｍ ｓｐｏｒｅｓꎻ ＰＯＢ: Ｐ. ｏｌｉｇａｎｄｒｕｍ
ｂｒｏｔｈ. Ｄａｔａ ａｒｅ ｍｅａｎ ± ＳＥ. Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｌｅｔｔｅｒｓ ｉｎ ｔｈｅ ｓａｍｅ ｃｏｌｕｍｎ ｉｎ￣
ｄｉｃａｔｅ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ ａｔ Ｐ < ０􀆰 ０５ ｌｅｖｅｌ ｂｙ ＬＳＤ ｔｅｓｔ.
９２８５ 期 贾瑞莲等: 寡雄腐霉发酵液对温室番茄生长及灰霉病的防治作用
２􀆰 １􀆰 ２ 生理指标
ＰＯＳ处理中ꎬ番茄植株根系活力为 ３４􀆰 ６２ μｇ
ＴＴＦ􀅰ｇ －１􀅰ｈ －１ꎬ比对照提高了 ３８􀆰 ３１％ꎬ但对叶片叶绿
素含量无显著影响ꎮ ＰＯＢ 则可显著提高叶片叶绿素
含量和根系活力ꎬ分别为 １􀆰 ０９ ｍｇ / ｇ 和 ４７􀆰 ２４ μｇ ＴＴＦ􀅰
ｇ －１􀅰ｈ －１ꎬ比对照提高 ２１􀆰 ７１％和 ８８􀆰 ６５％(图 １)ꎮ
图 １ 不同处理下番茄的根系活力和叶绿素含量
Ｆｉｇ. １ Ｒｏｏｔ ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ ａｎｄ ｃｈｌｏｒｏｐｈｙｌｌ ｉｎ ｌｅａｖｅｓ ｏｆ ｔｏｍａｔｏ ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ ａｔ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｔｒｅａｔｍｅｎｔｓ
ＣＫ: Ｂｏｎｎｅｔ液体培养基ꎻ ＰＯＳ: 寡雄腐霉孢子悬浮液ꎻ ＰＯＢ: 寡雄腐霉发酵液ꎮ 图中数据为平均数 ±标准差ꎮ 不同小
写字母表示经 ＬＳＤ法检验在 Ｐ < ０􀆰 ０５ 水平差异显著ꎮ ＣＫ: Ｂｏｎｎｅｔ ｌｉｑｕｉｄ ｍｅｄｉｕｍꎻ ＰＯＳ: Ｐ. ｏｌｉｇａｎｄｒｕｍ ｓｐｏｒｅｓꎻ ＰＯＢ: Ｐ. ｏｌｉ￣
ｇａｎｄｒｕｍ ｂｒｏｔｈ. Ｄａｔａ ａｒｅ ｍｅａｎ ± ＳＥ. Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｌｅｔｔｅｒｓ ｉｎ ｔｈｅ ｆｉｇｕｒｅ ｉｎｄｉｃａｔｅ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ ａｔ Ｐ < ０􀆰 ０５ ｌｅｖｅｌ ｂｙ ＬＳＤ ｔｅｓｔ.
　
　 　 ＰＯＳ 处理中ꎬ番茄叶片 ＰＯＤ 活性为 ６３５􀆰 ６
Ｕ􀅰ｇ － １ＦＷ􀅰ｍｉｎ － １ꎬ比对照提高了 ２２􀆰 ９４％ ꎬ但对 ＮＲ、
ＳＯＤ和 ＣＡＴ 的活性均无显著影响ꎮ 而 ＰＯＢ 可显著
提高 ＮＲ、ＰＯＤ 和 ＣＡＴ 的活性ꎬ分别比对照增加了
１０５􀆰 ５０％ 、５６􀆰 ２３％和 １４􀆰 １１％ (表 ２)ꎮ
表 ２ ＰＯＢ对番茄叶片酶活性的影响
Ｔａｂｌｅ ２ Ｉｎｆｌｕｅｎｃｅｓ ｏｆ Ｐｙｔｈｉｕｍ ｏｌｉｇａｎｄｒｕｍ ｂｒｏｔｈ ｏｎ ｅｎｚｙｍａｔｉｃ ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ ｉｎ ｔｈｅ ｌｅａｖｅｓ ｏｆ ｔｏｍａｔｏ ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ
处理
Ｔｒｅａｔｍｅｎｔ
硝酸还原酶 ＮＲ
(μｇ􀅰ｇ － １􀅰ｈ － １)
超氧化物歧化酶 ＳＯＤ
(Ｕ / ｇ ＦＷ)
过氧化物酶 ＰＯＤ
(Ｕ􀅰ｇ － １ＦＷ􀅰ｍｉｎ － １)
过氧化氢酶 ＣＡＴ
(Ｈ２Ｏ２ｍｇ􀅰ｇ
－ １ＦＷ􀅰ｍｉｎ － １)
ＣＫ ４. ０２ ± ０. １０ ｂ １２３. ２ ± ２０. ６６ ａ ５１７. ０ ± ３２. ４８ ｃ ３. ６２ ± ０. ２１ ｂ
ＰＯＳ ４. ６２ ± ０. ４４ ｂ １３１. ８ ± １９. ２０ ａ ６３５. ６ ± １９. ６０ ｂ ３. ９０ ± ０. １６ ａｂ
ＰＯＢ ８. ２６ ± ０. ５５ ａ １２１. ６ ± ６. ２５ ａ ８０７. ７ ± ４. ０１ ａ ４. １３ ± ０. ０４ ａ
　 　 ＣＫ: Ｂｏｎｎｅｔ液体培养基ꎻ ＰＯＳ: 寡雄腐霉孢子悬浮液ꎻ ＰＯＢ: 寡雄腐霉发酵液ꎮ 表中数据为平均数 ±标准差ꎮ 同列不同
小写字母表示经 ＬＳＤ法检验在 Ｐ < ０􀆰 ０５ 水平差异显著ꎮ ＣＫ: Ｂｏｎｎｅｔ ｌｉｑｕｉｄ ｍｅｄｉｕｍꎻ ＰＯＳ: Ｐ. ｏｌｉｇａｎｄｒｕｍ ｓｐｏｒｅｓꎻ ＰＯＢ: Ｐ. ｏｌｉ￣
ｇａｎｄｒｕｍ ｂｒｏｔｈ. Ｄａｔａ ａｒｅ ｍｅａｎ ± ＳＥ. Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｌｅｔｔｅｒｓ ｉｎ ｔｈｅ ｓａｍｅ ｃｏｌｕｍｎ ｉｎｄｉｃａｔｅ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ ａｔ Ｐ < ０􀆰 ０５ ｌｅｖｅｌ ｂｙ ＬＳＤ ｔｅｓｔ.
２􀆰 １􀆰 ３ 植株养分吸收
ＰＯＳ能显著提高番茄幼苗的氮、钾含量和吸收
量ꎬ氮、 钾含量依次比对照提高了 ３１􀆰 ６１％ 和
２６􀆰 ３０％ ꎬ吸收量则提高了 ６７􀆰 ３２％ 和 ７３􀆰 １１％ ꎮ
ＰＯＢ能显著提高番茄幼苗的氮、磷、钾含量和吸收
量ꎬ养分含量比对照依次提高了 ２８􀆰 ３９％ 、１１４􀆰 ２８％
和 ３３􀆰 ０３％ ꎬ吸收量依次增加了 ９７􀆰 ２８％ 、１０４􀆰 ０４％
和 １２１􀆰 ８１％ (表 ３)ꎮ
表 ３ 不同处理下番茄植株的养分含量与吸收量
Ｔａｂｌｅ ３ Ｎｕｔｒｉｅｎｔ ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ ａｎｄ ａｂｓｏｒｐｔｉｏｎ ｏｆ ｔｏｍａｔｏ ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ ａｔ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｔｒｅａｔｍｅｎｔｓ
处理
Ｔｒｅａｔｍｅｎｔ
含量 Ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ (％ ) 吸收量 Ａｂｓｏｒｐｔｉｏｎ (ｍｇ / ｐｌａｎｔ)
Ｎ Ｐ Ｋ Ｎ Ｐ Ｋ
ＣＫ １􀆰 ５５ ± ０􀆰 １８ ｂ ０􀆰 ２１ ± ０􀆰 ０１ ｂ ３􀆰 ２７ ± ０􀆰 ２３ ｂ ８􀆰 ０８ ± ０􀆰 ５４ ｂ ０􀆰 ９９ ± ０􀆰 ０５ ｂ １５􀆰 ７３ ± ０􀆰 ４１ ｂ
ＰＯＳ ２􀆰 ０４ ± ０􀆰 ２４ ａ ０􀆰 ２３ ± ０􀆰 ０２ ｂ ４􀆰 １３ ± ０􀆰 ２３ ａ １３􀆰 ５２ ± ２􀆰 ４６ ａ １􀆰 ４９ ± ０􀆰 １２ ｂ ２７􀆰 ２３ ± １􀆰 ３９ ａ
ＰＯＢ １􀆰 ９９ ± ０􀆰 ０６ ａ ０􀆰 ４５ ± ０􀆰 ０５ ａ ４􀆰 ３５ ± ０􀆰 ４５ ａ １５􀆰 ９４ ± １􀆰 ９８ ａ ２􀆰 ０２ ± １􀆰 ２６ ａ ３４􀆰 ８９ ± ４􀆰 ８７ ａ
　 　 ＣＫ: Ｂｏｎｎｅｔ液体培养基ꎻ ＰＯＳ: 寡雄腐霉孢子悬浮液ꎻ ＰＯＢ: 寡雄腐霉发酵液ꎮ 表中数据为平均数 ±标准差ꎮ 同列不同
小写字母表示经 ＬＳＤ法检验在 Ｐ < ０􀆰 ０５ 水平差异显著ꎮ ＣＫ: Ｂｏｎｎｅｔ ｌｉｑｕｉｄ ｍｅｄｉｕｍꎻ ＰＯＳ: Ｐ. ｏｌｉｇａｎｄｒｕｍ ｓｐｏｒｅｓꎻ ＰＯＢ: Ｐ. ｏｌｉ￣
ｇａｎｄｒｕｍ ｂｒｏｔｈ. Ｄａｔａ ａｒｅ ｍｅａｎ ± ＳＥ. Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｌｅｔｔｅｒｓ ｉｎ ｔｈｅ ｓａｍｅ ｃｏｌｕｍｎ ｉｎｄｉｃａｔｅ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ ａｔ Ｐ < ０􀆰 ０５ ｌｅｖｅｌ ｂｙ ＬＳＤ ｔｅｓｔ.
０３８ 植　 物　 保　 护　 学　 报 ４２ 卷
２􀆰 ２ ＰＯＢ对灰霉病菌的抑制作用
ＰＯＢ对灰霉病菌菌丝生长和孢子萌发的抑制
率分别达 ４７􀆰 ９％ ~ ７１􀆰 ８％ 和 ３１􀆰 ７％ ~ ５２􀆰 ３％ ꎮ
ＰＯＢ浓度越高ꎬ抑制灰霉病菌菌丝生长和孢子萌发
的作用愈强ꎮ 抑制作用依次为 ＰＯＢ原液 > ２ ∶ １稀释
液 > １ ∶ １稀释液ꎮ
２􀆰 ３ ＰＯＢ对番茄灰霉病的防治作用
处理 １５ ｄ 后ꎬ不接种病菌处理的番茄未发生灰
　 　 　
霉病ꎮ 接种病菌后ꎬ发病率和病情指数分别为
９４􀆰 ７％和 ５２􀆰 ５ꎮ 在 ＰＯＢ ＋接种病菌处理中ꎬ发病率
和病情指数分别降低了 ３１􀆰 ０５％和 ５７􀆰 １４％ ꎬ防治效
果为 ５７􀆰 １４％ ꎻ在接种病菌 ＋ ＰＯＢ 处理中ꎬ发病率和
病情指数分别降低了 ２２􀆰 ２８％和 ４７􀆰 ６２％ ꎬ防治效果
为 ４７􀆰 ６２％ (表 ４)ꎮ
　 　 接种灰霉病菌之后ꎬ番茄叶片中的丙二醛含量
增加ꎬＰＯＢ显著降低其增幅ꎬ但接种病菌前后施用
　 　 　
表 ４ ＰＯＢ对番茄灰霉病的防治效果
Ｔａｂｌｅ ４ Ｃｏｎｔｒｏｌ ｅｆｆｉｃａｃｙ ｏｆ Ｂｏｔｒｙｔｉｓ ｃｉｎｅｒｅａ ｄｉｓｅａｓｅ ｏｆ ｔｏｍａｔｏ ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ ｂｙ Ｐｙｔｈｉｕｍ ｏｌｉｇａｎｄｒｕｍ ｂｒｏｔｈ
试验处理
Ｔｒｅａｔｍｅｎｔ
发病率 (％ )
Ｍｏｒｂｉｄｉｔｙ
病情指数
Ｄｉｓｅａｓｅ ｉｎｄｅｘ
防治效果 (％ )
Ｃｏｎｔｒｏｌ ｅｆｆｉｃａｃｙ
对照 (ＰＤＡ液体培养基)
ＣＫ (ＰＤＡ ｌｉｑｕｉｄ ｃｕｌｔｕｒｅ ｍｅｄｉｕｍ)
０􀆰 ０ ± ０􀆰 ００ ｄ ０􀆰 ０ ± ０􀆰 ００ ｃ —
接种病菌
Ｐａｔｈｏｇｅｎｉｃ ｉｎｏｃｕｌａｔｉｏｎ
９４􀆰 ７ ± ２􀆰 ２５ ａ ５２􀆰 ５ ± ２􀆰 ４８ ａ —
ＰＯＢ ＋接种病菌
ＰＯＢ ＋ ｐａｔｈｏｇｅｎｉｃ ｉｎｏｃｕｌａｔｉｏｎ
６５􀆰 ３ ± １􀆰 ６４ ｃ ２２􀆰 ５ ± １􀆰 ５９ ｂ ５７􀆰 １４
接种病菌 ＋ ＰＯＢ
Ｐａｔｈｏｇｅｎｉｃ ｉｎｏｃｕｌａｔｉｏｎ ＋ ＰＯＢ
７３􀆰 ６ ± １􀆰 ８６ ｂ ２７􀆰 ５ ± １􀆰 ９７ ｂ ４７􀆰 ６２
　 　 表中数据为平均数 ±标准差ꎮ 同列不同小写字母表示经 ＬＳＤ法检验在 Ｐ < ０􀆰 ０５ 水平差异显著ꎮ Ｄａｔａ ａｒｅ ｍｅａｎ ± ＳＥ. Ｄｉｆ￣
ｆｅｒｅｎｔ ｌｅｔｔｅｒｓ ｉｎ ｔｈｅ ｓａｍｅ ｃｏｌｕｍｎ ｉｎｄｉｃａｔｅ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ ａｔ Ｐ < ０􀆰 ０５ ｌｅｖｅｌ ｂｙ ＬＳＤ ｔｅｓｔ.
ＰＯＢ无显著差异ꎮ 其中ꎬ不接病菌(对照)的丙二醛
含量为 ２􀆰 ５９ μｍｏｌ / ｇꎬ接种病菌后上升至 ３􀆰 ７５ μｍｏｌ /
ｇꎻ在施用 ＰＯＢ的处理中ꎬ丙二醛含量变化在 ３􀆰 １４ ~
３􀆰 ２２ μｍｏｌ / ｇ 之间ꎬ比接种病菌降低了 １６􀆰 ２７％
(ＰＯＢ ＋ 接种病菌)和 １４􀆰 １３％ (接种病菌 ＋ ＰＯＢ)
(图 ２)ꎮ
３ 讨论
本试验结果表明施用 ＰＯＳ 和 ＰＯＢ 能促进温室
番茄幼苗生长ꎬ株高、根长和生物量显著增加ꎬ类似
寡雄腐霉卵孢子活菌剂对水稻、黄瓜和胡椒等作物
生长的影响(Ｂｒｏｚｏｖａꎬ２００２ꎻ欧阳由男等ꎬ２００７ꎻ孙海
等ꎬ２０１４)ꎮ 寡雄腐霉能分泌生长活性物质(Ｐｉｃａｒｄ
ｅｔ ａｌ. ꎬ２０００ꎻＢｅｎｈａｍｏｕ ｅｔ ａｌ. ꎬ２０１２)ꎬ这可能是 ＰＯＢ
促进番茄幼苗生长的重要原因之一ꎮ 值得注意的
是ꎬＰＯＢ的促生效应显著优于 ＰＯＳꎬ证实了微生物次
级代谢产物的促生效果优于活菌剂ꎬ且不易受到环
境因素影响的观点(王爱英等ꎬ２００７)ꎮ 此外ꎬ施用
ＰＯＢ之后ꎬ番茄幼苗叶绿素含量提高ꎬ硝酸还原酶
活性和根系活力增强ꎬ有益于光合作用、氮素同化、
养分吸收ꎬ进而可提高番茄生长速率(周宝利等ꎬ
２０１０ꎻ齐曼􀅰尤努斯等ꎬ２０１１)ꎮ
迄今为止ꎬ人们发现了 １２０ 多种腐霉ꎬ绝大多数
图 ２ ＰＯＢ对番茄叶片丙二醛含量的影响
Ｆｉｇ. ２ Ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ Ｐｙｔｈｉｕｍ ｏｌｉｇａｎｄｒｕｍ ｂｒｏｔｈ ｏｎ
ｍａｌｏｎｄｉａｌｄｅｈｙｄｅ ｉｎ ｔｈｅ ｌｅａｖｅｓ ｏｆ ｔｏｍａｔｏ ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ
ＣＫ１: ＰＤＡ 液体培养基ꎻ ＣＫ２: 接种病菌ꎻ Ｄ１:
ＰＯＢ ＋接种病菌ꎻ Ｄ２: 接种病菌 ＋ ＰＯＢꎮ 图中数据为平
均数 ±标准差ꎮ 不同小写字母表示经 ＬＳＤ法检验在 Ｐ <
０􀆰 ０５ 水平差异显著ꎮ ＣＫ１: ＰＤＡ ｌｉｑｕｉｄ ｍｅｄｉｕｍꎻ ＣＫ２:
ｐａｔｈｏｇｅｎｉｃ ｉｎｏｃｕｌａｔｉｏｎꎻ Ｄ１: ＰＯＢ ＋ ｐａｔｈｏｇｅｎｉｃ ｉｎｏｃｕｌａｔｉｏｎꎬ
Ｄ２: ｐａｔｈｏｇｅｎｉｃ ｉｎｏｃｕｌａｔｉｏｎ ＋ ＰＯＢ. Ｄａｔａ ａｒｅ ｍｅａｎ ± ＳＥ.
Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｌｅｔｔｅｒｓ ｉｎｄｉｃａｔｅ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ ａｔ Ｐ < ０􀆰 ０５
ｌｅｖｅｌ ｂｙ ＬＳＤ ｔｅｓｔ.
　
为植物病原菌ꎬ导致多种植物发生猝倒、茎腐、根腐
和果腐等真菌病害ꎮ 但是ꎬ寡雄腐霉不仅对植物无
致病作用ꎬ而且还能杀抑其它致病腐霉和多种病原
１３８５ 期 贾瑞莲等: 寡雄腐霉发酵液对温室番茄生长及灰霉病的防治作用
真菌(王爱英等ꎬ２００７)ꎮ 在本试验中ꎬＰＯＢ 显著抑
制灰葡萄孢菌的菌丝生长和孢子萌发ꎮ 在 ＰＯＢ 对
番茄灰霉病防治作用试验中ꎬ灰霉病的发病率降低ꎬ
病情减轻ꎬ与赵建等(２０１４)研究结果相似ꎮ 推测
ＰＯＢ含有多种细胞壁水解酶和抗菌物质ꎬ导致灰霉
菌细胞壁水解或直接抑制了它们的生长繁殖ꎮ
接种灰霉病菌之后ꎬ番茄叶片中的丙二醛含量
增加ꎬ但 ＰＯＢ显著降低其增幅ꎬ说明 ＰＯＢ 减轻了病
菌危害ꎬ有效地保护了细胞膜(张宪政ꎬ１９９２)ꎮ 此
外ꎬ接种灰霉菌使 ＳＯＤ、ＰＯＤ和 ＣＡＴ活性提高ꎬ施用
ＰＯＢ可以进一步提高 ＰＯＤ 和 ＣＡＴ 活性ꎬ与赵建等
(２０１３ｂꎻ２０１４)报道相似ꎮ 生防菌可使植物产生诱
导性系统抗病性( ｉｎｄｕｃｅｄ ｓｙｓｔｅｍｉｃ ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅꎬＩＳＲ)ꎬ
类似病原菌引起的系统获得抗性(ｓｙｓｔｅｍｉｃ ａｃｑｕｉｒｅｄ
ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅꎬＳＡＲ)ꎮ ＩＳＲ和 ＳＡＲ的作用机制主要是促
进组织木质化ꎬ增强细胞机械屏障和产生植保素等ꎬ
涉及到过氧化物酶、苯丙氨酸解氨酶和多种氧化酶
等催化的生物化学反应(刘晓光等ꎬ２００７)ꎮ 因此ꎬ
ＰＯＢ能诱导番茄植株产生抗病性反应ꎬ促进合成抗
病物质ꎬ构成保护性屏障ꎬ防止病原菌入侵ꎬ提高抗
病能力ꎮ 在寡雄腐霉诱导植物产生抗病性的过程
中ꎬ寡雄蛋白和未知的某些小分子物质可能起主要
作用(楼兵干和张炳欣ꎬ２００５)ꎮ
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(责任编辑:高　 峰)
３３８５ 期 贾瑞莲等: 寡雄腐霉发酵液对温室番茄生长及灰霉病的防治作用