全 文 :植物营养与肥料学报 2016,22(3):736-743 doi牶1011674/zwyf.14554
JournalofPlantNutritionandFertilizer htp://www.plantnutrifert.org
收稿日期:2014-12-08 接受日期:2015-05-28 网络出版日期:2015-09-29
基金项目:福建省大宗蔬菜产业体系(2012K83139294);福建省自然科学基金(2012j01082);福建农林大学校重点建设项目(6112c0409)资助。
作者简介:叶丽萍(1989—),女,福建浦城人,硕士研究生,主要从事蔬菜遗传育种方面的研究。Email:yeliping1202@163com
通信作者 Email:lyz2003007@163com
外源 NO对铜胁迫下小白菜 SBPase基因
表达特性及其光合速率的影响
叶丽萍,钟凤林,林义章,林琳琳
(福建农林大学园艺学院,福州 350002)
摘要:【目的】本研究通过克隆小白菜光合暗反应中限制核酮糖-1,5-二磷酸(RuBP)再生的关键酶景天庚酮糖
-1,7-二磷酸酶(sedoheptulose1,7bisphosphatase,SBPase)基因,分析铜胁迫及添加外源一氧化氮(NO)供体硝普
钠(SNP)缓解铜胁迫时该基因的表达情况,并将其与对应处理下小白菜净光合速率(Pn)的变化情况结合在一起进
行分析,以期为全面了解外源NO缓解铜胁迫植物光合作用机理提供理论依据。【方法】以小白菜品种“上海青”3
4片真叶大的幼苗为材料,采用RT-PCR技术克隆小白菜SBPase基因,铜处理浓度为200μmol/L,外源 NO供
体SNP浓度为300μmol/L,同时设置相关的4个对照组排除其他可能因素的干扰,在添加处理液后的0、4、8、12
d上午九点测定各处理小白菜相同节位叶片的净光合速率,并利用实时荧光定量PCR技术检测在对应的处理时间
及对应节位小白菜叶片中SBPase基因的表达情况。试验环境条件为光照强度200μmol/(m2·s),光周期12h,温
度25℃/18℃。【结果】1)克隆得到小白菜SBPase基因(Genbank登录号:AHY189741),开放阅读框为1182bp,编
码393个氨基酸,蛋白质分子量为4234kD,理论等电点为585。2)序列分析表明其含有氧化还原活性位点,包含
一个具有59个氨基酸残基的叶绿体转移肽序列。小白菜 SBPase基因推导的氨基酸序列与其他物种中已分离的
SBPase编码的氨基酸序列具有很高的同源性。3)实时荧光定量 PCR分析表明,SBPase基因在铜胁迫下的小白菜
叶片中表达量下降,且随着胁迫时间的延长下降程度加剧;而在铜胁迫的基础上添加外源NO可以在一定程度上缓
解铜胁迫引起的小白菜叶中SBPase基因表达量的下降。4)铜胁迫下小白菜叶片Pn显著下降,且随着胁迫时间的
延长,Pn下降加剧,施加外源NO后Pn的下降得到一定程度的缓解,各处理下 Pn的变化与 SBPase基因表达量变
化趋势一致。【结论】铜胁迫及在铜胁迫的基础上添加外源NO后小白菜叶片中SBPase基因表达量的变化,可能是
影响对应条件下小白菜叶片的净光合速率变化的原因之一。
关键词:小白菜;铜胁迫;一氧化氮;景天庚酮糖-1,7-二磷酸酶;实时荧光定量PCR
中图分类号:S6343601;Q94578 文献标识码:A 文章编号:1008-505X(2016)03-0736-08
EfectsofexogenousnitricoxideonSBPasegeneexpressioncharacteristicsand
photosyntheticrateofBrassicachinensisL.undercopperstress
YELiping,ZHONGFenglin,LINYizhang,LINLinlin
(ColegeofHorticulture,FujianAgricultureandForestryUniversity,Fuzhou350002,China)
Abstract:【Objectives】Inordertoprovideatheoreticalbasisforcomprehensiveunderstandingmechanismof
addingexogenousnitricoxide(NO)toaleviatethedeclineofnetphotosyntheticrate(Pn),thegeneof
sedoheptulose1,7bisphosphatase(SBPase)whichisoneofthekeyenzymestorestrictRuBPregenerationin
calvincyclewascloned,andthediferentexpressionoftheSBPasegeneinBrasicachinensisL.leavesunder
copperstressandaddingtheSNPwasanalyzedcombinedwiththenetphotosyntheticratechanges.【Methods】
TheSBPasegeneofBrasicachinensisL.wasclonedbyRT-PCR,andseedlingsofBrasicachinensisL.(named
Shanghaigreen)withthreetofourrealleaveswereusedasmaterials.Copperconcentrationwas200μmol/L,and
theSNPconcentrationwas300μmol/L.Atthesametime,fourrelatedgroupsweresettoexcludethedisruptive
3期 叶丽萍,等:外源NO对铜胁迫下小白菜SBPase基因表达特性及其光合速率的影响
factors.ThePnandtheexpressionofSBPasegeneofBrasicachinensisL.leavesatthesamepositionandmoment
afterthetreatmentof0,4,8and12daysweredetermined.Theenvironmentalconditionsoftheexperimentwere
lightintensity,200μmol/(m2·s);photoperiod,12h;andtemperature,25℃/18℃.【Results】1)Thesequence
oftheopenreadingframeofSBPasegeneis1182bp,encoding393aminoacids.Themolecularweightofthe
predictedproteinis4234kDandthetheoreticalisoelectricpointis5852)Thesequenceanalysisshowthatit
containsaredoxactivesiteanda59-aminoacidchloroplasttransferpeptide.Theaminoacidsequencehashigh
homologywithotherSBPaseseparatedfromotherspecies.3)TheqRT-PCRanalysisshowthattheSBPasegene
expressioninBrasicachinensisL.leavesisdeclinedundercopperstress,andwithtimeextendingthedegreeof
declineisaggravated.Besides,theexpressionofSBPasegeneisincreasedaftertheadditionofNO.4)The
applicationofexogenousNOincreasesthePnofBrasicachinensisL.leavesunderthecopperstress,andthe
variationtendencyofPnandtheexpressionofSBPasegeneareinagoodagreement.【Conclusions】Theexpression
ofSBPasegeneinBrasicachinensisL.leavesischangedunderthecopperstressandtheadditionofNO,which
maybeoneofthecausesofthechangeofPninBrasicachinensisL.underthecopperstressandtheaddition
ofNO.
Keywords牶BrasicachinensisL.牷copperstress牷NO牷sedoheptulose1牞7bisphosphatase牷realtimePCR
光合作用是植物生长发育的基础,它的强弱对
于植物的生长、产量及抗逆性有着重要的影响。光
合暗反应又称为卡尔文循环,是高等植物碳固定的
基本途径,其反应过程由RuBP为起点至RuBP再生
结束。景天庚酮糖 -1,7二磷酸酶(sedoheptulose
1,7-bisphosphatase)是限制光合作用卡尔文循环
中RuBP再生速率的关键酶,也是植物光合作用途
径的主要限速酶之一[1]。CO2受体 RuBP由景天庚
酮糖-7-磷酸转变而来,景天庚酮糖 -7-磷酸由
SBPase酶不可逆地催化景天庚酮糖 -1,7-二磷酸
去磷酸化生成[2]。前人研究表明[3-5],将 SBPase基
因反向导入烟草中,发现SBPase活性的微小下降即
可导致反义转基因植株碳同化速率的显著下降,植
株生长受到抑制。Lawson等[6]研究表明,当 SBPase
活性或SBPase基因表达量下降时,植物的光合能
力,生长速度以及生物量的积累均下降。可见
SBPase酶对光合作用强弱起着重要的调控作用。
铜是植物生长发育所必需的微量元素,但是过
量的铜却会对植物产生毒害作用[7]。近年来随着
农业生产上含铜杀菌剂的频繁使用、铜矿的过度开
采及工业生产中含铜污染物的大量排放,使得土壤
中的铜含量越来越高,影响着蔬菜的品质和产
量[8-11]。植物受到铜胁迫后叶绿体结构发生明显变
化,光合速率明显下降[12]。外源 NO是一种生物活
性气体分子[13],研究表明其在保护植物抵抗重金属
毒害等非生物胁迫引起的植物光合作用的下降方面
有着重要的作用[14-16]。
目前,关于外源 NO缓解铜胁迫下植物光合作
用的相关研究主要集中在植物形态及生理生化指标
变化方面,研究表明[14,17-18]施加适宜浓度的外源
NO可以显著提高番茄、玉米、黄瓜、油菜在铜、镉
胁迫下的净光合速率,但关于外源 NO对铜胁迫下
植物光合碳同化过程重要酶对应基因的表达是否产
生影响,及其变化情况与光合作用变化的对应关系
研究较少。小白菜(BrasicachinensisL.)为十字花
科芸薹属蔬菜,营养丰富、味道鲜美,适应性强,四
季均有,栽培周期短,广泛栽培,备受人们喜爱。本
研究以小白菜为试验材料,克隆小白菜的SBPase基
因序列,并研究外源 NO对铜胁迫下小白菜 SBPase
基因表达量的变化与小白菜光合速率的对应关系的
影响,为全面了解外源 NO缓解铜胁迫植物光合作
用机理提供一定的理论依据。
1 材料与方法
11 试验材料
试验在福建农林大学园艺学院温室内进行。供
试小白菜品种为“上海青”,采用穴盘育苗,待幼苗
长到3 4片真叶时,选取生长一致、健壮的幼苗将
其移至装有12L通用叶菜类水培营养液的塑料盆
中,每盆18株,缓苗5d后移入处理液中。NO供体
SNP购自 Sigma公司。处理条件为光照强度 200
μmol/(m2·s)、光周期12h、温度25℃/18℃。
12 试验设计
试验共设 6个处理:1)对照,完全营养液
(CK);2)200μmol/LCuSO4·7H20(Cu);3)200
μmol/LCuSO4·7H20+300μmol/LSNP(Cu+S);
737
植 物 营 养 与 肥 料 学 报 22卷
4)200μmol/LCuSO4·7H20+300μmol/LNaNO2
+300μmol/LNaNO3(Cu+N);5)200μmol/L
CuSO4·7H20+300μmol/LK3[Fe(CN)6](Cu+
F);6)200μmol/LCuSO4·7H20 +300μmol/L
SNP+25μmol/LNitroLarginine(NO抑制剂)(Cu
+S+L)。每个处理设3次重复,每4d更换一次营
养液(每次取样后更换营养液),在处理后的0、4、
8、12d上午九点测定各处理植株第3片完全展开
的功能叶的净光合速率,并取相同节位的功能叶用
液氮速冻后保存于-80℃的冰箱中备用。
13 测定项目与方法
1)小白菜叶片净光合速率测定 采用美国生
产的CI340便携式光合测定仪,于上午九点测定植
株第3片完全展开的功能叶的净光合速率(Pn)。
2)小白菜叶片总 RNA提取与 cDNA合成 采
用 Trizol法提取小白菜叶片总 RNA(Trizol购于
Invitrogen公司),并对所获得的总 RNA进行电泳检
测和 OD值的测定。利用 RevertAitFirstStrand
cDNASynthesisKit试剂盒(Thermo公司),将所提取
的质量较高的RNA反转录成cDNA,作为模板。
3)SBPase基因的克隆 RTPCR引物序列为,
SBPaseF: 5′ATGGAGACCAGCATCGCGTGCT3′;
SBPaseR:5′AGTTTCTAAGCGGTAACTCC3′。
RTPCR反应体系为:反应体系为1μLcDNA、
1μLSBPaseF、1μLSBPaseR、25μL10×Ex
taqbufer、02μLExTaq(5U/μL)、05μLdNTP
(10mmol/L)、加ddH2O至体积25μL。RTPCR反
应步骤:94℃ 5min;94℃ 45s,52℃ 40s,72℃ 75
s,共35个循环;72℃ 10min。
4)SBPase基因的生物信息学分析 利用相关
软件分析小白菜 SBPase编码的氨基酸序列,即用
Blast(htp://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi)进
行同源序列搜索;用ProtParam(htp://web.expasy.
org/protparam/)预测基本的理化性质;用 ProScal
(htp://web.expasy.org/protscale/) 默 认 算 法
(Hphob./Kyte&Doolitle)预测该蛋白的疏水性;用
SignalP41 Server(htp://www.cbs.dtu.dk/
services/SignalP/)预测信号肽;应用DNAMAN进行
序列比对;用MEGA52构建系统进化树。
5)SBPase基因的特异性表达分析 分别提取
处理0、4、8、12d的小白菜叶片总RNA,控制用于
逆转录的 RNA起始浓度相同,用 SuperscriptTMШ
FirstStrandcDNASynthesisSystemforRTPCR试剂
盒合成cDNA。利用小白菜 actin为内参基因(引物
为actinqF5′GTCCTGTTCCAGCCTTCGTTC3′,actin
qR5′CAAGTCCTTCCTGATATCCACGTC3′)。根据
已得到的小白菜SBPase基因的ORF序列设计qRT
PCR特异性引物(SBPaseqF:5′AGGTGGGTTTAGT
GTGGCATTTG 3′,SBPaseqR:5′CTTGATCTCC
TCCCGTGACTCC3′)。用SYBRPremixExTaq试剂
盒进行qRTPCR检测该基因在不同处理、相同处
理不同处理时长的表达情况。
qRTPCR反应体系为:1μLcDNA、04μL上
游引物、04μL下游引物、10μLSYBR Premix
ExTaqTM(TliRNaseHPlus)、加 ddH2O2至体积20
μL。RealtimePCR反应步骤采用两步法,95℃ 10
min,95℃ 15s,58℃ 30s(回到第二步共40个循
环)。
2 结果与分析
21 外源 NO对铜胁迫下小白菜叶片净光合速率
的影响
由图1可看出,与 CK相比,200μmol/L(Cu)
铜胁迫4d后小白菜叶片 Pn出现明显的下降,且
随着胁迫时间的延长,Pn下降加剧。在铜胁迫的
基础上添加外源 SNP后(即 Cu+S),由铜胁迫引
起的小白菜 Pn的下降得到一定程度的缓解,但仍
低于 CK处理的小白菜叶片的 Pn。在添加外源
SNP的同时添加 NO抑制剂处理(Cu+S+L)后,
SNP的缓解效果被消除。在铜处理液中加入 300
μmol/LNaNO2/NaNO3(Cu+N)或 300μmol/L
K3[Fe(CN)6](Cu+F),与只添加铜胁迫处理差
异不显著。说明外源 NO可以在一定程度上缓解
铜胁迫引起的小白菜 Pn的下降。SNP分解的产
物除 NO外,还有 NO-2 /NO
-
3 和 Fe(CN)
2-
5 等阴离
子,故在试验对照组中加入与 SNP相同浓度的
NaNO2/NaNO3和K3[Fe(CN)6]作为对照,二者在
本试验条件下均不能产生 NO。
22 SBPase基因的克隆及序列分析
利用RT-PCR技术获得SBPase基因开放阅读
框的cDNA序列(图2),长为1182bp(GenBank登录
号:AHY189741),推测其编码393个氨基酸,含有
起始密码子ATG和终止密码子TAG(表1)。
23 生物信息学分析
用 ProtParam 软件预测结果显示,小白菜
SBPase基因编码的蛋白质分子量为4234kD,理论
837
3期 叶丽萍,等:外源NO对铜胁迫下小白菜SBPase基因表达特性及其光合速率的影响
图1 外源NO对铜胁迫下小白菜叶片净光合速率的影响
Fig.1 EfectsofexogenousnitricoxideonthenetphotosyntheticrateinleavesofBrassicachinensisL.underthecopperstress
[注(Note):柱上不同字母表示处理间差异达5%显著水平Diferentletersabovethebarsmeansignificantdiferenceatthe5%level.]
表1 小白菜SBPase基因核苷酸序列及推导氨基酸序列
Table1 NucleotiodesequenceanddeducedaminoacidsequenceofBrassicachinensisL.SBPase
序号 SBPase基因核苷酸序列及推导的氨基酸序列
937
植 物 营 养 与 肥 料 学 报 22卷
图2 SBPase基因ORF区段扩增结果
Fig.2 AmplificationproductofSBPase
[注(Note):M—DL2000;A—SBPase]
等电点为 585,所带的正电荷总数(Arg+Lys)为
39,负电荷总数(Asp+Glu)为43为碱性蛋白。理
论推导半衰期是30h,不稳定指数为3419,为稳定
蛋白。
利用 Expasy对蛋白质亲水性、疏水性进行分
析,结果显示,疏水性氨基酸占4244%,亲水性氨
基酸占5756,该蛋白为亲水性蛋白。由图3可以
看出,在图中所有的 SBPase氨基酸序列中,有5个
Cys是保守的,其中的2和3形成CGGTAC结构,这
一结构被认为是很多酶的氧化还原活性位点,参与
光的调节反应[19-20]。由图3还可以发现,不同植物
的SBPase氨基酸序列的N-末端同源性较低,但它
们都具有叶绿体蛋白转移肽的共同特征,即含有较
图3 小白菜SBPase基因推测的氨基酸序列与其他植物中该序列的同源性比对
Fig.3 AlignmentofaminoacidsequenceofBrassicachinensisL.SBPasewithotherspecies
[注(Note):NP0012676581—黄瓜Cucumissativus;XP0063556541—马铃薯Solanumtuberosum;
NP1911391—拟南芥Arabidopsisthaliana;XP0022630491—葡萄Vitisvinifera;AHY189741—小白菜 BrasicachinensisL.]
多的丝氨酸,较少的天冬氨酸、谷氨酸。利用
ChloroP11PredictionServer分析发现,由小白菜
SBPase基因推导的氨基酸序列含有一个包含59个
氨基酸残基的叶绿体转移肽序列,这与前人的研究
结果一致[2,21]。
将小白菜 SBPase编码的蛋白与 GenBank中登
录的12个物种的 SBPase蛋白进行聚类分析,构建
SBPase进化树。结果如图4所示,小白菜SBPase推
测的氨基酸序列与同为十字花科的拟南芥 SBPase
的亲缘关系最近,同源性为 9567%。同玉米的
SBPase的亲缘关系最远,同源性为7375%。
24 外源NO对铜胁迫下小白菜叶片中SBPase基
因表达特性的影响
由图 5可以看出,200μmol/L的铜处理小白
菜,胁迫4d时小白菜叶片中SBPase基因的表达量
显著下降,且随着处理时间的延长小白菜叶片中
SBPase基因的表达量下降程度加剧,而在铜胁迫的
基础上同时外施300μmol/L的SNP处理(Cu+S),
能提高铜胁迫下小白菜叶片SBPase基因的表达量,
但其表达量仍低于对照处理。在添加NO抑制剂处
理后(Cu+S+L),SNP的缓解效果被消除。在铜处
理液中加入300μmol/LNaNO2/NaNO3(Cu+N)或
047
3期 叶丽萍,等:外源NO对铜胁迫下小白菜SBPase基因表达特性及其光合速率的影响
图4 小白菜SBPase氨基酸序列与其他物种SBPase氨基酸序列的系统进化树分析
Fig.4 PhylogenetictreeofaminoacidsequencesofBrassicachinensisL.SBPasewithotherspecies
图5 外源NO对铜胁迫下小白菜叶片中SBPase基因表达的影响
Fig.5 EfectsofexogenousnitricoxideontheexpressionofSBPaseinleavesofBrassicachinensisL.underthecopperstress
[注(Note):柱上不同字母表示差异达5%显著水平Diferentletersabovethebarsmeansignificantdiferenceatthe5%level.]
300μmol/LK3[Fe(CN)6](Cu+F),与只添加铜胁
迫处理的差异不显著。说明外源NO可以在一定程
度上缓解铜胁迫引起的小白菜叶片中 SBPase基因
表达量的下降。
3 讨论
前人研究表明,在烟草、番茄、水稻中 SBPase
基因表达量下降及酶活下降时,其净光合能力、生
长速度及生物量的积累都会明显下降[3-6],表明
SBPase基因表达量及酶活的变化会对植物光合作
用的变化产生相应的影响。Wang等[15]研究表明低
温胁迫下,番茄叶片的SBPase基因表达量及SBPase
酶活性降低,且番茄叶片的 Pn出现同样的变化趋
势,表明部分非生物胁迫引起的植物叶片中的
SBPase基因表达量下降,是植物在对应胁迫下光合
速率下降的原因之一。本研究结果表明,铜胁迫4d
就会引起小白菜叶片中的 SBPase基因表达量出现
显著的下降,且随着胁迫时间的延长,SBPase表达
量下降加剧;在铜胁迫4d时小白菜叶片的Pn也降
低,且随着胁迫时间的延长 Pn下降加剧,即小白菜
受到铜胁迫时SBPase表达量与Pn的值均呈下降趋
势。在铜胁迫的基础上施加适宜浓度的 SNP处理
后小白菜叶片的SBPase的表达量增加,且小白菜叶
片中Pn也出现同样的升高趋势。崔金霞[22]研究也
表明适宜浓度的SNP处理,可以提高黄瓜叶片中多
个参与卡尔文循环过程的酶对应基因的表达水平。
本研究结果表明小白菜叶片中 SBPase表达量的变
化可能是引起小白菜在铜胁迫及铜胁迫的基础上添
加外源NO时小白菜叶片净光合速率出现相应的降
低或升高的原因之一。
147
植 物 营 养 与 肥 料 学 报 22卷
NO缓解植物逆境胁迫的生理效应往往与其对
ROS代谢的调控有关,并涉及有关的信号转导。王
丽娜等[23]研究表明,外源 NO显著提高了铜胁迫下
番茄幼苗叶片保护酶编码基因 mRNA的表达量,诱
导保护酶同工酶的表达,提高了植株抵御铜毒害的
能力。陈蕤等[24]研究表明,一定浓度的 NO供体
SNP可以通过调节 CAT、SOD和 POD活性,抑制
O-2 和H2O2生成,缓解百草枯对玉米胚根的胁迫。
推测在铜胁迫的基础上外源添加 NO时,小白菜叶
片中SBPase基因表达量增加,可能是 NO诱导铜胁
迫下小白菜叶片保护酶及保护酶的同工酶的表达,
减少ROS在其体内的累积,或通过诱发一系列信号
转导过程来调节一些基因的表达。但是铜胁迫使得
小白菜叶片中的SBPase基因表达量下降,及在铜胁
迫基础上外源添加 NO后 SBPase表达量增加的具
体调控机制尚不清楚,有待进一步研究。
参 考 文 献:
[1] AnjaS,MarcoB,RudigerH.Overexpressionofthepotential
herbicidetargetsedoheptrlosefromspinaciaoleraceaintransgentic
tobacco[J].MolecularBreeding,2002,99(1):53-61
[2] 冀宪领,盖英萍,马建平,等.桑树景天庚酮糖 -1,7-二磷
酸酶基因的克隆、原核表达与植物表达载体的构建[J].林业
科学,2008,44(3):62-69.
JiXL,GaiYP,MaJP,etal.Cloningandprokaryotic
expressionofthesedoheptulose1,7bisphosphatasecDNAfrom
mulberyandconstructionofplantexpressionvector[J].Scientia
SilvaeSinicea,2008,44(3):62-69
[3] Raines,CA,HarisonEP,OlcerH,etal.Investigatingtherole
ofthethiolregulatedenzymesedoheptulose1,7-bisphosphatase
inthecontrolofphotosynthesis[J].PlantPhysiology,2000,110
(2):303-308
[4] OlcerH,LloydJC,RainesCA,etal.Photosyntheticcapacityis
diferentialyafected by reductionsin sedoheptulose1, 7
bisphosphataseactivityduringleafdevelopmentintransgentic
tobaccoplants[J].PlantPhysiology,2001,125(2):982-989
[5] RainesCA.Thecalvincyclerevisited[J].Photosynthesis
Research,2003,75(1):1-10
[6] LawsonT,BryantB,LefebverS.DecreasedSBPaseactivityalters
growthanddevelopmentintransgenictobaccoplants[J].Plant
CelandEnvironment,2006,29(1):48-58
[7] 王松华,杨志敏,徐朗莱.植物铜毒害及其抗逆性机制研究
进展[J].生态环境,2003,12(3):336-341.
WangSH,YangZM,XuLL.Researchprogressofplantcopper
toxicity and mechanism ofresistance[J]. Ecology and
Environment,2003,12(3):336-341
[8] 林义章,徐磊,林碧英.Cu胁迫对小白菜保护酶系统及其他
相关抗性指标的影响[J].福建农林大学学报,2007,36(4):
369-372.
LinYZ,XuL,LinBY.EfectsofcopperstressonBrasica
chinensisL.resistantenzymesystemandotherresistantindexes
[J].JournalofFujianAgricultureandForestryUniversity,2007,
36(4):369-372
[9] 徐磊,林义章.铜胁迫对小白菜品质相关指标的影响[J].中
国农学通报,2009,25(14):161-163.
XuL,LinYZ.ThechangeofBrasicachinensisL.quality
indicatorsunderthecopperstress[J].ChineseAgricultural
ScienceBuletin,2009,25(14):161-163
[10] 林义章,张淑媛,朱海生.铜胁迫对小白菜叶肉细胞超微结
构的影响[J].中国生态农业学报,2008,16(4):948-951.
LinYZ,ZhangSY,ZhuHS.Efectofcopperstressonultra
structureofmesophylcelsinChinesecabbage[J].Chinese
JournalofEcoAgriculture,2008,16(4):948-951
[11] 林义章,徐磊.铜污染对高等植物的生理毒害作用研究[J].
中国生态农业学报,2007,15(1):201-204.
LinYZ,XuL.Physiologicaltoxicityofcopperpolutionto
higherplant[J].ChineseJournalofEcoAgriculture,2007,15
(1):201-204.
[12] OuzounidouG. Rootgrowth and pigmentcomposition in
relationshiptoelementuptakeinSilenecompactPlantstreated
withcopper[J].PlantNutrition,1994,17(6):933-943
[13] 史庆华,赖齐贤,朱祝军,等.一氧化氮在植物中的生理功
能[J].细胞生物学杂志,2005,27(1):39-42.
ShiQH,LaiQX,ZhuZJ,etal.Thephysiologicalfunctionof
nitricoxideinplant[J].ChineseJournalofCelBiology,2005,
27(1):39-42
[14] 余肇端.外源 NO缓解黄瓜、油菜幼苗镉胁迫的生理效应
[D].泰安:山东农业大学硕士论文,2010.
YuZD.Physiologicalaleviatingefectsofexogenousnitricoxide
onthecucumberandChinesecabbageseedlingsundercadmium
stress[D].Tai’an:MSThesisofShandongAgricultural
University,2010
[15] WangML,BiHG,LiuPP,etal.Molecularcloningand
expressionanalysisofthegeneencodingsedoheptulose1,7
bisphosphatasefromcucumisstativus[J].ScientiaHorticulturae,
2011,129(3):414-420
[16] 樊洪泓,李延春,李正鹏,等.强光胁迫下外源 NO对霍山
石斛叶绿素荧光和抗氧化系统的影响[J].园艺学报,2008,
35(8):1215-1220.
FanHH,LiYC,LiZP,etal.Efectsofexogenousnitric
oxideonthechlorophyⅡ fluorescenceandantioxidantsystemof
dendrobium huoshanenseunderhighlightstress[J].Acta
HorticulteraeSinica,2008,35(8):1215-1220
[17] 张义凯,崔秀敏,杨守祥,等.外源 NO对镉胁迫下番茄活
性氧代谢及光合特性的影响[J].应用生态学报,2010,21
(6):1432-1438.
ZhangYK,CuiXM,YangSX,etal.Efectsofexogenous
nitricoxideonactiveoxygenmetabolism andphotosymthetic
characteristicsoftomatoseedlingundercadmium stress[J].
ChineseJournalofAppliedEcology,2010,21(6):1432-1438
[18] 钟韬韬.外源 NO对铜胁迫玉米幼苗生理生化特性的影响
247
3期 叶丽萍,等:外源NO对铜胁迫下小白菜SBPase基因表达特性及其光合速率的影响
[D].南昌:南昌大学硕士论文,2012.
ZhongTT.Physiologicalandbiochemicalefectsofexogenous
nitricoxideonseedlingsofmaize(ZeamaysL.)undercopper
stress[D].Nanchang:MSThesisofNanchangUniversity,2012
[19] FoxB S,WalshC T.Mercuricreductase:homologyto
glutathione reductase and lipoamide dehydrogenase.
Iodoacetamidealkylationandsequenceoftheactivesitepeptide
[J].Biochemistry,1983,22(17):4082-4088
[20] DunfordRP,CatleyMA,RainesCA,etal.Expressionof
wheatsedoheptulose1,7bisphosphataseinE.coliandafinity
purificationoffunctionalprotein[J].ProteinExpressionand
Purification,1998,14(1):139-145
[21] NishizawaA N,BuchananB B.EnzymeregulationinC4
photosynthesis.Purificationandpropertiesofthioredoxinlinked
fructosebisphosphataseandsedoheptulosebisphosphatasefrom
cornleaves[J].JournalBiologicalChemistry,1981,256(12):
6119-6126
[22] 崔金霞.一氧化氮和MAPK在油菜素内酯诱导黄瓜抗氧化防
御中的作用[D].杭州:浙江大学博士论文,2010.
CuiJX.TheroleofnitricoxideandMAPKinbrassinosteroids
inducedantioxidantdefenseinCucumissativus[D].Hangzhou:
PhDDissertationofZhejiangUniversity,2010
[23] 王丽娜,杨凤娟,王秀峰,等.外源 NO对铜胁迫下番茄幼
苗生长及其抗氧化酶编码基因 mRNA转录水平的影响[J].
园艺学报,2010,37(1):47-52.
WangLN,YangFJ,WangXF,etal.Efectsofexogenous
nitricoxideongrowthandtranscriptionalexpressionofantioxidant
enzymemRNAintomatoseedingsundercopperstress[J].Acta
HorticulturaeSinica,2010,37(1):47-52
[24] 陈蕤,崔盛,唐江川,等.NO对百草枯胁迫下玉米胚根氧化
损伤的效应[J].云南农业大学学报,2006,21(4):479
-485.
ChenR,CuiS,TangJC,etal.Efectsoftreatmentofnitric
oxide(NO)onactiveoxygenspeciesdamagesinmaizeradical
underMVstress[J].JournalofYunnanAgriculturalUniversity,
2006,21(4):479-485.
347