全 文 :收稿日期:!""#$"%$!& 接受日期:!""#$"&$!!
基金项目:教育部高校博士点基金项目(!""’"’"#"!");江苏省科技厅项目(()!""’’"&,(*!""!’"%)资助。
作者简介:张古文(+,-+—),男,山西运城人,博士研究生,主要从事蔬菜逆境生理和生物技术研究。
./0:"!1$-%’,&%#!,*23450:674899:;/8<+!&= >?3。 ! 通讯作者 ./0:"!1$-%’,&%#!,*23450:@067:<8A4:B /C:B >8
!"(#$%)& 胁迫对番茄嫁接苗叶片不同形态
多胺含量的影响
张古文,朱月林!,刘正鲁,魏国平,胡春梅
(南京农业大学园艺学院,江苏南京 !+"",1)
摘要:以耐盐番茄品种“影武者”为砧木,“宝大 ,"’”为接穗,研究了在 -" 33?0 D E )4(FG’)!胁迫 +" C条件下,嫁接苗
与自根苗生长和叶片不同形态(游离态、结合态和束缚态)多胺含量的差异。结果表明,)4(FG’)! 胁迫后,嫁接苗的
生物量显著高于自根苗。整个胁迫期内嫁接苗叶片 ’种形态的腐胺、亚精胺和精胺含量均呈上升趋势;自根苗叶
片 ’种形态的腐胺含量下降;游离态、结合态亚精胺和精胺含量上升;束缚态亚精胺含量下降,束缚态精胺含量变
化不显著。以上结果表明,’种形态的腐胺、束缚态亚精胺和精胺在番茄嫁接苗叶片耐盐性方面发挥重要作用。
关键词:番茄;)4(FG’)!胁迫;嫁接;多胺
中图分类号:H&%+=! 文献标识码:I 文章编号:+""-$1"1J(!""-)"!$"’1#$"1
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8#3 9’,.&:V?34V?;)4(FG’)! SVW/SS;9W4ZV589;R?0@4358/S
近 !"年来,我国蔬菜设施栽培发展迅速,然而
随着种植年限的增加、化肥施用过量以及设施内独
特的水分运行方式等原因,使许多设施发生了严重
的土壤次生盐渍化现象,导致生产效益下降,产品品
质变劣,严重影响了设施生产的可持续发展[+]。研
究表明,在设施的次生盐渍化土壤中,阴离子主要以
FG$’ 为主,占阴离子总量的 ]!#&],阳离子以
)4! ^为主[!]。为提高蔬菜的耐盐性,人们用常规育
种的方法做了大量尝试,但效果并不理想[’]。发达
国家设施蔬菜生产的成功经验表明,嫁接是提高蔬
菜作物耐盐性的一条有效途径[%]。
多胺是研究较多的一种植物生长发育调节物
植物营养与肥料学报 !""-,+%(!):’1# $ ’&+
""""""""""""""""""""""""""""""""""""""""""""""""""""""""""""""
\048V F:VW5V5?8 48C _/WV5056/W H>5/8>/
质,广泛分布于植物体内,在植物生长发育以及对环
境的应激反应中发挥重要作用,当植物遭受盐胁迫
后,不同形态的多胺之间相互转化,从而提高植株的
耐盐性[!]。研究表明,氮素过量时,植物叶片积累大
量的游离态氨基酸,其中主要是精氨酸["]。精氨酸
是多胺合成的前体,具有调节多胺代谢的作用。
#$%&’()等[*]的研究表明,+,-+./ 胁迫下,北美红枫
(!"#$ $%&$%’)叶片游离态多胺含量与氮素水平呈显
著正相关。但有关高氮胁迫下,嫁接番茄叶片不同
形态多胺含量的变化情况尚未见报道。本试验以番
茄嫁接苗和自根苗为材料,研究 0)(+./)1 胁迫下两
者叶片内 /种形态多胺含量的变化,以探明不同形
态多胺在嫁接番茄耐盐性方面所起的作用。
! 材料与方法
!"! 试验设计
供试的番茄( ()"*+#$,-"*. #,"%/#.0%’ #$22 3)砧木
是日本设施栽培上专用的耐盐品种“影武者”,接穗
为“宝大 45/”。试验在南京农业大学温室内进行。
155"年 6月 *日砧木种子浸种催芽,! 7后接穗种子
浸种催芽。出芽后分别播于塑料营养钵,蛭石作基
质。真叶展开后浇 8 9 6浓度日本园试营养液。4月
8/日,当砧木具有 -!! 片真叶,接穗具有 /!- 片
真叶时进行嫁接,嫁接操作和嫁接苗的培育按文献
[6]的方法进行。4 月 1* 日,挑选生长一致的嫁接
苗和自根苗移栽于塑料桶中,每桶 8 株。用 8 9 - 浓
度日本园试营养液栽培,每 - 7 更换一次营养液。
85 月 1" 日,当幼苗具有 6! 4 片真叶时进行
0)(+./)1胁迫处理,即:8)营养液栽培嫁接苗(:8);
1)营养液栽培嫁接苗 ; 0)(+./)1(:1);/)营养液栽
培自根苗(.8);-)营养液栽培自根苗 ; 0)(+./)1
(.1)。每处理 *株,/次重复,随机排列。0)(+./)1
浓度为 65 <<&2 9 =,将固体 0)(+./)1 直接溶于 8 9 -
浓度日本园试营养液中,处理时间 85 7。
!"# 测定项目及方法
生物量的测定:0)(+./)1 处理后第 85 7,将植
株从栽培桶中取出,用去离子水洗净吸干后分为地
上部和地下部,称其鲜重,之后放入烘箱 85!>杀酶
8! <$%,再在 *!>下烘干至恒重,称其干重。
0)(+./)1处理前(胁迫时间为 5 7)取样 8次,处
理开始后,每 1 7取自上向下数第 -片完全展开叶
测多胺含量,各处理重复 /次。
多胺提取方法参照 ?&%@等[4]的方法进行。取
5A! @叶片加入 85 <=预冷的 !B高氯酸(C0D),冰
浴研磨后浸提 8 (,8"555 E 9 <$%(->)离心 /5 <$%,分
离上清液和沉淀。
游离态多胺提取方法:吸取 5A! <=上清液加
入 8 <= 1 <&2 9 =的 +).,,加 85!=苯甲酰氯,涡旋后
/*>水浴反应 /5 <$%,加饱和 +)02 1 <=和 1 <=乙
醚,8555 E 9 <$%离心 ! <$%,然后吸 8A! <=醚相放入 1
<=离心管中,在超净工作台上吹干后,用 855!=甲
醇溶解,过 5A-!!<滤膜,吸取 85!=进样(用同样的
方法作多胺标准曲线)。
结合态和束缚态多胺提取方法:将沉淀用 1 <=
8 <&2 9 =的 +).,悬浮,分别取 1 <=的上清液和沉
淀悬浮液,各加入 1 <= 81 <&2 9 =的 ,02,885>下水
解 1- (,过滤除去碳化材料,*5>干燥后溶于 8 <=
!B的高氯酸中,各吸 5A! <=重复游离态多胺的提
取方法。
用日本产 ?($<)7FG =0H85DI 型高效液相色谱
仪进行多胺含量的测定。"-B甲醇(J 9 J)为流动相,
流速 5A* <= 9 <$%,柱温(1! K 8)>。?($<)7FG ?CL H
85D检测器,波长 1!- %<。
数据用 ?D?软件进行方差分析,并对平均数用
LG%’)%’M新复极差法进行多重比较。
# 结果与分析
#"! $%(&’()#胁迫对番茄嫁接苗和自根苗生物量
的影响
0)(+./)1 胁迫对番茄嫁接苗(:1)和自根苗
(.1)的生长均产生显著的抑制作用,导致两者的生
物量积累显著下降(表 8)。但嫁接苗地上部鲜重和
干重分别是后者的 8A*5和 8A66倍;地下部鲜重和
干重分别是后者的 1A55 和 1A5! 倍,说明嫁接苗在
0)(+./)1 胁迫下生长受抑制的程度较小。另外,
0)(+./)1胁迫后,:1和 .1的根冠比、地上部和地下
部的干物率均显著提高,:1 显著高于 .1。说明嫁
接苗的渗透调节能力较强,对盐胁迫的适应性强于
自根苗。
#"# $%(&’()#胁迫对番茄嫁接苗和自根苗叶片不
同形态腐胺含量的影响
表 1可知,0)(+./)1 胁迫前,游离态腐胺含量
嫁接苗(:8)与自根苗(.8)的差异不显著;0)(+./)1
胁迫后,嫁接苗(:1)含量上升,而自根苗(.1)下降。
从胁迫第 1 7起 :1显著高于 :8和 .1;从胁迫第 -
7起 .1显著低于 .8。在结合态和束缚态腐胺含量
6!/ 植 物 营 养 与 肥 料 学 报 8-卷
表 ! "#($%&)’胁迫下番茄嫁接苗和自根苗生物量的比较
(#)*+ ! ",-.#/01,2 ,3 )0,-#11 ./,45670,2 )+78++2 9/#37+4 #24 ,82:/,,7 7,-#7, .*#271 524+/ "#($%&)’ 17/+11
处理
!"#$%’%
地上部 ()**%
(+ , -.$’%)
地下部 /**%
(+ , -.$’%) 根冠比
/**% , 0)**%
"$%1*
干物率 23 "$%#
(4)
鲜重
5"#0) 6#1+)%
干重
2"7 6#1+)%
鲜重
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干重
2"7 6#1+)%
地上部
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地下部
/**%
89 99:;<= > ?;9@ $ 99;<@ > 9;?A $ :B;C: > 9;=A $ <;?A > C;9B $ C;<: > C;C9 D =;=? D A;@: D
8< A@;A@ > :;C? E @;
G9 =C;:: > <;@= D B;F= > 9;B9 D
G< :=;=C > 9;=B H :;B: > C;=< H 9:;9: > 9;<9 E C;BB > C;CF H C;<: > C;C9 D =;AC E A;@C D
注(I*%#):同列数值不同字母表示差异达 ?4显著水平,下同。21JJ#"#’% .#%%#"0 1’ %)# 0$ E*.K&’ 1’H1E$%# 01+’1J1E$’% $% ?4.#L#. M !)# 0$ D#.*6M
表 ’ "#($%&)’胁迫下番茄嫁接苗和自根苗叶片不同形态腐胺含量的比较(2-,* ; 9,<=)
(#)*+ ’ ",-.#/01,2 ,3 6,27+271 ,3 4033+/+27 3,/-1 ,3 .57/+1602+(>57)02 *+#?+1 )+78++2 9/#37+4 #24
,82:/,,7 7,-#7, .*#271 524+/ "#($%&)’ 17/+11
处理天数(H)
2$70 *J %"#$%’%
处理
!"#$%’%
游离态腐胺
5"## NK%
结合态腐胺
O*’PK+$%#H NK%
束缚态腐胺
Q*K’H NK%
C 89 :CC;B= > B; $ ?9;BC > <;:A $ FC;:= > 9;@? $
8< :CA;FA > 9C;=: $ ?:;C= > <;=A $ :@;<= > <;CB $
G9 A;
G< <=9;:C > 9F;C< $ ?C;A? > 9;9= $ :=; :;C9 $
< 89
8< :9<;?B > @;@? $ A9;CB > 9;=? $ F9;C? > :;C: $
G9 :C9;CB > 9C;@< D ??;?B > <;B: D F9;9< > :;FB $
G< @;9< D F@;AC > <;:F E :A;== > 9;:C D
F 89 <=F;F: > 9C;BC D ?F;:C > <;:? D :=;=C > <;C? D
8< :<@;?: > 9<;== $ A=;C= > <;F< $ F?;CB > <;CA $
G9 <=B;C@ > @;<= D ?9;=9 > 9;?A D :@;== > :;A< D
G<
A 89 :C:;:C > B;F? D AC;9@ > <;9F D FC;B= > 9;
G9 :C9;:A > 9@;:A D ?<;:F > <;C: D FC;AB > <;=: D
G<
B 89 <=C;FA > A;A= D ?<;A? > <;F@ D F:;FA > <;BF D
8< :A:;9@ > 99; <;A9 $ AC;@= > :;?B $
G9 :99;9B > B;BC D ?F;BC > <;9: D F:;?= > :;@? D
G< <:?;9C > 9F;@9 E <=; 9;<9 E :<;9F > <;9< E
9C 89 :CF;<= > 99;:? D ?=;== > <;@= D :B;AF > 9;:= D
8< :A@;:C > 9C;9: $ 9CC;BA > 9;:@ $ AF;F9 > F;A= $
G9 :C:;A: > 9<;9A D ?=;<: > 9;:F D FC;?< > <;BF D
G< <:C;F< > 9?;9< E
注(I*%#):统计分析是在处理天数内分别进行的,下同。(%$%10%1E $’$.7010 6$0 E$""1#H *K% 61%)1’ H$70 *J %"#$%’% M !)# 0$ D#.*6M
方面,两者含量的变化趋势与游离态腐胺一致。从
胁迫第 F H起 8<显著高于 89和 G<;从胁迫第 < H
起 G<显著低于 G9。
’@& "#($%&)’胁迫对番茄嫁接苗和自根苗叶片不
同形态亚精胺和精胺含量的影响
如表 :所示,未经 O$(IG:)< 胁迫时,89游离态
亚精胺含量显著高于 G9,两者结合态和束缚态亚精
胺含量差异不显著。O$(IG:)< 胁迫后,8<亚精胺 :
种形态含量上升;G< 游离态和结合态亚精胺含量
上升,而束缚态亚精胺含量下降。8<游离态亚精胺
=?:<期 张古文,等:O$(IG:)<胁迫对番茄嫁接苗叶片不同形态多胺含量的影响
含量一直显著高于 !",结合态和束缚态亚精胺含量
分别从胁迫第 # $和 " $起显著高于 !"。在精胺含
量方面,%&(’!()" 胁迫前,)*游离态精胺含量显著
低于 !*,结合态和束缚态精胺含量两者差异不显
著。%&(’!()" 胁迫后,)" 精胺 ( 种形态含量均上
升,!"游离态和结合态精胺含量上升,束缚态精胺
含量变化不显著。从胁迫第 " $起,两者游离态精
胺含量差异不显著,在结合态和束缚态精胺含量方
面,从胁迫第 + $起,)"显著高于 !"。
表 ! "#($%!)&胁迫下番茄嫁接苗和自根苗叶片不同形态亚精胺和精胺含量的比较(’()* + ,,-.)
/#0*1 ! ")(2#345)’ )6 7)’81’85 )6 9466131’8 6)3(5 )6 5213(494’1(:29)#’9 5213(4’1(:2()4’ *1#;15 018<11’ ,3#6819 #’9
)<’=3))8 8)(#8) 2*#’85 >’913 "#($%!)& 583155
天数
,&-.
($)
处理
/01&2 3
亚精胺 45$ 精胺 456
游离态
7011
结合态
%89:;<&21$
束缚态
=8;9$
游离态
7011
结合态
%89:;<&21$
束缚态
=8;9$
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!" +?(@(C A **@?" F **C@+( A "@*( E (+@#? A "@B> F *D?@BD A (@#> & "BC@+( A B@D+ E ?>(@"* A C@*" E
! 讨论
在植物生长发育过程中,钙和氮都是植物生长
的必需元素,但必需元素过量也会对植物的生长造
成伤害。研究表明,土壤中 ’!G( 浓度过高时,植物
体内细胞液浓度异常增高,引起原生质分离;而且
植株叶片卷曲、碳同化受阻,从而导致光合能力下
降,抑制生长[*>]。本试验中,高浓度的 %&(’!()" 胁
迫下,番茄嫁接苗和自根苗的生物量积累均显著下
降,但嫁接苗下降的幅度小于自根苗,说明嫁接苗受
抑制的程度较小,对胁迫的适应性强于自根苗。
多胺是一类具有强烈生理活性的低分子量脂肪
族含氮碱,参与植物体对逆境的响应。研究表明,外
源喷施腐胺和精胺能显著提高水稻的耐盐性[**]。
4&92&G%0;H等[*"]研究发现,短期 ’&%I 处理后,番茄
叶片的游离态腐胺含量上升,并且耐盐品种的游离
态腐胺积累速度显著快于盐敏感品种。JK98FL&
等[D]的研究表明,’M+’!( 胁迫下,北美红枫( !"#$
$%&$%’)叶片的游离态多胺含量显著升高,多胺的积
累既可以起到阳离子平衡阴离子电性的功能又可以
>#( 植 物 营 养 与 肥 料 学 报 *+卷
将过多的 !素储存起来。本试验中,"#(!$%)& 胁迫
后,耐盐性强的番茄嫁接苗叶片 %种游离态多胺含
量均升高,而耐盐性弱的自根苗游离态腐胺含量降
低,另外嫁接苗游离态多胺的总含量也显著高于自
根苗,这样一方面能中和植株体内过多的 !$’% 离
子,另一方面也能储存过多的氮素,有利于提高耐盐
性。
生理 ()条件下,多胺分子呈多聚阳离子状态,
能与细胞中的阴离子如 *!+、膜磷脂、酸性蛋白残
基以及细胞壁等组分通过共价键结合,对 *!+的复
制、转录以及生物膜稳定性的维持有重要作用[,%]。
!#"-胁迫后,游离态多胺向结合态和束缚态多胺的
转化有利于提高植物的耐盐性[,.]。低浓度 !#"-胁
迫条件下,大麦根系原生质膜和液泡膜上结合态多
胺含量的增加可以提高其耐盐性[,/]。胡炳义等[,0]
在研究中发现,束缚态多胺含量的升高有利于提高
大豆幼苗的渗透调节能力。123 等[,4]的研究表明,
渗透胁迫下,抗旱性强的小麦品种束缚态腐胺含量
显著上升,表明游离态腐胺向束缚态的转化有利于
提高小麦的耐旱性。本试验中,"#(!$%)& 胁迫后,
嫁接苗叶片结合态、束缚态多胺含量均显著上升,表
明游离态多胺向结合态、束缚态多胺的转化增强,这
有利于提高细胞膜、蛋白质和核酸的稳定性,从而提
高耐盐性。
综上所述,嫁接换根后,番茄嫁接苗在 "#
(!$%)& 胁迫后叶片 %种形态的多胺含量均上升,一
方面可以将过多的氮素储存起来,另外大量的游离
态多胺也有利于平衡植株体内过多的阴离子;另一
方面也有利于提高细胞膜以及蛋白质、核酸的稳定
性,从而提高了耐盐性。
参 考 文 献:
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