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Separation and Functional Analysis of the Promoter of PpAGO7 Gene from Physcomitrella patens

小立碗藓PpAGO7基因启动子分离及其启动活性分析



全 文 :书西北植物学报!
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文章编号#"""*&"!
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收稿日期!"#&*"0*#) &修改稿收到日期
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基金项目科技部转基因生物新品种培育科技重大专项子课题" !"#&12"3"#!*""! # 作者简介高运通"
#030(
#!男!在读硕士研究生!主要从事植物分子遗传学研究
4*56-7
&"3"0"!88+9:5"王爱民!理学硕士!副教授!主要从事植物生理与分子生物学教学与研究
4*56-7
65/;6/,<br./=+>?=+9/12!3,
基因启动子
分离及其启动活性分析
高运通!潘沈元!王爱民"
"江苏师范大学 生命科学学院!江苏徐州
!!###
#

!
@AB) 蛋白在多种植物中被发现并预测在叶片生长发育过程中起作用!但是在高等植物中最古老且唯一 没有维管束的苔藓植物中却未有报道该文通过 CD@EF 比对水稻 !"#!)
基因编码的氨基酸序列得到小立碗藓
@AB)
蛋白编码基因
%
&
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基因起始密码子上游的启动子序列!利用在线软件
G76/HI@J4

GD@I4
分析该启动子的结构特征&并构建启动子分析载体
K
G
K
@AB)*ALE
!转化拟南芥!通过转基因拟南芥
ALE
染色结果分析推测
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#
#
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#!) 基因启动子序列中含有大量的光反应有 关的顺式作用元件以及数个分生组织相关和防御与胁迫相关作用元件" ! # F ! 代转基因拟南芥的 ALE 染色结果 表明! % & #!)
基因启动子会启动
(!((("!)
基因启动子具有组成性启
动活性!且在生长旺盛的部位启动活性较强!此外其启动活性还受到光照因素的影响!为进一步研究小立碗藓的
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#!)小立碗藓&
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#!) &启动子 中图分类号
N)3& N)30 文献标志码
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*
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4025"
&
%
&
#!) & K V:5:H>V !! @AB 蛋白" 6V < :/6=H> K V:H>-/. #是 JP@ 诱导 的沉默复合物" J\EI #的核心成分!它在几乎所有已 知的 JP@ 沉默通路中发挥关键作用!包括维持基 因组的稳定(调控组织发育)#*(对逆境的适应性应答 以及在 JP@ 层面对入侵核酸"转基因和植物病毒# 的免疫等)!* 前人对植物 @AB 蛋白功能的研究在拟南芥中 最为全面和透彻!在拟南芥的 #" 个 @AB 蛋白中全 部具有切割活性所必需的催化三联体 ]]Y 或 ]]] !但目前被证实有切割活性的只有 @H@AB# ( @H@AB& 和 @H@AB) ) %*& *  @AB) 最早是在早熟的 拟南芥突变体中与 H6*.-JP@ 一同被鉴定出来的! @?>/:H 等)*发现
F@E%H6*.-JP@
的产生依赖于
@AB)
蛋白的作用!并且生成的
H6*.-JP@
能继续

@H@AB)
结合形成沉默复合体调节下游的靶
5JP@
)
@H@AB).JP@!@AB)(!!广!!!!!+,))3"!)
基因的保
守序列!获得小立碗藓的
@AB)
蛋白编码基因
%
&
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基因起始密码子上游
碱基序列!分析其序列结构并构建以
%
&
#!)(
基因表达的启动子分析质粒
K
G*
K
@AB)*ALE
农杆菌介导浸花法转化拟南芥!通

ALE
染色和
ALE
活性测定以了解
%
&
#!)!!)
基因的生物学功能提供依据
#
!
材料和方法
;+;
!
实验材料
小立碗藓"
%)
*
",-./012334
&
4025"
#及拟南芥
"
#146/7-
&
"/"0)43/454
#哥伦比亚型由本实验培养
大肠杆菌"
8",)21/,)/4,-3/
#菌种
]Y" (根癌农杆 菌" # 9 1-64,021/:.0:.2 ; 4,/25" #菌种 4Y@#"
(启
动子分析载体
K
#%""AP
均由江苏师范大学生命科
学学院保存
F
&
]P@7-
<
6.>

<4
=
酶购自
F6^ 6*
J6
公司&限制性内切酶购自
FQ>V5:E9->/H-T-9

司&
]P@
片段快速胶回收试剂盒购自北京博大泰克
生物基因技术有限公司引物合成和测序工作均由
上海捷瑞生物工程有限公司完成
;<=
!
1
2
!3,启动子的克隆及启动子分析质粒的 构建 以小立碗藓成熟茎叶体为材料!用 E]E 法提取 基因组总 ]P@ ) #" * 以水稻的 B.@AB) 蛋白的氨 基酸序列" QHH K%%
;;;+/9Z-+/75+/-Q+
<
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%
K
V:*
H>-/
%
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#为模板对小立碗藓的蛋白质数
据库进行
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K
"
QHH
K

软件设计正向引物
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"
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!下划线

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酶切位点#!扩增 % & #!)
基因起始密
码子上游长
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K
的序列扩增条件为
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变性
5-/ & 0&b 变性 &.
!
&b 退火 &.
!
)!b


!5-/
!
%"
个循环&
)!b
延伸
#"5-/
&
&b
保存
电泳回收目的基因片段测序
将扩增获得的启动子片段用
?4.Y


的载体
K
#%""AP

?4.Y
和 >/5? # 之间!后接(
基因的编码区序列(潮霉素抗性基因
>@和 A!( 终止子!构建成启动子分析质粒 K G K @AB)* ALE "图 # #酶切鉴定和测序表明构建正确 图 # ! 质粒载体 K G K @AB)*ALE 示意图 DC ( JC+F*]P@ 的左(右边界& P+PBE 终止子& YOA+ 潮霉素抗性 基因编码区& I6[%E+%E 启动子& ALE+(
基因编码区
-`
<
+#
!
E9Q>56H-9?-6
<
V65:THQ>
K
76.5-?
W>9H:V
K
G
K
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R
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V>
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K
V:5:H>V
&
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<
V>
<
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基因启动子序列分析
利用在线启动子分析软件
G76/HI@J4
"
QH*
H
K
%%
;;;+?/6+6T*
TV9+
<
:+
,K
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GD@I4
%
.-
<
/67.96/+QH57
#对 克 隆 的
%
&
#!) 基因启动子潜在的功能进行预测 ;+? ! 拟南芥转化 将启动子分析质粒 K G K @AB)*ALE 通过冻融 法导入到农杆菌 4Y@#"
中)##*!之后取适量农杆菌
转化子接种至含有
"5<5
<
%
D

霉素的
#
%
![E
固体培养基上培养
#"?
!将生长正
常的幼苗"转化株#移至土壤中培养待拟南芥成熟
后!分别提取总
]P@
并以
G@A`

G@AJ
为引物
GIJ
扩增检验其是否已插入质粒载体分单株收
取转基因拟南芥种子并用上述相同的方法培养得到
F
#
代转化株分别选取不同时期及不同组织的
F
#
代拟南芥转化株按
U>TT>V.:/
的方法进行
ALE
组织
化学染色)#%*
;!
转基因拟南芥不同光照强度处理及
7A%
活性
测定
将培养箱"光照强度
)"""7M
(
#!Q
光照
3Q

暗(
!#b
#中培养
#? 的 F ! 代拟南芥转化株转到 光照强度分别为 #""" ( &""" ( )""" 和 #""""7M !其 他环境条件不变的培养箱中培养 %? !非转基因拟南 芥置于 &"""7M 光强的培养箱中作为参照 %? 后 测定 ALE 活力!随机选取 & 个处理组转基因拟南芥 及非转基因植株在液氮中研磨!用磷酸缓冲液法提 取总蛋白并测定样品蛋白质含量)#&*然后参照 J-9Q6V? 等)#*的方法检测各样品中
ALE
的活力
酶活力单位定义为每分钟
GPGA
生成
#/5:7
对硝
基苯酚的酶量为一个单位!
ALE
活力"
L
#以每分钟
每毫 克 蛋 白 的 酶 活 力 表 示 "
/5:7
.
5
<
(#
.
5-/
(#
#
)
#
*
每个处理组设置
%
次重复实验
!
!
结果与分析
=<;
!
1
2
!3,C76.HK!G@1G§!@AB!)
基因启动子活性!采用
GIJ
扩增从预测的
%
&
#+
!) 基因启始密码子起上游 #))%Z K 的 ]P@ 片段 "图 ! ! @ #之后将扩增的片段与 F 载体连接然后 转化大肠杆菌 ]Y
"
!挑取单菌落进行菌落
GIJ

?4.Y
%%
;;;+9:.*
5:..+:V
<
#序列一致
=<=
!
1
2
!3,G76/HI@J4!)
启动子序列!结果"图
%
#表明!
%
&
#!) 基因起始密码子 @FA 上游 #))%Z K 启动子序列中 含有启动子 区域 特征元件 F@F@*Z:M## 个! I@@F*Z:M0 个进一步结构分析发现! % & #!)
启动子序列中含有高水平转录调控因子
aLFJ"a*LFJG
R
*V-9Q.HV>H9Q
#&与光反应有关

CB2*
( IA*5:H-T ( IAF*5:H-T ( A*Z:M ( A*C:M ( AF#*5:H-T ( AFAAI*5:H-T 及与病原体(真菌诱导子 侵入有关的 C:M*S# ( [CE ( SZ:M 等顺式作用元 件&同时还发现了数个响应低氧环境的作用元件 @J4 (响应低温脱水的作用元件 I*V> K >6H % ]J4 (与 分生组织有关的作用元件 I@F*Z:M (与防御和物理 胁迫有关的元件 FI*V-9QV> K >6H. 以及响应低温环 境的元件 DFJ 等多个顺式作用元件 =<> ! 启动子分析质粒  5  07CD7A%
的构建与转
基因植株的获得
按照上述方法将构建的启动子分析质粒
K
G*
K
@AB)*ALE
通过浸花法转化拟南芥分单株收获
)&
%

!!!!!!!!!!!
高运通!等!)
基因启动子分离及其启动活性分析
种子并萌发于含有潮霉素的选择培养基上!筛选出
长势良好的幼苗移至土壤中继续生长随机选取
]P@!@GA@GAJGIJ!!cZ!!!)
启动子的扩增"
@
#与启动子分析质粒
K
G
K
@AB)*ALE
的酶切鉴定"
C
#
@+GIJ
扩增
%
&
#!)
[+]D!"""
&
G+%
&
#!) 启动子& C+ 启动子 K G K @AB)*ALE 质粒酶切鉴定
[#+#"cZ
&
[!+]D!"""
&
N+
启动子
K
G
K
@AB)*ALE
质粒用
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K
V:5:H>V65
K
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K
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#!) K V:5:H>V;-HQGIJ & [+]D!""" & G+GV:5:H>V:T% & #!)
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K
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6/67
R
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K
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K
G
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基因启动子序列特征分析
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R
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&
#!)<>/>KV:5:H>VTV:5

"图
&
#表明获得的植株即为插入了质粒载体
K
G*
K
@AB)*ALE
的转化株
=!
1
2
!3,启动子的启动活性分析 为了检测所扩增的序列是否具有启动活性!分 图 & ! 转基因拟南芥的 GIJ 检测结果 [+]D!""" & d+ 阳性对照& (+ 阴性对照& # %+
转基因拟南芥
-`
<
+&
!
GIJ6/67
R
.-.:THV6/.
<
>/-9#146/7-
&
"/"
[+]D!"""
&
d+G:.-H-W>9:/HV:7
&
(+P>
<
6H-W>
9:/HV:7
&
#(+FV6/. < >/-9#146/7- & "/" 别选取生长 #" ( !" ( &

? 等 & 个时期的转基因 拟南芥的根(茎(叶(花和果实!进行 ALE 组织化学 染色"图 $ #由图可见!拟南芥转化株在这 & 个时 期都有显色!而且在各自时期的根(叶(茎(花和种子 部位也都有不同程度的着色"图 $ ! @ % #并且在 根尖(叶片顶端(雄蕊的花药(雌蕊的柱头和种子这 些部位的染色相对于其他部位更深"图 $ ! ] ( U ( ^ 和 D #由此可以推测该启动子可能在个体生长发育 的整个时期都有启动活性 =<@ ! 1 2 !3,$ 启动子的启动活性与光照强度关系 由于 % & #$!) 启动子的序列分析中发现有很 多光敏感的作用元件!为此分析了不同光照强度下 该启动子活性结果"图  #显示!在光照强度 )""" 7M 和 #""""7M 条件下!转基因拟南芥中 ALE 活性 图 $ ! F ! 代转基因拟南芥各个时期不同部位 ALE 组织化学染色 @ ( C ( U+#"? 的拟南芥& I ( ] ( ^+!"? 的拟南芥& 4 ( ` ( D+&$? 的拟南芥& A % \+?
的拟南芥&
@
%
`
(
U
%
D
用解剖显微镜拍摄!
A
%
用数码相机拍摄
-`
<
+! FQ>ALE.H6-/-/ < :TH;:* < >/>V6H-:/HV6/. < >/-9#146/7- & "/"6HW6V-:=.H-5>.6/?-/?-TT>V>/H K 6VH. @ ! C ! U+#"?6 R .:T#146/7- & "/" & I ! ] ! ^+!"?6 R .:T#146/7- & "/" & 4 ! ` ! D+&?6
R
.:T#146/7-
&
"/"
&
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R
.:T#146/7-
&
"/"
$
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!
U(D-.H:=.>6?-..>9H-/
<
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A(\-.H:=.>6?-
<
-H67965>V6
#
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%

!!!!!!!!!!!
高运通!等$小立碗藓
%
&
#$!)
基因启动子分离及其启动活性分析


!
转基因拟南芥
ALE
活性与光照强度关系柱状图
-`
<
+
!
FQ>Q-.H:
<
V65:TALE>/X
R
5>69H-W-H
R
6H?-TT>V>/H
7-
<
QH-/H>/.-H->.-/HV6/.
<
>/-9#146/7-
&
"/"
无显著差异!都在
%"/5:7
.
5
<
(#
.
5-/
(#左右而
在光照强度
#"""7M

&"""7M
条件下!转基因拟
南芥中的
ALE
活性则要显著低于
#""""7M
条件
"
%
#
"+"#
#与光照强度
#"""7M
相比!光照强度
&"""
(
)"""

#""""7M
下生长的转基因拟南芥中

ALE
活性分别是其
!+%$
倍(
%+)!
倍和
%+)

在非转基因拟南芥中!
ALE
活性几乎为零
%
!

!

@AB
蛋白是一个高度保守且庞大的家族!作为
沉默复合体的核心成分!在
JP@
沉默中发挥着关
键作用)#)*
@AB)
蛋白是植物体内特有的一种小
JP@
即反式作用小
JP@
"
H6*.-JP@
#生物合成途
径中必需的拟南芥
#0#$!)
基因敲除突变体表
现为早熟!继而导致叶片形态结构的缺陷)#3*水稻

!"#$!)
基因的超表达会引起叶片内卷)#0*在
玉米中
C.#$!)
基因下调突变株中!叶片维管束生
成异常!从而影响了叶片的形态)!"*番茄中
(D#+
$!)
在营养组织叶中微弱表达!而在生殖器官花中
强烈表达!表达量从花蕾到盛开的花呈递增趋势!但
在果实不同发育时期中表达都非常微弱甚至不表
达)!#*由此推测
@AB)
蛋白介导的
H6*.-JP@
途径
可能在植物叶片和花器官的形态结构和发育过程起
到一定作用本实验从小立碗藓中分离出
%
&
#+
$!)
基因起始密码子上游
#))%Z
K
的启动子片段!
并以此构建启动子分析载体!在转基因拟南芥的
ALE
染色结果中!根尖(叶顶端和花的花药与柱头
都有较深的着色!而这些一般都是生长分化较快的
部位!说明此段启动子区域的启动活性具有组织特
异性!并且也预示着
%
&
#$!)
基因可能在小立碗藓
的组织生长发育(叶片极性生长和花的发育的过程
中起到一定的的调控作用
N=
等)!!*发现!拟南芥
#0#$!)

#0#$!#

同参与由
.-JP@
介导的对芜菁皱缩病毒"
FIe
#的
免疫反应!其中
#0#$!#
占主导作用而
#0#$!)

辅助作用在
%
&
#$!)
基因启动子序列中也发现
了与病原体(真菌诱导子侵入有关的顺式作用元件
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基因启动子分离及其启动活性分析

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